化合物icg?001在制备治疗高血压的药物中的用图
【专利摘要】本发明涉及小分子化合物ICG?001(一种Wnt/β?catenin信号通路拮抗剂)的新用途，具体涉及化合物ICG?001在制备治疗高血压的药物中的用途。本发明提供了ICG?001在治疗高血压中的应用，其疗效显著，且未见明显毒副作用。因此，本发明所述的ICG?001可制备成用于治疗高血压的药物制剂。
【专利说明】化合物ICG-001在制备治疗高血压的药物中的用途
[0001 ] 本申请是申请号为201410262364.7、申请日为2014年6月13日、发明名称为“化合物ICG-001在制备治疗慢性肾脏病的药物中的用途”的发明专利申请的分案申请。
技术领域
[0002]本发明涉及小分子化合物106-001(—种?]11:/0-03七611；[11信号通路措抗剂)的新用途，具体涉及化合物ICG-OOI在制备治疗高血压的药物中的用途。
【背景技术】
[0003]慢性肾脏病(CKD)正成为一种“公众健康问题”，严重危害人类健康并消耗大量卫生资源。然而，目前临床上尚缺乏有效延缓CKD进展的药物。针对CKD的发病机制，寻找有效地抑制或延缓CKD进展的药物无疑是当前肾脏病学界的当务之急，成为亟待攻克的战略重点之一。高血压也是慢性肾脏病(CKD)最常见的病因，是促进CKD进展到尿毒症的独立危险因素。大多数CKD患者伴随高血压。
[0004]大量的研究表明，Wnt/i3-catenin信号通路在多种CKD发生发展中占有重要地位(JAm SocNephrol,2009,20:1997-2008；J Am SocNephrol,201I,22:1642-1653),β-catenin作为一种转录调节因子，介导并促进纤维化的发生发展(J Am SocNephrol ,2011,22:90-103 ； J B1l Chem, 2010, 285: 24665-24675)。I CG-0 O I 是一个小分子化合物(Proc.Natl.Acad.Sc1.USA, 2004,101:12682-12687)，能够特异地阻断β-catenin下游靶基因的转录，从而抑制Wnt/0-catenin信号通路。本发明涉及利用ICG-001作为一种新颖的、有效性的Wnt/i3-catenin信号活化的拮抗剂，阻断体内关键的促纤维化信号通路，从而抑制CKD进展过程中肾组织损伤和肾脏纤维化、延缓或/和逆转CKD的病程。
[0005]单侧输尿管结扎(UUO)、阿霉素肾病(ADR)、5/6肾切除(5/6NX)是经典的CKD动物模型，UUO模型的特点是可以快速完整地展示梗阻侧肾小管间质纤维化的不同病理阶段和特征，包括炎细胞浸润、小管细胞的增殖和凋亡、肌成纤维细胞的活化、纤连蛋白(Fibronectin)和I型胶原(Collagen I)的沉积;ADR肾病是目前常用的模拟人类肾小球疾病的模型，其特点是大量蛋白尿、肾小管内管型、肾小管塌陷、进行性局灶节段硬化(FSGS)和球性硬化、严重肾间质纤维化和炎症形成;5/6NX模型的特点是动脉高压、蛋白尿、肾小球硬化，该模型与临床CKD相似，是研究CKD及并发高血压的理想模型。
[0006]在病理上，通常采用Masson染色，来观察组织细胞外胶原蛋白沉积情况。而更具体的组织纤维化则常常应用肌成纤维细胞的标志蛋白平滑肌肌动蛋白a(a-SMA)、纤连蛋白和I型胶原的免疫染色和免疫印迹方法(Western blotting)来定性、定量观察和评估。
【发明内容】
[0007]本发明的目的在于提供小分子化合物106-001(—种?]11:/0-03七611；[11信号通路措抗剂)的新用途。
[0008]本发明所述的用途是小分子化合物ICG-001在制备治疗高血压的药物中的用途，可以有效抑制和延缓慢性肾脏病(CKD)及并发高血压的进展。
[0009]根据本发明所述的用途的进一步特征，所制备的药物包括:治疗上有效剂量的化合物ICG-001，以及药学上可接受的辅料。
[0010]本发明的实验证明，小分子化合物ICG-001在小鼠动物实验中无明显毒副作用。发明人对ICG-001进行UU0、ADR肾病、5/6NX模型实验。结果表明:与UU0、ADR、5/6NX模型组比较，腹腔注射ICG-001组肾脏间质胶原沉积显著减少，α-SMA、纤连蛋白及I型胶原均显著降低，Wnt/f3-catenin下游靶基因表达明显下调，表明ICG-001能有效抑制UU0、ADR肾脏和5/6NX肾脏组织纤维化，拮抗Wnt/f3-catenin信号通路;并且，在5/6NX模型中观察到ICG-001对于血压的有效抑制作用，提示抑制纤维化同时还具有抗高血压作用。
[0011]综上所述，ICG-001具有显著抑制肾脏组织纤维化和降低高血压的作用，且无明显毒副作用，因此可用于制备有效治疗高血压的药物。
【附图说明】
[0012]图1是UUO模型各组小鼠肾脏Masson染色图。该图中，从左到右，1:假手术组(Sham) ； 2:UUO模型组(UU0+PBS) ； 3:UU0+ICG-001 2mg/kg/d组；4:UU0+ICG-001 5mg/kg/d组。
[0013]图2是检测UUO模型各组小鼠肾脏纤维化指标纤维连接蛋白(Fibronectin)与I型胶原(ColIagen I)的免疫染色图。该图中，Sham:假手术组;UUO:模型对照组;UU0+ICG-001:用药组。
[0014]图3检测ADR模型各组小鼠肾脏PAS染色图。该图中，从左到右，1:生理盐水组；2:ADR模型组；3: ADR+ICG-001中期治疗组;4: ADR+ICG-001晚期治疗组。
[0015]图4检测ADR模型各组小鼠肾脏MASSON染色图。该图中，从左到右，I:生理盐水组；
2: ADR模型组；3: ADR+ICG-001中期治疗组;4: ADR+ICG-001晚期治疗组。
[0016]图5是Western blotting法检测各组小鼠肾脏β-catenin及其下游革El基因蛋白水平的代表图。该图中，左图为免疫印迹检测的代表性结果，分为:生理盐水组;ADR:ADR模型组；ICG-w: ADR+ICG-001中期治疗组；ICG_t: ADR+ICG-001晚期治疗组;右图为所有结果的统计图，分为:生理盐水组;ADR: ADR模型组；ICG-w: ADR+ICG-001中期治疗组；ICG-t: ADR+ICG-001晚期治疗组。图中，Col I: I型胶原;Col 111:1 II型胶原;α-SMA: a平滑肌肌动蛋白。
[0017]图6检测5/6NX模型各组大鼠肾脏MTS(Masson)和PAS染色图。该图中，左:假手术组；中:5/6NX模型组;右:5/6NX+ICG-001治疗组。
[0018]图7是Western blotting法检测各组大鼠肾脏β-catenin的下游革El基因蛋白水平的代表图。该图中，左图为免疫印迹检测的代表性结果，右图为所有结果的统计图；分为:假手术组;5/6NX模型组;5/6NX+ICG-001治疗组。
[0019]图8是各组大鼠尿蛋白和血压检测图。该图中，左图为尿蛋白检测的结果，右图为血压的检测结果图；分为:假手术组;5/6NX模型组;5/6NX+ICG-001治疗组。
【具体实施方式】
[0020]下面仅以实施例的方式结合附图对本发明做进一步的说明。
[0021 ] 实施例一:ICG-001对UUO小鼠肾脏纤维化的抑制
[0022]1、实验动物:⑶-1小鼠，雄性，体重20_22g，SPF级。先将动物称重、编号，选择健康、体重在20-22g的小鼠15只，随机分为3组，每组5只。包括假手术组、模型对照组及用药组。
[0023]ICG-001购于上海佰世凯化学科技有限公司。
[0024]2、各组处理
[0025]I)假手术组:室温，3%戊巴比妥钠以Iml/公斤体重麻醉小鼠后，选择左背侧肋缘下l-2cm为切口；局部消毒后，逐层切开皮肤、皮下、肌层及腹膜，发现左侧输尿管后随即逐层缝合。局部消毒后，核实标记，置于相应鼠笼。
[0026]2)模型对照组:同上麻醉、消毒。逐层切开皮肤、皮下、肌层及腹膜，找到左侧输尿管后，于输尿管上1/3段结扎，逐层缝合。局部消毒后，核实标记，置于相应鼠笼。
[0027]3)用药组:同上麻醉、消毒。逐层切开皮肤、皮下、肌层及腹膜，找到左侧输尿管后，于输尿管上1/3段结扎，逐层缝合。局部消毒后，核实标记，置于相应鼠笼。
[0028]3、实验过程
[0029]ICG-001用生理盐水稀释。各组分笼饲养。假手术组仅观察。模型对照组仅给予生理盐水腹腔注射。用药组予以含有2mg/kg和5mg/kg体重的ICG-001的生理盐水腹腔注射。饲养7天后杀死各组小鼠，均取左侧肾脏，分别予以10%中性缓冲甲醛固定及液氮冷冰冻组织。甲醛固定组织在经脱水、包埋、切片、制片后，分别予以Masson染色及α-SMA、纤连蛋白及I型胶原免疫染色。冰冻组织匀浆后提取蛋白，用免疫印迹法(Western Blot)检测β-catenin及其革El基因表达水平。
[0030]4、实验结果
[0031 ] (I )Masson染色检测肾脏组织纤维化程度
[0032]1、ICG-001减少UUO小鼠肾间质胶原沉积
[0033]实验结果如图1所示，用药组小鼠肾间质胶原沉积明显低于模型对照组。
[0034]11、ICG-001减少UUO小鼠肾间质纤维化
[0035]实验结果如图2所示，与模型对照组比较，用药组小鼠肾间质纤连蛋白、I型胶原水平明显降低。
[0036]实施例二: ICG-001对ADR小鼠肾脏纤维化的抑制
[0037]1、实验动物:BABL/c小鼠，雄性，体重20_22g，SPF级。先将动物称重、编号，选择健康、体重在20-22g的小鼠24只，随机分为4组，每组6只。包括生理盐水组、模型对照组、中期治疗组、晚期治疗组。
[0038]ICG-001购于上海佰世凯化学科技有限公司。
[0039]2、各组处理
[0040]I)生理盐水组:室温，尾静脉注射生理盐水2ml。
[0041]2)模型对照组:阿霉素溶解于生理盐水，10mg/kg体重尾静脉一次注射。
[0042]3)用药组:于阿霉素注射后I周或3周注射含有5mg/kg体重的ICG-001的生理盐水每日腹腔注射，持续注射两周。
[0043]3、实验过程
[0044]各组分笼饲养。每周留取尿液标本并称量体重。饲养5周后杀死各组小鼠，均取左侧肾脏，分别予以10%中性缓冲甲醛固定及液氮冷冰冻组织。甲醛固定组织在经脱水、包埋、切片、制片后，分别予以Masson染色及α-SMA、纤连蛋白及I型胶原免疫染色。冰冻组织匀楽后提取蛋白，用免疫印迹法(Western Blot)检测β-catenin及其革El基因表达水平。
[0045]4、实验结果
[0046](I )Masson染色检测肾脏组织纤维化程度
[0047]1、ICG-OOI减轻ADR小鼠肾组织形态改变
[0048]实验结果如图3所示，用药组小鼠肾组织形态趋于正常，未见大量肾小球硬化，肾小管管型及肾小管塌陷等病理改变。
[0049]11、ICG-001减少ADR小鼠肾间质胶原沉积
[0050]实验结果如图4所示，用药组小鼠肾间质胶原沉积明显低于模型对照组。
[0051 ] II1、ICG-001减少ADR小鼠肾间质纤维化
[0052]实验结果如图5所示，与模型对照组比较，用药组小鼠肾组织纤连蛋白、I型胶原、III型胶原和α-SMA水平明显降低。
[0053]实施例三:1CG-001对5/6NX大鼠肾脏纤维化和高血压的抑制
[0054]1、实验动物:SD大鼠，雄性，体重200_220g，SPF级。先将动物称重、编号，选择健康、体重在200-220g的大鼠18只，随机分为3组，每组6只。包括假手术组、模型对照组及用药组。
[0055]ICG-001购于上海佰世凯化学科技有限公司。
[0056]2、各组处理
[0057]I)假手术组:室温，3%戊巴比妥钠30mg/公斤体重麻醉大鼠后，局部消毒后，选择左背侧肋缘下l_2cm为切口，逐层切开皮肤、皮下、肌层及腹膜后即缝合，核实标记，置于相应鼠笼。
[0058]2)模型对照组:同上麻醉、消毒。逐层切开皮肤、皮下、肌层及腹膜局部消毒后，逐层切开皮肤、皮下、肌层及腹膜，发现左侧肾脏后切除上下极，一周后(记O周)进行右侧肾脏全切，于第6周开始每日注射生理盐水。局部消毒后，核实标记，置于相应鼠笼。
[0059]3)用药组:同上麻醉、消毒。逐层切开皮肤、皮下、肌层及腹膜，发现左侧肾脏后切除上下极，一周后(记O周)进行右侧肾脏全切，于第6周开始注射5mg/kg的ICG-001药物(每周三次)ο局部消毒后，核实标记，置于相应鼠笼。
[0060]3、实验过程
[0061]各组分笼饲养。每周留取尿液标本并称量体重。饲养12周后以大鼠尾动脉脉搏测压法检测血压，后杀死各组大鼠，留取血液和尿液标本分别检测血清肌酐和尿蛋白；均取左侧肾脏，分别予以10%中性缓冲甲醛固定及液氮冷冰冻组织。甲醛固定组织在经脱水、包埋、切片、制片后，分别予以Masson、PAS染色，用免疫印迹法(Western Blot)检测β-catenin其靶基因纤连蛋白及I型胶原表达水平。
[0062]4、实验结果
[0063](I) ICG-001减轻5/6NX大鼠肾间质纤维化和肾组织形态改变
[0064]实验结果如图6所示，用药组大鼠肾组织形态改变明显减轻，未见明显肾间质纤维化(Masson染色)，肾小球硬化等改变(PAS染色)。
[0065 ] (2)1 CG-OOI抑制5/6NX大鼠的肾纤维化基因表达
[0066]实验结果如图7所示，与模型对照组比较，用药组大鼠肾组织纤连蛋白和I型胶原水平明显降低。左图为纤连蛋白和I型胶原的免疫印迹代表性结果，右图为所有结果的统计图。
[0067](3)ICG_001抑制5/6NX大鼠的尿蛋白和血压增高
[0068]实验结果如图8所示，与模型对照组比较，用药组大鼠肾尿蛋白及血压明显降低。
[0069]综上所述，ICG-OOI可以明显减少UUO、ADR小鼠和5/6NX大鼠肾间质胶原蛋白沉积，显著降低UU0、ADR小鼠和5/6NX大鼠肾组织纤连蛋白、I型胶原、III型胶原、α-SMA表达水平，并可以明显抑制CKD模型中的异常活化的β-catenin信号通路及血压增高。因此，ICG-001可以能成为有效抑制CKD进展、抑制高血压的新药。
【主权项】
1.化合物ICG-OOI在制备治疗高血压的药物中的用途。2.根据权利要求1所述的用途，其特征在于，所述的药物包括:治疗上有效剂量的化合物ICG-001，以及药学上可接受的辅料。
【文档编号】A61P9/12GK106038568SQ201610355411
【公开日】2016年10月26日
【申请日】2014年6月13日
【发明人】刘友华, 周丽丽
【申请人】南方医科大学南方医院