分散得受试物b2，以清水为空白对照试剂；
[0051] (2)试验动物:健康、皮肤无损伤的成年白色新西兰家兔，普通级，共24只，体重为 2.2-2.5kg，由广东省医学实验动物中心提供(动物生产许可证号：SCXK(粵)2003-0002)，试 验动物合格证编号:〇〇〇3296,实验动物使用许可证号：SYXK(粵)2003-0011，动物房的温度 为23°C，湿度为52%RH，饮用水为自来水，实验前进行随机分组，每组4只；
[0052] (3)试验步骤：
[0053]①试验前将实验动物背部脊柱两侧被毛剪掉，去毛范围各为3cmX3cm，涂抹面积 2.5cmX2.5cm；
[0054] ②取受试物0.5g涂抹在一侧皮肤上，另一侧作为空白对照，每天涂抹1次，连续涂 抹14天。从第二天开始，每次涂抹前剪毛，用水或无刺激性溶剂清除残留受试物，一小时后 观察结果，按照《化妆品卫生规范》(2007版)规定的评分标准进行评分。
[0055] (4)实验结果：
[0056] 表1受试物al、a2、a3多次皮肤刺激性反应结果
[0057]
[0058] 表2受试物bl、b2、空白对照多次皮肤刺激性反应结果
[0059]
[0060]
[00611 (5)结果评价
[0062]每天每只动物平均积分=Σ红斑和水肿积分/受试动物数/14,以表3判定皮肤刺 激强度；
[0063]表3皮肤刺激强度分级
[0065]从表1-3可以看出实验组的受试物al_a3均无刺激性，由此证明使用本发明所述的 原料、溶剂和制备方法提取而得的植物提取物对皮肤相对安全无刺激性。受试物bl_b2均有 轻微刺激性，其使用的溶剂和制备方法均与受试物al_a3相同，仅其原料配比不同，说明了 原料以特定配比使用时其对皮肤的刺激性降低。
[0066]实施例7促进血液循环功效验证
[0067] (1)试验样品：按照实施例1-3和对比例1-2所制得的泡腾片，分别用100mL生理药 水水分散后分为受试物(31、(：2、(33、(11、(12;实施例1所得泡腾片41分散得受试物(31、实施例2 所得泡腾片A2分散得受试物c2、实施例3所得泡腾片A3分散得受试物c3、对比例1所得泡腾 片B1分散得受试物dl、对比例2所得泡腾片B2分散得受试物d2,以生理药水为空白对照试 剂；
[0068] (2)试验动物:健康、皮肤无损伤的成年小鼠，普通级，共60只，体重为20±2g，由四 川省医学实验动物研究所提供(动物生产许可证号:SCXK(川）2001-0011)，试验动物合格证 编号：2001A032,动物房的温度为23°C，湿度为52%RH，饮用水为自来水，实验前进行随机分 组，每组10只；试验前适应性饲养7天，自由饮水进食。
[0069] (3)试验试剂和仪器：
[0070]乌拉坦，购自四川科龙化工试剂厂。
[0071 ] 生理盐水，购自四川科伦药业有限公司。
[0072] 显微镜Motic BA300及Motic image advanced3.2工作站、微循环观测台，购自广 州奥诺生物工程有限公司。
[0073] ES-1000SPM多普勒超声血流计，购自广州奥诺生物工程有限公司。
[0074] (4)试验步骤：
[0075]①6组小鼠分别用不同受试物0.5mL灌胃，1组小鼠作为空白对照组用0.5mL生理盐 水灌胃，每天灌胃两次，两次灌胃期间起码隔开8小时，连续灌胃给药8天，自由饮水进食。
[0076] ②试验前用医用橡皮膏黏贴掉小鼠两耳的绒毛，温水洗净。
[0077] ③末次给药后，使用乌拉坦进行腹腔麻醉，背位固定在观察台上，使耳廓平展在耳 托上，在耳托和耳廓表面滴加少许液体石蜡。
[0078] ④置于冷光源显微镜下观察小鼠耳廓微循环在给药后的变化，分别记录末次给药 后10、20、30min耳廓毛细血管开放量，使用毛细血管交点计数法测量毛细血管开放量，用测 微尺测量耳廓微动脉、微静脉的口径。
[0079]⑤在小鼠颈部总动脉搏动明显处放置血流计探头，以测定给药前lh和给药后lh颈 总动脉峰值和平均血流速度，按照如下计算式计算血流速度增加率：
[0080] 血流速度增加率=(给药后血流速度-给药前血流速度)/给药前血流速度X100% [0081 ] (5)实验结果
[0082] 表4小鼠耳廓毛细血管交叉网开放数目变化
[0083]
[0084]
[0085] 表5小鼠耳廓微动、静脉血管口径的变化
[0086]
[0087] 表6小鼠血液流动速度的变化
[0088]
[0089]
[0090] (6)结果分析：
[0091]由表4、5可见，给药后10、20、3〇!^11，与空白对照组比较，各受试物对小鼠耳廓微动 脉管径有显著的扩大作用;给药后10、20、30!^11，各受试物对小鼠耳廓微静脉管径有显著的 扩大作用；同时发现小鼠耳廓毛细血管交叉网开放数目有明显增加。提示本发明所述的植 物提取物对小鼠耳廓微循环有明显的改善作用。由表6可见，给药后lh，各受试物对小鼠均 有加快血液流动速度的效果。受试物al_a3与受试物bl_b2的各个促进血液循环作用对比得 知，本发明提供的原料配比制备的产品促进血液循环的效果更强。
[0092]实施例6抗菌功效验证
[0093] (1)试验样品：按照实施例1-3和对比例1-2所制得的泡腾片，分别用1000mL水分散 后分为受试物61^2^3、￡1^2;实施例1所得泡腾片41分散得受试物61、实施例2所得泡腾 片A2分散得受试物e2、实施例3所得泡腾片A3分散得受试物e3、对比例1所得泡腾片B1分散 得受试物Π 、对比例2所得泡腾片B2分散得受试物f 2，以清水为空白对照试剂；
[0094] (2)试验试剂和仪器：
[0095] 生理盐水，购自四川科伦药业有限公司。
[0096] 红色毛癣菌，购自中科院南京皮肤病研究所医学真菌储藏库。
[0097] 金黄葡萄球菌，购自中科院南京皮肤病研究所医学真菌储藏库。
[0098] 白色念珠菌，购自中科院南京皮肤病研究所医学真菌储藏库。
[0099 ]沙保琼脂培养基，购自四川科伦药业有限公司。
[0100] 生化培养箱，购自广州世洋净化设备有限公司。
[0101] 不锈钢高压蒸汽灭菌锅，购自广州世洋净化设备有限公司。
[0102] (4)试验步骤：
[0103]①使用沙保琼脂培养基制造试管斜面培养基，将活化后的红色毛癣菌、金黄葡萄 球菌和白色念珠菌种分别接入试管斜面培养基培养，置于28°C恒温箱中培养48h，分别用接 种环取少许菌体于装有无菌生理盐水的试管中，震荡均匀制成菌悬液。用平板菌落法测定 菌液的菌体浓度，并稀释至菌体个数为1 〇4/mL。
[0104]②将固体培养基加热熔化并冷却至50°C，实验组分别取lmL受试物加入到20mL固 体培养基中混匀，对照组取lmL无菌生理盐水加入到20mL固体培养基中混匀，然后分别加入 到D9cm的无菌培养皿中，放置24小时。
[0105]③在各实验组、对照组培养皿上分别涂布0.2mL菌液，于28 °C恒温箱中培养72h，每 24小时观察记录培养皿中菌落数目，计算其杀菌率。
[0106] ④杀菌率=(对照组菌落数目-实验组菌落数目）/对照组菌落数目X 100%
[0107] (5)实验结果
[0108] 表7受试物el_e3和受试物fl_f2的杀菌率
[0109]
[0110] (6)结果分析：
[0111] 由表7可见，培养72小时后，各受试物对红色毛癣菌、金黄葡萄球菌和白色念珠菌 都具有显著的抗菌活性。从el-3和Π -2结果比较得知，el-3的杀菌作用更为明显。
[0112] 实施例7渗透功效验证
[0113] (1)试验样品：按