多西环素在制备治疗或预防衰老性疾病的药物中的用图
【专利摘要】本发明涉及多西环素在制备治疗和/或预防衰老性疾病的药物中的用途，其中所述多西环素以小于2μg/ml的剂量施用，所述衰老性疾病主要包括皮肤老化、神经退行性疾病、2型糖尿病、线粒体疾病和由高血脂与高胆固醇引发的动脉粥样硬化、冠心病等心血管疾病。多西环素在小于2μg/ml时可以减少成纤维细胞分泌的颗粒物，促进成纤维细胞的增值以及降低III型胶原蛋白的表达量；还可以减少细胞内的应激性颗粒，促进线粒体缺陷型细胞的增值；刺激胰岛beta细胞的胰岛素分泌以及肝脏细胞的胰岛素敏感性；最后，多西环素能与脂肪代谢调节分子SREBP特异性结合，抑制脂肪与胆固醇合成。
【专利说明】
多西环素在制备治疗或预防衰老性疾病的药物中的用途
技术领域
[0001] 本发明设及多西环素的新用途，具体地说，设及多西环素在制备和/或治疗衰老性 疾病的药物中的用途。
【背景技术】
[0002] 多西环素(Doxycycline，DOC)是四环素家族的一种抗生素，别名脱氧±霉素、强力 霉素，属于第Ξ代半合成四环素类广谱抗生素。它是在四环素母环
[0003] 6α-位上脱氧而得到的一种半合成四环素。D0C具有四环素类药物的共同特征，可 W络合金属离子，如化2+、化2+。主要作用于细菌核蛋白体30S亚基，干扰氨基酸tRNA与30S亚 基上的作用位点结合，阻断氨基酷tRNA与核糖体mRNA复合体结合，抑制蛋白质合成而发挥 抑菌作用。
[0004]
[0005] 随着对多西环素的深入广泛研究发现，发现多西环素除了很强的抗菌和抗炎作用 夕h还具有多种其它方面的药理作用。例如，有研究表明多西环素具有抗炎症、抗氧化的作 用。另一方面多西环素可W抑制基质金属蛋白酶的活性从而作用于肿瘤细胞，影响肿瘤细 胞的增殖调亡、侵袭转移等过程。虽然关于多西环素的研究越来越多，其生物学意义和临床 应用也获得深入研究，但是，到目前为止，还没有多西环素在衰老性疾病方面的相关研究和 应用。
【发明内容】
[0006] 本发明的主要目的是扩展多西环素的应用范围，尤其是其在衰老性疾病预防和/ 或治疗方面的新的制药用途，从而为治疗和/或预防衰老性疾病提供新的方法和策略。
[0007] 本发明的技术方案如下：多西环素在制备治疗和/或预防衰老性疾病的药物中的 用途，其中所述多西环素 W等于或小于化g/ml的剂量施用；其中所述衰老性疾病包括皮肤 老化、神经退行性疾病、2型糖尿病、动脉粥样硬化、冠屯、病。本发明人经过大量的研究发现， 低浓度(等于或低于化g/ml)的多西环素能够促进细胞(例如，NIH3T3,化La细胞和INS-1细 胞)的生长，降低III型胶原蛋白表达量，减少细胞中的应激性颗粒，增加膜岛分泌量和敏感 性等作用。而一旦多西环素的作用浓度大于化g/ml，其在上述某些方面具有完全相反的作 用，导致总体作用效果大幅下降。
[000引作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述衰老性疾病为皮肤老化。随着年龄 增长，皮肤老化突显，可表现为皮肤干燥粗糖，皱纹增多、加深，皮肤松弛，弹性下降。
[0009] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述皮肤老化由成纤维细胞数量减少而 引起。成纤维细胞是皮肤真皮中最主要的细胞成分，在合成分泌纤维和细胞外基质中扮演 着重要的角色。皮肤老化的临床表现都与成纤维细胞数量减少、合成功能下降或异常有关。 成纤维细胞既合成和分泌胶原蛋白、弹性蛋白，生成胶原纤维、网状纤维和弹性纤维，也合 成和分泌糖胺多糖和糖蛋白质等基质成分。本发明人在研究中发现，多西环素在低至化g/ ml的浓度作用时，可W明显促进成纤维细胞的生长。
[0010] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述皮肤老化由III型胶原蛋白表达量 提高而引起。研究发现在皮肤成纤维细胞的衰老过程中胶原蛋白的表达分泌会发生明显改 变。胶原蛋白随着年龄的增加而流失、结构发生变化，组成比例和代谢平衡都有变化。皮肤 结构的松弛、皱纹的产生都与胶原蛋白息息相关。在婴儿和青年人皮肤中，I型胶原蛋白含 量约占70%，111型胶原蛋白占30%。在衰老过程中，成纤维细胞合成ΙΠ 型胶原蛋白增加 ，I 型胶原蛋白减少。本发明人在研究中发现，多西环素在低至化g/ml的浓度作用时，可W提高 I型胶原蛋白表达量，降低ΠΙ型胶原蛋白表达量，实现皮肤年轻化。
[0011] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述皮肤老化由细胞分泌的颗粒物增加 而引起。细胞分泌的颗粒物会排到细胞外，而且细胞表面粗糖。本发明人在研究中发现，多 西环素在低至化g/ml的浓度作用时，细胞外的颗粒物质明显减少，细胞表面更光滑。
[0012] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述衰老性疾病为神经退行性疾病。近 年来采用组织化学方法在人脑中陆续发现不溶性沉积物(包涵体），进一步研究发现，运些 沉积物是由于某些蛋白质异常聚集或淀粉样化形成的，是某些神经退行性疾病的主要致病 原因。
[0013] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述神经退行性疾病由应激性颗粒而引 起。应激性颗粒是用于储存、修复或者降解RNA的场所，如果mRNA不能正常翻译，运些mRNA会 被储存在应激性颗粒中，进行修复，一旦无法修复，会被降解。应激性颗粒的增加，会导致各 种神经退行性疾病，例如，肌萎缩性脊髓侧索硬化症、阿兹海默症等。本发明人在研究中发 现，多西环素在低至化g/ml的浓度作用时，可W明显减少细胞内的应激性颗粒。
[0014] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述神经退行性疾病由损伤性线粒体而 引起。线粒体是细胞功能代谢中屯、，同时也是环境化学外源物毒害作用的优先祀标，线粒体 损伤包括形态结构破坏、线粒体DNA突变等，线粒体与细胞衰老之间有明密切的关系。本发 明人在研究中发现，正常细胞经过邸(漠化乙锭)处理后，会发生线粒体损伤而死亡，而在适 合浓度的多西环素存在的情况下，经过邸处理的细胞依然可W生长。也就是说，适合浓度的 多西环素可W保护细胞免受线粒体损伤的影响。
[0015] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述衰老性疾病为2型糖尿病。糖尿病是 一种与衰老相关的疾病，特别是2型糖尿病，衰老会导致膜岛细胞分泌膜岛素能力和敏感性 严重下降，而且难W抵抗外界刺激压力，最终导致功能缺失或者调亡。
[0016] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述2型糖尿病为膜岛beta细胞调亡引 起。本发明人在研究中发现，多西环素在低至化g/ml的浓度作用时，可W明显促进膜岛be化 细胞的增殖。
[0017] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述2型糖尿病为膜岛素分泌不足引起。 本发明人在研究中发现，多西环素在低至化g/ml的浓度作用时，可W明显促进膜岛素的分 泌。
[0018] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述2型糖尿病为膜岛素阻抗引起。膜岛 素阻抗主要发生在肝脏、肌肉和脂肪组织。本发明人在研究中发现，多西环素在低至化g/ml 的浓度作用时，可W明显促进肝脏细胞的生长及对膜岛素的敏感性。
[0019] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述衰老性疾病为由高血脂与高胆固醇 引发的动脉粥样硬化、冠屯、病等屯、血管疾病。由高血脂与高胆固醇引发的动脉粥样硬化、冠 屯、病等屯、血管疾病主要是由于脂肪代谢通路异常，大量脂肪与胆固醇存在于血液中，从而 诱发相关疾病。
[0020] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述屯、血管疾病为脂肪代谢异常引起。 在胆固醇水平不足的情况下，细胞内的脂肪代谢调节分子SREBP(固醇调节元件结合蛋白） 会被激活并与细胞DNA结合，促进脂肪合成;在胆固醇水平过高的情况下，SREBP受到抑制， 阻碍脂肪合成。本发明人通过生物信息学分析发现，多西环素与SR邸P可发生特异性结合， 抑制SREBP激活，阻碍脂肪和胆固醇合成，减少细胞内的脂肪滴，从而降低血脂和胆固醇水 平。
[0021] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述多西环素 W等于或小于化g/ml的剂 量施用。
[0022] 作为对上述技术方案的进一步限定，其中所述多西环素也包含化学修饰的各种四 环素，包括:四环素、米诺霉素等。
[0023] 本发明人发现，多西环素能有效促进成纤维细胞生长，促进I型胶原蛋白表达，降 低ΠΙ型胶原蛋白的表达，减少细胞分裂的颗粒物质，实现细胞的年轻化。多西环素还能减 少细胞在EB诱导后的应激性颗粒，延缓神经退行性疾病。另外一方面，多西环素可W保护细 胞免受线粒体损伤的影响，实现细胞的活力增强，并实现年轻化。而且，多西环素能还促进 膜岛beta细胞的生长，而且能有效提高膜岛素的分泌量和敏感性。最后，多西环素能与脂肪 代谢调节分子SREBP特异性结合，抑制脂肪和胆固醇的合成。因此，多西环素为治疗和/或预 防衰老性疾病提供新的方法和策略。
【附图说明】
[0024] 图1为显示多西环素对NIH3T3成纤维细胞外颗粒物的影响的显微镜观察图。
[0025] 图2为显示多西环素对NIH3T3成纤维细胞生长的影响的柱状图。
[00%] 图3为显示多西环素对NI册T3成纤维细胞III型胶原蛋白表达量的影响的western blot 图。
[0027] 图4为显示多西环素对化La细胞和邸处理后的化La细胞的影响的显微镜观察图。
[0028] 图5为显示多西环素对化La细胞和邸处理后的化La细胞数量的影响的柱状图。
[0029] 图6为显示多西环素对线粒体缺陷型化La细胞增殖的影响的显微镜观察图。
[0030] 图7为显示多西环素对线粒体缺陷型化La细胞增殖的影响的柱状图。
[0031] 图8为显示多西环素促进线粒体缺陷型化La细胞内应激性颗粒减少的显微镜观察 图。
[0032] 图9为显示多西环素促进线粒体缺陷型化La细胞内应激性颗粒减少的免疫巧光染 色图。
[0033] 图10为显示INS-1膜岛beta细胞在不同浓度多西环素条件下培养24h的显微镜观 察图。
[0034] 图11为显示INS-1膜岛beta细胞在不同浓度多西环素条件下培养4她的显微镜观 察图。
[0035] 图12为显示INS-1膜岛beta细胞在不同浓度多西环素条件下培养72h的显微镜观 察图。
[0036] 图13为显示INS-1膜岛be化细胞在不同浓度多西环素条件下培养2地、4她和7化的 流式细胞计数图。
[0037] 图14为显示INS-1膜岛beta细胞在不同浓度多西环素条件下培养4她后膜岛素总 量的柱状图。
[0038] 图15为显示INS-1膜岛beta细胞在不同浓度多西环素条件下培养4她后高糖刺激 膜岛素分泌量的柱状图。
[0039] 图16为显示多西环素对高糖刺激下的膜岛素分泌敏感性影响的柱状图。
[0040] 图17为显示肝脏细胞在多西环素条件下培养7化的显微镜观察图。
[0041] 图18为显示罗丹明-多西环素复合物与SREBP特异性结合，并定位在细胞核周围与 内质网的微镜观察图。
【具体实施方式】
[0042] 实施例1:多西环素减少NI册T3成纤维细胞外颗粒物
[0043] 在96孔板每孔接种IxlO4个NIH3T3细胞(成纤维细胞），分别用0、化g/ml、化g/ml、5 μg/ml、10μg/ml、20μg/ml浓度的多西环素处理。在倒置显微镜下分别对不同浓度DOC处理后 的细胞进行拍照，结果如图1所示。在图1中，0XD0C、1XD0C、2XD0C、5XD0C、10XD0C、20XD0C分 别表示多西环素处理细胞的浓度为0、：Lμg/ml、aig/ml、扣g/ml、lOμg/ml、20μg/ml。10X为10: 10倍物镜;20X为20:20倍物镜。由图1可W看出，与未加多西环素的细胞相比，加入多西环素 后，细胞培养液中的颗粒物质明显减少，成纤维细胞表面更为光滑。
[0044] 实施例2:多西环素促进成NI册T3纤维细胞生长
[0045] 在96孔板每孔接种IxlO4的NI册T3细胞，分别用0、化g/ml、2μg/ml、扣g/ml、lOyg/ ml、2化g/ml浓度的多西环素处理24小时、48小时、72小时。立个时间点后，分别用流式细胞 仪对不同浓度D0C处理后的细胞进行计数，结果如图2所示。由图2可W看出，与没有加入D0C 的细胞相比，在24h时，各个浓度的D0C都可W促进细胞生长;到了4她和7化后，2μg/ml的D0C 依然可W促进成纤维细胞的生长，然而随着D0C浓度的增加，反而会逐渐抑制成纤维细胞的 生长。
[0046] 实施例3:多西环素减少NIH3T3成纤维细胞ΙΠ 型胶原蛋白的表达量
[0047] 在6孔板每孔接种30xl04的NIH3T3细胞，用0、化g/ml浓度的多西环素分别处理24 小时和72小时，然后用RAPI裂解法提取总蛋白，测定蛋白浓度后，每条泳道上样50yg总蛋 白，进行western blot，结果如图3所示。由图3可W看出，与没有加入D0C相比，2μg/ml的D0C 可W明显减低ΠΙ型胶原蛋白的表达量。
[004引实施例4:多西环素对化La细胞和邸处理后化La细胞的影响
[0049] 将化La细胞和加入邸处理的化La细胞(加入邸后，细胞处于应激状态)分别用0、化 g/ml、化g/ml、5μg/ml、10μg/ml、20μg/ml浓度的多西环素处理4天，在倒置显微镜下分别对 不同浓度D0C处理后的细胞进行拍照，结果如图4所示。同时，分别用流式细胞仪对细胞进行 计数，计数前经舰化丙晚(PI)染色，除去死亡细胞，结果如图5所示。由图4和图5(A)可W看 出，对于未经邸处理的化La细胞而言，与没有加入D0C的细胞相比，lyg/m巧日化g/ml的D0C可 W促进细胞的生长，然而随着D0C浓度的增加，反而会逐渐抑制细胞的生长；由图4和图5 (B)，可W看出对于经邸处理的化La细胞而言，未加入DO別寸，细胞生长状态明显下降，加入 D0C可W促进细胞的生长，尤其是D0C的浓度为化g/m巧日化g/ml时，促进作用非常明显，然而 随着D0C浓度的增加，促进作用逐渐减弱，但依然存在促进作用。可W看出，合适浓度的多西 环素可W保护细胞免受线粒体损伤的影响，并促进细胞的生长。
[0050] 实施例5:多西环素对线粒体缺陷型细胞的影响
[0051] 先用EB处理化La细胞12天，使得化La细胞的线粒体发生缺失。然后分别用0、化g/ ml、2μg/ml、扣g/ml、lOμg/ml、20μg/ml浓度的西环素处理4天。在倒置显微镜下分别对不同 浓度D0C处理后的细胞进行拍照，结果如图6所示。同时，分别用流式细胞仪对细胞进行计 数，计数前经舰化丙晚(PI)染色，除去死亡细胞，结果如图7所示。由图6和图7可W看出，对 于经EB处理的线粒体已发生缺失的化La细胞，与没有加入D0C的细胞相比，随着DO切农度的 增加，细胞量也逐渐增加，也就是线粒体缺失的条件下，低浓度D0C不足W保护细胞，而高浓 度D0C才可W保护细胞，表明D0C不但可W通过调节线粒体而促进细胞生长的，而且可能在 线粒体缺失的条件下，高浓度D0C可W通过其他通路保护细胞，促进细胞生长。
[0052] 实施例6:多西环素对线粒体缺陷型化La应激性颗粒的影响。
[0化3]用0、化g/ml浓度的多西环素分别处理EB处理后化La细胞4天、8天和12天，在运Ξ 个时间点后用显微镜观察细胞内的应激性颗粒，同时对细胞进行免疫巧光染色(4%多聚甲 醒固定20分钟，0.2%曲拉通处理20分钟，一抗G3BP1 (应激小体)解育2小时，二抗红色巧光 解育1小时，DAPI染色5分钟），置于共聚焦显微镜观察。结果如图8和图9所示，D4、D8、D2分别 代表第4天、第8天、第12天。由图8和图9可W看出，与没有加入D0C的细胞相比，加入化g/ml DOC处理的细胞中的应激性颗粒（即图8中细胞内的黑色颗粒物，图9中的红色巧光）明显减 少。
[0054] 实施例7:多西环素对INS-1膜岛Be化细胞生长的影响
[005引用膜酶消化并收集6孔板的INS-1细胞(膜岛瘤细胞），用新鲜的DMEM重悬后，将其 W20 %的密度均匀铺到96孔板，并分别加入0μg/ml，化g/ml，2μg/ml，扣g/ml，10μg/ml，20μ g/ml浓度的DOC,每个浓度3个复孔;分别培养24h，4她，72h后，用倒置巧光显微镜拍摄不同 DO切农度条件下INS-1细胞10X、20X、40X的图片，每个浓度每个孔分别取3~5个视野，结果如 图10~12所示。由图10~12可W看出，与没有加入D0C的细胞相比，当D0C浓度为化g/ml和化 g/ml时，可W明显促进INS-1细胞的生长，然而，随着DO切农度的增加，运种促进作用明显逐 渐减弱。
[0056] 实施例8:细胞流式术检测多西环素对INS-1膜岛Be化细胞生长的影响
[0057] 用膜酶消化并收集6孔板的INS-1细胞，用新鲜的DMM重悬后，将其W20%的密度 均匀铺到96孔板，并分别加入0μg/ml，lμg/ml，化g/ml，5μg/ml，10μg/ml，20μg/ml浓度的 DOC,每个浓度至少5个复孔;分别培养24h、4她、7化后，用膜酶消化并收集各组96孔细胞，通 过流式细胞术检测INS-1细胞数，结果图13所示。由图13可W看出，与没有加入DOC的细胞相 比，当D0C浓度为化g/m巧日化g/ml时，可W明显促进INS-1细胞的生长，然而，随着D0C浓度的 增加，运种促进作用明显逐渐减弱，该结果与实施例7的结果一致。
[0化引实施例9:化ISA法检测多西环素对INS-1细胞胞内膜岛素的影响。
[0059] 用膜酶消化并收集6孔板的INS-1细胞，用新鲜的DMM重悬后，将其W30%的密度 均匀铺到96孔板，并分别加入0μg/ml，化g/ml，化g/ml，化g/ml，10μg/ml，20μg/ml浓度的D0C 浓度的DOC，每个浓度至少5个复孔;培养4她后，弃培养液，PBS洗2次，膜酶消化并收集各组 细胞沉淀，1.5%盐酸乙醇解育20分钟，-80°C/4 °C反复冻融3次，离屯、取上清，用化ISA检测 分泌的膜岛素的总量，结果如图14所示。由图14可W看出，与没有加入D0C的细胞相比，当 DO切农度为化g/ml和化g/ml时，INS-1细胞的膜岛素分泌量明显增加，然而，随着D0C浓度的 增加，INS-1细胞的膜岛素分泌量逐渐降低。
[0060] 实施例10:ELISA法检测多西环素对INS-1细胞的葡萄糖刺激的膜岛素分泌量 [0061 ]用膜酶消化并收集6孔板的INS-1细胞，用新鲜的DMM重悬后，将其W30%的密度 均匀铺到96孔板，分别加入0μg/ml，lμg/ml，化g/ml，扣g/ml，10μg/ml，20μg/ml浓度的D0C， 每个浓度至少5个复孔;培养4她后，弃培养液，KRB缓冲液洗1次，先用不含葡萄糖的KRB缓冲 液解育化，再用含25mM葡萄糖的KRB缓冲液解育8小时，收集上清，PBS洗涂2次，用RIPA裂解 细胞，收集并离屯、，取上清进行BCA蛋白测定。结果如图15所示。由图15可W看出，在高浓度 的葡萄糖刺激下，与没有加入D0C的细胞相比，当DO切农度为化g/ml和化g/ml时，INS-1细胞 的膜岛素分泌量增加，然而，随着DO切农度的增加，INS-1细胞的膜岛素分泌量逐渐降低，当 D0C浓度高至20μg/ml时，膜岛素的分泌被抑制。
[0062] 实施例11:ELISA法检测多西环素对INS-1细胞的葡萄糖刺激后不同时间点的膜岛 素分泌量
[0063] 用膜酶消化并收集6孔板的INS-1细胞，用新鲜的DMM重悬后，将其W30%的密度 均匀铺到96孔板，分别加入化g/m巧日化g/ml浓度的D0C，每个浓度至少5个复孔;培养4她后， 弃培养液，KRB缓冲液洗1次，先用不含葡萄糖的KRB缓冲液解育化，再用含25mM葡萄糖的KRB 缓冲液解育后的15min、30min、化、2h和4h 5个时间点，收集上清，PBS洗涂2次，用RIPA裂解 细胞，收集并离屯、，取上清进行BCA蛋白测定，结果如图16所示。由图16可W看出，在高浓度 的葡萄糖刺激下，与没有加入D0C的细胞相比，当DCX：浓度为lμg/ml时，在各个时间点INS-1 细胞的膜岛素分泌量均有增加，尤其在葡萄糖刺激后15分钟和30分钟时，膜岛素的分泌量 相差显著。
[0064] 实施例12:多西环素促进成LM3肝脏细胞生长
[0065] 在96孔板每孔接种IxlO4个LM3肝脏细胞，分别用0和化g/ml浓度的多西环素处理。 在倒置显微镜下分别对不同浓度D0C处理后的细胞进行拍照，结果如图17所示。在图17中， 0XD0C、1XD0C、分别表示多西环素处理细胞的浓度为0、化g/ml。10X为10:10倍物镜。由图17 可W看出，与未加多西环素的细胞相比，加入多西环素后，细胞培养液中的颗粒物质明显减 少，LM3肝脏细胞表面更为光滑，细胞生长加快，说明多西环素有利于降低膜岛素阻抗，因为 肝脏细胞的膜岛素阻抗是产生2型糖尿病的一个重要原因。
[0066] 实施例13:罗丹明-多西环素与SREBP的结合及其在细胞中的定位
[0067] SREBP与脂肪和胆固醇的合成相关，本发明人经过生物信息学分析发现，SREBP蛋 白可能与多西环素特异性结合。为了验证此推断，利用化学合成方法，合成了罗丹明-多西 环素复合物，使多西环素化被标记上红色巧光，然后通过免疫化学方法，对Ad293细胞用4 % 多聚甲醒固定，PBS洗Ξ次，加入罗丹明-多西环素复合物，解育30小时后用PBS洗Ξ次，置于 共聚焦显微镜下观察。可W观察得到，细胞的核膜周围和内质网处发出红色巧光，表明罗丹 明-多西环素复合物与定位在核膜周围和内质网的物质特异性结合，而SREBP在没有被激活 的情况下，是定位在核膜周围和内质网处，因此，SREBP可与多西环素特异性结合。
【主权项】
1. 多西环素在制备治疗和/或预防衰老性疾病的药物中的用途，其中所述多西环素以 等于或小于2μg/ml的剂量施用； 其中所述衰老性疾病包括皮肤老化、神经退行性疾病、2型糖尿病、动脉粥样硬化、冠心 病。2. 如权利要求1所述的用途，其中所述衰老性疾病为皮肤老化。3. 如权利要求2所述的用途，其中所述皮肤老化由成纤维细胞数量减少而引起。4. 如权利要求2所述的用途，其中所述皮肤老化由I型胶原蛋白表达量下降而III型胶 原蛋白表达量提尚而引起。5. 如权利要求2所述的用途，其中所述皮肤老化由细胞分泌的颗粒物增加而引起。6. 如权利要求1所述的用途，其中所述衰老性疾病为神经退行性疾病。7. 如权利要求6所述的用途，其中所述神经退行性疾病由应激性颗粒引起。8. 如权利要求6所述的用途，其中所述神经退行性疾病由损伤性线粒体而引起。9. 如权利要求1所述的用途，其中所述衰老性疾病为2型糖尿病。10. 如权利要求9所述的用途，其中所述2型糖尿病由胰岛Beta细胞增殖障碍引起。11. 如权利要求9所述的用途，其中所述2型糖尿病由胰岛素释放不足引起。12. 如权利要求9所述的用途，其中所述2型糖尿病由胰岛素阻抗引起。13. 如权利要求1所述的用途，其中所述衰老性疾病为动脉粥样硬化和/或冠心病。14. 如权利要求13所述的用途，其中所述动脉粥样硬化和/或冠心病由脂肪代谢异常引 起。15. 如权利要求1所述的用途，其中所述多西环素包含化学修饰的四环素和米诺霉素。
【文档编号】A61P5/50GK105998037SQ201610427906
【公开日】2016年10月12日
【申请日】2016年6月16日
【发明人】魏炽炬, 林浩鹏, 王娜, 潘峰, 郑德锦
【申请人】汕头大学