原花青素b2的提取方法

文档序号:3559354阅读:478来源:国知局

专利名称::原花青素b2的提取方法
技术领域
:本发明涉及一种原花青素B2的提取方法。技术背景原花青素(proanthocyanidins或procyanidins,简称PC)是植物界中广泛存在的一大类多酚化合物的总称。起初统称为縮合鞣质或黄烷醇类。随着分离鉴定技术的不断发展以及对此类物质研究的不断深入,现已成为独立的一大类物质,统称之为原花青素。原花青素是由多羟基黄烷-3-醇单元构成的低聚体和多聚体,由不同数量的儿茶素或表儿茶素结合而成[1]。原花青素具有抗氧化、保护心血管、抗肿瘤、抗糖尿病、抗衰老、抗辐射、减肥美容等多种保健功效[2—3]。原花青素B2是原花青素中主要的活性成分,是由两个表儿茶素结构以4-8位连接而成。目前市场上销售的含有原花青素的植物提取物中原花青素B2的含量较低为1-15%。本发明将提供一种制备高含量原花青素B2的方法。参考文献[1]FulekiT,RicardodasilvaJM.Catechinandprocyanidincompositionofseedsfromgrapecultivategrowninontario[J]./々n'c尸oocCTem,1997,45:1156-1160.[2]ChangH.ResearchProgressinPharmacologicalactivityofOligomericProanthocyanidinsinGrapeSeedsExtracts[J].Fore/g72Me&'ca/5We"ces(Sec"o"0//fygz'e"W(国外医学卫生学分册),2005,32:72-76.[3]ZhangBR,LaoYX,SuWW.ResearchandDevelopmentStatusQuoofOligomericProanthocyanidins[J].7on<"a/o/C/'"eseAfoafc/"a/Afafer/a/s(中药材),2003,26:卯5-908.
发明内容本发明的目的是提供一种原花青素B2的提取方法。本发明的技术方案概述如下一种原花青素B2的提取方法,包括如下步骤(1)以松科松属植物的根、树皮、叶;或蔷薇科植物的根、茎、叶、果实、种子;或葡萄科葡萄属植物的根、茎、果实、种子;或豆科植物的茎或种皮为原料;向所述原料中加入4-10重量倍的水或4-10重量倍的体积百分比浓度为10%~95%的乙醇水溶液或4-10重量倍的10%~95%的甲醇水溶液,常压,70-95'C浸提取1~5小时,过滤,提取次数为1~5次,提取液合并静置至温度低于50度,弃沉淀,得上清液,在温度56(TC,真空度为0.06~0.08MPa减压浓縮至糖度2-40,得到提取物;(2)将所述提取物以重量比为1:110的比例分散至水中,经大孔树脂吸附,用水及体积百分比浓度为10%~95%的乙醇水溶液或水及体积百分比浓度为10%~95%的甲醇水溶液梯度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,得糖度为1040的浓縮物;(3)将步骤(2)的产物进行聚酰胺树脂分离,用水及体积百分比浓度为20-95%的乙醇水溶液或水及体积百分比浓度为20-95%的甲醇水溶液梯度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,得糖度为10-20的原花青素B2。所述步骤还可以包括(4)将所述步骤(3)制备的原花青素B2进行0DS中低压柱层析,用水及体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度^60。C,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,得糖度为10-20的原花青素B2。所述步骤还可以包括(5)将所述步骤(4)制备的原花青素B2进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10-30%的甲醇进行等浓度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为10-20的组分,冷冻干燥得到原花青素B2。所述步骤(1)中过滤所用滤网的目数为80120。所述歩骤(2)中所述大孔树脂为AB-8型、HP20型、HPD100型、HPD100A型、HPD300型、X-5型、NKA-II型、D101型或DA201型。所述步骤(3)中所述的薄层层析检测方法采用聚酰胺薄膜,展开溶剂为体积比为4:1:3的正丁醇-醋酸-水,显色剂为重量百分浓度为5%三氯化铁乙醇溶液,与原花青素B2标准品对照。本发明的优点市场上销售的含有原花青素B2的提取物含量相对较低,一般只有1-15%,本发明提供的方法可以制备20-98%不同含量的原花青素B2的提取物,使20-98%不同含量的原花青素B2的提取物能够达到产业化生产,为20-98%不同含量的原花青素B2提取物的进一步开发利用奠定基础。图1为本发明的原花青素B2的聚酰胺薄膜TLC检测图。图2为本发明的原花青素B2的液相分析图谱。图3为本发明的原花青素B2的ESI-MS图谱。图4为本发明的原花青素B2的^-NMR图谱。图5为本发明的原花青素B2的13C-NMR图谱。具体实施方式原花青素B2的分子结构如下OH本发明的植物来源广泛,松科植物如松科松属植物马尾松、野山松及其同属植物的根、树皮、松针等。蔷薇科山楂属山楂及其同属植物的果实及其叶,蔷薇科苹果属植物苹果及其同属植物的果实及其根、茎枝、树叶,蔷薇科蔷薇属植物含两个亚属单叶蔷薇亚属(Huhhemia)和蔷薇亚属(Rosa)。其中蔷薇亚属包括9个组芹叶组(Pimpinellifollae)、蔷薇组(Rosa)、桂味组(Cinnamomeae)、月季组(Chinenses)、合柱组(Synstylae)、木香组(Banksianae)、金樱子组(Laevigatae)、硕苞蔷薇组(Bractcatae)、小叶组(Microphyllae),约有200种,本属植物广泛分布于亚、欧、北非、北美各洲寒温带至亚热带地区,我国产82种。到目前为止,国内外学者已对该属植物的30个品种进行过研究,本属植物所含的主要化学成分为原花青素类成分,是提供原花青素成分很好的植物原料。葡萄科葡萄属植物葡萄的根、茎枝、果实和种子。豆科植物落花生的种皮、茎,豆科植物黑大豆的种皮等。下面结合具体实施例对本发明作进一步的说明。—实施例190%以下的原花青素B2含量HPLC检测方法色谱柱C-18250x4.6mm检测波长280nm流速1.0ml/min流动相A:1%磷酸B:乙腈:水=80:20时间(min)0361530506066808385105B比例(%)004101523253050800Stop样品用50%乙醇溶解实施例298°/。原花青素B2的HPLC检测方法:色谱柱C-18250x4.6mm检测波长280nm流速l.Oml/min流动相乙腈:0.5%磷酸=20:80实施例3(1)提取500g葡萄籽中加入2000g的水常压95'C温浸提取5次,提取时间分别为5、4、3、2、l小时,过滤,滤网的目数为120,提取液合并静置至温度低于50度,弃沉淀,得上清液;(2)大孔树脂吸附分离将(1)中提取液经HP20型大孔树脂吸附,用水、体积百分比ii度为10%、30%、50%、70%、95%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接收体积,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为40,得原花青素B2的富集物;(3)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度S60'C,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物。原花青素B2的含量为37.4%。步骤(3)中所述的薄层层析检测方法采用聚酰胺薄膜,展开溶剂为体积比为4:1:3的正丁醇-醋酸-水,显色剂为重量百分浓度为5%三氯化铁乙醇溶液,与原花青素B2标准品对照。实施例4步骤(1)-(3)同实施例3;(4)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原-花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%、20%、30%、40%、50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度^6(TC,真空度为0.06~0.08MPa减压浓縮,糖度为IO,用实施例l的方法测定原花青素B2的含量为75.3。/。。实施例5步骤(1)-(4)同实施例4;(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比30%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度^6(TC,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为20的组分,冷冻干燥得到原花青素B2(260mg)。利用ESI-MS、^-NMR和BC-NMR等光谱手段并于文献数据进行对照,鉴定了根据上述方法分离得到的原花青素B的结构。在此基础上利用标准品(美国CHROMDEX公司购买)进行标定,测定原花青素素B2含量为98n/。。原花青素B2淡黄色粉末,聚酰胺薄膜以正丁醇-醋酸-水(4:1:3)展开,Rf为0.3,5%三氯化铁乙醇溶液显单一蓝色斑点。阴离子ESI-MS中给出了准分子离子峰[M-H]-577禾口[M-H+Cl]-612,其'H-NMRG00MHz,inDMSO)中信号交叠较严重,其"C-NMR(75MHz,inDMSO)中信号清晰,与文献相对照进行了全归属,鉴定为原花青素B2,结果见下表。表1本发明中化合物的。C-NMR数据<table>tableseeoriginaldocumentpage7</column></row><table>用葡萄的根、茎或果替代实施例3、4、5中的原料,可以获得原花青素B2。实施例6(1)提fe:500g山楂中加入5000g的水常压70。C温浸提取2次,每次4小时,过滤,滤网的目数为80,提取液合并静置至温度低于50度,弃沉淀,得上清液;(2)大孔树脂吸附分离将(1)中提取液经大孔树脂D101吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30%、50°/。、70%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度S6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为40,得原花青素B2的富集物;(3)聚酰胺树脂分离:大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,根据原花青素B2的含量高低不同将洗脱液分成三个组分合并,分别在温度^6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓缩,糖度为IO,得原花青素B2的富集物。原花青素82的含量为65.9%;用山楂的根、茎和叶取代本实施例的原料,可以获得原花青素B2的含量为33.1%、36.8%。实施例7步骤(1)-步骤(3)同实施例6;(4)ODS中低压柱层析分离将经步骤(.1)-步骤(3)分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%、20%、30%、40%、50°/。的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度S6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为20,得到的原花青素B2提取物含量分别78.1%。用山楂的根、茎和叶取代本实施例的原料,可以获得原花青素B2的含量为51.4%、71.2%。实施例8步骤(1)-步骤(4)同实施例7;(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比30%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为10的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(185mg)。用山楂的根、茎和叶取代本实施例的原料,可以获得较纯的原花青素B2。实施例9(1)提取500g苹果的果树枝加入5000g的体积百分比浓度为10。/。的乙醇水溶液常压7(TC.温浸提取1次,浸提5小时,过滤,滤网的目数为100,提取液在温度S6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物;(2)大孔树脂吸附分离将(1)中B2提取物用水分散(重量比为1:3),静置2小时,弃去沉淀,上清液经大孔树脂AB-8吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30%、50%、70%、95%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度^6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为40,得原花青素B2的富集物;(3)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(重量比为1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物,原花青素B2含量为19.4%。实施例10步骤(1)-步骤(3)同实施例9;(4)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度56(TC,真空度为0.06(T.08MPa减压浓縮,糖度为10,原花青素B2含量为51.2%。实施例11步骤(1)-步骤(4)同实施例10;(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度^6(TC,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为20的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(68mg)。实施例12(1)提取500g青苹果加入5000g的体积百分比浓度为10%的乙醇水溶液常压7(TC温浸提取1次,浸提5小时,过滤,提取液合并在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为IO,得原花青素B2的富集物。(2)大孔树脂吸附分离将(1)中B2提取物用水分散(重量比为1:3),静置2小时,弃去沉淀,上清液经大孔树脂AB-8吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30%、50%、70%、95%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度^6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为40,得原花青素B2的富集物。G)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(重量比为1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度《(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物,原花青素82含量为41.2%;(4)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,原花青素B2含量为89.2%;(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度^60'C,真空度为0.06-0.08MPa减压浓缩,得到糖度为20的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(132mg)。实施例13(1)提取500g月季的根加入5000g的体积百分比浓度为95%的乙醇水溶液常压70。C温浸提取3次,浸提5小时,过滤,提取液合并静置至温度低于50度,弃沉淀,得上清液;在温度56CTC,真空度为0.060.08MPa减压浓缩至无醇,'糖度为40,得原花青素B2的富集物;(2)大孔树脂吸附分离将(1)中B2提取物分散至水中(重量比为1:10),静置2小时,弃去沉淀,上清液经大孔树脂X-5吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30°/。、50%、70%、95%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为20,得原花青素B2的富集物;(3)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度《(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为20,得原花青素B2的富集物,原花青素B2含量为38.9%;(4)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度^6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,原花青素B2含量为76.3e/。;(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比20%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接收体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度^60'C,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为20的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(275mg)。实施例14(1)提取500g葡萄藤加入2000g的体积百分比浓度为60%的乙醇水溶液常压70。C温浸提取1次,浸提5小时,过滤,提取液合并在温度^60。C,真空度为0.060.08MPa减压浓缩,糖度为20,得原花青素B2的富集物;(2)大孔树脂吸附分离将(1)中B2提取物用水分散(重量比为1:4),静置2小时,弃去沉淀,上清液经大孔树脂HPD-100吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30%、50%、95%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检领!),收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度S6(TC,真空度为0.06~0.08MPa减压浓縮,糖度为40,得原花青素B2的富集物;(3)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物;原花青素B2含量为19.2。/。;(4)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度^6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为20,原花青素B2含量为55.6%(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法^结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度S60。C,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为10的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(78mg)。实施例15(1)提取500g玫瑰花干品加入2.5L的体积百分比浓度为60%的乙醇水溶液常压70°C温浸提取1次,浸提5小时,过滤,提取液合并在温度56(TC,真空度为0.06~0.08MPa减压浓縮,糖度为20,得原花青素B2的富集物。(2)大孔树脂吸附分离将(1)中B2提取物用水分散(重量比为1:4),静置2小时,弃去沉淀,上清液经大孔树脂HPD-100A吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30%、50%、95%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度56(TC,真空度为0.06~0.08MPa减压浓縮,糖度为40,得原花青素B2的富集物。(3)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物,含量为21.8%(4)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度^6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为20,含量为53.4%(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10°/。的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为10的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(214mg)。实施例16(1)提取500g松树皮加入4L的体积百分比浓度为10%的甲醇水溶液常压70。C温浸提取l次,浸提5小时,过滤,提取液合并在温度^6(TC,真空度为0.'060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物;(2)大孔树脂吸附分离将(1)中B2提取物用水分散(重量比为l:l),静置2小时,弃去沉淀,上清液经大孔树脂NKA-II吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30%、50%、70%、95%的甲醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度S6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为15,得原花青素B2的富集物;(1)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(重量比为1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物,原花青素B2含量为17.3%;(2)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度^6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为20,原花青素B2含量为59.P/o;(3)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为15的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(65mg)。实施例17(1)提取500g豆科植物黑大豆的种皮加入3L的体积百分比浓度为95。/。的甲醇水溶液常压70。C温浸提取3次,浸提3小时,过滤,提取液合并在温度56(TC,真空度为0.06~0.08MPa减压浓縮,糖度为40,得原花青素B2的富集物;(2)大孔树脂吸附分离将(1)中B2提取物用水分散(重量比为1:10),静置2小时,弃去沉淀,上清液经大孔树脂HPD-300吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30%、50%、70%、95%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为30,得原花青素B2的富集物;(3)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(重量比为1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70°/。、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度S6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物,原花青素B2含量为52.7°/。;(4)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,原花青素B2含量为88.9%;(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度^6(TC,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为20的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(95mg)。实施例18(1)提取500g豆科植物落花生的种皮加入3L的体积百分比浓度为95%的甲醇水溶液常压70'C温浸提取3次,浸提3小时,过滤,提取液合并在温度S60'C,真空度为0.06~0.08MPa减压浓縮,糖度为40,得原花青素B2的富集物;(2)大孔树脂吸附分离将(1)中B2提取物用水分散(重量比为1:10),静置2小时,弃去沉淀,上清液经大孔树脂HPD-300吸附,用水、体积百分比浓度为10%、30°/。、50%、70%、95%的乙醇水溶液梯度洗脱,每250ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将其合并,在温度S6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为30,得原花青素B2的富集物;(3)聚酰胺树脂分离大孔树脂吸附分离后得到的原花青素B2的富集物分散至水中(重量比1:4)进行聚酰胺树脂分离,用水、体积百分比浓度为20%、50%、70%、95%的乙醇水溶液,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度56(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,得原花青素B2的富集物,原花青素B2含量为56.4%;(4)ODS中低压柱层析分离将通过聚酰胺分离后富含原花青素B2的组分进行ODS中低压柱层析,用水、体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,每50ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度^60'C,真空度为0.060.08MPa减压浓縮,糖度为10,原花青素B2含量为85.1%;(5)SephadexLH-20进行纯化将(4)中得到的含有原花青素B2的组分进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10%的甲醇进行洗脱,每10ml作为一个接受体积,通过薄层层析等方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度560'C,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为20的组分,冷冻干燥得到原花青素B2的纯品(219mg)。权利要求1.一种原花青素B2的提取方法,其特征是包括如下步骤(1)以松科松属植物的根、树皮、叶;或蔷薇科植物的根、茎、叶、果实、种子;或葡萄科葡萄属植物的根、茎、果实、种子;或豆科植物的茎或种皮为原料;向所述原料中加入4-10重量倍的水或4-10重量倍的体积百分比浓度为10%~95%的乙醇水溶液或4-10重量倍的10%~95%的甲醇水溶液,常压,70-95℃浸提取1~5小时,过滤,提取次数为1~5次,提取液合并静置至温度低于50度,弃沉淀,得上清液,在温度≤60℃,真空度为0.06~0.08MPa减压浓缩至糖度2-40,得到提取物;(2)将所述提取物以重量比为1∶1~10的比例分散至水中,经大孔树脂吸附,用水及体积百分比浓度为10%~95%的乙醇水溶液或水及体积百分比浓度为10%~95%的甲醇水溶液梯度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度≤60℃,真空度为0.06~0.08MPa减压浓缩,得糖度为10~40的浓缩物;(3)将步骤(2)的产物进行聚酰胺树脂分离,用水及体积百分比浓度为20-95%的乙醇水溶液或水及体积百分比浓度为20-95%的甲醇水溶液梯度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度≤60℃,真空度为0.06~0.08MPa减压浓缩,得糖度为10-20的原花青素B2。2.根据权利要求1所述的一种原花青素B2的提取方法,其特征是所述步骤包括(4)将所述步骤(3)制备的原花青素B2进行0DS中低压柱层析,用水及体积百分比为10%-50%的甲醇水溶液梯度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,并将其在温度S6(TC,真空度为0.060.08MPa减压浓缩,得糖度为10-20的原花青素B2。3.根据权利要求2所述的一种原花青素B2的提取方法,其特征是所述步骤包括(5)将所述步骤(4)制备的原花青素B2进行SephadexLH-20柱层析纯化,用体积百分比10-30%的甲醇进行等浓度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,以原花青素B2纯品作为对照品,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液在温度^60'C,真空度为0.06-0.08MPa减压浓縮,得到糖度为10-20的组分,冷冻干燥得到原花青素B2。4.根据权利要求1或2或3所述的一种原花青素B2的提取方法,其特征是所述步骤(1)中过滤所用滤网的目数为80-120。5.根据权利要求1或2或3所述的一种原花青素B2的提取方法,其特征是所述步骤(2)中所述大孔树脂为AB-8型、HP20型、HPD100型、HPD100A型、HPD300型、X-5型、NKA-II型、D101型或DA201型。6.根据权利要求1或2或3所述的一种原花青素B2的提取方法,其特征是所述步骤(3)中所述的薄层层析检测方法采用聚酰胺薄膜,展开溶剂为体积比为4:1:3的正丁醇-醋酸-水,显色剂为重量百分浓度为5%三氯化铁乙醇溶液,与原花青素B2标准品对照。全文摘要本发明公开了一种原花青素B2的提取方法,步骤为(1)以松科、蔷薇科等植物的根、茎或叶为原料,加乙醇水溶液,浸提,过滤,上清液减压浓缩至糖度2-40的提取物;(2)将提取物分散至水中,经大孔树脂吸附,用乙醇水溶液梯度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,减压浓缩,得糖度为10~40的浓缩物;(3)将浓缩物进行聚酰胺树脂分离,用乙醇水溶液梯度洗脱,通过薄层层析方法并结合分析型HPLC检测,收集富含原花青素B2的组分,将洗脱液减压浓缩,得糖度为10-20的原花青素B2重量百分含量为20%-50%的提取物。用本发明的方法可以获得高含量的原花青素B2提取物。文档编号C07D311/00GK101125844SQ20071006121公开日2008年2月20日申请日期2007年9月28日优先权日2007年9月28日发明者丹刘,刘岱琳申请人:天津市尖峰天然产物研究开发有限公司
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