植物中的重金属减少的制作方法

专利名称：植物中的重金属减少的制作方法
技术领域：
发明涉及编码ABC转运蛋白的多核苷酸和多肽，ABC转运蛋白参与重金属转运。本发明还涉及在植物中改变所述多核苷酸或多肽的表达。尤其是，本发明涉及调节(例如，减少或抑制)一个或多个参与亚细胞重金属转运的ABC转运蛋白的表达或活性。
背景技术：
植物通过从它们的环境中利用根细胞和其它维管组织表面上表达的跨膜转运蛋白介导的各种转运机制吸收金属离子基质(substrate)获得必需的重金属，如锌和铜。一个机制利用将毒素运输到细胞溶质外的转运。例如，谷胱甘肽S-缀合物(GS-X)泵家族是一类负责消除/隔离植物以及哺乳动物、酵母细胞中的化合物的ATP-结合盒(cassette)(ABC)转运蛋白。哺乳动物和植物MRP、cMOAT (微管(canalicular)多特异性阴离子转运蛋白)和YCFl (酵母镉 因子)基因编码的GS-X泵的分子结构和功能贯穿整个分子进化过程中似乎是保守的。植物暴露于外源性毒素-如微生物产物、化感物质(allelochemical)、农用化学品和重金属-使得细胞的存活依赖于脱毒或减少这些试剂的积累的机制。重金属-如铅、镉、汞等-是主要的环境毒物，其通过在活生物体的细胞中结合酶的活性位点而导致活性氧化物质的生成、DNA损伤和酶的失活。由于工业化和人口规模的增加，重金属环境污染急剧增加。重金属污染的土壤抑制植物的正常生长并导致食品污染。许多重金属在低浓度时就对人体健康具有很强的毒性并且是致癌的。非常希望并迫切需要减少动物和人类所消耗的植物或植物产品中的重金属-如镉-的含量。本发明的一个目的是满足这种需要。

发明内容
本发明的方面和实施方式如所附权利要求所示。在一个方面中，提供了一种选自如下的分离的多核苷酸:分离的多核苷酸，其包括、由或基本上由具有与 SEQ ID NO:1 或 SEQ ID NO:2 或 SEQ ID N0:27 或 SEQ ID NO:28、SEQ ID N0:29或SEQ ID NO:51至少71%序列同一性的序列组成；分离的多核苷酸，其包括、由或基本上由具有与SEQ ID NO:3-23或30-50或53中任一个至少65%序列同一性的序列组成；编码NtMRP多肽的多核苷酸，NtMRP多肽包括、由或基本上由具有与SEQ ID NO:24-26或52中任一个至少65%序列同一性的序列组成,且优选地，其中所述多肽具有重金属转运蛋白活性。在另一方面中，提供长度上至少15个连续核苷酸的多核苷酸构建体，其具有与SEQ ID NO:1-23或27-51任一个的区域至少65%的同一性。在另一方面中，提供双链核糖多核苷酸，其包括至少两条彼此至少部分互补的序列，且其中正义链包括第一序列，反义链包括第二序列，并且其中序列中的至少一个包括NtMRP RNA的至少10个连续核苷酸。
适当地，双链RNA包括具有与NtMRP DNA的至少10个核苷酸至少65%序列同一性的第一序列；第二序列；以及和第一序列处于相同方向的、具有第一序列的反向互补序列的第三序列，其中第二序列位于第一序列和第三序列之间，以及第二序列有效地连接至第一序列和第三序列。适当地，第一序列与选自如下的序列具有至少65%序列同一性:SEQ ID N0:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID NO:7、SEQ ID NO:8、SEQ IDNO:9, SEQID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQ ID NO:12、SEQ ID NO:13、SEQ IDN0:14、SEQ ID NO:15、SEQID NO:16,SEQ ID NO:17、SEQ ID NO:18、SEQ IDN0:19、SEQ ID NO:20,SEQ ID NO:21,SEQID NO:21、SEQ ID NO:22、SEQ IDNO:23,SEQ ID NO:30、SEQ ID NO:31、SEQ ID NO:32、SEQID NO:33、SEQ IDNO:34,SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:36、SEQ ID NO:37、SEQ ID NO:38、SEQIDNO:39, SEQ ID NO:40、SEQ ID NO:41, SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:43、SEQ IDNO:44, SEQID NO:45,SEQ ID NO:46,SEQ ID NO:47,SEQ ID NO:48,SEQ IDNO:49,SEQ ID N0:50和SEQID N0:53。适当地，第三序列与SEQ ID NO:3, SEQ ID NO:4, SEQ ID NO:5, SEQ ID NO:6, SEQID NO:7,SEQ ID NO:8,SEQ ID NO:9,SEQ ID NO:10、SEQ ID NO:11、SEQID NO:12、SEQ IDNO:13、SEQ ID NO:14、SEQ ID NO:15、SEQ ID NO:16、SEQID NO:17、SEQ ID NO:18、SEQ IDNO:19、SEQ ID NO:20、SEQ ID NO:21、SEQID NO:21、SEQ ID NO:22、SEQ ID NO:23、SEQ IDNO:30、SEQ ID NO:31、SEQID NO:32、SEQ ID NO:33、SEQ ID NO:34、SEQ ID NO:35、SEQ IDNO:36, SEQID N0:37, SEQ ID NO:38, SEQ ID NO:39, SEQ ID N0:40、SEQ ID N0:41、SEQIDNO:42、SEQ ID NO:43、SEQ ID NO:44、SEQ ID NO:45、SEQ ID NO:46、SEQID NO:47、SEQ IDNO:48, SEQ ID NO:49、SEQ ID N0:50和SEQ ID NO:53相对应的序列的反向互补体具有至少65%序列同一性。 在另一方面中，提供了表达载体，其包括分离的多核苷酸或多核苷酸构建体。在另一方面中，提供了突变的、非天然发生的或转基因的植物细胞，其包括分离的多核苷酸、多核苷酸构建体、双链核糖多核苷酸或表达载体。在另一方面中，提供了突变的、非天然发生的或转基因的植物，其包括突变的、非天然发生的或转基因的植物细胞。在另一方面中，提供了植物材料，其包括生物质、种子或叶子，植物材料包括来自所述植物的细胞或组织。在另一方面中，提供了烟草产品，其包括所述植物的部分或植物细胞或所述植物材料。在另一方面中，提供了突变的、非天然发生的或转基因的植物，其中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性减少，并且所述植物的叶子的镉含量比对照植物减少至少5%，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。在另一方面中，提供了包括来自所述植物的组织的生物质、种子或叶子。在另一方面中，提供了用于在植物的至少部分中减少镉水平的方法，包括和对照植物相比，减少NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性的步骤，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。在另一方面中，提供了通过此处所述方法获得的或可获得的突变的、非天然发生的或转基因的植物，其中和对照植物相比，在植物的至少部分中减少至少约5%的镉含量，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。在另一方面中，提供了由SEQ ID N0:24-26或SEQ ID NO:52中任一个所示的序列表达的分离的NtMRP多肽，优选地，其中所述多肽具有重金属转运蛋白活性。在另一方面中，提供了抗体，该抗体特异性结合分离的多肽。在另一方面中，提供了检测样本中NtMRP多核苷酸的方法，包括步骤:(a)提供含有多核苷酸的样本；(b)所述样本接触特异性检测NtMRP多核苷酸的至少部分的多个引物之一或者一个或多个探针；以及(c)检测扩增产物的存在，其中扩增产物的存在指示着样本中存在NtMRP多核苷酸。本发明的其它方面如下所示。包括有效地连接至一个或多个调控序列上的分离多核苷酸的嵌合基因。根据本发明的多核苷 酸构建体或双链RNA，其中多核苷酸包含、由或基本上由至少15-30个核苷酸、30-50个核苷酸、50-100个核苷酸、100-150个核苷酸、150-200个核苷酸、200-300个核苷酸、300-400个核苷酸、400-500个核苷酸、500-600个核苷酸或600-700个
核苷酸组成。缀合物，其包括根据本发明的分离的多核苷酸、嵌合基因、多核苷酸构建体或双链RNA，以及共价地附着至其上的至少一个非核苷酸或非多核苷酸半体(moiety)。突变的、非天然发生的或转基因的植物细胞，其包括根据本发明的分离的多核苷酸、嵌合基因、多核苷酸构建体、双链RNA、缀合物或表达载体。突变的、非天然发生的或转基因的植物，其包括根据本发明的突变的、非天然发生的或转基因的植物细胞。适当地，收集的叶子的干生物质和对照植物的大致相同。 包含来自本发明的植物的组织的生物质、种子或叶子。消耗品，其混合或利用根据本发明的生物质、种子或叶子。根据本发明的生物质、种子或叶子或者根据本发明的消耗品，其中和来自对照植物的生物质、种子或叶子相比，其中存在至少约5%的镉含量减少，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。细胞系，其包括根据本发明的分离的多核苷酸、嵌合基因、多核苷酸构建体、双链RNA、缀合物或表达载体。用于制备突变的、非天然发生的或转基因的植物的方法，包括步骤:在所述植物的至少部分中，和对照植物相比，降低NtMRP多核苷酸的表达以及由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。用于在植物的至少部分中降低镉水平的方法，包括步骤:和对照植物相比，降低NtMRP多核苷酸的表达以及由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。
适当地，所述方法包括用多核苷酸构建体、双链RNA、缀合物、表达载体、大范围核酸酶或锌指蛋白接触所述植物的第一步骤。适当地，所述方法包括用诱变剂接触所述植物的第一或附加步骤。通过本发明的方法获得或可获得的突变的、非天然发生的或转基因的植物，其中和对照植物相比，在植物的至少部分中存在至少约5%的镉含量减少，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。用于在细胞中调节(例如减少或抑制)NtMRP多核苷酸表达或由此编码的蛋白的活性的方法，所述方法包括施用根据本发明的嵌合基因、多核苷酸构建体、双链RNA、缀合物或表达载体。用于检测、分离、扩增或分析NtMRP多核苷酸的方法，该方法包括步骤:提供包括多核苷酸的样本，以及将所述多核苷酸杂交至这样的多核苷酸分子，其包括来自根据本发明的分离核苷酸序列的至少10个连续核苷酸的核苷酸序列。与对照植物相比，调节(例如减少或抑制)NtMRP多核苷酸表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性的试剂用于减少植物的至少部分中至少5%镉含量的用途，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。根据本发明的方法或用途，其中试剂是或源自NtMRP多核苷酸、嵌合NtMRP基因、包含NtMRP多核苷酸的多核苷酸构建体、反义RNA、双链RNA、cDNA、包含NtMRP多核苷酸的缀合物以及至少一个共价附着至其上的非核苷酸或非多核苷酸半体、核酶、诱变剂、锌指蛋白、小分子或大范围核酸酶在另一方面中，提供了制备烟草产品的方法，包括步骤:(a)从突变的、非天然发生的或转基因的烟草植 物中收获种子；(b)将种子种植并栽培成植物；(C)收获植物；和Cd)从收获的植物制备烟草产品。上述实施方式作为上述各方面的实施方式公开。一些优势生产镉含量更低的突变的、非天然发生的或转基因的植物(包括由此得到的生物质、种子和叶)提供了许多优点。通过实例的方式，植物，包括突变的、非天然发生的或转基因的植物，可以生长在含有可变镉浓度的土壤中、或含有低于期望镉浓度的土壤中。这些植物和衍生的种子可以为在更广范围的土壤环境中栽培它们提供更多的选择，这可能会增加操作者(例如农民)可获得的可耕种土壤的量。通过进一步的实例的方式，突变的、非天然发生的或植物(包括由此得到的生物质、种子和叶)显示出与对照对应部分相比减少的镉含量，并且可作为可食用产品直接消耗。这些可食用产品的消费可能是更加健康的选择。可以根据所公开的方法处理的合适植物包括农业用途的可耕种的植物，包括烟草、水稻、玉米、南瓜、大豆、莴苣、土豆、甜菜、草本植物、小麦、大麦和胡萝卜等。通过进一步的实例的方式，突变的、非天然发生的或转基因的植物的高度和/或重量与对照植物基本上相同。因此，和对照相比，在收集的植物干叶子中没有发现显著的差异，从而表明NtMRP转录物的调节对干生物质没有统计学上相关的影响。这是有利的，因为植物被用于各种产品(包括烟草)的商业化生产，其中视觉外观上的改变对于产业而言是不可接受的，或可能会导致不可接受的生产量下降。


图1、图1 (a)是NtMRP4基因座的示意图；图1 (b)显示NtMRP4的核苷酸序列，其中5’和3’UTR区以下划线表示；外显子以大写和粗体字母表示；内含子以小写和正常字母表示；以及起始和终止密码子显示为灰色。用于产生NtMRP4RNAi序列的5’和3’引物序列以斜体和删除线表示。图2表示在水耕条件下镉处理的7天期间NtMRP4多核苷酸的表达。用0、0.05和
0.5氯化镉处理三周龄的KY14幼苗(a)以及用0.5微摩尔(micr0.Μ)氯化镉对4周龄的黄花烟草(N.rustica)和红花烟草(N.tabacum) (TN90)小植株(plantlet)处理一周(b)。分离RNA并进行半定量RT-PCR。图3表示，和野生型田间栽培的植物相比，在NtMRP4RNAi系的系I和系2的叶子中的镉减少。图4显示两个NtMRP4RNAi栽培系的叶子中的镉减少。在这个实验中，没有NtMRP4插入的载体对照被加入。图5显示沿着覆盖NtMRP4编码区的基因组NtPM1-BAC_G0T0WE_5_gDNABAC克隆序列的内含子-外显子结构以及内含子和外显子的位置。cDNA序列(碱基对1-4，521上链)同包括MRP4编码区的基因组BAC克隆序列(碱基对61，781-69，748下链)的同源性是100%。图6显示NtMRP3的核苷酸序列，其中5’和3’UTR区以斜体显示；外显子以大写和粗体字母表示；内含子以小写 和正常字母表示；以及起始和终止密码子以大写、粗体和斜体字母表示。
具体实施例方式定义在本申请的范围内，所用的技术术语和表达通常具有普遍适用于植物和分子生物学相关领域中的含义。所有下列术语定义适用于本申请中的全部内容。措词“包括”不排除其它元素或步骤，并且不定冠词“一”或“一个”不排除复数。单个步骤可能实现权利要求中记载的几个特征的功能。与属性或值有关的术语“基本上”、“约”、“大约”等也尤其分别准确限定了属性或值。一个给定值或范围的上下文中，术语“约”是指给定值或范围的20%、10%、或5%、4%、3%、2%或1%内的值或范围。“多核苷酸”是指核苷酸的聚合物，其可以是未修饰的或修饰的脱氧核糖多核苷酸(DNA)或核糖多核苷酸(RNA)。因此，多核苷酸可以是，但不限于，基因组DNA、互补DNA(cDNA)(例如SEQ ID NO:27)、mRNA或反义RNA。此外，多核苷酸可以是单链或双链DNA、单链和双链区的混合物的DNA、含有DNA和RNA的杂种分子、或具有单链和双链区的混合物的杂种分子。此外，多核苷酸可由包括DNA、RNA或两者的三链区组成。多核苷酸可以包含一个或多个修饰的碱基，如硫代磷酸，以及可以是肽多核苷酸(PNA)。一般来说，此处所描述的多核苷酸可以组装自分离或克隆的cDNA片段、基因组DNA、寡核苷酸、或单个核苷酸、或上述的组合。虽然此处所述的多核苷酸序列以DNA序列显示，序列包括其对应的RNA序列、和其互补(例如完全互补)的DNA或RNA序列，包括其反向互补体。术语“NtMRP多核苷酸”包括这样的多核苷酸，在其中核苷酸的聚合物包括、由或基本上由如SEQ ID NO:1、2、27、28、29或51所示的序列组成。此术语还包括与SEQ ID NO:
1、2、27、28、29或51具有相当大同源性(S卩，序列相似性)或相当大同一性的多核苷酸序列；SEQ ID N0:l、2、27、28、29或51的片段；以及与其具有相当大同源性(S卩，序列相似性)或相当大同一性的SEQ ID N0:l、2、27、28、29或51的片段。变体与分离的NtMRP基因(如NtMRP3 基因或 NtMRP4 基因)的序列可具有至少 60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 或 99% 序列同一性。虽然此处所描述的NtMRP多核苷酸序列显示为DNA序列，序列包括其对应的RNA序列、及其互补(例如完全互补的)DNA或RNA序列，包括其反向互补体和反义DNA或RNA序列。示例性片段如SEQ ID NO:3至23和30至50和53所示。术语“N tMRP3多核苷酸”是指这样的实施方式，在其中核苷酸的聚合物包括、由或基本上由此处所指明的如SEQ ID N0:28或SEQ ID NO:29或SEQ ID NO:51所示的多核苷酸组成。该术语包括与SEQ ID NO:28或SEQ ID NO:29或SEQID NO:51具有相当大同源性(即，序列相似性)或相当大同一性的多核苷酸变体；SEQ ID NO:28或SEQ ID NO:29或SEQID NO:51的片段；以及与其具有相当大同源性(B卩，序列相似性)或相当大同一性的SEQ IDN0:28或SEQ ID N0:29或SEQ ID NO:51的片段。如此处所述，变体与分离的NtMRP3基因的序列可具有至少 60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 或 99% 序列同一性。示例性片段如 SEQ ID NO:30 至50所示。术语“NtMRP4多核苷酸”是指这样的实施方式，在其中核苷酸的聚合物包括、由或基本上由此处所指明的如SEQ ID NO:1或SEQ ID NO:2或SEQ ID NO:27所示的多核苷酸组成。该术语包括与SEQ ID NO:1或SEQ ID NO:2或SEQ ID NO:27具有相当大同源性(即，序列相似性)或相当大同一性的多核苷酸变体；SEQ IDNO:1或SEQ ID NO:2或SEQ IDNO:27的片段；以及与其具有相当大同源性(B卩，序列相似性)或相当大同一性的SEQ ID NO:I或SEQ ID NO:2或SEQ IDNO:27的片段。变体与分离的NtMRP3基因的序列可具有至少60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%或99%的序列同一性。示例性片段如SEQ ID NO:3至23和53所示。术语“NtMRP多肽”是指这样的多肽，其包括、由或基本上由与SEQ ID NO:24至26和52具有相当大同源性(S卩，序列相似性)或相当大同一性的氨基酸序列；SEQ ID NO:24至26和52的片段；以及与其具有相当大同源性(即，序列相似性)或相当大同一性的SEQID NO:24至26和52的片段组成。NtMRP多肽包括含有与SEQ ID NO:24至26和52具有足够或相当大程度同一性或相似性的片段和序列，其可以通过跨细胞膜转运重金属(例如，镉)而发挥作用。NtMRP多肽还包括通过引入任何类型的改变(例如，氨基酸的插入、缺失或取代；糖基化状态的变化；影响重新折叠或异构化、三维结构或自我结合状态的变化)所产生的变体或突变体，其可以有意地经过工程化改造或被天然分离。NtMRP多肽可以是线性形式的或使用已知方法环化的。变体与NtMRP4多肽的序列可具有至少60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 或99%的同一性。
术语“NtMRP3多肽”是指这样的实施方式，在其中多肽包括、由或基本上由如SEQID NO:52所示的序列组成，或是指包括、由或基本上由与NO:52具有相当大同源性(B卩，序列相似性)或相当大同一性的氨基酸序列；SEQ ID NO:52的片段；以及与其具有相当大同源性(即，序列相似性)或相当大同一性的SEQ IDNO:52的片段组成的多肽。NtMRP3多肽包括含有与SEQ ID NO:52具有足够或相当大程度同一性或相似性的片段和序列，其可以通过跨细胞膜转运重金属(例如，镉)而发挥作用。NtMRP3多肽还包括通过引入任何类型的改变(例如，氨基酸的插入、缺失或取代；糖基化状态的变化；影响重新折叠或异构化、三维结构或自我结合状态的变化)所产生的变体或突变体，其可以有意地经过工程化改造或被天然分离。NtMRP3多肽可以是线性形式的或使用已知方法环化的。如此处所述，变体与NtMRP3多肽的序列可具有至少 60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 或 99% 的同一性。术语“NtMRP4多肽”是指这样的实施方式，在其中多肽包括、由或基本上由如SEQID NO: 24、SEQ ID NO: 25或SEQ ID NO: 26所示的序列组成，或是指包括、由或基本上由与SEQ ID NO:24, SEQ ID NO:25或SEQ ID NO:26具有相当大同源性(B卩，序列相似性)或相当大同一性的氨基酸序列；SEQ ID NO:24,SEQ ID NO:25或SEQ ID NO:26的片段；以及与其具有相当大同源性(即，序列相似性)或相当大同一性的SEQ ID NO:24,SEQ ID NO:25或SEQ ID NO:26的片段组成的多肽。NtMRP4多肽包括含有与SEQ ID NO:24, SEQ ID NO:25或SEQ ID NO:26具有足够或相当大程度同一性或相似性的片段和序列，其可以通过跨细胞膜转运重金属(例如，镉)而发挥作用。NtMRP4多肽还包括通过引入任何类型的改变(例如，氨基酸的插入、缺失或取代；糖基化状态的变化；影响重新折叠或异构化、三维结构或自我结合状态的变化)所产生的变体或突变体，其可以有意地经过工程化改造或被天然分离。NtMRP4多肽可以是线性形式的或使用已知方法环化的。如此处所述，变体与NtMRP4多肽的序列可具有至少 60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 或 99% 的同一性。术语“分离的”是指取自其天然环境的实体，但是术语并不意味着任何程度的纯化。“基因序列”是指多核苷酸分子或编码多肽的多核苷酸或具有生物活性的RNA的核苷酸序列，并包括仅编码蛋白质片段的部分编码序列的核苷酸序列。术语“载体”是指多核苷酸载体，其包括能够转运多核苷酸、多核苷酸构建体和多核苷酸缀合物等的多核苷酸组分的组合。合适的载体包括能够进行染色体外复制的游离体(episome)，如环形、双链多核苷酸质粒；线性化的双链多核苷酸质粒；和任何来源的其它载体。“表达载体”是指多核苷酸载体，其包括能够表达多核苷酸、多核苷酸构建体和多核苷酸缀合物等的多核苷酸组分的组合。合适的表达载体包括能够进行染色体外复制的游离体，如环形、双链多核苷酸质粒；线性化的双链多核苷酸质粒；和任何来源的其它功能等价的表达载体。表达载体包括至少一个位于上游的并且有效地连接至如下所限定的多核苷酸、多核苷酸构建体或多 核苷酸缀合物的启动子。“构建体”是指双链、重组多核苷酸片段，其包括一个或多个NtMRP多核苷酸。构建体包括与互补的“有义或编码链”碱基配对的“模板链”。给定的构建体可以按两个可能的方向插入到载体中，相对于位于载体(如表达载体)中的启动子的方向相同(或有义)的方向或相反(或反义)的方向。术语“缀合物”是指多核苷酸通过共价附着(“缀合”)至一个或多个其本身不是多核苷酸或单体的半体(“缀合半体”)而形成的化合物。“模板链”是指包括互补于多核苷酸双链体“有义或编码链”的序列的链，比如NtMRP基因组片段、NtMRP的cDNA、或NtMRP构建体、或包括通过RNA聚合酶可转录的多核苷酸序列的任何多核苷酸片段。在转录期间，新生RNA合成过程中，RNA聚合酶可以沿着模板链按3’至5’的方向移位。“有义链”此处和术语“编码链”可互换使用，是指包括互补于DNA双链体中模板链的序列的链。例如，对于所鉴定的NtMRP基因组克隆的有义链(“有义序列”)的序列指定为SEQ ID NO:1或SEQ ID NO:2。例如，如果有义链包括假设的序列5’-TAATCCGGT-3’，那么假设的靶mRNA中基本上相同的相应序列是5’ -UAAUCCGGU-3’。“反向互补序列”是指互补于位于相同链内的目标“有义序列”(例如，外显子序列)的序列，位于相对于有义序列的相同方向。例如，如果一条链包含假设序列5’ -TAATCCGGT-3’，那么反向互补序列5’ -ACCGGATTA-3’可以有效地连接至有义序列，通过间隔序列分开。“NtMRP”、“NtMRP3”或“NtMRP4`RNA转录物”包括感兴趣的宿主植物细胞内产生的多核糖多核苷酸分子，其产生自如此处所述的内源性NtMRP3或NtMRP4基因或cDNA的转录。因此，此术语包括作为NtMRP3或NtMRP4的转录产物而产生的任何RNA种类或RNA变体，或包括那些在结构/功能水平上具有足够相似性的RNA种类或RNA变体的NtMRP3或NtMRP4RNA。例如，NtMRP3或NtMRP3RNA转录物包括，但不限于:(I)分离的NtMRP3或NtMRP3基因或cDNA的转录所产生的pre-mRNA和mRNA ；(2)任何基因的转录所产生的preiRNA和mRNA，所述基因与分离的NtMRP3基因的序列具有至少60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99% 或 100% 序列同一性(即，和所鉴定的NtMRP3基因基本上相同的以及编码ABC转运蛋白相关同种型的其它不同基因)；以及(3) NtMRP3基因的等位基因的转录所产生的pre-mRNA和mRNA。NtMRP3RNA转录物包括作为特定基因的异核RNA (“hnRNA”)的可选RNA剪接反应的结果而产生的RNA变体、产生自这种可选RNA剪接反应的mRNA变体、以及任何中间的RNA变体。通过进一步的实施例的方式，NtMRP4或NtMRP4RNA转录物包括:(1)分离的NtMRP4或NtMRP4基因或cDNA的转录所产生的pre-mRNA和mRNA，如此处所述；(2)任何基因的转录所产生的pre-mRNA和mRNA，所述基因与分离的NtMRP4基因的序列具有至少60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%或100%或更高的序列同一性(即，和所鉴定的NtMRP4基因基本上相同的以及编码ABC转运蛋白相关同种型的其它不同基因);以及(3)NtMRP或NtMRP4基因的等位基因的转录所产生的pre-mRNA和mRNA。NtMRP和NtMRP4RNA转录物包括作为特定基因的异核RNA (“hnRNA”)的可选RNA剪接反应的结果而产生的RNA变体、产生自这种可选RNA剪接反应的mRNA变体、以及任何中间的RNA变体。“同源性”、“同一性”或“相似性”是指通过序列比对比较的两条多肽之间或两条多核苷酸分子之间序列相似性的程度。两条待比较的分立的多核苷酸序列之间的同源性程度是在可比较的位置上相同的或匹配的核苷酸数目的函数。体现为百分比同一性的相似性程度可以通过目测和数学计算来确定。或者，两条多核苷酸序列的百分比同一性可以通过使用Devereux等人所描述的并且可获自威斯康星大学遗传学计算机小组(UWGCG)的 GAP 计算机程序(版本 6.0) (Nucl.Acids Res.12:387，1984)、Clustalff, BLAST、FASTA或Smith-Waterman比较序列信息来确定。GAP程序典型的默认参数包括:(I)对于核苷酸，一元比较矩阵(含有I为同一性以及O为非同一性的值)，以及如Schwartz和DayhofT编辑,Atlas ofProtein Sequence and Structure, National Biomedical ResearchFoundation, pp.353-358，1979 所描述的，Nucl.Acids Res.14:6745, 1986, Gribskov 和Burgess的权重比较矩阵；(2)对于每个空位(gap)罚分为3.0,以及对于每个空位中的各符号为额外0.10的罚分；以及(3)对于末端空位没有罚分。序列比较领域中的技术人员已知的各种程序可以交替使用。术语“上游”是指沿着线性多核苷酸序列相对于参考元件的相对方向/位置，其表示朝着多核苷酸序列5’端的方向/位置。“上游”可以与“参考元件的5’端”互换使用。“有效地连接”是指连接不同的多核苷酸元件、片段或序列来产生功能性转录单元或功能性表达载体。“启动子”是指通常位于上游的并且有效地连接至双链DNA片段(如NtMRP RNAi构建体)的多核苷酸元件/序列。例如，合适的启动子使得能够通过募集转录复合物来转录激活NtMRP RNAi构建体以便启动RNA的合成，转录复合物包括RNA聚合酶和各种因子。启动子可以整个源自靠近目标天然基因的区域，或可以由源自不同天然启动子或合成DNA节段的不同元件组成。“增强子”是指可以募集转录调节蛋白(比如转录激活子)以通过增加启动子活性来增强转录激活的多核苷酸分子、或多核苷酸序列。合适的增强子可以源自靠近目标天然启动子的区域(同源来源)，或者可以源自非天然环境(异源来源)并且有效地连接到NtMRP构建体(如RNAi表达载体)内的任何目标启动子上，以增强启动子活性或组织特异性。有些增强子可以在相对于转录单元方向的任何方向进行操作。例如，增强子可位于转录单元的上游或下游，转录单元包括启动子和NtMRP构建体。如此处所用，术语“植物”是指在其生命周期或发育的任何阶段的任何植物及其后代。在一个实施方式中，植物是烟草植物，其是指属于烟草属的植物。此处描述了烟草植物的优选物种、栽培品种、杂交种和品种。术语“植物细胞”是指植物的结构和生理单元。植物细胞可以是没有细胞壁的原生质体的形式、分离的单细胞或培养的细胞、或作为较高组织单元(比如但不限于植物组织、植物器官或整个植物)的部分。“植物材料”是指可获自植物的任何固体、液体或气体组合物、或其组合，其包括生物质、叶、叶片、中脉、茎、根、花或花部分、果实、花粉、卵细胞、受精卵、种子、插条、分泌物、提取物、细胞或组织培养物、或植物的任何其它部分或产品。在一个实施方式中，植物材料包括或由生物质、种子或叶组成。在另一实施方式中，植物材料包括或由叶组成。术语“品种”是指共享恒定特性的一群植物，所述特性将它们区别于相同物种的其它植物。当具有一个或多个不同的性状时，品种 特征进一步在于该品种内个体间非常小的整体差异。品种往往是市场上销售的。
术语“系”或“育种系”表示植物育种期间所使用的一组植物。系不同于品种，因为其表现个体间一个或多个目标性状的小差异，尽管对于其它性状可能有一些个体间差异。术语“减少”或“减少的”是指从约10%至约99%的减少，或至少10%、至少20%、至少25%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少75%、至少80%、至少90%、至少95%、至少98%、至少99%、或至少100%、200%或300%或以上的量或活性的减少，如但不限于多肽活性、转录活性和/或蛋白质的表达。如此处所用，术语“抑制”或“抑制的”是指从约98%至约100%的减少，或至少98%、至少99%、但尤其是100%的量或活性的减少，比如但不限于多肽活性、转录活性和/或蛋白质的表达。术语“增加”或“增加的”是指从约10%至约99%的增加，或至少10%、至少20%、至少25%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少75%、至少80%、至少90%、至少95%、至少98%、至少99%、或至少100%、200%或300%或以上的量或活性的增加，如但不限于
多肽活性、转录活性和/或蛋白质的表达。术语“对照”在对照植物或对照植物细胞的上下文中是指植物或植物细胞，其中特定基因或蛋白质(如NtMRP)的表达或活性未经修饰(例如，增加或减少的)，因此其可以提供与植物的比较，在所述植物中特定基因或蛋白质(如NtMRP)的表达或活性已经过修饰。对照植物可包括空载体。对照植物可对应着野生型植物。详细描述此处所述的NtMRP多核苷酸和多肽包括NtMRP3和NtMRP4多核苷酸和多肽。如图6中所示，指定为SEQ ID NO :28或SEQ ID NO:29的NtMRP3基因组克隆包括:内含子I (SEQID N0:30)、内含子 2 (SEQ ID N0:31)、内含子 3 (SEQ ID N0:32)、内含子 4 (SEQ ID NO:33)、内含子 5 (SEQ ID N0:34)、内含子 6 (SEQ ID N0:35)、内含子 7 (SEQ ID N0:36)、内含子 8 (SEQ ID N0:37)、内含子 9 (SEQ ID N0:38)、内含子 10 (SEQ ID NO:39)、外显子 I(SEQID N0:40)、外显子 2 (SEQ ID N0:41)、外显子 3 (SEQ ID NO:42)、外显子 4 (SEQ IDNO:43)、外显子 5 (SEQ ID NO:44)、外显子 6 (SEQ ID NO:45)、外显子 7 (SEQ ID NO:46)、外显子 8 (SEQ ID N0:47)、外显子 9 (SEQID NO:48)、外显子 10 (SEQ ID NO:49)和外显子 11 (SEQ ID NO:50)。各种实施方式涉及代表着在NtMRP3基因座分离的基因组片段的分离多核苷酸，包括 SEQ ID NO:28 或 SEQ ID NO:29，SEQ ID NO:28 或 SEQ ID NO:29 的片段，或其变体。各种实施方式涉及代表着NtMRP3基因座cDNA序列的分离多核苷酸，包括SEQ IDNO:5U SEQ ID NO:51的片段，或其变体。各种实施方式涉及分离的NtMRP多核苷酸变体，其与SEQ ID NO:28或SEQID NO:29、或 SEQ ID NO:28 或 SEQ ID NO:29 的片段包括至少 71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 和 99% 的序列同一性。各种实施方式涉及分离的多核苷酸，其互补于NtMRP多核苷酸变体，NtMRP多核苷酸变体与 SEQ ID N0:28 或 SEQ ID NO:29 或 SEQ ID NO:51、或者 SEQ ID NO:28 或 SEQID N0:29或SEQ ID NO:51 的片段包括至少71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%和99%的序列同一性。各种实施方式涉及分离的多核苷酸，其可以在中度到高度严谨条件下和包括SEQID NO:28 或 SEQ ID NO:29 或 SEQ ID N0:51、或 SEQ ID NO:28 或 SEQ ID NO:29 或 SEQ IDNO:51的片段的多核苷酸进行特异性杂交。如图1中所示，指定为SEQ ID NO:1或SEQ ID NO:2的NtMRP4基因组克隆包括:内含子 I (SEQ ID NO:3)、内含子 2 (SEQ ID NO:4)、内含子 3 (SEQ ID NO:5)、内含子 4 (SEQID NO:6)、内含子 5 (SEQ ID NO:7)、内含子 6 (SEQ ID NO:8)、内含子 7 (SEQ ID NO:9)、内含子 8 (SEQ ID N0:10)、内含子 9 (SEQ ID N0:11)、内含子 10 (SEQ ID N0:12)、外显子
1(SEQ ID N0:13)、外显子 2 (SEQ ID NO:14)、外显子 3 (SEQ ID N0:15)、外显子 4 (SEQID N0:16)、外显子 5 (SEQ ID N0:17)、外显子 6 (SEQ ID N0:18)、外显子 7 (SEQ ID NO:19)、外显子 8 (SEQ ID N0:20)、外显子 9 (SEQ ID NO:21)、外显子 10 (SEQ ID NO:22)和外显子 11 (SEQ ID N0:53)或 SEQ ID NO:23。各种实施方式涉及代表着在NtMRP4基因座分离的基因组片段的分离多核苷酸，包括 SEQ ID NO:1 或 SEQ ID NO:2、或 SEQ ID NO:1 或 SEQ ID NO:2 的片段，或其变体。各种实施方式涉及分离的CDNA，其包括SEQ ID NO:27、SEQ ID NO:27的片段，或
其变体。各种实施方式涉及分离的NtMRP多核苷酸变体，其与SEQ ID NO:1或SEQID NO:2或 SEQ ID N0:27、或 SEQ ID NO:1 或 SEQ ID NO:2 或 SEQ ID NO:27 的片段包括至少 71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 和 99% 的序列同一性。各种实施方式涉及分离的多核苷酸，其互补于NtMRP多核苷酸变体，NtMRP多核苷酸变体与 SEQ ID NO:1 或 SEQ ID NO:2 或 SEQ ID NO:27、或者 SEQ IDNO:1 或 SEQ ID NO:
2或 SEQ ID NO:27 的片段包括至少 71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%和99%的序列同一性。 各种实施方式涉及分离的多核苷酸，其可以在中度到高度严谨条件下和包括SEQID NO:1 或 SEQ ID NO:2 或 SEQ ID NO:27、或 SEQ ID NO:1 或 SEQ IDNO:2 或 SEQ ID NO:27的片段的多核苷酸进行特异性杂交。如此处所述的，多核苷酸通常含有磷酸二酯键，尽管在某些情况下，包括多核苷酸类似物，多核苷酸类似物可具有替代骨架，包括例如氨基磷酸酯、硫代磷酸酯、二硫代磷酸酯或O-甲基氨基磷酸酯键；以及肽多核苷酸骨架和键。其它类似物多核苷酸包括具有阳性骨架；非离子型骨架和非核糖骨架的那些。核糖-磷酸骨架的修饰可以出于各种原因而进行，例如，为了增加这样的分子在生理环境中或在生物芯片上作为探针的稳定性和半衰期。可以制备天然发生的多核苷酸和类似物的混合物；或者，可以制备不同多核苷酸类似物的混合物，以及天然发生的多核苷酸和类似物的混合物。已知各种多核苷酸类似物，包括例如氨基磷酸酯、硫代磷酸酯、二硫代磷酸酯、O-甲基氨基磷酸酯键以及肽多核苷酸骨架和键；其它类似物多核苷酸包括具有阳性骨架、非离子型骨架和非核糖骨架的那些。也包括含有一个或多个碳环糖的多核苷酸。其它类似物包括肽多核苷酸(PM)，其是肽多核苷酸类似物。这些骨架在中性条件下基本上是非离子型的，不同于天然发生的多核苷酸的高电荷磷酸二酯骨架。这可能会带来优势。首先，PNA骨架可能会表现出改善的杂交动力学。PNA在解链温度(Tm)上，相对于完全匹配的碱基对，对于不匹配的碱基对具有更大的变化。DNA和RNA对于内部不匹配通常在Tm上表现出2-4°C的下降。对于非离子型的PNA骨架，下降接近7-9°C。相似地，由于其非离子性质，碱基附着至这些骨架的杂交对盐浓度相对不敏感。此外，PNA可能不会被细胞酶降解或降解程度较小，并因此可能会更稳定。在所公开的NtMRP多核苷酸、及其片段的组合的用途当中，是片段在多核苷酸杂交分析中作为探针、或者在多核苷酸扩增分析中用作引物的用途，或者片段在开发各种多核苷酸构建体(如RNAi分子)中的用途。这样的片段通常包括DNA序列的至少约10、11、12、
13、14、15、16、17、18、19或20或更多个连续核苷酸。在其它实施方式中，DNA片段包括DNA序列的至少约10、15、20、30、40、50或60或更多个连续核苷酸。因此，在进一步的方面中，还提供了用于检测NtMRP多核苷酸的方法，其包括使用此处所描述的探针和/或引物。影响杂交条件选择的基本参数和制定合适条件的指导由Sambrook, J.，E.F.Fritsch 和 T.Maniatis 描述(1989，Molecular Cloning: A LaboratoryManual, ColdSpring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.X 使用遗传密码子和上述氨基酸序列的知识，可以制备简并寡核苷酸的集合。这样的寡核苷酸可用作引物，例如在聚合酶链反应(PCR)中，由此分离并扩增多核苷酸片段。在某些实施方式中，可以用简并引物作为非人类遗传文库的探针。这种文库将包括但不限于cDNA文库、基因组文库、甚至电子EST (表达序列标签)或DNA文库。然后将通过此方法鉴定的同源序列用作探针，来鉴定此处所鉴定的NtMRP序列的非人类同源物。潜在用途还有多核苷酸和寡核苷酸(例如，引物或探针)，其在降低的严谨条件下、通常中等严谨条件下、通常高度严谨条件下杂交至此处所述的NtMRP多核苷酸。影响杂交条件选择的基本参数和制定合适条件的指导由Sambrook, J., E.F.Fritsch和T.Maniatis描述(1989，Molecular Cloning:A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor LaboratoryPress, Cold Spring Harbor, N.Y.),并且可以由本领域的普通技术人员基于例如多核苷酸的长度或碱基组成很容易地确定。

实现中等严谨条件的一种方法涉及使用含有5X标准柠檬酸钠、0.5%十二烷基硫酸钠、1.0mM乙二胺四乙酸(pH8.0)的预洗溶液，约50%甲酰胺、6 X标准柠檬酸钠的杂交缓冲液，以及约55°C的杂交温度(或其它相似的杂交溶液，如含有约50%甲酰胺，杂交温度约42°C的一个)，以及0.5 X标准柠檬酸钠、0.1%十二烷基硫酸钠中约60°C的洗涤条件。一般情况下，高度严谨条件定义为如上杂交条件，但在约68°C，0.2X标准柠檬酸钠、0.1%十二烷基硫酸钠中洗涤。SSPE( I X SSPE是0.15M氯化钠、IOmM磷酸钠和1.25mM乙二胺四乙酸，pH值7.4)在杂交中可替换为标准柠檬酸钠(I X标准柠檬酸钠是0.15M氯化钠和15mM柠檬酸钠)以及洗涤缓冲液；杂交完成后，进行15分钟的洗涤。应当理解，洗涤温度和洗涤盐浓度，通过应用控制杂交反应和双链体稳定性的基本原则，可以根据需要进行调整以实现所需的严谨程度，如本领域技术人员所知的并在下面进一步描述(见，例如Sambrook, J.，E.F.Fritsch 和 T.Maniatisl989, Molecular Cloning:A Laboratory Manual, Cold SpringHarbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.)。当多核苷酸杂交至未知序列的革巴多核苷酸时，杂交长度假定为杂交多核苷酸的长度。当已知序列的多核苷酸杂交时，杂交长度可通过比对多核苷酸的序列以及鉴定最佳序列互补性的区域或多个区域来确定。期望小于50个碱基对长度的杂交的杂交温度应该是低于杂交的解链温度(Tm) 5至10°C，其中根据下面的公式确定Tm。对于长度小于18个碱基对的杂交，Tm (。C)=2 (A+T碱基数目)+4(G+C碱基数目)。对于长度大于18个碱基对的杂交，Tm (。0=81.5+16.6 (1glO [Na+])+0.41 (%G+C)- (600/N)，其中N是杂交中的碱基数目，以及[Na+]是钠离子在杂交缓冲液中的浓度(对于IX标准柠檬酸钠，[Na+]=0.165M)。通常情况下，每个这种杂交多核苷酸具有这样的长度，是其所杂交的多核苷酸的长度的至少25% (通常至少50%、60%、或70%，并最常用为至少80%)，并且与其所杂交的多核苷酸具有至少60%的序列同一性(例如，至少65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、97.5%、或至少 99%)。本领域技术人员将理解，线性DNA具有两个可能的方向:5’至3’方向和3’至5’方向。例如，如果参考序列处于5’至3’方向，并且如果第二序列在相同多核苷酸分子/链内处于5’至3’方向，那么参考序列和第二序列处于相同的方向，或具有相同的方向。通常情况下，在给定启动子的调控下，目标基因和启动子的序列处于相同的方向。然而，相对于处于5’至3’方向的参考序列，如果第二序列在相同多核苷酸分子/链内处于3’至5’方向，那么参考序列和第二序列处于反义的方向，或具有反义的方向。如果参考序列(5’至3’方向)和参考序列的反向互补序列(参考序列处于5’至3’)处于相同多核苷酸分子/链内，相对于彼此具有反义方向的两条链可以可替代地描述为具有相同的方向。此处所示序列以5’至3’方向显示。NtMRP多肽包括通过引入任何类型的改变(例如，氨基酸的插入、缺失或取代；糖基化状态的变化；影响重新折叠或异构化、三维结构或自我结合状态的变化)所产生的变体，其可以有意地经过工程化改造或被天然分离。NtMRP3或NtMRP4多肽可以是线性形式的或使用已知方法环化的。NtMRP4多肽包括至少10、至少20、至少30、或至少40个连续氨基酸。各种实施方式涉及由多核苷酸序列编码的分离NtMRP3多肽，多核苷酸序列包括、由或基本由 SEQ ID N0:28 或 SEQ ID NO:29 或 SEQ ID NO:51 以及 SEQ ID NO:28 或 SEQID NO:29或SEQ ID NO:51的片段、或其变体组成。各种实施方式涉及由多核苷酸序列编码的分离NtMRP4多肽，多核苷酸序列包括、由或基本由 SEQ ID NO:1 或 SEQ ID NO:2 或 SEQ ID NO:27,SEQ ID NO:1 或 SEQ ID NO:2或SEQ ID NO:27的片段，或其变体组成。各种实施方式涉及分离的NtMRP多肽变体，其与SEQ ID NO:1或SEQ ID NO:2或SEQ ID NO:27 或 SEQ ID NO:28 或 SEQ ID NO:29 或 SEQ ID NO:51、或者 SEQ ID NO:1 或SEQ ID NO:2 或 SEQ ID NO:27 或 SEQ ID NO:28 或 SEQ ID NO:29 或 SEQ ID NO:51 的片段包括至少 70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 和 99% 的序列同一性。NtMRP、NtMRP3和NtMRP4的突变多肽变体也包括在权利要求书中，并在此处公开为突变的、非天然发生的或转基因的植物(例如，突变的、非天然发生的或转基因的烟草植物)，其包括NtMRP和/或MtMRP3和/或NtMRP4的突变多肽变体。此处所用术语“非天然发生的”描述不由自然形成或者不存在于自然当中的实体(例如，多核苷酸、基因突变、多肽、植物、植物细胞和植物材料)。可以通过此处所述或本领域中已知的方法制备、合成、启动、修饰、干预或操纵这样的非天然发生的实体或人工实体。因此，通过举例的方式，可以使用传统植物育种技术(如回交)或通过遗传操做技术(如反义RNA、干扰RNA、大范围核酸酶等)制备非天然发生的植物、非天然发生的植物细胞或非天然发生的植物材料。通过进一步的实例， 可以通过从第一植物或植物细胞向第二植物或植物细胞(它本身可以是天然发生的)的基因渗入或通过传送一个或多个基因突变(例如，一个或多个多态性)制备非天然发生的植物、非天然发生的植物细胞或非天然发生的植物材料，从而得到包括不由自然形成或者不存在于自然当中的遗传结构(例如，基因组、染色体或其节段)的植物、植物细胞或植物材料或其后代。因此，得到的植物、植物细胞或植物材料是人工或者非天然发生的。因此，即使得到的遗传序列天然发生于包括不同于第一植物或植物细胞的遗传背景的第二植物或植物细胞中，也可以通过在第一天然发生的植物或植物细胞中修饰遗传序列来制备人工的或非天然发生的植物或植物细胞。可以通过表型差异或通过本领域已知的分子生物学技术(如多核苷酸测序、遗传标记物(例如，微卫星RNA标记物)的存在或不存在)检测遗传背景的差异。
通过在适合表达多肽的培养条件下培养转化的或重组的宿主细胞可以制备多肽。然后可使用已知的纯化过程从这些培养物中纯化所产生的表达的多肽。多肽的纯化也可包括含有结合多肽的试剂的亲和柱；一个或多个穿过这样的亲和树脂的柱步骤，亲和树脂如伴刀豆球蛋白A琼脂糖、肝素-Toyopearl 或Cibacrom blue3GA Sepharose ； 一个或
多个涉及使用这样的树脂的疏水性相互作用色谱法的步骤，树脂如苯基醚、丁基醚或丙基醚；或免疫亲和色谱。或者，多肽也可以有利于纯化的形式进行表达。例如，其可以被表达为融合多肽，如麦芽糖结合多肽(MBP)、谷胱甘肽-5-转移酶(GST)或硫氧还蛋白(TRX)的那些。用于表达和纯化这种融合多肽的试剂盒商业上分别获自New England BioLab(Beverly, Mass.)、Pharmacia (Piscataway, N.J.)和 InVitrogen。多妝也可以被表位所标记，并随后通过使用针对这种表位的特异性抗体进行纯化。最后，可以采用一个或多个利用疏水RP-HPLC介质，例如具有侧甲基或其它脂肪族基团的硅胶的反相高效液相色谱法(RP-HPLC)步骤进一步纯化多肽。也可以，以不同的组合，采用部分或全部上述纯化步骤，来提供基本上同质的重组多肽。这样纯化的多肽基本上没有其它多肽，此处定义为“基本上纯化的多肽”；这样纯化的多肽包括NtMRP多肽、片段、变体等。可以通过任何合适的技术，包括但不限于此处所述的方法，来实现多肽和片段的表达、分离和纯化。也可以利用亲和柱，如产生的抗多肽的单克隆抗体，来亲和纯化表达的多肽。可以用常规技术从亲和柱中除去这些多肽，例如在高盐洗脱缓冲液中，然后对较低盐的缓冲液进行透析备用、或通过改变PH值或其它组件，这取决于所用的亲和基质，或者使用天然发生的亲和半体的底物，如来自于本公开的多肽，被竞争性除去。也可以通过已知的常规化学合成来制备多肽。用于通过合成装置来构建多肽或其片段的方法是本领域技术人员已知的。合成构建的多肽序列，通过与天然多肽分享一级、二级或三级结构或构象特征，可拥有与其共同的生物学性质，包括生物活性。实施方式涉及用于生产突变的、非天然发生的或转基因的植物的组合物和方法，所述植物已经通过减少NtMRP多核苷酸表达水平或通过减少由此编码的蛋白质的活性而被修饰以减少或阻碍重金属(例如镉)转运至叶片。和对照植物相比，NtMRP RNA转录物的稳态水平可被降低。因此，用于跨细胞膜转运重金属(例如镉)的可获得的功能活性NtMRP转运蛋白的数目可被降低，从而镉水平也被降低。NtMRP多核苷酸表达的减少可以从约5%至约100%，或至少10%、至少20%、至少25%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少75%、至少80%、至少90%、至少95%、至少98%、或高达100%的减少，其包括转录活性或蛋白质表达的减少。NtMRP蛋白活性的减少可从约5%至约100%，或至少10%、至少20%、至少25%、至少30%、至少40%、至少50%、至少60%、至少70%、至少75%、至少80%、至少90%、至少95%、至少98%、或高达100%的减少。抑制是指从约98%至大约100%的减少，或至少98%、至少99%、但特别是100%的减少。此处所述的多核苷酸和重组构建体可用于调节(例如，减少或抑制)NtMRP多肽在目标植物物种中的表达。已知一些基于多核苷酸的方法来抑制植物中基因的表达，包括反义RNA、核酶指导的RNA切割、转录后基因沉默(PTGS)，例如RNA干扰(RNAi)以及转录基因沉默(TGS)。合适的多核苷酸包括编码NtMRP多肽的全长多核苷酸或全长多核苷酸的片段。在一些实施方式中，可以使用全长多核苷酸或其片段的互补物。通常情况下，片段是至少 10 个连续核 苷酸，例如，至少为 10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、
26、27、30、35、40、50、80、100、200、500或更多个连续的核苷酸。一般情况下，更高的同源性可以用来补偿较短序列的使用。因此，可以调节(例如，减少或抑制)NtMRP表达或活性的组合物包括但不限于可以干扰一个或多个内源性NtMRP基因转录的序列特异性多核苷酸；可以干扰NtMRP RNA转录物翻译的序列特异性多核苷酸(例如双链RNA、siRNA、核酶);可以干扰NtMRP蛋白稳定性的序列特异性多肽；可以干扰NtMRP蛋白的酶活性或NtMRP蛋白相对于底物或调节蛋白的结合活性的序列特异多核苷酸JiNtMRP蛋白表现出特异性的抗体；可以干扰NtMRP蛋白稳定性或NtMRP蛋白的酶活性或NtMRP蛋白的结合活性的小分子化合物；结合NtMRP多核苷酸的锌指蛋白；以及对NtMRP多核苷酸具有活性的大范围核酸酶。反义技术是一种公知的方法，其可以用来进行调节(例如，减少或抑制)NtMRP多肽的表达。待抑制的基因的多核苷酸进行克隆并有效地连接到调节区和转录终止序列，从而转录RNA的反义链。如此处所述，重组构建体然后转化到植物中并产生RNA的反义链。多核苷酸不必是待抑制的基因的整个序列，但通常基本上互补至待抑制的基因的有义链至少部分。多核苷酸可转录成核酶或催化性RNA,其影响mRNA的表达。核酶可被设计成特异性地与几乎任何靶RNA配对并在特定位置切割磷酸二酯骨架，从而在功能上灭活靶RNA。异源多核苷酸可以编码被设计用于切割特定mRNA转录物的核酶，从而防止多肽的表达。尽管可以使用各种在位点特异性识别序列切割mRNA的核酶，使用锤头核酶来破坏特定的mRNA。锤头核酶在侧翼区所规定的位置切割mRNA，侧翼区与靶mRNA形成互补碱基对。唯一要求是靶RNA包含5’-UG-3’核苷酸序列。锤头核酶的构建和生产是本领域已知的。锤头核酶序列可以被嵌入稳定的RNA (如转移RNA (tRNA))中来增加体内切割效率。例如，可以制备这样的构建物，其包括转录成RNA的序列，所述RNA可以自我退火，例如，具有茎环结构的双链RNA。在一些实施方式中，双链RNA的茎部分的一条链包括和NtMRP多核苷酸的有义编码序列或其片段相似的或相同的序列，并且长度从约10个核苷酸至约2500个连续核苷酸。与有义编码序列相似的或相同的序列的长度可以从10个连续核苷酸至500个连续核苷酸、从15个连续核苷酸至300个连续核苷酸、从20个连续核苷酸至100个连续核苷酸、或从25个连续核苷酸至100个连续核苷酸。双链RNA茎部分的另一条链包括与NtMRP多核苷酸编码序列的反义链或其片段相似或相同的序列，并可以具有同有义序列的对应长度更短、相同或更长的长度。在某些情况下，双链RNA茎部分的一条链包括与编码NtMRP多肽的mRNA的3’或5’非翻译区、或其片段相似或相同的序列，并且双链RNA茎部分的另一条链包括这样的序列，其与编码NtMRP的mRNA的各自3’或5’非翻译区、或其片段互补的序列相似或相同。在其它实施方式中，双链RNA茎部分的一条链包括与编码NtMRP多肽的pre-mRNA中的内含子序列或其片段相似或相同的序列，并且茎部分的另一条链包括这样的序列，其与pre-mRNA中的内含子序列或其片段互补的序列相似或相同。双链RNA的环部分可以从约3个核苷酸至约5000个核苷酸-如从约15个核苷酸至约1000个核苷酸、从约20个核苷酸至约500个核苷酸、从约25个核苷酸至250个核苷酸。RNA的环部分可以包含内含子或其片段。双链RNA可以具有零、一、二、三、四、五、六、七、八、九、十或更多个茎环结构。构建体包括有效地连接到调节区或转录终止序列的序列，并且该序列转录成可以形成双链RNA的RNA，构建体可以转化至如此处所述的植物。使用RNAi来抑制基因表达的方法是本领域的技术人员已知的。也可使用包括按着有义方向有效连接至多核苷酸分子的调节区的构建体来抑制基因的表达。转录产物可以与NtMRP多肽的有义编码序列或其片段相似或相同。转录产物也可以是非多腺苷酸化的， 缺少5’帽结构，或包含不可剪接的内含子。使用全长cDNA以及部分cDNA序列抑制基因表达的方法是本领域中已知的。在一些实施方式中，使用包括具有至少一条链的多核苷酸的构建体来抑制基因的表达，所述链是彼此互补的有义和反义序列二者的模板。有义和反义序列可以是较大多核苷酸分子的部分，或可以是具有不互补序列的独立多核苷酸分子的部分。有义或反义序列可以是同编码NtMRP多肽的mRNA序列、mRNA的3’或5’非翻译区或pre-mRNA中的内含子、或这种序列的片段相同或互补的序列。在一些实施方式中，有义或反义序列同驱动编码NtMRP多肽的基因的转录的调节区的序列相同或互补。在每一种情况下，有义序列是互补于反义序列的序列。有义和反义序列长度可以大于约10个核苷酸(例如，约10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30或多个核苷酸)。例如，反义序列长度可以是约20、21、22、23、24、25、26、27、28、29或30个核苷酸。通常情况下，有义和反义序列长度范围从约15个核苷酸至约30个核苷酸，例如，从约18个核苷酸至约28个核苷酸，或约从约21个核苷酸至约25个核苷酸，或从约23个核苷酸至约25个核苷酸。在一些实施方式中，反义序列是互补于编码此处所述NtMRP多肽的mRNA序列或其片段的序列。互补于反义序列的有义序列可以是NtMRP多肽mRNA内出现的序列。通常情况下，有义和反义序列经过设计以便对应于靶mRNA的15-30个核苷酸序列，从而减少靶mRNA的水平。在一些实施方式中，可以使用包括具有至少一条链的多核苷酸的构建体抑制基因的表达，所述链是一个以上有义序列(例如，约2、3、4、5、6、7、8、9、10或更多有义序列)的模板。同样的，可以使用包括具有至少一条链的多核苷酸的构建体抑制基因的表达，所述链是一个以上反义序列(例如，约2、3、4、5、6、7、8、9、10或更多反义序列)的模板。例如，构建体可以包含具有至少一条链的多核苷酸，所述链是两条有义序列和两条反义序列的模板。多个有义序列可以是相同的或不同的。多个反义序列可以是相同的或不同的。例如，构建体可以包括具有一条链的多核苷酸，所述链是互补于两条相同有义序列的两条相同有义序列和两条相同反义序列的模板。或者，分离的多核苷酸可以包括一条链，所述链是(I)两条相同有义序列，其长度约 10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29 或30或更多个核苷酸，(2)—条反义序列，其互补于两条相同有义序列，其长度约10、11、12、
13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29或 30 或更多个核苷酸，(3)有义序列，其长度约 10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29 或 30或更多个核苷酸，以及(4)三条相同反义序列，其互补于有义序列，其长度约10、11、12、13、
14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29或 30 或更多个核苷酸的模板。此处提供的构建体可以被设计为具有任意排列的有义和反义序列。例如，两条相同的有义序列其后可以是两条相同的反义序列，或可以位于两条相同的反义序列之间。包括至少一条链的多核苷酸可以有效地连接至驱动含有有义或反义序列的RNA分子转录的调节区，所述链是一条或多条有义或反义序列的模板。此外，这样的多核苷酸可以被有效地连接到转录终止序列，如胭脂碱合酶(nos)基因的终止子。在某些情况下，两个调节区可以指导两个转录物的转录:一个来自顶链，以及一个来自底链。两个调节区可以是相同或不同的。两个转 录物可以形成诱导靶RNA降解的双链RNA分子。在某些情况下，多核苷酸可以位于T-DNA或源自植物的转移DNA (P-DNA)内，从而左和右T-DNA将序列包围，或者P-DNA的左和右边界样序列在多核苷酸的侧翼或两侧。两调节区之间的多核苷酸序列长度可以从约15至约300个核苷酸、从约15至约200个核苷酸的长度、从约15至约100个核苷酸的长度、从约15至约50个核苷酸的长度、从约18至约50个核苷酸的长度、从约18至约40个核苷酸的长度、从约18至约30个核苷酸的长度、或从约18至约25个核苷酸的长度。因此，可以调节(例如，下调)NtMRP蛋白表达或活性的组合物包括可以干扰一个或多个内源性NtMRP基因转录的序列特异性多核苷酸；可以干扰NtMRPRNA转录物翻译的序列特异性多核苷酸(例如双链RNA、siRNA、核酶);可以干扰NtMRP蛋白稳定性的序列特异性多肽；可以干扰NtMRP蛋白的酶活性或NtMRP蛋白相对于底物或调节蛋白的结合活性的序列特异多核苷酸JiNtMRP蛋白表现出特异性的抗体；可以干扰NtMRP蛋白稳定性或NtMRP蛋白的酶活性或NtMRP蛋白的结合活性的小分子化合物；结合NtMRP多核苷酸的锌指蛋白；以及对NtMRP多核苷酸具有活性的大范围核酸酶。有效的拮抗剂可以减少至少5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99% 或 100% 的重金属(例如镉)向叶(例
如，叶片结构)中的转运。在一个实施方式中，可以干扰NtMRP RNA转录物翻译的序列特异性多核苷酸是RNAi。RNA干扰(“RNAi”)或RNA沉默是进化上保守的过程，通过它特异性mRNA可以被靶向酶促降解。必须引入或由细胞产生双链RNA (双链RNA)(例如双链RNA病毒，或NtMRPRNAi多核苷酸)来启动RNAi途径。双链RNA可以被RNA酶III转换成多个21_23bp长度的siRNA双链体(“siRNA”)，RNA酶III是双链RNA特异性内切核酸酶(“Dicer”)。siRNA可以随后被RNA诱导的沉默复合物(“RISC”)所识别，RISC通过ATP-依赖的过程促进siRNA的解旋。解旋的siRNA反义链将激活的RISC引导至包括互补于siRNA反义链的序列的靶mRNA (例如，NtMRP RNA变体)。靶mRNA和反义链可形成A-型螺旋，以及A-型螺旋的大沟可以被激活的RISC所识别。靶mRNA可以在siRNA链5’端结合位点所定义的单一位点处被激活的RISC所切割。激活的RISC可以反复催化另一个切割事件。NtMRP RNAi表达载体包括编码NtMRP RNAi多核苷酸的NtMRP RNAi构建体，NtMRPRNAi表达载体通过降低NtMRP mRNA、NtMRP pre-mRNA或相关NtMRP RNA变体的表达水平表现出RNA干扰活性。表达载体可以包括位于上游并有效地连接到NtMRP RNAi构建体的启动子，如此处进一步描述的。NtMRPRNAi表达载体可以包括合适的最小核心启动子、目标NtMRP RNAi构建体、上游(5’)调节区、下游(3’)调节区，包括转录终止和多腺苷酸化信号，以及本领域技术人员已知的其它序列，如各种选择标记物。可以各种形式生产NtMRP多核苷酸，包括双链结构(B卩，含有反义链和互补有义链的双链RNA分子)、双链发夹样结构(“ dsRNAi ”)、单链结构(S卩，只含有反义链的ssRNA分子)。结构可以包括双链体、不对称双链体、发夹或不对称发夹二级结构，具有自我互补的有义和反义链。NtMRP dsRNAi可以被酶转化为双链NtMRP siRNA。NtMRP siRNA双链体的其中一条链可以退火至靶NtMRPmRNA和相关NtMRP RNA变体内的互补序列。siRNA/mRNA双链体由RISC识别，RISC可以在多位点上以序列依赖性方式切割NtMRP RNA,导致靶NtMRPmRNA和相关NtMRP RNA变体的降解。双链RNA分子可包括以茎-环结构由单个寡核苷酸组装的siRNA分子，其中siRNA分子自身互补的有义和反义区通过基于多核苷酸或基于非多核苷酸接头以及具有两个或多个环结构和含有自我互补的有义和反义链的茎的环状单链RNA的方式进行连接，其中环状RNA可以在体内或在体外进行处理来产生能够介导RNAi的活性siRNA分子。此处还公开了小发夹RNA (shRNA)分子，除反向互补(有义)序列外，其包括特异性反义序列，通常由间隔序列或环序列分开。间隔序列或环的切割提供单链RNA分子及其反向互补体，使得它们可以退火形成双链RNA分子(任选地，具有附加的处理步骤，其可导致一个、两个、三个或更多个核苷酸从一条或两条链的3’端或5’端添加或除去)。间隔序列可以具有足够的长度以允许反义和有义序列在间隔序列切割之前退火并形成双链结构(或茎)(及，任选地，随后的 处理步骤，其可导致一个、两个、三个、四个或更多个核苷酸从一条或两条链的3’端或5’端添加或除去)。间隔序列通常是无关核苷酸序列，该序列位于当退火成双链多核苷酸时包括shRNA的两个互补核苷酸序列区之间。间隔序列通常包括约3-约100个之间的核苷酸。可以通过选择适于生产NtMRP发夹双链体的序列组合物、环大小和茎长度来生成任何目标NtMRP RNA多核苷酸。适于设计发夹双链体的茎长度范围包括至少约10、11、12、
13、14、15、16、17、18、19或20个核苷酸的茎长度，如约14-30个核苷酸、约30-50个核苷酸、约50-100个核苷酸、约100-150个核苷酸、约150-200个核苷酸、约200-300个核苷酸、约300-400个核苷酸、约400-500个核苷酸、约500-600个核苷酸以及约600-700个核苷酸的茎长度。适于设计发夹双链体的环长度范围包括约4-25个核苷酸、约25-50个核苷酸，或如果发夹双链体的茎长度较大时则更长的环长度。在某些实施方式中，双链RNA或ssRNA分子是约15至约40个核苷酸之间的长度。在另一个实施方式中，siRNA分子是长度约15至约35个核苷酸之间的双链RNA或ssRNA分子。在另一个实施方式中，siRNA分子是长度约17至约30个核苷酸之间的双链RNA或ssRNA分子。在另一个实施方式中，siRNA分子是长度约19至约25个核苷酸之间的双链RNA或ssRNA分子。在另一个实施方式中，siRNA分子是长度约21至约23个核苷酸之间的双链RNA或ssRNA分子。在某些实施方式中，长于21个核苷酸的具有双链体区的发夹结构可促进有效的siRNA指导的沉默，与环序列和长
度无关。靶mRNA序列通常是约14至约50个核苷酸之间的长度。因此，可以对靶mRNA的长度约14至约50个核苷酸的区域进行扫描，其对于靶序列优选满足一个或多个以下标准:A+T/G+C的比为约2:1至约1:2之间；靶序列5’端的AA 二核苷酸或CA 二核苷酸；靶mRNA独有的至少10个连续核苷酸的序列；以及没有“运行”三个以上连续鸟嘌呤(G)核苷酸或三个以上连续胞嘧啶(C)核苷酸。使用本领域公知的各种技术可以评估这些标准，例如，计算机程序如BLAST可用于搜索公共可用数据库以确定是否所选靶序列是靶mRNA独有的。或者,可以使用市售计算机软件(例如，OligoEngine.TM.(Seattle, Wash.)；Dharmacon, Inc.(Lafayette, Col0.);来自 Ambion Inc.的 Target Finder (Austin, Tex.)和来自 QIAGEN, Inc.的 siRNA Design Tool (Valencia, Calif.))选择祀序列(和设计的siRNA 序列)。在一个实施方式中，选择长度约14至约30个核苷酸之间的、满足上述标准中的一个或多个的靶mRNA序列。在另一个实施方式中，选择长度约16至约30个核苷酸之间的、满足上述标准中的一个或多个的靶序列。在另一个实施方式中，选择长度约19至约30个核苷酸之间的、满足上述标准中的一个或多个的靶序列。在另一个实施方式中，选择长度约19至约25个核苷酸之间的、满足上述标准中的一个或多个的靶序列。在一个示例性实施方式中，siRNA分子包括特异性反义序列，其互补于如SEQIDNO: 1-23 中所示序列中任一条的至少 12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、
27、28、29、30或更多个连续核苷酸。siRNA分子所包括的特异性反义序列与靶序列的互补物可以相同或基本相同。在一个实施方式中，siRNA分子所包括的特异性反义序列与靶mRNA序列的互补物至少约75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%或99%相同。确定序列同一性的方法是本领域已知的，并且能够通过例如使用威斯康星大学计算机组(GCG)软件或NCBI网站上提供的BLASTN程序确定。此处所述的siRNA分子的特异性反义序列可以表现出和靶mRNA序列相差(例如，通过核苷酸取代，包括转换或颠换)一个、两个、三个、四个或更多个核苷酸的差异。当这样的核苷酸取代存在于双链RNA分子的反义链中时，与取代核苷酸通常会形成氢键碱基配对的有义链中的互补核苷酸可能或可能不会被相应地取代。也可以考虑双链RNA分子，其中一个或多个核苷酸取代发生在有义序列中，但不在反义链中。当siRNA分子的反义序列包括一个或多个siRNA核苷酸序列和靶核苷酸序列之间的错配时，如上所述，错配可能会发现于反义序列的3’端、5’端或中央部分。在另一个实施方式中，siRNA分子包括能够在严谨条件下选择性杂交至天然发生的靶基因或靶mRNA的部分的特异性反义序列。合适的严谨条件包括，例如，根据传统杂交程序的杂交和1-3次的洗涤条件。标准柠檬酸钠、0.1-1%十二烷基硫酸钠、50-70摄氏度，约5-30分钟后，更换洗涤溶液。正如本领域那些普通技术人员已知的,可以通过改变杂交和洗涤步骤中所用时间 、温度或溶液浓度来实现杂交条件的严谨程度的变化。适当的条件也可以部分依赖于所用的特定核苷酸序列，例如靶mRNA或基因的序列。
具有双链体或双链结构的RNAi分子，例如双链RNA或shRNA，可具有平端，或者可具有3’或5’突出。如此处所用，“突出”是指未成对的核苷酸，或者当一条RNA链的3’-端伸出另一条链的5’-端时突出于双链体结构的核苷酸(3’突出)，或反之亦然(5’突出)。包括突出的核苷酸可以是核糖核苷酸、脱氧核糖核苷酸或其修饰的版本。在一个实施方式中，RNAi分子的至少一条链具有3’突出，其长度从约I至约6个核苷酸。在其它实施方式中，3’突出长度从约I至约5个核苷酸、从约I至约3个核苷酸以及从约2至约4个核苷酸。当RNAi分子在分子的一端包括3’突出时，另一端可以是平端或也具有突出(5’或3’)。当RNAi分子在分子的两端包括突出时，突出的长度可以相同或不同。在一个实施方式中，此处所描述的RNAi分子在分子两端包括约I至约3个核苷酸的3’突出。在另一个实施方式中，RNAi分子是在分子两端具有2个核苷酸的3’突出的双链RNA。在另一个实施方式中，包括RNAi突出的核苷酸是TT 二核苷酸或UU 二核苷酸。当确定包括一个或多个突出的RNAi分子与靶mRNA序列的百分比同一性时，可以考虑或不用考虑突出。例如，来自3’突出的核苷酸以及来自双链5’-或3’-端的多达2个核苷酸可以经过修饰，而没有显著损失siRNA分子的活性。RNAi分子可以包括一个或多个5’或3’ -帽结构。RNAi分子可以在有义链、反义链或有义和反义链两者的3’ -端；或在RNAi分子的有义链、反义链或有义和反义链两者的5’-端包括帽结构。或，RNAi分子可以在RNAi分子的3’-端和5’-端两端包括帽结构。术语“帽结构”是指在寡核苷酸的任一端并入的化学修饰(见，例如，美国专利号5，998，203)，其保护分子免于外切核酸酶降解，并且还可以有助于细胞内的递送或局部化。适于RNAi分子的另一种修饰是一个或多个半体或缀合物同RNAi分子的化学键合，其增强RNAi分子的的活性、细胞分布、细胞吸收、生物利用度或稳定性。多核苷酸可以通过本领域公认的方法进行合成或修饰。化学修饰可包括但不限于2’修饰、引入非天然碱基、与配体的共价附着以及 憐酷键和硫代憐酷键的替换。在本实施方式中，双链体结构的完整性通过至少一个以及典型地两个化学键得到加强。化学键可以通过各种公知技术的任一个实现，例如通过引入共价、离子或氢键；疏水相互作用、范德华力或堆积相互作用；通过金属离子配位的方式或通过使用嘌呤类似物。在另一个实施方式中，在两条单链的一个或两个上的核苷酸可被修饰以防止或抑制细胞酶的激活，如，例如但不限于某些核酸酶。抑制细胞酶激活的技术是本领域已知的，包括但不限于2’ -氨基修饰、2’ -氟修饰、2’ -烷基修饰、不带电荷的骨架修饰、吗啉基修饰、2’ -O-甲基修饰和氨基磷酸酯。因此，双链RNA上的核苷酸的至少一个2’ -羟基基团被化学基团所取代。此外，至少一个核苷酸可被修饰以形成锁核苷酸。这种锁核苷酸包含连接核糖2’ -氧与核糖4’ -碳的亚甲基或亚乙基桥。锁核苷酸引入寡核苷酸改善对互补序列的亲和性并提高若干度的解链温度。配体可缀合至RNAi分子，例如，以增强其细胞吸收。在特定的实施方式中，疏水性配体缀合至分子以利于细胞膜的直接渗透。使用这些方法以促进反义寡核苷酸的细胞渗透。在某些情况下，阳离子配体和寡核苷酸的缀合通常导致改善的对核酸酶的抗性。阳离子配体的代表性实例是丙基铵和二甲基丙基铵。当阳离子配体分散在整个寡核苷酸时，反义寡核苷酸可以保留其对mRNA的高结合亲和性。可以使用公知的固相合成技术制备此处所述的分子和核苷酸。本领域已知的用于这种合成的任何其它方式可附加地或替代地采用。各种实施方式涉及包括NtMRP多核苷酸或NtMRP RNAi构建体的NtMRP表达载体(例如，NtMRP3表达载体)，其中NtMRP多核苷酸或NtMRP RNAi构建体包括一个或多个:SEQID NO:28, SEQ ID NO:29、SEQ ID NO:51、内含子 I (SEQ ID NO:30)、内含子 2 (SEQ ID NO:
31)、内含子3 (SEQ ID N0:32)、内含子 4 (SEQ ID N0:33)、内含子 5 (SEQ ID N0:34)、内含子 6 (SEQ ID N0:35)、内含子 7 (SEQ ID N0:36)、内含子 8 (SEQ ID N0:37)、内含子 9(SEQ ID N0:38)、内含子 10 (SEQ ID NO:39)、外显子 I (SEQ ID NO:40)、外显子 2 (SEQID N0:41)、外显子 3 (SEQ ID NO:42)、外显子 4 (SEQ ID NO:43)、外显子 5 (SEQ ID NO:44)、外显子 6 (SEQ ID NO:45)、外显子 7 (SEQ ID NO:46)、外显子 8 (SEQ ID NO:47)、夕卜显子 9 (SEQ ID N0:48)、外显子 10 (SEQ ID NO:49)或外显子 11 (SEQ ID NO:50)及其片段和变体。如此处所述，特异性序列的参照还包括其互补物或反向互补物。各种实施方式涉及包括NtMRP多核苷酸或NtMRP RNAi构建体的NtMRP表达载体(例如，NtMRP4表达载体)，其中NtMRP多核苷酸或NtMRP RNAi构建体包括一个或多个:SEQID NO:U SEQ ID NO:2、SEQ ID N0:27、内含子 I (SEQID NO:3)、内含子 2 (SEQ ID NO:
4)、内含子 3 (SEQ ID NO:5)、内含子 4 (SEQ ID NO:6)、内含子 5 (SEQ ID N0:7)、内含子6 (SEQ ID NO:8)、内 含子 7 (SEQ ID NO:9)、内含子 8 (SEQ ID N0:10)、内含子 9 (SEQ IDNO:11)、内含子 10 (SEQ ID NO:12)、外显子 I (SEQ ID NO:13)、外显子 2 (SEQ ID NO:14)、外显子 3 (SEQ ID N0:15)、外显子 4 (SEQ ID NO:16)、外显子 5 (SEQ ID N0:17)、外显子
6(SEQ ID N0:18)、外显子 7 (SEQ ID N0:19)、外显子 8 (SEQ ID N0:20)、外显子 9 (SEQID NO:21)、外显子 10 (SEQ ID NO:22)、外显子 11 (SEQ ID NO:53)或 SEQ ID NO:23 及其片段和变体。如此处所述，特异性序列的参照还包括其互补物或反向互补物。各种实施方式涉及包括如下的表达载体:一个或多个NtMRP多核苷酸或NtMRPRNAi构建体(例如，NtMRP3多核苷酸或NtMRP3RNAi构建体)，其与选自SEQ ID NO:28、SEQID N0:29、内含子 I (SEQ ID N0:30)、内含子 2 (SEQ ID N0:31)、内含子 3 (SEQ ID NO:
32)、内含子4 (SEQ ID N0:33)、内含子 5 (SEQ ID N0:34)、内含子 6 (SEQ ID N0:35)、内含子 7 (SEQ ID N0:36)、内含子 8 (SEQ ID N0:37)、内含子 9 (SEQ ID N0:38)、内含子 10(SEQ ID N0:39)、外显子 I (SEQ ID NO:40)、外显子 2 (SEQ ID N0:41)、外显子 3 (SEQ IDNO:42)、外显子 4 (SEQ ID NO:43)、外显子 5 (SEQ ID NO:44)、外显子 6 (SEQ ID NO:45)、外显子 7 (SEQ ID N0:46)、外显子 8 (SEQ ID NO:47)、外显子 9 (SEQ ID NO:48)、外显子10 (SEQ ID N0:49)、外显子11 (SEQ ID N0:50)或SEQ ID NO:51及其片段和变体或者其两个或多个的组合的序列具有至少 71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%和99%的序列同一性。如此处所述，特异性序列的参照还包括其互补物或反向互补物。各种实施方式涉及包括如下的表达载体=NtMRP多核苷酸或NtMRP RNAi构建体(例如，NtMRP4多核苷酸或NtMRP4RNAi构建体)，其与选自SEQ ID NO:USEQ ID N0:2、内含子 I (SEQ ID NO:3)、内含子 2 (SEQ ID NO:4)、内含子 3 (SEQ ID NO:5)、内含子 4 (SEQID NO:6)、内含子 5 (SEQ ID NO:7)、内含子 6 (SEQ ID NO:8)、内含子 7 (SEQ ID NO:9)、内含子 8 (SEQ ID N0:10)、内含子 9 (SEQ ID N0:11)、内含子 10 (SEQ ID NO:12)、外显子I (SEQ ID N0:13)、外显子 2 (SEQ ID N0:14)、外显子 3 (SEQ ID N0:15)、外显子 4 (SEQID N0:16)、外显子 5 (SEQ ID N0:17)、外显子 6 (SEQ ID N0:18)、外显子 7 (SEQ ID NO:19)、外显子 8 (SEQ ID NO:20)、外显子 9 (SEQ ID NO:21)、外显子 10 (SEQ ID NO:21)、夕卜显子11 (SEQ ID NO:22)或SEQ ID NO:23及其片段和变体或者其两个或多个的组合的序列具有至少 70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 和 99% 的序列同一性。如此处所述，特异性序列的参照还包括其互补物或反向互补物。各种实施方式涉及包括如下的表达载体:能够自我退火而形成发夹结构的NtMRP多核苷酸或编码NtMRP RNAi多核苷酸的NtMRP RNAi构建体(例如，NtMRP3多核苷酸或编码NtMRP3RNAi多核苷酸的NtMRP3RNAi构建体)，其中构建体包括(a)与选自SEQ ID NO:
28、SEQ ID N0:29、内含子 I (SEQ ID N0:30)、内含子 2 (SEQ ID N0:31)、内含子 3 (SEQID N0:32)、内含子 4 (SEQ ID N0:33)、内含子 5 (SEQ ID N0:34)、内含子 6 (SEQ ID NO:35)、内含子 7 (SEQ ID N0:36)、内含子 8 (SEQ ID N0:37)、内含子 9 (SEQ ID N0:38)、内含子 10 (SEQ ID N0:39)、外显子 I (SEQ ID NO:40)、外显子 2 (SEQ ID N0:41)、外显子 3(SEQ ID N0:42)、外显子 4 (SEQ ID NO:43)、外显子 5 (SEQ ID NO:44)、外显子 6 (SEQ IDNO:45)、外显子 7 (SEQ ID NO:46)、外显子 8 (SEQ ID NO:47)、外显子 9 (SEQ ID NO:48)、外显子10 (SEQ ID N 0:49)、外显子11 (SEQ ID N0:50)或SEQ ID NO:51及其片段和变体或者其两个或多个的组合的序列具有至少71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%和99%的序列同一性的第一序列；(b)编码形成发夹结构的环的间隔元件的第二序列JP(C)包括第一序列的反向互补序列、和第一序列处于相同方向的第三序列，其中第二序列位于第一序列和第三序列之间，并且第二序列有效地连接到第一序列和第三序列。如此处所述，特异性序列的参照还包括其互补物或反向互补物。各种实施方式涉及包括如下的表达载体:能够自我退火而形成发夹结构的NtMRP多核苷酸或编码NtMRP RNAi多核苷酸的NtMRP RNAi构建体(例如，NtMRP4多核苷酸或编码NtMRP4RNAi多核苷酸的NtMRP4RNAi构建体)，其中构建体包括(a)与选自SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、内含子 I (SEQ ID NO:3)、内含子 2 (SEQ ID NO:4)、内含子 3 (SEQ ID NO:
5)、内含子 4 (SEQ ID NO:6)、内含子 5 (SEQ ID NO:7)、内含子 6 (SEQ ID N0:8)、内含子
7(SEQ ID NO:9)、内含子 8 (SEQ ID N0:10)、内含子 9 (SEQ ID N0:11)、内含子 10 (SEQID N0:12)、外显子 I (SEQ ID N0:13)、外显子 2 (SEQ ID N0:14)、外显子 3 (SEQ ID NO:15)、外显子 4 (SEQ ID N0:16)、外显子 5 (SEQ ID N0:17)、外显子 6 (SEQ ID N0:18)、夕卜显子 7 (SEQ ID N0:19)、外显子 8 (SEQ ID N0:20)、外显子 9 (SEQ ID NO:21)、外显子 10(SEQ ID NO:22)、外显子 11 (SEQ ID NO:53)、SEQ ID NO:23 或 SEQ ID NO:51 及其片段和变体或者其两个或多个的组合的序列具有至少71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%和99%的序列同一性的第一序列；(b)编码形成发夹结构的环的间隔元件的第二序列JP(C)包括第一序列的反向互补序列、和第一序列处于相同方向的第三序列，其中第二序列位于第一序列和第三序列之间，并且第二序列有效地连接到第一序列和第三序列。如此处所述，特异性序列的参照还包括其互补物或反向互补物。所公开的序列可以用于构建不形成发夹结构的各种NtMRP多核苷酸。例如，可以通过(I)通过有效地连接到第一启动子来转录NtMRP cDNA的第一条链，和(2)通过有效地连接到第二启动子来转录NtMRP cDNA片段的第一条链的反向互补序列，来形成NtMRP双链RNA。可以从同一表达载体，或从不同的表达载体转录NtMRP多核苷酸的每条链。具有RNA干扰活性的NtMRP RNA双链体可以通过酶转化为siRNA来减少NtMRP RNA水平。
各种实施方式涉及NtMRP表达载体，其包括能够自我退火的NtMRP多核苷酸或编码NtMRP RNAi多核苷酸的NtMRP RNAi构建体(例如，包括NtMRP3多核苷酸或编码NtMRP3RNAi多核苷酸的NtMRP3RNAi构建体的NtMRP3表达载体)，其中构建体包括(a)与选自 SEQ ID NO:28,SEQ ID NO:29,SEQ ID NO:30,SEQ ID NO:3USEQ ID NO:32,SEQ IDNO:33、SEQ ID NO:34、SEQ ID NO:35、SEQ ID NO:36、SEQ ID NO:37、SEQ ID NO:38、SEQID NO:39、SEQ ID NO:40、SEQ ID NO:41、SEQ ID NO:42、SEQ ID NO:43、SEQID NO:44、SEQ ID NO:45,SEQ ID NO: 46,SEQ ID NO: 47,SEQ ID NO: 48,SEQ ID NO:49,SEQ ID NO:50和SEQ ID NO:51及其片段和变体或者其两个或多个的组合的序列具有至少71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99% 或 100% 序列同一性的第一序列；和(b)包括第一序列的互补(例如反向互补)序列、和第一序列处于相同方向的第二序列。如此处所述，特异性序列的参照还包括其互补物或反向互补物。其它实施方式涉及NtMRP表达载体，其包括能够自我退火的NtMRP多核苷酸或编码NtMRP RNAi多核苷酸的NtMRP RNAi构建体(例如，包括NtMRP4多核苷酸或编码NtMRP4RNAi多核苷酸的NtMRP4RNAi构建体的NtMRP4表达载体)，其中构建体包括(a)与选自 SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4、SEQ ID NO:5、SEQ ID NO:6、SEQ ID N0:7、SEQ ID N0:8、SEQ ID N0:9、SEQ ID NO: 10、SEQ ID NO: 11、SEQ ID NO: 12、SEQ ID NO: 13、SEQ ID NO: 14、SEQ ID NO: 15、SEQ ID NO: 16、SEQ ID NO: 17、SEQ ID NO:18、SEQ ID NO:19、SEQ ID NO:20、SEQ ID NO:21、SEQ ID NO:21、SEQ ID NO:22、SEQ IDNO:23,SEQ ID NO:27和SEQ ID NO:53及其片段和变体或者其两个或多个的组合的序列具有至少 71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99% 或 100% 序列同一性的第一序列；和6)包括第一序列的互补(例如反向互补)序列、和第一序列处于相同方向的第二序列。如此处所述，特异性序列的参照还包括其互补物或反向互补物。提供各种组合物和方法，其通过促进NtMRP基因表达的共抑制用于调节(例如，减少)NtMRP基因家族成员的内源性表达水平。共抑制现象的发生是作为向植物细胞宿主中引入多个拷贝转基因的结果。多个拷贝转基因的整合可导致转基因和靶向的内源性基因的表达减少。共抑制的程度依赖于转基因和靶向的内源性基因的序列同一性程度。内源性基因和转基因两者的沉默 可以通过沉默位点的广泛甲基化而发生(B卩，目标内源性启动子和内源性基因)，其可以阻止转录。或者，在某些情况下，内源性基因和转基因的共抑制可以通过转录后基因沉默(“PTGS”)而发生，其中可以产生转录物，但增强的降解速度阻止转录物的积累。通过PTGS的共抑制机制被认为类似于RNA干扰，其中RNA似乎是这些过程中的重要的起始子(initiator)和靶，并且可以至少部分通过相同的分子机制，可能通过RNA引导的mRNA降解，被介导。可以通过将多个拷贝的NtMRP cDNA或其片段作为转基因整合到目标植物的基因组中来实现NtMRP多核苷酸的共抑制。宿主植物可转化有包括有效地连接到NtMRP cDNA或其片段的启动子的表达载体。各种实施方式涉及用于促进NtMRP内源性基因共抑制的表达载体，其包括:有效地连接至NtMRP (例如，NtMRP cDNA)的启动子，NtMRP鉴定为SEQ IDNO:1、SEQ ID NO:2、SEQ ID NO:28、SEQ ID NO:29 或 SEQ ID NO:51 或其片段，如 SEQ IDN03至23或30至50的任一个，或者与其具有至少约65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 或 99% 的序列同一性的变体。
各种实施方式涉及通过向植物基因组中整合多个拷贝NtMRP多核苷酸(例如，NtMRP cDNA)调节(例如，减少或抑制)NtMRP多核苷酸表达水平的方法，其中NtMRP多核苷酸鉴定为 SEQ ID NO:USEQ ID NO:2、SEQ ID NO:28 或 SEQ ID N0:29 或 SEQ ID NO:51 或其片段，如SEQ ID勵3至23或30至50或53的任一个，或者与其具有至少约65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 或 99 % 序列同一性的变体，方法包括:用表达载体转化植物宿主细胞，其中表达载体包括有效地连接至SEQ IDNO:USEQ ID N0:2、SEQ ID NO:28 或 SEQ ID N0:29 或 SEQ ID NO:51 或其片段，如 SEQ IDN03至23或30至50的任一个，或者与其具有至少约65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98% 或 99 %序列同一性的变体上的启动子。提供各种组合物和方法，其用于通过抑制NtMRP mRNA的翻译来减少NtMRP内源性的基因表达水平。可以用表达载体转化宿主植物细胞，表达载体包括:有效地连接到NtMRP多核苷酸或其变体或其片段的启动子，其相对于启动子处于反义方向，以便能够表达具有互补于部分NtMRP mRNA的序列的RNA多核苷酸。用于抑制NtMRP mRNA翻译的各种表达载体可包括:有效地连接至NtMRP (例如，NtMRP cDNA)的启动子，NtMRP 鉴定为 SEQ ·ID NO:1 或 SEQ ID NO:2 或 SEQ ID NO:27 或SEQ ID N0:28 或 SEQ ID N0:29 或 SEQ ID NO:51 或其片段，如 SEQ ID N03 至 23 或 30 至 50或 53 的任一个，或者与其具有至少约 65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%或99%序列同一性的变体，其中相对于启动子序列处于反义方向。反义NtMRP RNA多核苷酸的长度可以不同，并且可从约15-20个核苷酸、约20-30个核苷酸、约30-50个核苷酸、约50-75个核苷酸、约75-100个核苷酸、约100-150个核苷酸、约150-200个核苷酸和约200-300个核苷酸。还提供了用于获得突变的NtMRP多核苷酸和多肽的方法。任何目标植物，包括植物细胞或植物材料，可以通过各种已知的诱导诱变的方法进行遗传修饰，包括位点定向诱变、寡核苷酸定向诱变、化学诱导的诱变、辐射诱导的诱变、利用修饰碱基的诱变、利用缺口双链体DNA的诱变、双链断裂诱变、利用修复缺陷的宿主株的诱变、通过全基因合成的诱变、DNA改组和其它等同的方法。或者，可以通过向目标植物基因组中引入转座子(例如，IS元件)靶向NtMRP基因进行失活。可以通过有性杂交受精引入这些可移动的遗传元件，通过NtMRP蛋白活性的丢失(如，减少的镉转运)筛选插入突变体。通过亲本植物与未经受转座子诱导的诱变的植物进行杂交，例如通过有性杂交受精，可以将亲本植物中破坏的NtMRP基因引入到其它植物中。可以利用本领域技术人员已知的任何标准育种技术。在一个实施方式中，可以通过插入一个或多个转座子使一个或多个NtMRP相关基因失活。突变可导致一个或多个NtMRP基因的纯合子破坏，导致一个或多个NtMRP基因的杂合子破坏，或者如果破坏一个以上NtMRP基因时，纯合子和杂合子破坏的组合。合适的可转座的元件可以选自两大类，指定为I类和II类。合适的I类可转座的元件包括反转录转座子、反转录子(retroposon)和SINE样元件。这样的方法是本领域的技术人员已知的。或者，可以通过引入源自一些小环状RNA的核酶靶向NtMRP基因进行失活，小环状RNA能够自我切割并在植物中复制。这些RNA可以单独复制(类病毒RNA)或与辅助病毒(卫星RNA)—起复制。合适的RNA实例包括源自鳄梨日斑类病毒(avocado sunblotchviroid)的那些以及源自烟草环斑病毒(Tobacco ringspot virus)、紫花苜猜短暂条纹病毒(lucerne transient streak virus)、绒毛烟斑马支病毒(velvet tobacco mottleVirus)、爺属植物斑驳病毒(solanum nodiflorum mottle virus)和地三叶草斑驳病毒(subterranean clover mottle virus)的卫星RNA。各种革E RNA特异性核酶是本领域技术人员已知的。在一些实施方式中，通过非转基因方式，例如在包括NtMRP3和/或NtMRP4基因的NtMRP基因中产生突变，来调节、减少或抑制NtMRP多肽的表达。在基因序列中随机引入突变的方法可以包括化学诱变、EMS诱变和辐射诱变。向细胞中引入一个或多个靶向突变的方法包括但不限于基因组编辑技术，特别是锌指核酸酶介导的诱变、tilling技术(靶向诱导的基因组局部损伤)、同源重组、寡核苷酸定向诱变和大范围核酸酶介导的诱变。突变的一些实例是至少一个核苷酸的缺失、插入和错义突变、单核苷酸多态性(SNP)、简单序列重复。突变后，可以鉴定产生早期终止密码子或者非功能性NtMRP基因的缺失进行筛选。可以通过测序，或通过使用一个或多个特异于NtMRP基因或蛋白质的探针或引物进行突变体的筛选。也可以产生NtMRP多核苷酸中的特异性突变，其导致减少的NtMRP基因表达、降低的NtMRP mRNA稳定性或降低的NtMRP蛋白稳定性。这样的植物此处称为“非天然发生的”植物或突变的植物。非天然发生的和突变的植物可具有任意组合的一个或多个导致NtMRP多肽水平减少的突变。例如，植物可以具有单个NtMRP基因中的单个突变或单个NtMRP基因中的多个突变。因此，公开了突变的或非天然发生的植物(例如，如此处所述的突变的、非天然发生的或转基因的烟草植物等)，其包括NtMRP、NtMRP3和NtMRP4的突变多肽变体。在一个实施方式中，诱变 来自植物的种子，然后生长成第一代突变植物。然后允许第一代植物自花传粉，来自第一代植物的种子生长成第二代植物，然后筛选其NtMRP基因座中的突变。虽然可以筛选诱变植物材料的突变，筛选第二代植物的优点是所有的体细胞突变对应着种系突变。本领域技术人员理解，各种植物材料,包括但不限于种子、花粉、植物组织或植物细胞，可经过诱变而产生NtMRP突变的植物。然而，当筛选植物多核苷酸的突变时，诱变的植物材料类型可能产生影响。例如，当在非诱变植物授粉前对花粉进行诱变时，授粉所产生的种子生长成第一代植物。第一代植物的每一个细胞将包含花粉中产生的突变；因此，可以之后筛选这些第一代植物的NtMRP突变，而不是等到第二代。主要产生点突变和短的缺失、插入、颠换和或转换的诱变，包括化学诱变剂或辐射，可用于产生突变。诱变剂包括但不限于甲磺酸乙酯(EMS)、甲磺酸甲酯(丽S)、N-乙基-N-亚硝基脲(ENU)、三乙基三聚氰胺(TEM)、N-甲基-N-亚硝基脲(MNU)、甲基苄肼、苯丁酸氮芥、环磷酰胺、硫酸二乙酯、丙烯酰胺单体、美法仑、氮芥、长春新碱、二甲基亚硝胺、N-甲基-N’ -硝基-亚硝基胍(MNNG)、亚硝基胍、2-氨基嘌呤、7，12 二甲基-苯并蒽(DMBA)、环氧乙烷、六甲基磷酰胺、白消安(bisulfan)、二环氧烷烃(二环氧辛烷(DE0)、二环氧丁烷(BEB)等)、2_甲氧基-6-氣-9[3_(乙基-2-氣乙基)氛丙基氛基]口丫P定二盐酸盐(ICR-170)和甲醛。只要它们产生此处所述的所需表型，也可以考虑不是由诱变剂直接造成的NtMRP基因座中的自发突变。合适的诱变试剂还包括，例如，电离辐射，如X-射线、Y射线、快中子辐射和UV辐射。本领域技术人员已知的植物多核苷酸制备的任何方法可用来制备用于NtMRP突变筛选的植物多核苷酸。所制备的来自个体植物的多核苷酸可以任选进行合并，以便加快对源自诱变植物组织的整个植物群体的NtMRP基因中的突变进行筛选。可以筛选一个或多个植物后代、植物细胞或植物材料。任选合并的组的大小取决于所用筛选方法的灵敏度。任选合并多核苷酸样本之后，可以将它们进行NtMRP多核苷酸特异性扩增技术，如聚合酶链式反应(PCR)。任何一个或多个特异于NtMRP基因或NtMRP基因紧接相邻的序列的引物或探针可用于扩增合并的多核苷酸样本中的NtMRP序列。优选地，设计一个或多个引物或探针用于扩增最有可能产生有用突变的NtMRP基因座区域。最优选的是，设计一个或多个引物或探针用于检测NtMRP多核苷酸的外显子区域内的突变。此外，优选一个或多个引物或探针来避免已知多态性位点以便于点突变的筛选。为了便于扩增产物的检测，可以使用任何常规标记方法来标记一个或多个引物或探针。可以根据此处所述的NtMRP序列，使用本领域公知的方法，设计一个或多个引物或探针。通过本领域已知的手段鉴定多态性。在进一步的方面中，提供制备突变植物的方法。方法涉及提供植物的至少一个细胞，植物包括编码功能性NtMRP多肽的基因。接着，在有效调节NtMRP基因活性的条件下，处理植物的至少一个细胞。至少一个突变的植物细胞然后繁殖成突变植物，其中突变植物相比于对照植物具有被调节的NtMRP多肽水平。在制备突变植物的此方法的一个实施方式中，处理步骤涉及在有效产生至少一个突变植物细胞的条件下，让至少一个细胞经受如上所述的化学诱变试剂。在本方法的另一个实施方式中，处理步骤涉及在有效产生至少一个突变植物细胞的条件下，让至少一个细胞经受辐射源。术语“突变植物”包括突变体植物，其中，和对照植物相比，适当地通过遗传工程或遗传修饰以外的手段修饰基因型。在某些实施方式中，突变植物、突变植物细胞或突变植物材料可以包括一个或多个突变，所述突变天然发生在另一植物、植物细胞或植物材料中并赋予其期望的性状。这种突变可以并入(例如，基因渗入)另一植物、植物细胞或植物材料(例如，具有不同于突变所来自的植物的遗传背景的植 物、植物细胞或植物材料)来赋予其性状。因此，通过举例的方式，天然发生在第一植物中的突变可引入第二植物，如具有不同于第一植物遗传背景的第二植物。因此，技术人员能够搜索和鉴定在其基因组中天然携带NtMRP基因的一个或多个赋予期望性状的突变等位基因的植物。天然发生的突变等位基因可以通过各种方法，包括育种、回交和基因渗入，转移到第二植物，以产生在NtMRP基因中具有一个或多个突变的系、品种或杂种。从突变植物池中筛选出显示期望性状的植物。合适地，利用如此处所述的NtMRP核苷酸序列知识进行选择。因此，可能筛选与对照相比指示着被调节(例如减少)的镉水平的遗传性状。这种筛选方法可能涉及如此处所述的常规多核苷酸扩增和/或杂交技术的应用。因此，另一方面涉及用于鉴定突变植物的方法，包括步骤:(a)提供一个样本，其包括来自植物的NtMRP多核苷酸；以及(b)确定NtMRP多核苷酸的多核苷酸序列，其中相比于对照植物的NtMRP多核苷酸，NtMRP多核苷酸序列上的差异指示着所述植物是NtMRP突变植物。另一个方面中，提供了鉴定突变植物的方法，和对照植物相比，突变植物积累了调节的(例如减少)镉水平，包括步骤:(a)提供来自待筛选的植物的样本；(b)确定所述样本是否包括NtMRP多核苷酸中的一个或多个突变；以及(c)确定所述植物至少一部分的镉含量；其中所述样本是否包括NtMRP多核苷酸中的一个或多个突变，所述突变和对照植物相比调节(例如减少)编码蛋白的表达或活性，以及植物的至少部分具有和对照植物相比调节的(例如减少)镉含量，其中NtMRP的表达或活性未被调节(例如减少)指示着积累了调节(例如减少)的镉水平的天然发生的突变植物。在另一方面中，提供了用于制备突变植物的方法，突变植物和对照植物相比积累了调节(例如减少)的镉水平，包括步骤:Ca)提供来自第一植物的样本；(b)确定所述样本是否包括NtMRP多核苷酸中的一个或多个突变，所述突变导致其中调节的(例如减少)镉水平；以及(c)将一个或多个突变转移到第二植物。可以使用本领域已知的各种方法将突变转移到第二植物中，例如通过遗传工程、遗传操作、基因渗入、植物育种、回交等。在一个实施方式中，第一植物是天然发生的植物。在一个实施方式中，第二植物具有不同于第一植物的遗传背景。在另一方面中，提供了制备突变植物的方法，突变植物和对照植物相比积累了调节(例如减少)的镉水平，包括步骤:Ca)提供来自第一植物的样本；(b)确定所述样本是否包括NtMRP多核苷酸中的一个或多个突变，所述突变导致其中调节(例如减少)的镉水平；以及(c)将一个或多个突变从第一植物渗入到第二植物。在一个实施方式中，基因渗入的步骤包括植物育种，任选包括回交等。在一个实施方式中，第一植物是天然发生的植物。在一个实施方式中，第二植物具有不同于第一植物的遗传背景。在一个实施方式中，第一植物不是栽培品种优良的栽培品种)。在一个实施方式中，第二植物是栽培品种或优良的栽培品种)。另一个方面涉及通过此处所述方法获得的或可获得的突变植物(包括栽培品种或优良的栽培品种突变植物)。在某些实施方式中，突变植物可以具有仅位于植物特定区域的一个或多个突变，如NtMRP多核苷酸序列内。根据本实施方式，突变植物的其余基因组序列和诱变之前的植物相同或基本上相同。在某些实施方式中，突变植物可以具有位于植物一个以上的区域中的一个或多个突变，如NtMRP多核苷酸的序列内以及基因组的一个或多个其它区域。根据本实施方式，突变植物的其余基因组序列和诱变之前的植物相同或基本上相同。在某些实施方式中，突变植物可以不在一个或多个、两个或多个、三个或多个、四个或多个或五个或多个NtMRP多核苷酸的外显子中具有一个或多 个突变；可以不在一个或多个、两个或多个、三个或多个、四个或多个或五个或多个NtMRP多核苷酸的内含子中具有一个或多个突变；或者可以不在NtMRP多核苷酸的启动子中具有一个或多个突变；或者可以不在NtMRP多核苷酸的3’非翻译区具有一个或多个突变；或者可以不在NtMRP多核苷酸的5’非翻译区具有一个或多个突变；或可以不在NtMRP多核苷酸的编码区具有一个或多个突变；或者可以不在NtMRP多核苷酸的非编码区具有一个或多个突变；或者其、其部分的两个或多个、三个或多个、四个或多个、五个或多个；或六个或多个的任意组合。在另一方面中，提供了鉴定在编码NtMRP的基因中包括突变的植物、植物细胞或植物材料的方法，包括:Ca)使植物、植物细胞或植物材料经受诱变；(b)从所述植物、植物细胞或植物材料或其后代获得多核苷酸样品；以及(c)确定编码NtMRP或其变体或片段的基因的多核苷酸序列，其中所述序列中的差异指示着其中的一个或多个突变。

锌指蛋白可用于调节(例如，减少或抑制)NtMRP的表达或活性。在各种实施方式中，通过锌指核酸酶介导的诱变来修饰包括部分或全部NtMRP多核苷酸编码序列的基因组多核苷酸序列。搜索基因组多核苷酸序列以找寻锌指蛋白结合的独特位点。或者，搜索基因组多核苷酸序列以找寻锌指蛋白结合的两个独特位点，其中两个位点位于相对的链上并彼此靠近，例如，相隔1、2、3、4、5、6或更多个碱基对。因此，提供了结合NtMRP多核苷酸的锌指蛋白。锌指DNA结合结构域或基序由折叠成beta-beta-alpha结构的大约30个氨基酸组成，其中alpha-螺旋(α -螺旋)插入到DNA双螺旋中。“alpha-螺旋”指的是蛋白二级结构中的基序，其是右手或左手卷曲的，其中氨基酸的各N-H基团的氢结合至位置_4(相对于第一氨基酸)的氨基酸上的C=O基团。此处所用的“beta-桶”(β_桶)是指蛋白二级结构中的基序，其包括两条beta-链(β -链)，其中第一条链氢结合到第二条链来形成封闭的结构。此处所用“beta-beta-alpha结构”是指蛋白中的结构，其由包括两个反向平行β_链的β_桶和一个α-螺旋组成。术语“锌指DNA结合结构域”指的是蛋白质结构域，其包括锌离子并能够结合特异性三碱基对DNA序列。术语“非天然锌指DNA结合结构域”是指锌指DNA结合结构域，其不发生在包括待修饰DNA的细胞或生物体中。结合靶DNA中三碱基对序列的锌指DNA结合结构域或基序的关键氨基酸是，相对于alpha-螺旋(α -螺旋)的起始，氛基酸-1、+1、+2、+3、+4、+5和+6。相对于锋指DNA结合结构域或基序的α -螺旋的起始，位于-1、+1、+2、+3、+4、+5和+6位置的氨基酸可以进行修饰，而保留beta-桶(β -桶)骨架，以便产生结合不同的3碱基对序列的新DNA结合结构域或基序。这种新DNA结合结构域可以是非天然的锌指DNA结合结构域。除了被相对于α -螺旋的起始的位于-1、+1、+2、+3、+4、+5和+6位置的氨基酸所识别的三碱基对序列以夕卜，这些氨基酸中的一些也可以与三碱基对序列识别位点以外的碱基对相互作用。通过组合两个、三个、四个、五个、六个或更多个锌指DNA结合结构域或基序，可以产生特异性结合至更长DNA序列的锌指蛋白。例如，包括两个锌指DNA结合结构域或基序的锌指蛋白可以识别特异性的六碱基对序列，以及包括四个锌指DNA结合结构域或基序的锌指蛋白可以识别特异性的12碱基对序列。锌指蛋白可以包括两个或更多天然锌指DNA结合结构域或基序，或者通过截短或扩展或定点诱变结合筛选方法的过程(例如但不限于噬菌体展示筛选、细菌双杂交筛选或细菌单杂交筛选)而源自天然或野生型锌指蛋白的两个或更多非天然锌指DNA结合结构域或基序，或天然和非天然锌指DNA结合结构域的任何组合。在本上下文中所用的“截短”是指含有少于天然锌指蛋白中发现的锌指DNA结合结构域或基序完整数目的锌指蛋白。在本上下文中所用的“扩展”是指含有多于天然锌指蛋白中发现的锌指DNA结合结构域或基序完整数目 的锌指蛋白。用于选择锌指蛋白结合的基因组序列中的多核苷酸序列的技术是本领域已知的。用于涉及结合特异性核苷酸序列的锌指蛋白结构域的方法是本领域已知的，其中核苷酸序列是靶基因特有的。经计算，包括18个核苷酸的序列足以规定高等生物基因组中独特的位置。因此，通常情况下锌指蛋白结构域包含6个锌指，各锌指凭借其专门设计的α螺旋与特定三联体相互作用。然而，在某些情况下，更短或更长的核苷酸靶序列是可取的。因此，蛋白中的锌指结构域可含有2至12个指，如3至8个指、5至7个指或6个指。使用的锌指蛋白可包括至少一条锌指多肽，其通过接头，优选柔性接头，连接至至少第二 DNA结合结构域，其任选是第二锌指多肽。锌指蛋白可含有两个以上的DNA结合结构域，以及一个或多个调节结构域。锌指多肽可以被过程化以识别选择基因中所选的靶位点。在一个实施方式中，锌指蛋白包括源自天然发生的锌指蛋白的框架(或骨架)。可以使用源自任何天然发生的锌指蛋白的框架(或骨架)。例如，可以使用包括源自含有C2H2基序的锌指蛋白的框架(或骨架)的锌指蛋白。
在另一具体实施方式
中，锌指蛋白包括源自在植物细胞中天然发挥功能的锌指蛋白的框架(或骨架)。例如，锌指蛋白可包括C3H锌指、QALGGH基序、RING-H2锌指基序、9个氨基酸的C2H2基序、拟南芥锌指基序LSDl和BBF/Dof结构域蛋白的锌指基序。可以通过本领域已知的任何合适方法向植物细胞提供锌指蛋白。例如，锌指蛋白可以外源地添加到植物细胞，植物细胞保持在这样的条件下，从而锌指蛋白结合靶核苷酸序列并在植物细胞中调节靶基因的表达。或者，编码锌指蛋白的核苷酸序列可在植物细胞中表达，植物细胞保持在这样的条件下，从而表达的锌指蛋白结合靶核苷酸序列并在植物细胞中调节靶基因的表达。可以使用任何合适的植物表达载体在植物中表达锌指基因。可用于在高等植物中表达基因的典型载体是本领域公知的。除了调节结构域，为了便于纯化、监测表达或监测细胞和亚细胞定位，锌指蛋白通常可以被表达为与麦芽糖结合蛋白(“MBP”)、谷胱甘肽S转移酶(GST)、六聚组氨酸、c-myc或FLAG表位的融合蛋白。在一个实施方式中，通过锌指核酸酶介导的诱变产生突变的或非天然发生的植物或者突变的或非天然发生的植物细胞。在一个具体的实施方式中，通过锌指核酸酶介导的诱变修饰包括部分或全部NtMRP多核苷酸编码序列的基因组DNA序列。搜索基因组DNA序列以找寻锌指蛋白结合的独特位点。或者，搜索基因组DNA序列以找寻锌指蛋白结合的两个独特位点，其中两个位点位于相对的链上并彼此靠近。两个锌指蛋白靶位点可以相隔0、1、2、3、4、5、6或多个碱基对。锌指蛋白结合位点可以在NtMRP基因序列的编码序列或控制NtMRP基因表达的调节元件中，如但不限于NtMRP基因的启动子区域。特别是，一个或两个锌指蛋白是非天然锌指蛋白。因此，本公开提供了结合至NtMRP多核苷酸的锌指蛋白。可以考虑通过锌指核酸酶介导的诱变使编码NtMRP基因的基因序列，如基因组DNA序列，发生突变的方法， 其包括任选一个或多个以下步骤:(i)提供至少两个选择性结合基因序列中不同靶位点的锌指蛋白；(ii)构建两个各编码不同的锌指核酸酶的表达构建体，所述锌指核酸酶包括步骤(i)中两个不同非天然锌指蛋白中的一个和核酸酶，其有效地连接至在植物细胞中有效的表达控制序列上；(iii)向植物细胞中引入两个表达构建体，其中产生两个不同的锌指核酸酶，从而向植物细胞基因组中的基因组DNA序列中，在至少一个靶位点上或附近，引入双链断裂。可以同时或先后实施向植物细胞中引入两个表达构建体，任选包括选择吸收第一构建体的细胞。如此处所用的双链断裂(DSB)是指在DNA或RNA两条链中的断裂。双链断裂可以发生在基因组DNA序列上，在距离靶位点之一不超过5个碱基对至1500个碱基对之间、特别是不超过5个碱基对至200个碱基对之间、特别是不超过5个碱基对至20个碱基对之间的位点。双链断裂可以促进非同源端连接，这导致了基因组DNA序列中位于靶位点或附近的突变。如此处所用，“非同源端连接(NHEJ)”是指这样的修复机制，其通过直接连接而不需要同源模板来修复双链断裂，因此相对于发生双链断裂前的序列可以是致突变的。方法可任选地还包括步骤(iv)向植物细胞中引入多核苷酸，多核苷酸包括至少和双链断裂核苷酸序列上游同源的第一区域以及和双链断裂核苷酸序列下游同源的第二区域。多核苷酸可包括对应着NtMRP多核苷酸序列的核苷酸序列，NtMRP多核苷酸序列含有异源核苷酸序列的缺失或插入。因此，多核苷酸可以促进靶位点处或附近的同源重组，这导致异源序列插入到基因组中或基因组DNA序列从基因组删除。获得的植物细胞中基因组DNA序列可以包括破坏所表达的突变NtMRP蛋白的酶活性的突变、早期翻译终止密码子、或干扰pre-mRNA被适当加工成mRNA的序列基序，这导致基因表达减少或失活。通过使得编码蛋白的基因序列发生突变来破坏蛋白质合成的方法是本领域技术人员已知的。可以通过制备第一多核苷酸和第二多核苷酸的融合体来构建锌指核酸酶，第一多核苷酸编码结合NtMRP多核苷酸的锌指蛋白，第二多核苷酸编码非特异性内切核酸酶，如但不限于IIS型内切核酸酶的那些。IIS型内切核酸酶是限制性酶，其具有独立的识别结构域以及内切核酸酶切割结构域，其中酶在远离识别位点的位点切割DNA。IIS型内切核酸酶的非限制性实例可以是，但不限于,Aar 1、Bae1、Cdi 1、DrdI1、Eci 1、Fok1、Fau1、Gdi I1、Hga1、Ksp6321、MboI1、ΡΠ1108Ι、Rlel081、RleA1、Sap1、TspDTI 或 UbaPI。用于设计和构建融合蛋白的方法、用于从IIS型内切核酸酶序列识别结构域中选择和分离内切核酸酶结构域的方法、用于设计和构建包括锌指蛋白质与内切核酸酶的融合蛋白的锌指核酸酶的方法是本领域已知的。在一个具体的实施方式中，锌指核酸酶中的核酸酶结构域是FokI。锌指蛋白和FokI核酸酶之间的融合蛋白可以包括由2个碱基对组成的间隔序列，或者间隔序列可以由三、四、五、六或更多个碱基对组成。在一个实施方式中，描述了一种具有7个碱基对间隔序列的融合蛋白，从而当第一锌指核酸酶的内切核酸酶接触第二锌指核酸酶时，可以发生二聚化，其中构成所述锌指核酸酶的两个锌指蛋白可以结合靶DNA序列的上游和下游。通过二聚化，锌指核酸酶可以在靶核苷酸序列中引入双链断裂，其随后是非同源端连接或者与外源核苷酸序列的同源重组，外源核苷酸序列具有和双链断裂两侧的区域的同源性。在另一个实施方式中，提供了融合蛋白，其包括锌指蛋白和产生锌指激活蛋白的增强子蛋白。锌指激活蛋白可用于上调或激活NtMRP基因的转录，包括步骤(i )对锌指蛋白进行工程改造，锌指蛋白结合启动子内的区域或有效地连接到NtMRP基因编码序列的序列，(ii)制备所述锋指蛋白和转录激活蛋白之间的融合蛋白，(iii)制备包括在细胞如植物细胞内有活性的启动子控制下编码所述锌指激活蛋白的多核苷酸序列的表达构建体，(iv)向细胞中引入所述基因构建体，以及(V)培养细胞，并允许表达锌指激活蛋白，以及(vi)确定具有增加的NtMRP蛋白表达的细胞。在另一个实施方式中，本公开提供了融合蛋白，其包括锌指蛋白和产生锌指阻遏蛋白的基因阻遏蛋白。锌指阻遏蛋白可以用来下调或抑制NtMRP多核苷酸的转录，包括步骤(i)对锌指蛋白进行工程改造，锌指蛋白结合启动子内的区域或有效地连接到NtMRP多核苷酸的序列，和(ii)制备所述锌指蛋白和转录阻遏蛋白之间的融合蛋白，和(iii)开发包括在细胞如植物细胞内有活性的启动子控制下编码所述锌指阻遏蛋白的多核苷酸序列的基因构建体，和(iv)向细胞中引入所述基因构建体，以及(V)提供锌指阻遏蛋白的表达，以及(vi)确定具有减少的NtMRP多核苷酸转录的细胞。在另一个实施方式中，本公开提供了融合蛋白，其包括锌指蛋白和产生锌指甲基化酶的甲基化酶。锌指甲基化酶，通过 将NtMRP多核苷酸启动子区域内的区域甲基化，可以用来下调或抑制NtMRP多核苷酸在细胞如植物细胞中的表达，包括步骤(i)对锌指蛋白进行工程改造，锌指蛋白结合NtMRP多核苷酸启动子内的区域，和(ii)制备所述锌指蛋白和甲基化酶之间的融合蛋白，和(iii)开发含有在细胞内有活性的启动子控制下编码所述锌指甲基化酶的多核苷酸的基因构建体，和(iv)向细胞中引入所述基因构建体，以及(V)允许锌指甲基化酶的表达，以及(vi)确定在细胞中具有减少的或基本不表达的NtMRP蛋白的细胞。在各种实施方式中，可以根据此处描述的方法选择锌指蛋白来结合NtMRP多核苷酸的调节序列。更具体地，调节序列可包括转录起始位点、起始密码子、外显子区域、外显子-内含子边界、终止子或终止密码子。锌指蛋白可融合至核酸酶、激活蛋白或阻遏蛋白。在各种实施方式中，锌指核酸酶向NtMRP多核苷酸基因组DNA序列的调节区、编码区或非编码区引入双链断裂，并导致NtMRP多核苷酸表达水平的减少、抑制或显著抑制，或者其所编码的蛋白的活性的减少、抑制或显著抑制。本公开还提供了用于修饰细胞如植物细胞的方法，其中通过锌指核酸酶介导的诱变来修饰植物细胞基因组，包括(a)鉴定和制备至少两个非天然锌指蛋白，其选择性地结合不同的靶位点以便基因组核苷酸序列中的修饰；(b)在植物细胞中表达至少两个融合蛋白，其各含有核酸酶和至少两个非天然锌指蛋白中的一个，从而向植物基因组中基因组核苷酸序列中弓I入 双链断裂，尤其是位于或接近基因组核苷酸序列中的靶位点；以及，任选地(C)向细胞中引入包括这样的核苷酸序列的多核苷酸，所述核苷酸序列包括和双链断裂序列上游同源的第一区域以及和双链断裂区域下游同源的第二区域，从而多核苷酸与基因组中的DNA重组。还描述了包括一个或多个表达构建体的细胞，构建体包括编码一个或多个融合蛋白的核苷酸序列。在另一个方面中，本公开还提供了使用大范围核酸酶比如1-CreI产生突变的、非天然发生的或转基因的或者遗传修饰的植物的方法。天然发生的大范围核酸酶以及重组大范围核酸酶可用于在植物基因组DNA中的单个位点或在相对较少的位点特异性引起双链断裂，从而允许NtMRP基因的破坏。大范围核酸酶可以是工程改造的大范围核酸酶，具有改变的DNA识别性能。可以通过本领域已知的各种不同机制将大范围核酸酶蛋白递送到植物细胞中。大范围核酸酶可以是工程改造的大范围核酸酶，具有改变的DNA识别性能。此引用描述了用于基于结构的工程改造源自天然发生的大范围核酸酶1-CreI的大范围核酸酶的方法。可以制备这些工程改造的大范围核酸酶来识别并切割植物基因组中发现的预先确定的22个碱基对的DNA序列。可以通过本领域已知的各种不同机制将大范围核酸酶蛋白递送到植物细胞中。公开的各方面允许使用大范围核酸酶以失活植物细胞或植物中的NtMRP多核苷酸。各方面还涉及使用大范围核酸酶使植物中的NtMRP多核苷酸失活的方法，包括(a)提供包括NtMRP多核苷酸的植物细胞；(b)将大范围核酸酶或编码大范围核酸酶的构建体引入所述植物细胞中；和(c)允许大范围核酸酶使NtMRP多核苷酸失活。大范围核酸酶可以用来切割NtMRP多核苷酸编码区内的大范围核酸酶识别位点。这种切割频繁导致大范围核酸酶识别位点的DNA删除，随后是通过非同源端连接的致突变的DNA修复。基因编码序列中这样的突变一般足以使该基因失活。首先，此方法涉及使用合适的转化方法将大范围核酸酶表达盒递送至植物细胞。为获得最高效率，需要将大范围核酸酶表达盒连接至可选择的标记物，并在选择试剂存在下选择成功转化的细胞。这种过程将导致大范围核酸酶表达盒整合到基因组中，然而如果植物需要监管批准，这种过程则是不可取的。在这样的情况下，可以使用常规育种技术将大范围核酸酶表达盒(以及连接的选择性标记物基因)在后代植物中分离(segregate)。或者，可以最初用缺乏选择性标记物的大范围核酸酶表达盒转化植物细胞，并且可在缺乏选择试剂的介质中生长。在这样的条件下，部分处理后的细胞将获得大范围核酸酶表达盒并瞬时表达工程化的大范围核酸酶而没有将大范围核酸酶表达盒整合到基因组中。因为其没有考虑转化效率，该后一种转换过程需要筛选更大数目处理过的细胞以获得所需的基因组修饰。递送大范围核酸酶表达盒之后，植物细胞最初在所用的对于特定转化过程典型的条件下生长。这可能意味着在介质上在低于26摄氏度的温度下培养转化细胞，频繁地在黑暗中。这样的标准条件可使用一段时间，优选1-4天，以允许植物细胞从转化过程中恢复。此初始恢复期后的任何时候，可提高生长温度以刺激工程化大范围核酸酶切割和突变大范围核酸酶识别位点的活性。对于某些应用，可能需要从植物基因组中精确除去NtMRP多核苷酸。通过使用一对工程改造的大范围核酸酶，这种应用是可行的，每种大范围核酸酶切割位于所预期的缺失各侧的大范围核酸酶识别位点。此处所提供的重组构建体可用于转化植物或植物细胞以便调节(例如，减少或抑制)NtMRP蛋白的表达水平。重组多核苷酸构建体可以包括编码如此处所述的NtMRP多肽的多核苷酸，其有效地连接到适于在植物或细胞中表达NtMRP多肽的调节区。因此，多核苷酸可以包括编码如此处所述的NtMRP多肽或其变体的编码序列。由重组多核苷酸编码的NtMRP多肽可以是天然NtMRP多肽，或可以与细胞是异源的。在一些情况下，重组构建体包含有效地连接到调节区的减少或抑制NtMRP调节多肽表达的多核苷酸。合适的调节区的实例如此处所描述。还提供了含有重组多核苷酸构建体的载体，如此处所述的那些。合适的载体骨架包括例如本领域常规使用的那些，比如质粒、病毒、人工染色体、BAC、YAC或PAC。合适的表达载体包括，但不限于，源自例如噬菌体、杆状病毒和逆转录病毒的质粒和病毒载体。许多载体和表达系统是商业上可获得的。载体还可以包括例如复制起源、支架附着区(SAR)或标记物。标记物基因可以为植物细胞赋予可选择的表型。例如，标记物可以赋予杀生物剂抗性，比如对抗生素(例如卡那霉素、G418、博来霉素或潮霉素)或除草剂(例如草甘膦、氯磺隆或草铵膦)的抗性。此外，表达载体可以包括设计用来促进操作或检测(例如，纯化或定位)所表达的多肽的标签序列。标签序列，如荧光素酶、.beta.-葡糖醛酸酶(GUS)、绿色荧光蛋白(GFP)、谷胱甘肽S-转移酶(GST)、多聚组氨酸、c-myc或血凝素序列，通常被表达为与所编码的多肽的融合。这样的标签可以插入多肽内的任何地方，包括在羧基端或氨基端。各种实施方式涉及突变的、非天然发生的或转基因的植物，其通过各种方法被修饰以减少NtMRP基因的表达水平，所述方法可用于减少或沉默NtMRP基因的表达，从而产生在目标植物组织中NtMRP转运蛋白表达水平可被降低的植物。重金属转运的速度和重金属转运的分布模式，尤其是镉转运，在根据公开的方法和组合物产生的植物中可以被改变。适用于遗传修饰的植物包括单子叶和双子叶植物以及植物细胞系统，包括来自如下科之一的物种: 爵床科(Acanthaceae)、葱科(Alliaceae)、六出花科(Alstroemeriaceae)λ 石蒜科(Amaryllidaceae)、夹竹桃科(Apocynaceae)、模柳科(Arecaceae)、菊科(Asteraceae)、小梁科(Berberidaceae)、红木科(Bixaceae)、十字花科(Brassicaceae)、凤梨科(Bromeliaceae)、大麻科(Cannabaceae)、石竹科(Caryophyllaceae)、三尖杉科(Cephalotaxaceae)、黎科(Chenopodiaceae)、秋水仙科(Colchicaceae)、葫芦科(Cucurbitaceae)、薯截科(Dioscoreaceae)、麻黄科(Ephedraceae)、古柯科(Erythroxylaceae)、大戟科(Euphorbiaceae)、蝶形花科(Fabaceae)、唇形科(Lamiaceae)、亚麻科(Linaceae)、石松科(Lycopodiaceae)、锦葵科(Malvaceae)、黑药花科(Melanthiaceae)、色蕉科(Musaceae)、桃金娘科(Myrtaceae)、蓝果树科(Nyssaceae)、S粟科(Papaveraceae)、松科(Pinaceae)、车前草科(Plantaginaceae )、禾本科(Poaceae )、蓄薇科(Rosaceae )、菌草科(Rubiaceae )、杨柳科(Salicaceae)、无患子科(Sapindaceae)、煎科(Solanaceae)、紫杉科(Taxaceae)、山茶科(Theaceae)或葡萄科(Vitaceae)。合适的物种可包括黄秋葵(Abelmoschus)、冷杉(Abies)、槭(Acer)、翦股颖(Agrostis)、葱(Allium)、六出花(Alstroemeria)、凤梨(Ananas)、穿心莲(Andrographis)、须芒草(Andropogon)、蒿(Artemisia)、芦竹(Arundo)、真页煎(Atropa)、小檗(Berberis)、舌甘菜(Beta)、红木(Bixa)、芸苔(Brassica)、金盖菊(Calendula)、山荼花(Camellia)、喜树(Camptotheca)、大麻(Cannabis)、辣椒(Capsicum)、红花(Carthamus)、长春花(Catharanthus)、三尖杉(Cephalotaxus)、菊花(Chrysanthemum)、金鸡纳(Cinchona)、西瓜(Citrullus)、咖啡(Coffea)、秋水仙(Colchicum)、彩叶草(Coleus)、黄瓜(Cucumis)、南瓜(Cucurbita)、狗牙根(Cynodon)、曼陀罗(Datura)、石竹(Dianthus)、洋地黄(Digitalis)、薯截(Dioscorea)、油掠(Elaeis)、麻黄草(Ephedra)、斑茅(Erianthus)、古柯(Erythroxylum)、按树(Eucalyptus)、羊茅(Festuca)、草莓(Fragaria)、雪花莲(Galanthus)、大豆(Glycine)、棉花(Gossypium)、向日葵(Helianthus)、橡胶树(Hevea)、大麦(Hordeum)、天仙子(Hyoscyamus)、麻疯树(Jatropha)、萬苣(Lactuca)、亚麻(Linum)、黑麦草(Lolium)、羽扇豆(Lupinus)、番 M(Lycopersicon)、石松(Lycopodium)、木薯(Manihot )、苜蓿(Medicago)、薄荷(Mentha)、芒草(Miscanthus)、香蕉(Musa)、烟草(Nicotiana)、水稻(Oryza)、黍(Panicum)、S 粟(Papaver)、银胶菊(Parthenium)、狼尾草(Pennisetum)、矮牵牛(Petunia)、U(Phalaris)、猫尾(Phleum)、松(Pinus)、早熟禾(Poa)、一品红(Poinsettia)、胡杨(Populus)、萝芙木(Rauwolfia)、蔑麻(Ricinus)、蔷薇(Rosa)、甘鹿(Saccharum)、柳(Salix)、血根草(Sanguinaria)、莧菪(ScopoIia)、黑麦(Secale)、煎(SoIanum)、高梁(Sorghum)、米草(Spartina)、菠菜(Spinacea)、艾菊(Tanacetum)、紫杉(Taxus)、可可(Theobroma)、小黑麦(Triticosecale)、小麦(Triticum)、北美穗草(Uniola)、藜芦(Veratrum)、长春花(Vinca)、葡萄(Vitis)和玉米(Zea)属的成员。合适的物种可包括黍(Panicum spp.)、高粱(Sorghum spp.)、芒(Miscanthusspp.)、甘鹿(Saccharum spp.)、鹿茅(Erianthus spp.)、杨(Populusspp.)、大须芒草(An dropogon gerardii)(大须芒草(big bluestem))、象草(Pennisetumpurpureum)(象草(elephant grass))、藹草(Phalaris arundinacea)(藹草(reedcanarygrass))、狗牙根(Cynodon dactylon)(狗牙根(bermudagrass))、高羊茅(Festuca arundinacea)(高羊茅(tall fescue))、草原索草(Spartina pectinata)(草原绳草(prairie cord-grass))、紫花苜猜(Medicago sativa)(紫花苜猜(alfalfa))、芦竹(Arundo donax)(芦竹(giant reed))、黑麦(Secale cereale)(黑麦(rye))、柳(Salix spp.)(柳(willow))、桉树(Eucalyptus spp.)(桉树(eucalyptus))、小黑麦(Triticosecale)(小麦属小麦杂交黑麦(triticum wheat times rye))、竹(bamboo)、向日葵(Helianthus annuus)(向日葵(sunflower))、红花(Carthamustinctorius)(红花(safflower))、麻风(Jatropha curcas)(麻风(jatropha))、菌麻(Ricinus communis)(菌麻(castor))、油掠(Elaeis guineensis)(油掠(palm))、亚麻(Linum usitatissimum)(亚麻(flax))、芥菜(Brassica juncea)、甜菜(Betavulgaris)(甜菜(sugarbeet))、木薯(Manihot esculenta)(木薯(cassaya))、番煎(Lycopersicon esculentum)(西红柿(tomato))、萬苣(Lactuca sativa)(萬苣(lettuce))、香蕉(Musa paradisiaca)(香蕉(banana))、马铃薯(Solanumtuberosum)(马铃薯(potato))、甘蓝(Brassica oIeracea)(西兰花(broccoli))、花椰菜(caul if lower)、芽甘蓝(Brussels sprouts))、荼(Camel Iiasinensis)(茶(tea))、草毒(Fragaria ananassa)(草毒(strawberry))、口J 口J (Theobromacacao)(可可(cocoa))、咖啡(Coffea arabica)(咖啡(coffee))、葡萄(Vitis vinifera)(葡萄(grape))、菠萝(Ananas comosus)(菠萝(pineapple))、辣椒(Capsicumannum)(辣舌甘椒(hot&sweet pepper ))、洋葱(Allium cepa)(洋葱(onion))、甜瓜(Cucumis melo)(舌甘瓜(melon))、黄瓜(Cucumis sativus)(黄瓜(cucumber))、南瓜(Cucurbita maxima)(南瓜(squash))、南瓜(Cucurbita moschata)(南瓜(squash))、菠菜(Spinacea oleracea)(菠菜(Spinacea))、西瓜(Citrulluslanatus)(西瓜(watermelon))、秋葵(Abelmoschusesculentus)(秋葵(okra))、煎子(Solanum melongena)(煎子(eggplant))、蔷薇(Rosaspp.)(蔷薇(rose))、康乃馨(Dianthus caryophyllus)(康乃馨(carnation))、矮牵牛(Petunia spp.)(矮牵牛(petunia))、一品红(Poinsettia pulcherrima)(一品红(poinsettia))、习习扇豆(Lupinus albus)(习习扇豆(lupin))、燕麦(Uniola paniculata)(燕麦(oats))、翦股颖(bentgrass)(翦股颖(Agrostis spp.))、山杨(Populus tremuloides)(山杨(aspen))、松(Pinus spp.)(松(pine))、冷杉(Abies spp.)(冷杉(fir))、槭(Acerspp.)(枫(maple))、大麦(Hordeum vuIgare)(大麦(barley))、早熟禾(Poa pratensis)(早熟禾(bluegrass))、黑麦草(Lolium spp.)(黑麦草(ryegrass))和猫尾草(Phleumpratense)(猫尾草(timothy)、柳(Panicum virgatum)(柳(switchgrass))、高梁(Sorghumbicolor)(高梁(sorghum)、苏丹草(sudangrass))、芒草(Miscanthus giganteus)(芒草(miscanthus))、甘鹿(Saccharum sp.)(甘鹿(energycane))、白杨(Populus balsamifera)(白杨(poplar))、玉米(Zeamays)(玉米(corn))、大豆(Glycine max)(大豆(soybean))、油菜(Brassicanapus)(油菜(canola))、小麦(Triticum aestivum)(小麦(wheat))、棉花(Gossypium hirsutum)(棉花(cotton))、水稻(Oryza sativa)(水稻(rice))、向日葵(Helianthus annuus)(向日葵(sunflower))、紫花苜猜(Medicago sativa)(紫花苜猜(alfalfa))、甜菜(Beta vulgar is)(甜菜(sugarbeet))或者珍珠粟(Pennisetum glaucum)(珍珠粟(pearl millet))。各种实施方式涉及突变的、非天然发生的植物或转基因植物，其经过修饰以调节(例如，减少或抑制)NtMRP基因表达水平，从而产生这样的植物如烟草植物，在其中，在目标植物组织内的NtMRP表达水平和对照植物相比是减少的。公开的组合物和方法可应用于任何烟草属的物种，包括黄花烟草(N.rustica)和红花烟草(N.tabacum)(例如，LA B21、LNKY171、TI1406、巴斯玛(Basma)、Galpao (无对应译文)、珀里克(Perique)、BeinhartlOOO-1和Petico (无对应译文))。其它物种包括N.acaulis (无对应译文)、智利尖叶烟草(N.acuminata)、N.acuminata var.multiflora (无对应译文)、非洲烟草(Ν.africana)、花烟草(N.&1&丨3)、抱莖烟草(N.amplexicaulis)、N.arentsii (无对应译文)、Ν.attenuata (无对应译文)、N.benavidesii (无对应译文)、本塞姆氏烟草(N.benthamiana)、N.bigelovii(无对应译文)、N.bonariensis (无对应译文)、N.cavicola (无对应译文)、克氏烟草(N.clevelandii)、心叶烟草(N.cordifolia)、N.corymbosa (无对应译文)、N.debneyi (无对应译文)、N.excelsior (无对应译文)、福氏烟草(N.forgetiana)、N.fragrans (无对应译文)、粉蓝烟草(N.glauca)、粘性烟草(N.glutinosa)、N.goodspeedii (无对应译文)、野生烟草(N.gossei)、N.hybrid (无对应译文)、Ν.ingulba (无对应译文)、Ν.kawakamii (无对应译文)、N.knightiana (无对应译文)、郎氏烟草(N.1angsdorffii)、N.linearis (无对应译文)、长花烟草(N.1ongif 1ra)、海滨烟草(N.mar it ima)、麦格隆熄丰烟草(N.megalosiphon)、N.miersii (无对应译文)、夜花烟草(N.noctiflora)、N.nudicaulis (无对应译文)、N.0btusifolia (无对应译文)、西方烟草(N.0ccidental is)、N.0ccidental is subsp.hesperis (无对应译文)、耳状烟草(N.0tophora)、圆维烟草(N.paniculata)、N.paucif1ra(无对应译文)、矮牵牛状烟草(N.petunioides)、蓝茉莉叶烟草(N.plumbaginifolia)、N.quadrivalvis (无对应译文)、N.raimondii (无对应译文)、波缘烟草(N.repanda)、莲座叶烟草(N.rosulata)、N.rosulata subsp.1ngulba (无对应译文)、N.rotundifolia (无对应译文)、N.setchellii (无对应译文)、Ν.simulans (无对应译文)、Ν.solanifolia (无对应译文)、N.spegazzinii(无对应译文)、斯托克通氏烟草(N.stocktonii)、N.suaveolens(无对应译文)、种林烟草(N.sylvestris)、N.thyrsiflora (无对应译文)、域毛烟草(N.tomentosa)、拟鸾毛烟草(N.tomentosiformis)、N.trigonophylla (无对应译文)、Ν.umbratica (无对应译文)、波缘烟草(N.undulata)、N.velutina (无对应译文)、N.wigandioides (无对应译文)和N.Xsanderae (无对应译文)。此处也考虑使 用烟草栽培品种和优良烟草栽培品种。因此转基因、非天然发生的或突变的植物可以是烟草品种或优良烟草栽培品种，其包括一个或多个转基因或一个或多个遗传突变或其组合。遗传突变(例如，一个或多个多态性)可以是不天然存在于个体烟草品种或烟草栽培品种(例如，优良烟草栽培品种)的突变，或只要突变不天然发生在个体烟草品种或烟草栽培品种(例如，优良烟草栽培品种)中，可以是天然发生的遗传突变。特别有用的红花烟草品种包括白肋烟型、深型、烤烟型和东方型烟草。品种或栽培品种的非限制性实例是:BD64、CC101、CC200、CC27、CC301、CC400、CC500、CC600、CC700、CC800、CC900、Cokerl76 (无对应译文)、Coker319 (无对应译文)、Coker371Gold (无对应译文)、Coker48 (无对应译文)、CD263、DF911、DT538LC Galpao 烟草、GL26H、GL350、GL600、GL737、GL939、GL973、HB04P、HB04P LC、HB3307PLC、杂交 403LC、杂交 404LC、杂交 501LC、K149、K326、K346、K358、K394、K399、K730、KDH959、KT200、KT204LC、KY10、KY14、KY160、KY17、KY171、KY907、KY907LC、KTY14xL8LC、Little Crittenden (无对应译文)、McNair373、McNair944、msKY14xL8、窄叶 Madole(无对应译文)、窄叶 Madole LC、NBH98、N-126、N_777LC、N-7371LC、NC100、NC102、NC2000、NC291、NC297、NC299、NC3、NC4、NC5、NC6、NC7、NC606、NC71、NC72、NC810、NC BH129、NC2002、Neal Smith Madole (无对应译文)、0XF0RD207、PD7302LC、PD7309LC、PD7312LC、“珀里克”烟草、PVH03、PVH09、PVH19、PVH50、PVH51、R610、R630、R7-11、R7-12、RG17、RG81、RG H51、RGH4、RGH51、RS1410、Speightl68 (无对应译文)、Speightl72(无对应译文)、Speightl79 (无对应译文)、Speight210 (无对应译文)、Speight220 (无对应译文)、Speight225 (无对应译文)、Speight227 (无对应译文)、Speight234 (无对应译文)、Speight G-28 (无对应译文)、Speight G-70 (无对应译文)、Speight H-6 (无对应译文)、Speight H20 (无对应译文)、Speight NF3 (无对应译文)、TI1406、TI1269、TN86、TN86LC、TN90、TN97、TN97LC、TN D94、TN D950、TR(Tom Rosson) Madole (无对应译文)、VA309、VA359、AA37-l、B13P、Xanthi (Mitchell-Mor (无对应译文))、Bel-W3、79_615、沙姆逊福尔摩斯 NN、KTRDC2 号杂交 49、白肋 21、KY8959、KY9、MD609、PG01、PG04、P01、P02、P03、RG11、RG8、VA509、AS44、Banket Al (无对应译文)、Basma Drama B84/31 (无对应译文)、Basma I ZichnaZP4/B (无对应译文)、Basma Xanthi BX2A (无对应译文)、Batek (无对应译文)、Besuki Jember(无对应译文)、C104、Coker347、Criollo Misionero (无对应译文)、Delcrest (无对应译文)、Djebel81 (无对应译文)、DVH405、Gaipao Comum (无对应译文)、HB04P、Hicks Broadleaf
(无对应译文)、Kabakulak Elassona (无对应译文)、Kutsage El (无对应译文)、LA BU21、NC2326、NC297、PVH2110、Red Russian (无对应译文)、Samsun (无对应译文)、Saplak (无对应译文)、Simmaba (无对应 译文)、Talgar28 (无对应译文)、Wislica (无对应译文)、Yayaldag(无对应译文)、Pril印HC-72 (无对应译文)、Pril印P23 (无对应译文)、Pril印PB156/1 (无对应译文)、Pril印P12-2/1 (无对应译文)、Yaka JK-48 (无对应译文)、Yaka JB125/3 (无对应译文)、T1-1068、KDH-960、T1-1070、TW136、Basma (无对应译文)、1'肝4028、1^8、1'肝2002、GR14UBasma xanthi (无对应译文)、GR149、GR153、Petit Havana (无对应译文)。即使此处未特别指明，可考虑上述低转化亚变种(low converter subvariety)。在另一方面中，提供了如此处所述的突变的、非天然发生的或转基因植物，其已被进一步修饰使得NtHMA转运蛋白表达也减少了，这会进一步减少植物中的镉含量。使用NtHMA转运蛋白减少植物中镉含量描述于W02009074325中。根据一个实施方式，这提供了突变的、非天然发生的或转基因植物细胞，其包括分离的NtMRP多核苷酸、NtMRP嵌合基因、NtMRP多核苷酸构建体、NtMRP双链RNA、NtMRP缀合物和/或连同分离的NtHMA多核苷酸、NtHMA嵌合基因、NtHMA多核苷酸构建体、NtHMA双链RNA、NtHMA缀合物和/或NtHMA表达载体的NtMRP表达载体。实施方式还涉及用于产生突变植物、非天然发生的植物、杂交植物或转基因植物的组合物和方法,其中植物已被修饰以调节(例如,减少或抑制)NtMRP表达或活性，从而与对照相比其中积累了更少量的镉。在某些实施方式中，得到的植物和对照植物在整体外观(例如，表型)上相似或基本相同。可以通过实地观察评估各种表型特征，如成熟程度、单株叶数、株高、叶插入角度、叶大小(宽度和长度)、节间距离和叶片中脉比。在一个优选的实施方式中，植物的高度或重量、或高度和重量与对照植物基本相同。在另一个优选实施方式中，和对照相比，在收集的干燥植物叶子中没有发现显著差异，从而表明NtMRP转录物的调节对干生物质无统计学相关影响。一个方面是突变植物、非天然发生的植物、杂交植物或转基因植物的种子。优选，种子是烟草种子。另一方面是突变植物、非天然发生的植物、杂交植物或转基因植物的花粉或胚珠。此外，描述了突变植物、非天然发生的植物、杂交植物、转基因植物，其还包括赋予雄性不育的多核苷酸。本公开还提供了突变植物、非天然发生的植物、杂交植物或转基因植物或其部分的可再生细胞的组织培养物，该培养物使得能够表达所有亲本形态和生理特征的植物再生。可再生细胞包括但不限于来自的叶、花粉、胚、子叶、胚轴、根、根尖、花药、花和其部分、胚珠、芽、茎、梗、木髓和蒴果或者源自于此的愈伤组织或原生质体的细胞。在一些实施方式中，在其中NtMRP多核苷酸表达被调节(例如，减少或抑制)的植物可以具有，尤其是在叶中，减少的重金属如镉的水平。和相应的对照植物中的镉水平相比，镉水平降低了至少约 5%、6%、7%、8%、9%、10%、11%、12%、13%、14%、15%、16%、17%、18%、19%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、70%、80%、90%、95%、96%、97%、98 % 或 99 % 或以上，如100%、125%、150%或200%或以上，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达没有被调节(例如，减少或抑制)。在一些实施方式中，在其中NtMRP多核苷酸表达被调节(例如，减少或抑制)的植物在根中可以具有增加或减少的镉水平。在一些实施方式中，在其中NtMRP多核苷酸表达被调节(例如，减少或抑制)的植物可以具有根中减少或增加的镉水平以及叶中减少的镉水平。在一些实施方式 中，在其中NtMRP多核苷酸表达被调节(例如，减少或抑制)的植物在收获的生物质中可以具有减少的镉水平。可以使用包括例如RT-PCR、Northern印迹、RNA酶保护、引物延伸、Western印迹、蛋白凝胶电泳、免疫沉淀、酶联免疫分析、芯片分析和质谱的方法评价表达。应当注意的是，如果多肽在组织优选的或广泛表达启动子的控制下表达，可以在整个植物或在选定的组织中评价表达。相似地，如果多肽在特定的时间例如在特定的发育时间或诱导时表达，可以在期望的时间段内选择性地评价表达。可以筛选或选择突变的、非天然发生的或转基因的植物群体中具有期望的性状或表型的那些群中的成员。例如，可以筛选单一转化事件的后代群体中具有期望的NtMRP多肽或多核苷酸表达水平的那些植物。物理和生物化学方法可用于鉴定表达水平。这些包括用于检测多核苷酸的Southern分析或PCR扩增；用于检测RNA转录物的Northern印迹、SlRNA酶保护、引物延伸或RT-PCR扩增；用于检测多肽和多核苷酸的酶或核酶活性的酶法分析；以及检测多肽的蛋白凝胶电泳、Western印迹、免疫沉淀和酶联免疫分析。其它技术如原位杂交、酶染色和免疫染色也可用于检测多肽或多核苷酸的存在或表达。可以筛选植物群体中具有期望性状，如调节(例如，减少或抑制)的镉水平，的那些植物。可以通过一代或多代或在一个以上的地理位置进行选择或筛选。在某些情况下，突变的、非天然发生的或转基因的植物可以在诱导期望表型，或者必要时在突变的、非天然发生的或转基因的植物中产生期望表型的条件下生长并进行选择。此外，可以在特定发育阶段期间应用选择或筛选，在所述阶段中预期植物表现出期望的表型。可以进行选择或筛选来选择相对于对照植物在其镉含量上具有统计学显著差异的那些突变的、非天然发生的或转基因的植物，在对照植物中NtMRP多核苷酸或蛋白的表达或活性没有被调节(例如减少或抑制)。如此处所述的突变的、非天然发生的或转基因的植物细胞和植物包括一个或多个重组多核苷酸，如分离的多核苷酸、嵌合基因、多核苷酸构建体、双链RNA、缀合物或表达载体。可以通过使重组多核苷酸整合至其基因组中而成为稳定转化的方式转化植物或植物细胞。稳定转化的细胞一般在每次细胞分裂时保留所引入的多核苷酸。也可以瞬时转化植物或植物细胞，从而重组多核苷酸没有整合到其基因组中。瞬时转化的细胞通常在每次细胞分裂时失去所有或某些部分所引入的重组多核苷酸，从而在足够次数的细胞分裂之后所引入的重组多核苷酸在子细胞中检测不到。用于向单子叶植物和双子叶植物中引入多核苷酸的技术是本领域已知的，并且包括例如农杆菌介导的转化、病毒载体介导的转化、电穿孔法和粒子枪转化。用于向植物染色体中整合外源多核苷酸的农杆菌系统已经针对植物遗传工程进行了广泛的研究、改进和探索。包括多核苷酸序列的裸重组多核苷酸分子通过常规方法被连接到适当的T-DNA序列上，其中多核苷酸序列对应着目标纯化蛋白，并按有义或反义方向有效地连接至调节序列。通过聚乙二醇技术或通过电穿孔技术将这些引入烟草原生质体，两者都是标准的。或者，包括编码目标纯化蛋白的重组多核苷酸分子的这样的载体引入活的农杆菌细胞，其然后将多核苷酸转移到植物细胞中。可以通过原生质体与含有多核苷酸的脂质体融合或者通过电穿孔来进行不伴有T-DNA载体序列的裸多核苷酸的转化。不伴有T-DNA载体序列的裸多核苷酸也可通过惰性、高速微粒(microprojectile)用于转化细胞。如果细胞或培养的组织用作转化受体组织，需要时，可以通过本领域技术人员已知的技术从转化的培养物再生植物。待纳入重组构建体的调节区选择取决于若干因素，包括但不限于效率、可选择性、可诱导性、所需的表达水平和细胞的或组织的优先表达。对于本领域技术人员而言，通过适当选择和定位相对于编码序列的调节区来调节编码序列的表达是一个常规的事情。多核苷酸的转录可以类似方式调节。一些合适的调节区仅或主要在某些细胞类型中起始转录。用于鉴定和确定植物基因组多核苷酸中调节区的方法是本领域已知的。合适的启动子包括被存在于不同组织或细胞类型中(例如，根特异性启动子、茎特异性启动子、木质部特异性启动子)、或不同发育阶段出现的、或者响应不同环境条件而出现的组织特异性因子所识别的组织特异性启动子。合适的启动子包括组成型启动子，其可以在大多数细胞类型中 被激活而无需特定的诱导物。用于控制NtMRP RNAi多肽生产的合适启动子的实例包括花椰菜花叶病毒35S (CaMV/35S)、SSU、OCS、lib4、usp、STLS1、B33、nos或泛素启动子或菜豆素启动子。本领域技术人员能够产生多种重组启动子的变化。组织特异性启动子是转录调控元件，其仅在特定细胞或组织中、在植物发育期间的特定时间是有活性的，如在植物组织或繁殖组织中。例如，当优选在某些组织中表达多核苷酸时，组织特异性表达可以是有利的。发育控制下的组织特异性启动子实例包括可以仅在(或主要仅在)某些组织(如植物组织例如根或叶，或繁殖组织如果实、胚珠、种子、花粉、pistols (无对应中译文)、花或任何胚胎组织)中起始转录的启动子。繁殖组织特异性启动子可以是例如花药特异性、胚珠特异性、胚特异性、胚乳特异性、珠被特异性、种子和种皮特异性、花粉特异性、花瓣特异性、萼片特异性的或其组合。合适的叶特异性启动子包括来自C4植物(玉米)的丙酮酸、正磷酸二激酶(PI3DK)启动子、来自玉米的cab-mlCa+2启动子、拟南芥myb相关基因的启动子(Atmyb5)、核酮糖二磷酸羧化酶(RBCS)启动子(例如，在叶和光照生长的苗中表达的番茄RBCS1、RBCS2和RBCS3A基因、在发育中的番茄果实中表达的RBCSl和RBCS2或者几乎只在叶片和叶鞘的叶肉细胞中高水平表达的核酮糖二磷酸羧化酶启动子)。合适的衰老特异性启动子包括果实成熟、衰老和叶脱落期间的番茄启动子，编码半胱氨酸蛋白酶的基因的玉米启动子。可以使用合适的花药特异性启动子。可以选择本领域技术人员已知的合适的根优选启动子。适合的种子优选启动子包括种子特异性启动子(种子发育过程中有活性的那些启动子，比如种子贮藏蛋白的启动子)和种子萌发启动子(种子萌发过程中有活性的那些启动子)。这样的种子优选启动子包括但不限于Ciml (细胞分裂素诱导的消息)；cZ19Bl (玉米19kDa的玉米醇溶蛋白)；milps (肌-肌醇-1-磷酸合酶)；mZE40-2也称为Zm-40 ;nuclc ;以及celA (纤维素合酶)。Y-玉米醇溶蛋白是胚乳特异启动子。Glob-1是胚特异性启动子。对于双子叶植物，种子特异性启动子包括但不限于豆.beta菜豆素(bean, beta-phaseolin)、油菜籽蛋白、β -伴大豆球蛋白、大豆凝集素、十字花科蛋白(cruciferin)等。对于单子叶植物,种子特异性启动子包括但不限于玉米15kDa的玉米醇溶蛋白启动子、22kDa的玉米醇溶蛋白启动子、27kDa的玉米醇溶蛋白启动子、g_玉米醇溶蛋白启动子、27kDa的Y-玉米·醇溶蛋白启动子(如gzw64A启动子，参阅GenBank登录号S78780)、糯质基因(waxy)启动子、超甜基因(shrunken) I启动子、超甜基因2启动子、球蛋白I启动子(见GenBank登录号L22344)、Itp2启动子、ciml启动子、玉米endl和end2启动子、nucl启动子、Zm40启动子、eepl和eep2 ;lecl、硫氧还蛋白H启动子；mlipl5启动子、PCNA2启动子；和超甜基因2启动子。可诱导启动子的实例包括响应病原体攻击、厌氧条件、温度升高、光、干旱、低温或高盐浓度的启动子。病原体诱导的启动子包括来自病理相关蛋白(PR蛋白)的那些，病理相关蛋白是病原体感染后所诱导的(例如PR蛋白、SAR蛋白、beta_l，3_葡聚糖酶、几丁质酶)。除了植物启动子，其它合适的启动子可源自细菌来源，例如，章鱼碱合酶启动子、胭脂碱合酶启动子和源于Ti质粒的其它启动子)，或可以源自病毒启动子(例如，花椰菜花叶病毒(CaMV) 35S和19S RNA启动子、烟草花叶病毒的组成型启动子、花椰菜花叶病毒(CaMV) 19S和35S启动子或玄参花叶病毒35S启动子)。缀合半体的实例包括大分子化合物，例如蛋白质(例如抗体)、脂肪酸链、糖残基、糖蛋白、聚合物(例如，聚乙二醇)，或其组合。寡核苷酸可以缀合至增加寡核苷酸细胞吸收的半体上。半体的非限制性实例包括但不限于抗体、多肽、脂质半体如胆固醇半体、胆酸、硫醚例如己基-S-三苯甲硫醇、巯基胆固醇、脂肪族链例如十二烷二醇或i^一烷基残基、磷脂例如二 -十六烷基-外消旋-丙三醇或三乙基铵1- 二-邻-十六烷基-外消旋-甘油-s-h-膦酸酯、聚胺或聚乙二醇链、金刚烷乙酸、棕榈基半体、十八烷基胺或己基氨基-羰基-羟胆固醇半体。半体可以是带正电荷的聚合物，如带正电荷的肽，例如其长度是约I至50个氨基酸残基，或聚亚烷基氧化物如聚乙二醇(PEG)或聚丙二醇。适当地，带正电荷的聚合物，如聚亚烷基氧化物可以通过接头例如可释放的接头附着至低聚物。当测量NtMRP多肽表达时，检测编码NtMRP多肽的mRNA在细胞中的量可以通过例如PCR或Northern印迹进行定量。当测量样本中NtMRP多肽量的变化时，通过使用抗NtMRP抗体检测NtMRP可用于使用已知技术来定量NtMRP多肽在细胞中的量。或者，生物活性(例如，重金属如镉的转运)可以在与测试剂接触之前和之后进行测量。
在另一个实施方式中，此处提供了对多肽具有免疫反应性的抗体。如此处所述的NtMRP多肽、片段、变体、融合多肽等可以在生产对其具有免疫反应性的抗体用作“免疫原”。这样的抗体通过抗体的抗原结合位点特异性结合多肽。特异性结合抗体是特异性识别并结合NtMRP家族多肽、同源物和变体但不识别和结合其它分子的那些。在一个实施方式中，所述抗体特异于具有此处所述的NtMRP氨基酸序列的多肽，并且不与其它多肽交叉反应。
更具体而言，多肽、片段、变体、融合多肽等含有激发抗体形成的抗原决定簇或表位。这些抗原决定簇或表位可以是线性的或构象的(不连续的)。线性表位由多肽的单个氨基酸部分组成，而构象或不连续表位由来自多肽链不同区域的氨基酸部分组成，其在多肽折叠时被带到紧密靠近的位置。可以通过本领域已知的任何方法鉴定表位。此外，来自多肽的表位可以用作分析中的研究试剂，并用于从物质(如多克隆血清或来自培养的杂交瘤的上清)中纯化特异性结合的抗体。可以使用本领域已知的技术如固相合成、多肽的化学或酶切割或使用重组DNA技术生产这样的表位或其变体。可以通过常规技术制备多肽的多克隆抗体和单克隆抗体。此处也可以考虑产生多肽特异性单克隆抗体的杂交瘤细胞系。可以通过常规技术生产并鉴定这样的杂交瘤。对于抗体的生产,可以通过注射NtMRP多肽、片段、变体或其突变体来免疫各种宿主动物。举几个来说，这样的宿主动物可以包括，但不限于，兔、小鼠和大鼠。可以使用各种佐剂来增加免疫应答。根据宿主种类，这样的佐剂包括，但不限于，弗氏的(完全和不完全)、矿物凝胶如氢氧化铝、表面活性物质如溶血卵磷脂、复合多元醇、聚阴离子、肽、油乳液、钥孔血蓝蛋白、二硝基苯酚和潜在有用的人佐剂如BCG (卡介苗)和短小棒状杆菌。可以通过常规技术回收单克隆抗体。这样的单克隆抗体可能是任何免疫球蛋白类，包括IgG、IgM、IgE、IgA、IgD及其任何亚类。抗体也可用在分析中来检测多肽或片段的存在，无论是体外或体内。抗体也可以用于通过免疫亲和层析来纯化多肽或片段。各种实施方式提供了突变的、非天然发生的或转基因的植物，以及生物质和种子，其中NtMRP多核苷酸的表达水平显著降低，以减少或阻碍镉转运至叶片。叶片可以并入各种消费品，如各种可抽吸物品，如雪茄、香烟和无烟烟草制品(即，非易燃的)。在这些抽吸物品和无烟制品中的％镉减少和源自非突变的、非天然发生的或非转基因对应品相比时可以是低至少约 5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、或 100%、200%或 300% 的值。在一些实施方式中，这些可抽吸物品和无烟制品的镉含量是范围从约每百万(ppm) 0.01至约0.05份、从约0.01至约0.lppm、从约0.01至约0.5ppm、从约0.01至约1.0ppm或从约0.01至约5ppm的值。在一些实施方式中，这些可抽吸物品和无烟制品的镉含量是约0.0Olppm或以下、约0.0lppm或以下、或约0.05ppm或以下、或约0.49ppm或以下或约0.5ppm或以下。镉在植物中积累的程度可以有很大变化，这取决于归因于基因型和生长环境复杂性的若干参数。例如，田间生长的烟叶中的镉浓度可以变化极大，这取决于因素如农业气候、土壤质量、栽培品种和所用的肥料类型和来源。此外，烟草植物不同部位中相对的镉分布样式可以根据物种、器官/组织和生长条件(即田间生长相对于水栽培生长)而不同。平均来说，田间生长的烟草叶(包括中脉和叶脉)中测量的镉浓度范围可以从约0.5至5ppm(百万分之一，或微克/克烟草叶干重)。然而，许多已发表的镉水平通常不限定烟草成熟阶段、烟草品种或收获的用于分析的特定叶部分(g卩，从叶柄位置去除)。在一些品种中，下部叶子会比中部和上部叶子积累更高的镉水平。在细胞内水平，镉可见于植物细胞的各种细胞成分中，包括细胞壁、细胞质、叶绿体、核和液泡。此外，烟叶中测量的镉含量可以有很大不同，这取决于烟草植物生长于其中的，土壤环境中的镉水平。镉污染的区域中生长的烟草叶和生长于非污染区域中的遗传上相同的对应物的叶相比，可以积累从约35ppm或以上的镉，其中对应的叶可以积累范围从约0.4至约Sppm的镉。镉污染区中生长的植物的叶内液泡可以积累非常高浓度的镉。用于应用适合给定目标植物物种的所公开的组合物的方法是本领域技术人员已知的。使用本领域中已知的各种方法测量植物中的重金属含量。优选的方法包括利用电感耦合等离子体质谱分光光度法(“ICP_MS”Agilent7500A ；AgilentTechnologies, PaloAlto, CA)。此处所述的突变的、非天然发生的或转基因的植物可以具有其它用途，例如，在农业中。例如，此处所述的突变的、非天然发生的或转基因的植物可用于制备动物饲料和人类食品。来自此处所述植物的种子可以通过本领域中已知的方式进行调整处理并包装在包装材料中而形成制品。包装材料如纸和布是本领域众所周知的。种子的包装可以带有描述其中种子性质的标记，例如固定到包装材料的标签或标记、印刷在包装材料上的标记或插入到包装内的标记。携带突变NtMRP等位基因的植物可用于植物育种程序来建立有用的系、品种和杂种。特别是，突变的NtMRP等位基因渗入到上述商业重要的品种中。因此，提供用于植物育种的方法，其包括如此处所述的突变植物、非天然发生的植物或转基因植物与包括不同遗传同一性的植物进行杂交。方法可以进一步包括后代植物与另一种植物杂交，和任选地重复杂交直到获得具有期望的遗传性状或遗传背景的后代。这样的育种方法的目的之一是向其它品种、育种系、杂种或栽培品种，尤其是那些具有商业利益的，引入期望的遗传性状。另一个目的是便于在单一植 物品种、系、杂种或栽培品种中叠加不同基因的遗传修饰。考虑种内和种间交配。这样的杂交所产生的后代植物也被称为育种系，是非天然发生植物的实例。在一个实施方式中，提供用于生产非天然发生的植物的方法，包括(a)突变的或转基因的植物与第二植物杂交以产生后代种子；(b)在植物生长条件下培养后代种子以产生非天然发生的植物。方法可以进一步包括:(C)非天然发生的植物的上一代与自身或另一植物杂交以产生后代种子；(d)在植物生长条件下培养步骤(C)的后代种子，以产生额外的非天然发生的植物；以及(e)重复多次步骤(C)和(d)的杂交和生长步骤，以产生非天然发生的植物的其它世代。方法在步骤(a)之前可任选地包括提供亲本植物的步骤，亲本植物包括特征性的且不同于突变的或转基因的植物的遗传同一性。在一些实施方式中，根据育种程序，杂交和生长步骤可以重复从O到2次、从O到3次、从O到4次、从O到5次、从O到6次、从O到7次、从O到8次，从O到9次或从O到10次，以便产生非天然发生的植物世代。回交是这种方法的实例，其中后代与其亲本之一或与其亲本遗传相似的另一植物杂交，以便获得具有接近亲本之一的遗传同一性的下一代中的后代植物。用于植物育种的技术，尤其是烟草植物育种，是众所周知的并可以用于此处所述的方法。本公开还提供了通过这些方法生产的非天然发生的植物。
在此处所述方法的一些实施方式中，使用标准田间程序在田间评价获自育种和筛选的系的变体NtMRP基因。包括原始未诱变亲本的对照基因型包括在内，并且按随机的完全区组设计或其它适当的田间设计将入选者(entries)排布于田间。对于烟草，使用标准的农学操作，例如在烘焙(curing)之前和期间，收割、称量和取样烟草用于化学和其它常见测试。进行数据的统计分析，以确认所选择的系与亲本系的相似性。任选进行所选植物的细胞遗传学分析来确认染色体互补性和染色体配对关系。DNA指纹、单核苷酸多态性、微卫星标记物或类似技术可用在标记物辅助的选择(MAS)育种程序中，以便如此处所述向其它烟草传递或培育NtMRP基因的突变等位基因。例如，育种人员可以采用含有突变等位基因的基因型与农学期望的基因型进行杂交而建立分离的群体。可使用此处所列出的技术之一，使用根据NtMRP基因组序列或其片段所开发的标记物筛选F2中的植物或回交世代。鉴定为具有突变等位基因的植物可以回交或自花传粉以建立待筛选的第二群体。取决于预期遗传样式或所用MAS技术，有必要在每轮回交之前对所选择的植物进行自花授粉，以帮助鉴定所需的个体植物。可以重复进行回交或其它育种过程直到恢复轮回亲本的所需表型。根据公开，在育种程序中，成功的杂交产生有生育能力的Fl植物。所选择的Fl植物可以与亲本之一杂交，并且第一回交世代植物自花传粉以产生再次筛选变体NtMRP基因表达的群体(例如，NtMRP基因的无效版本)。重复回交、自花授粉和筛选的过程，例如至少4次，直到最终筛选产生有生育能力的并且合理地相似于轮回亲本的植物。这种植物，需要的话，是自花授粉的，并且随后再次筛选后代以确认植物展现出变体NtMRP基因表达。在一些实施方式中，筛选F2代中植物群体的变体NtMRP基因表达，例如，根据标准方法，例如通过使用PCR方法采用基于此处所述NtMRP的核苷酸序列信息的引物，鉴定由于缺失NtMRP基因而没有表达NtMRP的植物。通过防止第一品种的雌性亲本植物的自花传粉(S卩，种子亲本)可以产生杂种，允许来自第二品种的雄性亲本植物的花粉给雌性亲本植物授粉，并允许在雌性植物上形成Fl杂交种子。可以通过在花发育早期摘除花朵防止雌性植物的自花授粉。或者，可以使用雄性不育的形式防止雌性亲本植物上的花粉形成。例如，通过细胞质雄性不育(CMS)或转基因雄性不育可以产生雄性不育，其中转基因抑制孢子和/或花粉形成或自交不亲和性。含有CMS的雌性亲本植物特别有用。在实施方式中，其中雌性亲本植物是CMS，从雄性可育植物收获花粉并人工施加到CMS雌性亲本植物的柱头，收获得到的Fl种子。此处所述品种和系可用于形成单交Fl杂种。在这样的实施方式中，亲本品种的植物可以生长为基本均匀的相邻种群，以便雄性亲本植物对雌性亲本植物的天然交叉授粉。通过常规方式选择性收获雌性亲本植物上形成的种子。还可以大批培养两个亲本植物品种，并收获雌性亲本上形成的Fl杂种种子和雄性亲本上形成的种子的混合，作为自花授粉的结果。或者，可以进行三元杂交，其中单交Fl杂种用作雌性亲本，并与不同的雄性亲本杂交。作为另一种选择，可以产生双杂交杂种，其中两个不同单交的Fl后代自身进行杂交。可以筛选或选择突变的、非天然发生的或转基因的植物群体中具有所需性状或表型的那些群体成员。例如，可以筛选单一转化事件的后代群体中具有所需NtMRP多肽或多核苷酸表达水平的那些植物。物理和生物化学的方法可用于鉴定表达水平。这些包括用于检测多核苷酸的Southern分析或PCR扩增； 用于检测RNA转录物的Northern印迹、SlRNA酶保护、引物延伸或RT-PCR扩增；用于检测多肽和多核苷酸的酶或核酶活性的酶法分析；以及检测多肽的蛋白凝胶电泳、Western印迹、免疫沉淀和酶联免疫分析。其它技术如原位杂交、酶染色和免疫染色也可用于检测多肽或多核苷酸的存在或表达。如此处所述的突变的、非天然发生的或转基因的植物细胞和植物包括一个或多个重组多核苷酸，如一个或多个分离的NtMRP多核苷酸、一个或多个多核苷酸构建体、一个或多个双链RNA、一个或多个缀合物或一个或多个载体/表达载体。可以使用包括例如RT-PCR、Northern印迹、RNA酶保护、引物延伸、Western印迹、蛋白凝胶电泳、免疫沉淀、酶联免疫分析、芯片分析和质谱法的方法评价NtMRP表达。应当注意，如果多肽在组织优选的或广泛表达启动子的控制下表达，可以在整个植物或在选定的组织中评价表达。同样，如果多肽在特定时间例如在特定的发育时间或诱导时表达，可以在期望的时间段内选择性地评价表达。没有限制，出于其它目的，此处所述的植物在调节(例如，减少或抑制)NtMRP表达或活性之前或之后可经过修饰。一个或多个如下遗传修饰可以出现在突变的、非天然发生的或转基因的植物中。在一个实施方式中，修饰一个或多个参与重金属吸收或重金属转运的其它基因，产生比未经修饰的对照植物或其部分具有更低重金属含量的植物或植物部分(如叶)。非限制性实例包括助阳离子扩散蛋白(CDF)家族、Zrt-, Irt样蛋白(ZIP)家族、阳离子交换蛋白(CAX)家族、铜转运蛋白(COPT)家族、重金属P型ATP酶家族(HMA，如W02009074325中所述)、天然抗性相关的巨噬细胞蛋白(NRAMP)同源物家族以及参与重金属如镉转运的ATP结合盒(ABC)转运蛋白家族的其它成员中的基因。如此处所用，术语重金属包括过渡金属。在另一个实施方式中，参与含氮代谢中间体转化的一个或多个基因被修饰，产生这样的植物或植物部分(如叶)，当加热时，其产生和对照植物或其部分相比更低水平的至少一种烟草特异性亚硝胺(例如4-(甲基亚硝胺)-1_ (3-吡啶基)-1-丁酮、N-亚硝基去甲基烟碱、N-亚硝基新烟草碱和N-亚硝基假木贼碱)。可以被修饰的基因的非限制性实例包括编码烟碱去甲基化酶 的基因，如CYP82E4、CYP82E5和CYP82E10，其参与烟碱向去甲基烟碱的转化，并在 W02006091194、W02008070274、W02009064771 和 PCT/US2011/021088中描述。其它修饰的实例包括除草剂耐受性，例如，草甘膦是许多广谱除草剂的活性成分。已经通过转移aroA基因(来自鼠伤寒沙门氏菌(Salmonella typhimurium)和大肠杆菌(E.coli)的草甘膦EPSP合成酶)开发了草甘膦抗性转基因植物。已经通过转化来自拟南芥的突变ALS (乙酰乳酸合成酶)基因制备了磺脲抗性植物。来自突变绿穗觅(Amaranthushybridus)的光系统II的OB蛋白已经转移至植物中产生阿特拉津抗性转基因植物；以及通过并入来自细菌肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)的bxn基因产生溴苯腈抗性转基因植物。另一示例性的修饰产生昆虫抗性植物。苏云金芽孢杆菌(Bacillusthuringiensis) (Bt)毒素可以提供延迟Bt抗性害虫出现的有效途径，如最近在西兰花中所示，其中渐增的(pyramided) cryIAc和crylC Bt基因控制小菜蛾对单一蛋白的抗性,并显著延迟抗性昆虫的进化。另一个示例性修饰产生抵抗病原体(如病毒、细菌、真菌)引起的疾病的植物。工程改造了表达Xa21基因的植物(细菌性叶斑病抗性)以及表达Bt融合基因和几丁质酶基因的植物(三化螟抗性和鞘耐受)。另一个示例性的修饰产生改变的生殖能力，如雄性不育。另一个示例性的修饰产生非生物胁迫(例如，干旱、温度、盐度)耐受的植物，通过转染来自拟南芥的酰基甘油磷酸酶产生耐受植物；编码参与甘露糖醇和山梨糖醇合成的甘露糖醇脱氢酶和山梨醇脱氢酶的基因改善抗旱性。另一个示例性的修饰产生这样的植物，其产生具有人体使用中良好的免疫原性特性的蛋白质。例如，能够产生在其N-聚糖中基本上缺失α-1，3-连接的岩藻糖残基、β-1，2-链接的木糖残基、或两者的蛋白质的植物可以是有用的。其它示例性修饰可以产生具有改善的贮藏蛋白和油的植物、具有增强的光合效率的植物、具有延长的货架期的植物、具有增强的碳水化合物含量的植物以及抗真菌的植物；编码参与生物碱生物合成的酶的植物。也可考虑这样的转基因植物，其中S-腺苷-L-甲硫氨酸(SAM)和/或胱硫醚Y -合酶(CGS)的表达已被调节。没有限制，此处所述的植物可进行进一步修饰。这样的进一步的修饰的实例包括但不限于:(a)可以耐受除草剂的植物。例如，草甘膦是许多广谱除草剂的活性成分。已经通过转移aroA基因(来自鼠伤寒沙门氏菌和大肠杆菌的草甘膦EPSP合成酶)开发了草甘膦抗性转基因植物；已经通过转化来自拟南芥的突变ALS (乙酰乳酸合成酶)基因制备了磺脲抗性植物；来自突变绿穗苋的光系统II的OB蛋白已经转移至植物中产生阿特拉津抗性转基因植物；以及通过并入来自细菌肺炎克雷伯菌的bxn基因产生溴苯腈抗性转基因植物；(b)植物是昆虫抗性的。苏云金芽孢杆菌(Bt)毒素可以提供延迟Bt抗性害虫出现的有效途径，如最近在西兰花中所示，其中渐增的cryIAc和crylC Bt基因控制小菜蛾对单一蛋白的抗性，并显著延迟抗性昆虫的进化；(c)植物是病毒抗性的。通过引入病毒包衣蛋白产生烟草花叶病毒植物。其它病毒抗性转基因植物包括马铃薯病毒抗性马铃薯植物、RSV抗性水稻和YMV抗性黑豆和绿豆；(d)植物是细菌抗性的。工程改造了表达Xa21基因的植物(细菌性叶斑病抗性)以及表达Bt融合基因和几丁质酶基因的植物(三化螟抗性和鞘耐受)；(e)胁迫耐受性转基因植物:通过转染来自拟南芥的酰基甘油磷酸酶产生冷耐受转基因植物；编码参与甘露糖醇和山梨糖醇合成的甘露糖醇脱氢酶和山梨醇脱氢酶的基因改善抗旱性；(f)产生具有人体使用中良好的免疫原性特性的蛋白质的植物。例如，能够产生在其N-聚糖中基本上缺失α -1, 3-连接的岩操糖残基、β -1, 2-链接的木糖残基或两者的蛋白质的植物可以是有用的；以及(g)转基因植物的其它实例是具有改善的贮藏蛋白和油的植物、具有增强的光合效率的植物、具有延长的货架期的植物、具有增强的碳水化合物含量的植物以及抗真菌的植物；编码参与生物碱生物合成的酶的植物；细菌有机汞解毒途径(汞离子还原酶，merA)和有机汞裂解酶merB的基因，通过在拟南芥中杂交而进行组合，表达两个基因的植物和野生型植 物相比能够在高50倍的甲基汞浓度上生长。—个或更多这样的性状可渗入到来自另一个烟草栽培品种的突变的、非天然发生的或转基因的烟草植物，或可以直接转化至其中。可以通过本领域已知的任何植物育种方法实现将性状渗入到突变的、非天然发生的或转基因的烟草植物中，例如谱系育种、回交、双单倍体育种等(见，ffernsman, E.A,和 Rufty, R.C.1987.第 17 章 Tobacc0.669-698页，在 Cultivar Development.Crop Species, ff.H.Fehr(编),MacMillan PublishingCo, Inc.，New York, N.Y761pp.中)。如上所述的基于分子生物学的技术，尤其是RFLP和微卫星标记物，可用于这样的回交中，来鉴定与轮回亲本具有最高遗传同一性程度的后代。这允许加快生产与轮回亲本具有至少90%、优选至少95%、更优选至少99%遗传同一性的品种，但更优选地，与轮回亲本遗传上相同并还包括来自供体亲本的渗入性状。这种遗传同一性的确定可以基于本领域已知的分子标记物。
最后的回交世代可进行自交以便提供对于所转移的多核苷酸而言纯的育种后代。得到的植物除了转移的性状以外(例如，一个或多个单基因性状)一般还具有基本上所有突变的、非天然发生的或转基因的植物的形态和生理特性。精确的回交操作规程取决于待改变的性质，以确定合适的测试规程。虽然当被转移的性状是显性等位基因时回交方法被简化了，也可以转移隐性等位基因。在这种情况下，可能有必要引入对后代的测试以确定是否已成功转移所需性状。各种实施方式提供突变植物、非天然发生的植物或转基因植物以及生物质，其中NtMRP多核苷酸的表达水平被降低，从而在其中积累了更低量的镉。这样的植物的部分，特别是烟草植物，以及更特别的是烟草植物的叶片和中脉，可以并入或用于生产各种消费品，包括但不限于烟雾形成材料、烟雾形成装置、吸烟物品、可抽吸物品、无烟制品和烟草制品。烟雾形成材料的实例包括但不限于烟草组合物、烟草、烟草提取物、烟丝、切丝填料、烤烟、膨胀烟草、均质烟草、再造烟草和烟斗烟草。吸烟物品和可抽吸物品是烟雾形成装置的类型。吸烟物品或可抽吸物品的实例包括但不限于香烟、小雪茄和雪茄。无烟制品的实例包括咀嚼烟草和鼻烟。在某些烟雾形成装置而不是燃烧装置中，烟草组合物或其它烟雾形成材料被一个或多个电加热组件进行加热而产生烟雾。在加热烟雾形成装置的另一种类型中，通过将热从可燃性燃料组件或热源传递至物理上分开的可位于热源之内、周围或下游的烟雾形成材料来产生烟雾。无烟烟草制品和各种含烟草的烟雾形成材料可包含任何形式的烟草，包括干燥的颗粒、片、小粒、粉或匀浆，沉积在、混合于、包围有或组合有任何形式比如片、膜、卡(tab)、泡沫、或珠的其它成分。如此处所用，术语“烟”用来描述一种类型的烟雾，其由吸烟物品如香烟或通过烟雾形成材料的燃烧而产生。在一个实施方式中，还提供了来自此处所述突变的、转基因的和非天然发生的烟草植物的干燥(cured)材料。干燥新鲜烟叶的过程是本领域技术人员已知的，并包括但不限于空气干燥、火干燥、烤干和太阳干燥。干燥新鲜烟叶的过程取决于收获的烟草的类型。例如，弗吉尼亚烤烟(轻型(bright))烟草通常是烤干的，白肋烟和某些深色植物通常空气干燥，以及烟斗烟草、咀嚼烟草和鼻烟通常是火干燥的。在另一个实施方 式中，描述了包括含烟草的烟雾形成材料的烟草制品，烟雾形成材料包括来自此处所述的突变烟草植物、转基因烟草植物或者非天然发生的烟草植物的叶子，优选干燥的叶。此处所述的烟草制品可以是混合的烟草制品，其中还可以包括未修饰的烟草。突变的、非天然发生的或转基因的植物可以具有其它用途，例如，在农业中。例如，此处所述的突变的、非天然发生的或转基因的植物可用于制备动物饲料和人类食品。公开还提供了用于生产种子的方法，所述方法包括培养此处描述的突变植物、非天然发生的植物或转基因植物，并从栽培的植物收集种子。来自此处所述植物的种子可以通过本领域中已知的方式进行调整处理并包装在包装材料中而形成制品。包装材料如纸和布是本领域众所周知的。种子的包装可以带有描述其中种子性质的标记，例如固定到包装材料的标签或标记、印刷在包装材料上的标记或插入到包装内的标记。用于基因分型植物以鉴定、筛选或育种的组合物、方法和试剂盒包括在本公开内，并可以包括检测多核苷酸样本中是否存在NtMRP多核苷酸的手段。因此，描述了组合物，其包括一个或多个特异性扩增至少NtMRP多核苷酸一部分的引物，和任选用于进行扩增或检测的一个或多个探针和任选一种或多种试剂。因此，公开了基因特异性寡核苷酸引物或探针，其包括约10个或更多对应着NtMRP多核苷酸的连续多核苷酸。所述引物或探针可包括或由约15、20、25、30、40、45或50或更多连续的多核苷酸组成，其杂交(例如，特异性杂交)至NtMRP多核苷酸。在一些实施方式中，引物或探针可包括或由约10至50个连续核苷酸、约10至40个连续核苷酸、约10至30个连续核苷酸或约15至30个连续核苷酸组成，其可用于基因鉴定的序列依赖性的方法(例如，Southern杂交)或分离(例如细菌克隆或噬菌体噬菌斑的原位杂交)或基因检测(例如，作为多核苷酸扩增或检测中的一个或多个扩增引物)。可设计一个或多个特异性引物或探针并用于扩增或检测NtMRP多核苷酸的部分或全部。通过具体的实例，两个引物可用于聚合酶链式反应规程中来扩增编码NtMRP多核苷酸的多核苷酸片段，如DNA或RNA。也可以使用源自NtMRP多核 苷酸序列的一个引物和杂交至NtMRP多核苷酸序列(如NtMRP启动子序列、mRNA前体3’端或源自载体的序列)的序列上游或下游的第二引物进行聚合酶链式反应。可用于多核苷酸体外扩增的热和等温技术的实例是本领域中众所周知的。样本可以是或可以源自此处所述的植物、植物细胞或植物材料，或者从植物、植物细胞或植物材料所制得的或来源的制品。因此，在另一方面中，还提供了检测样本中NtMRP多核苷酸的方法，包括步骤:(a)提供包括或疑似包括多核苷酸的样本；(b)所述样本接触多个引物之一或一个或多个探针以便特异性检测NtMRP多核苷酸的至少部分；以及(c)检测扩增产物的存在，其中扩增产物的存在指示着样本中存在NtMRP多核苷酸。在另一方面中，还提供了多个引物或探针之一用于特异性检测NtMRP多核苷酸的至少部分的用途。还提供了用于检测NtMRP多核苷酸的至少部分的试剂盒，其包括用于特异性检测NtMRP多核苷酸的至少部分的多个引物或探针之一。试剂盒可以包括用于多核苷酸扩增(如聚合酶链反应(PCR))的试剂，或用于多核苷酸探针杂交检测技术(如Southern印迹、Northern印迹、原位杂交或微阵列)的试剂。试剂盒可以包括用于抗体结合检测技术(如Western印迹、ELISA、SELDI质谱法或试纸)的试剂。试剂盒可以包括用于DNA测序的试剂。试剂盒可以包括用于确定重金属如镉含量的试剂和/或说明书。在一些实施方式中，试剂盒可以包括一个或多个所述方法的说明。所述试剂盒可用于遗传同一性确定、系统发育研究、基因分型、单倍体分型、谱系分析或植物育种，特别是共显性评分。本公开还提供了包括NtMRP多核苷酸的植物、植物细胞或植物材料的基因分型方法。基因分型提供了区分染色体对的同源物的手段，并可以用来区分植物群体中的分离子(segregant)。分子标记方法可用于系统发育研究、确定作物品种之间的遗传关系、鉴定杂交或体细胞杂种、定位影响单基因性状的染色体片段、基于图谱的克隆和定量遗传研究。基因分型的具体方法可以采用任意数目的分子标记物分析技术，包括扩增片段长度多态性(AFLP)0 AFLP是由核苷酸序列变异引起的扩增片段之间等位基因差异的产物。因此，描述了使用这样的技术作为AFLP分析来跟踪NtMRP分离以及遗传连锁至这些基因或多核苷酸的染色体序列的方式。将于如下实施例中进一步描述本发明，其并非意图限制权利要求中描述的本发明的范围。实施例
提供如下实施例作为说明，而不是作为一种限制。除非另有说明，可以采用分子生物学、植物生物学、生物信息学和植物育种的传统技术和方法。实施例1:NtMRP3DNA基因组序列的鉴定烟草BAC文库。细菌人工染色体(BAC)文库按如下制备:从温室生长的植物红花烟草品种Hicks阔叶的叶子中分离核。按照标准规程从核中分离高分子量DNA，并用BamHI和HindIII进行部分消化，并克隆至BAC载体pINDIG05的BamHI或HindIII位点。获得超过320，000个克隆，I亿3千5百万(135mega)个碱基对的平均插入长度覆盖约9.7倍的烟
草基因组。烟草基因组序列组装。使用Sanger法对大量随机挑选的BAC克隆进行测序，产生超过1，780，000条平均长度550个碱基对的原始序列。通过使用用于转化的Mcr+大肠杆菌菌株以及只分离低甲基化的DNA来利用甲基过滤。使用CELERA基因组组装器组装所有序列产生超过800，000个序列，序列包括超过200，000个重叠群和596，970个单序列。重叠群大小在120至15，300个碱基对之间，平均长度为1，100个碱基对。通过对含有包括NtMRP3DNA的部分基因组的BAC进行测序来鉴定NtMRP3DNA的基因组序列。序列如图6所示。实施例2:用NtMRP3RNAi表达载体转化烟草品种烟草种子灭菌并在 含有补充了 5ml/L植物防腐剂混合物(PPM)的MS基础介质的培养皿中萌发。萌发后约7至10天，选择幼苗并用各种NtMRP3RNAi表达载体进行转化。根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens) LBA4404的单菌落接种到含有SOmgT1卡那霉素(卡那霉素单硫酸盐)的液体LB介质中，并在28 °C下往复摇动(150圈分钟―1)孵育48小时。通过离心(6000Xg，10min)收集培养的细胞，并悬浮至0.4_0.70D6(I(I的终密度，其中20ml液体MS介质中含有ZOg—1蔗糖。7_10天的幼苗外植体浸入细菌混悬液，保持5分钟，涂于无菌滤纸上。50个外植体放置于100毫米X 20毫米培养皿中的REG琼脂介质(补充有
0.1mgr11-萘乙酸(NAA)和Imgr1苄氨基嘌呤(BAP)的MS基础介质)40ml等份上。外植体与农杆菌在25°C下共培养。共培养3天后，洗涤外植体并转移到RCPK介质上(具有lOOmg—1卡那霉素、SOOmgr1羧节青霉素和5mlPPM的REG介质)，以筛选转化体。每2周对外植体进行次培养。选择性的条件下生长8-12周之后，将存活的植物(表示转化体具有整合入其基因组的NtMRP3RNAi表达构建体)转移到生根介质(补充有IOOmgr1卡那霉素的MS基础介质)。生根的植物转移到盆中促进进一步的生长。实施例3:烟草植物中NtMRP3多核苷酸的表达为确定NtMRP3多核苷酸的表达，从植物各个部分分离总细胞RNA。使用TRI 试剂(Sigma-Aldrich，St.Louis, MO)分离总RNA。为去除DNA杂质，用无RNA酶的DNA酶(TURBO DNA-free, Ambion, Austin TX)处理纯化的 RNA。为合成第一条 cDNA 链，用 HighCapacity cDNA Archive 试剂盒(Applied Biosystems, Foster City, CA)逆转录约 10 μ g的总RNA。为了测量样本中NtMRP3转录物的水平，根据TaqMan MGB基于探针的化学进行定量两步RT-PCR。RT混合物含有4μ MdNTP混合物、IX随机引物、IXRT缓冲液、lOgcDNA、50UMultiscribe逆转录酶(Applied Biosystems)、2U Superase-1n RNA酶抑制剂(Ambion)和无核酸酶的水。PCR 混合物含有 IXTaqman Universal PCR Master Mix (AppliedBiosystems, Foster City, CA)、400nM 正向引物、400nM 反向引物、250nM Taqman MGB 探针、2ng cDNA 和无核酸酶的水。使用 ABI7500Real_Time 系统(Applied Biosystems, FosterCity, CA)在如下扩增条件下进行 RT-PCR:50° C2min ；95° ClOmin ;40 个 95。C15sec 的循环和60。Clmin。实施例4:烟草植物中NtMRP3多核苷酸表达的沉默使用烟草基因组计划(TGI)注释发现编码假定的NtMRP3转录物的第一部分序列。从这种特定序列中，产生引物以使用RNAi方法来沉默烟草中的NtMRP3多核苷酸表达。通过RT-PCR从cDNA扩增相应的NtMRP3RNAi序列，然后，完全按照生产商(Invitrogen)所述，通过入门载体插入到Gateway载体pB7GWIWG2 (II)。这种载体含有用于在植物所有组织中组成型表达转基因的启动子(花椰菜花叶病毒CaMV35S启动子)和用于在琼脂板上用Basta(30mg/ml)进行除草剂筛选的bar基因。然后使用经典叶盘程序通过根瘤农杆菌将构建体插入白肋烟草KY14的基因组中。从愈伤组织，在Basta上再生和选择个体系。然后通过RT-PCR监测RNAi沉默系，并生长用于种子生产。收集Tl种子，在用来筛选的含有Basta的琼脂板上进行重新生长，在田间栽培之前在浮盘上进行抗性植物生长。称取约500mg植物，并在IOml浓硝酸中通过微波加速的反应系统5消解系统(CEM corporation, Mathews, NC)进行消解。使用电感稱合等离子体质谱光谱仪("ICP-MS, "Agilent7500A ;Agilent Technologies, Palo Alto, CA)分析重金属浓度。作为非转基因烟草对照，在可比条件下制备由上光-认证(polish-certified)的弗吉尼亚烟叶CTA-VTL-2组成的样本。 实施例5:NtMRP4DNA基因组序列的鉴定通过对含有包括NtMRP4DNA的部分基因组的BAC进行测序来鉴定NtMRP4DNA的基因组序列。序列如图1所示。实施例6:用NtMRP4RNAi表达载体转化烟草品种烟草种子灭菌并在含有补充了 5ml/L植物防腐剂混合物(PPM)的MS基础介质的培养皿中萌发。萌发后约7至10天，选择幼苗并用各种NtMRP4RNAi表达载体进行转化。根癌农杆菌LBA4404的单菌落接种到含有SOmgr1卡那霉素(卡那霉素单硫酸盐)的液体LB介质中，并在28°C下往复摇动(150圈分钟I孵育48小时。通过离心(6000Xg，10min)收集培养的细胞，并悬浮至0.4-0.70Deoo的终密度，其中20ml液体MS介质中含有ZOg—1蔗糖。
7-10天的幼苗外植体浸入细菌混悬液，保持5分钟，涂于无菌滤纸上。50个外植体放置于100毫米X 20毫米培养皿中的REG琼脂介质(补充有0.1mgr11-萘乙酸(NAA)和Imgr1苄氨基嘌呤(BAP)的MS基础介质)40ml等份上。外植体与农杆菌在25°C下共培养。共培养3天后，洗涤外植体并转移到RCPK介质上(具有lOOmg—1卡那霉素、SOOmgr1羧苄青霉素和5mlPPM的REG介质)，以筛选转化体。每2周对外植体进行次培养。选择性的条件下生长
8-12周之后，将存活的植物(表示转化体具有整合入其基因组的NtMRP4RNAi表达构建体)转移到生根介质(补充有IOOmgr1卡那霉素的MS基础介质)。生根的植物转移到盆中促进进一步的生长。实施例7:烟草植物中NtMRP4多核苷酸的表达为确定NtMRP4多核苷酸的表达，从植物各个部分分离总细胞RNA。使用TR1 试剂(Sigma-Aldrich, St.Louis, MO)分 离总 RNA。为去除 DNA 杂质，用无 RNA 酶的 DNA 酶(TURBODNA-free, Ambion, Austin TX)处理纯化的 RNA。为合成第一条 cDNA 链,用 High CapacitycDNA Archive 试剂盒(Applied Biosystems, Foster City, CA)逆转录约 10 μ g 的总 RNA。为了测量样本中NtMRP4转录物的水平，根据TaqMan MGB基于探针的化学进行定量两步RT-PCR。RT混合物含有4μΜ dNTP混合物、I X随机引物、I X RT缓冲液、IOg cDNA、50UMultiscribe 逆转录酶(Applied Biosystems)、2U Superase-1n RNA 酶抑制剂(Ambion)和无核酸酶的水。PCR 混合物含有 IXTaqman Universal PCR Master Mix (AppliedBiosystems, Foster City, CA)、400nM 正向引物、400nM 反向引物、250nM Taqman MGB 探针、2ng cDNA 和无核酸酶的水。使用 ABI7500Real_Time 系统(Applied Biosystems, FosterCity, CA)在如下扩增条件下进行 RT-PCR:50° C2min ；95° ClOmin ;40 个 95。C 15sec 的循环和60° C Imin。NtMRP4多核苷酸表达于烟草组织中，正如使用来自花瓣、雄蕊、雌蕊、萼片、蒴果、茎、叶和根的cDNA通过RT-PCR所确定的。当烟草植物栽培于水培溶液中时，NtMRP4多核苷酸的表达被红花烟草苗的根和叶中的镉轻微上调(TN90，见图2)。然而，尽管在黄花烟草叶中也发现NtMRP4多核苷酸被诱导，和红花烟草相比，黄花烟草根中观察到相反的数据(下调)，从而表明NtMRP4多核苷酸可能在黄花烟草根中镉的积累以及高镉耐受中发挥作用。实施例8:烟草植物中NtMRP4多核苷酸表达的沉默使用烟草基因组计划(TGI)注释发现编码假定的NtMRP4转录物的第一部分序列(CH0_SL022xb24fl.abl)(未显示)。从这种特定序列中，产生引物以使用RNAi方法来沉默烟草中的NtMRP4多核苷酸表达(图1)。通过RT-PCR从cDNA扩增相应的MRP4RNAi序列，然后，完全按照生产商(Invitrogen)所述,通过入门载体插入到Gateway载体pB7GWIWG2 (II)。这种载体含有用于在植物所有组织中组成型表达转基因的启动子(花椰菜花叶病毒CaMV 35S启动子)和用于在琼脂板上用Basta(30mg/ml)进行除草剂筛选的bar基因。然后使用经典叶盘程序通过根瘤农杆菌将 构建体插入白肋烟草KY14的基因组中。从愈伤组织，在Basta上再生和选择个体系。然后通过RT-PCR监测RNAi沉默系，并生长用于种子生产。图3显示NtMRP4沉默在转基因系中是有效的，包括系I和系2。收集Tl种子，在用来筛选的含有Basta的琼脂板上进行重新生长，在田间栽培之前在浮盘上进行抗性植物生长。称取约500mg植物，并在IOml浓硝酸中通过微波加速的反应系统5消解系统(CEM corporation, Mathews, NC)进行消解。使用电感稱合等离子体质谱光谱仪("ICP-MS, "Agilent7500A ;Agilent Technologies, Palo Alto, CA)分析重金属浓度。作为非转基因烟草对照，在可比条件下制备由上光-认证(polish-certified)的弗吉尼亚烟叶CTA-VTL-2组成的样本。图4显示连续两年在两次连续田间实验中，在两个所测试的NtMRP4 RNAi系(系I和系2)中接近20%的叶镉减少。在每一种情况下，实验单元由四个收集植物的四次独立重复组成(在第二年田间实验中，wt，系I和2以及载体对照植物)，植物随机分入区组中。此夕卜，对照样本被添加到区组中以便控制空间趋势。NtMRP4 RNAi系的分析证明了在减少镉平均水平中强并且统计学上显著的作用。实施例9:源自烟草植物的植物的高度和重量分析，在植物中NtMRP4多核苷酸的表达被沉默。沉默的NtMRP4系的高度和重量与对照植物相比略有影响。然而，在NtMRP4RNAi植物和野生型或载体对照植物之间的干燥收集的叶中没有发现显著差异，因此表明NtMRP4转录物的降解干生物质没有统计学上相关的影响。另一田间实验证实了这些数据，表明在相同烟草背景(KY14)中过表达AtMRP4 (和NtMRP4多核苷酸同源)导致叶中10-30%更多的镉积累(根据转基因系)。很明显，降解编码NtMRP4蛋白的mRNA显著降低烟草叶中的镉水平。实施例10:鉴定EMS诱导的NtMRP4中的突变体制备暴露于甲磺酸乙酯(EMS)的红花烟草植物的DNA文库，并通过测序个体植物NtMRP4基因相关部分筛选突变体中NtMRP4多核苷酸的外显子I和外显子2。对于外显子INtMRP4 外显子 IFW (5，-CATCTCCTTACGAAGGATACTACC-3’ )和NtMRP4 外显子 IREV (5，-GCTGCAAGCTCTCCTTTTCTAA-3’ )用于测序，以及对于外显子2，NtMRP4 外显子 2FW (5，-GTGCAATCTGGCAAATATAGTGAG-3’ )和NtMRP4 外显子 2REV (5，-AAAATGACATAGGAGCATGCAGTA-3’ )用于测序。NtMRP4多核苷酸外显子I和外显子2中发现的突变体概述于表I中所示。指明了原始密码子(密码子ori)和突变密码子(密码子mut)以及原始氨基酸(ASori)和氨基酸取代(AS mut)或终止密码子。实施例11:用于选择锌指核酸酶靶位点的搜索规程本实施例说明如何搜索NtMRP4基因来筛选相较于给定基因组数据库，给定基因序列内独特靶位点的发生，以便开发用于修饰基因表达的工具。通过公开的方法所鉴定的靶位点，包括下面公开的那些，序列基序以及任何位点或基序在修饰植物(如烟草)中对应的基因序列中的用途也包括在本公开内。搜索算法开发了计算机程序，其使用后缀阵列在DNA数据库中(如实施例1的烟草基因组序列组装)允许筛选输入查询(目标)核苷酸序列中两个固定长度子字符串DNA基序的发生，其中两个固定长度子字符串DNA基序被给定间隔尺寸所隔开。后缀阵列的建立和搜索使用开放资源 Iibdivsufsort 文库 2.0.0 (http://code.google, com/p/libdivsufsort/),其将任何输入的字符串直接转换成Burrows-Wheeler转化字符串。程序扫描整个输入(目标)核苷酸序列并返回在选定DNA数据库中发生次数少于所选次数的所有子字符串组合。筛选靶位点中查询序列的锌指核酸酶介导的诱变。锌指DNA结合结构域识别3碱基对的核苷酸序列。锌指核酸酶包括含有一个、两个、三个、四个、五个、六个或更多个锌指DNA结合结构的锌指蛋白，以及IIS型限制性酶的非特异性核酸酶。锌指核酸酶可用于向靶序列中引入双链断裂。为了引入双链断裂，需要一对锌指核酸酶，其中一个结合靶序列的正(上)链，另一个结合同一靶序列的相隔0、1、2、
3、4、5、6或更多个核苷酸的负(下)链。通过对两个固定长度子字符串DNA基序的每一个使用3的复数，程序可用来鉴定相隔给定间隔长度的两个锌指蛋白靶位点。程序输入:1、靶查询DNA序列
2、待搜索的DNA数据库3、第一子字符串DNA基序的固定大小4、间隔序列的固定大小5、第二子字符串DNA基序的固定大小6、在程序输入2的所选DNA数据库中，相隔程序输入4的程序输入3和5的组合发生次数的阈值程序输出:1、核苷酸序列列表，其中对于各序列，序列在DNA数据库中发生的次数以及程序输入6阈值的最大值。

实施例12:烟草中NtMRP3和NtMRP4转录物的表达谱烟草ExonArray的开发和分析。使用实施例1中所述的获得的BAC克隆,通过组合和比较烟草EST数据和获自BAC测序的甲基过滤序列，鉴定了 272，342个外显子。对于这些外显子的每个，设计4个25-mer寡核苷酸,并用于构建烟草ExonArray。使用标准规程通过 Affymetrix (Santa Clara,美国)制备 ExonArray0烟草中NtMRP3和NtMRP4的表达。RNA分离自生长于Cd+ (Cd污染)和Cd- (Cd缺失)土壤中的烟草种类，并使用标准杂交规程和分析工具进行分析。进行表达谱来鉴定Cd积累相关的基因集合，并确定土壤Cd对NtMRP3和NtMRP4转录物变化的影响。所用NtMRP3和NtMRP4探针位于第一和最后的外显子以及3’ UTR区中。表2所示结果表明，生长于Cd污染土壤中的红花烟草植物的叶比生长于相同土壤中的黄花烟草植物积累更多的Cd。红花烟草植物的根比黄花烟草植物的根积累较少的Cd。有趣的是，NtMRP3和NtMRP4都不受Cd的调节，但其表达在两种烟草物种中是不同的，这表明两个基因有差异地驱动烟草增加物(accession)中的Cd吸收、转位和积累(数据以log2显示，对应着三个生物重复的平均值)。作为对照，显示了三个看家基因(UBP12、外显子I和2)、α-微管蛋白和核糖体蛋白S16。此处引用或描述的任何出版物提供本申请申请日之前公开的有关信息。此处的陈述不能被解释为承认本发明者无权早于这种公开。在上面的说明书中提到的所有出版物在此引入作为参考。本公开的各种修饰和变化，在不脱离本发明的范围和精神的情况下，对于本领域技术人员来说是显而易见的。虽然本发明已结合具体的优选实施方式进行了描述，但应当理解，所要求的本发明不应该被不适当地限制于这种具体的实施方式。实际上，用于实施本发明的所述形式的对于细胞、分子和植物生物学或相关领域的技术人员是显而易见的各种修饰意图包括在如下权利要求的范围内。表I
权利要求
1.一种突变的、非天然发生的或转基因的植物或植物细胞，包括 (a)选自如下的多核苷酸: (i)包括、由或基本上由与SEQID NO:1、2、27、28或29或51具有至少71%序列同一性的序列组成的多核苷酸；或者 (ii)包括、由或基本上由与SEQID NO:3_23或30-50或53中任一个具有至少65%序列同一'I"生的序列组成的多核苷酸；或 (iii)编码NtMRP多肽的多核苷酸，NtMRP多肽包括、由或基本上由与SEQIDNO:24-26或52中任一个具有至少65%序列同一性的序列组成，且其中所述多肽具有重金属转运蛋白活性；或 (b)长度上至少15个连续核苷酸的多核苷酸构建体，其与SEQID NO:1-23或27-51或53任一个的区域具有至少65%同一性；或 (c )双链RNA，其包括至少两条彼此至少部分互补的序列，且其中正义链包括第一序列，以及反义链包括第二序列，并且其中序列中的至少一个包括NtMRPRNA的至少10个连续核苷酸；或 Cd)表达载体,其包括如(i)、(ii)或(iii)中所述的多核苷酸或如(b)中所述的多核苷酸构建体。
2.一种突变的、非天然发生的或转基因的植物，其中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性减少了，并且所述植物的叶子具有比对照植物减少至少5%的镉含量，在对照植物中NtMRP的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。
3.一种包括生物质、 种子或叶子的植物材料，所述生物质、种子或叶子包括来自权利要求I或权利要求2所述植物的细胞或组织。
4.一种烟草制品，其包括权利要求1或权利要求2所述植物的部分或根据权利要求3所述的植物材料。
5.一种用于在植物的至少一部分中减少镉水平的方法，其包括，和对照植物相比，减少NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性的步骤，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。
6.一种突变的、非天然发生的或转基因的植物，其是通过根据权利要求5所述的方法获得的或可获得的，其中和对照植物相比，在植物的至少部分中具有至少约5%镉含量的减少，在对照植物中NtMRP多核苷酸的表达和由此编码的蛋白的活性、或由此编码的蛋白的活性没有减少。
7.—种分离的NtMRP多肽,其由选自如下的多核苷酸表达: (i)包括、由或基本上由与SEQID NO:1、2、27、28或29或51具有至少71%序列同一性的序列组成的多核苷酸；或者 (ii)包括、由或基本上由与SEQID NO:3_23或30-50或53中任一个具有至少65%序列同一'I"生的序列组成的多核苷酸；或 或者一种分离的NtMRP多肽，其包括、由或基本上由SEQ ID NO:24-26或52中任一个的所示序列组成，其中所述多肽具有重金属转运蛋白活性。
8.一种抗体，其特异性结合根据权利要求7所述的分离的多肽。
9.一种检测样本中NtMRP多核苷酸的方法，包括步骤: (a)提供含有多核苷酸的样本； (b)所述样本接触多个引物之一或者一个或多个探针以便特异性检测NtMRP多核苷酸的至少部分；以及 (c)检测扩增产物的存在，其中扩增产物的存在指示着样本中存在NtMRP多核苷酸。
10.一种分离的多核苷酸，其选自如下: 包括、由或基本上由与SEQ ID NO:1、2、27、28或29或51具有至少71%序列同一性的序列组成的分离的多核苷酸； 包括、由或基本上由与SEQ ID NO:3-23或30-50或53中任一个具有至少65%序列同一性的序列组成的分离的多核苷酸； 编码NtMRP多肽的多核苷酸，NtMRP多肽包括、由或基本上由与SEQ ID NO:24-26或52中任一个具有至少65%序列同一性的序列组成，且其中所述多肽具有重金属转运蛋白活性。
11.一种长度至少15个连续核苷酸的多核苷酸构建体，其与SEQ ID NO:1-23或27-51或53任一个的区域具有至少65%同一性。
12.—种双链RNA，其包括至少两条 彼此至少部分互补的序列，且其中正义链包括第一序列，以及反义链包括第二序列，并且其中序列中的至少一个包括NtMRP RNA的至少10个连续核苷酸。
13.根据权利要求12所述的双链RNA，其包括 与NtMRP3或NtMRP4的至少10个核苷酸具有至少65%序列同一性的第一序列； 第二序列；以及 具有第一序列的反向互补序列的第三序列，其和第一序列处于相同方向， 其中第二序列位于第一序列和第三序列之间，以及第二序列有效地连接至第一序列和第三序列。
14.根据权利要求12或权利要求13所述的双链RNA，其中第一序列与选自SEQID NO:3至23和30至50和53的序列具有至少65%序列同一性，和/或其中第三序列与SEQ IDNO:3至23和30至50和53对应序列的反向互补具有至少65%序列同一性。
15.—种表达载体,其包括根据权利要求10所述的分离的多核苷酸或根据权利要求11所述的多核苷酸构建体。
全文摘要
此处描述了突变的、非天然发生的或转基因的植物或植物细胞，植物或植物细胞包括(a)选自如下的多核苷酸(i)包括、由或基本上由具有与SEQ ID NO1、2、27、28或29或51至少71%序列同一性的序列组成的多核苷酸；或(ii)包括、由或基本上由具有与SEQ ID NO3-23或30-50中任一个至少65%序列同一性的序列组成的多核苷酸；或(iii)编码NtMRP多肽的多核苷酸，NtMRP多肽包括、由或基本上由具有与SEQ ID NO24-26或52中任一个至少65%序列同一性的序列组成，且其中所述多肽具有重金属转运蛋白活性；或(b)长度上至少15个连续核苷酸的多核苷酸构建体，其与SEQ ID NO1-23或27-51任一个的区域具有至少65%的序列同一性；或(c)双链RNA，其包括至少两条彼此至少部分互补的序列，且其中正义链包括第一序列，反义链包括第二序列，并且其中序列中的至少一个包括NtMRP RNA的至少10个连续核苷酸；或(d)表达载体，其包括如(i)、(ii)或(iii)中所述的多核苷酸或如(b)中所述的多核苷酸构建体。
文档编号C07K14/415GK103228671SQ201180052798
公开日2013年7月31日 申请日期2011年8月31日 优先权日2010年9月3日
发明者L·博韦 申请人:菲利普莫里斯生产公司