抗羊痘病毒K3L蛋白C末端的单克隆抗体及其应用的制作方法

文档序号:14685758发布日期:2018-06-14 21:05阅读:366来源:国知局

本发明涉及一株单克隆抗体及应用,确切讲涉及一种可分泌抗羊痘病毒K3L蛋白C末端的单克隆抗体的杂交瘤细胞株、其分泌的抗羊痘病毒K3L蛋白的C末端单克隆抗体,以及该杂交瘤细胞株和抗体的应用。



背景技术:

羊痘是羊疫病中一种高度接触性和具有毁灭性病毒病,被世界动物卫生组织(OIE)列为法定报告的动物疫病,以发热、结膜炎、鼻炎、皮肤和粘膜的痘疮、呼吸困难及死亡为特征。羊痘主要流行于非洲、中东、印度、尼泊尔土耳其的一些地区,国内主要流行于青海、甘肃、湖南和内蒙等地区。羊痘病毒(Sheeppoxvirus,SPV)属于痘病毒科、脊索动物痘病毒亚科、山羊痘病毒属,主要通过气溶胶、近距离接触或昆虫叮咬传播,绵羊是绵羊痘病毒主要的宿主,各年龄段均能感染,但是死亡病例主要发生于羔羊,死亡率高达100%,给养羊业造成重大的经济损失,被认为是经济上潜在的生物武器。因此,绵羊痘的诊断和防控一直是研究的热点。

中国发明专利2011103869424公开了一种羊痘病毒属病毒,包括山羊痘病毒、绵羊痘病毒及牛疙瘩皮肤病病毒的芯片检测装置。该专利通过设计特异性探针,可对羊痘病毒属的山羊痘病毒、绵羊痘病毒及牛疙瘩皮肤病病毒进行同时鉴定。本发明旨在建立一种灵敏度高、特异性强、节时省力并且易于观察结果的微阵列芯片检测羊痘病毒属山羊痘病毒、绵羊痘病毒及牛疙瘩皮肤病病毒的方法。

中国发明专利申请2013105940610和201310594930X分别公开了用于羊痘病毒胶体金检测试剂条的胶体金、金标抗体及其制备方法。所述胶体金中采用羊痘病毒P32单克隆抗体的最适宜标记量,所制备金标抗体复合物在可见光范围内进行扫描出现最大的吸收峰。

上述这些方法都是针对病毒复制中、后期的核酸或者结构蛋白而建立起来的,因此,它们只能在病毒感染宿主12h甚至更长的时间之后才能检测出病毒是否存在。而本发明所制备的抗K3L蛋白的C末端单克隆抗体在羊痘病毒早期感染检测中的应用,最早可在病毒感染细胞2小时检测到K3L的表达,24小时达到最大。因此,本发明涉及到的K3L抗体的制备可在羊痘病毒早期检测试剂或试剂盒中的应用。



技术实现要素:

本发明提供一种可分泌抗羊痘病毒K3L蛋白C末端单克隆抗体的杂交瘤细胞株及其分泌的抗羊痘病毒K3L蛋白的单克隆抗体,同时提供其用途。

本发明的可分泌抗羊痘病毒K3L蛋白C末端单克隆抗体的杂交瘤细胞株K3L35已经于2015年12月17日在中国武汉市武汉大学的中国典型培养物保藏中心保藏,保藏编号为:CCTCCNO:C2015223。

由所述的K3L35杂交瘤细胞株可分泌K3L蛋白C末端单克隆抗体。

本发明的K3L35杂交瘤细胞株及所分泌的单克隆抗体可在制备诊断或检测羊痘病毒感染试剂中的应用,也可在制备试验用试剂中的应用。

本发明的抗K3L蛋白C末端的单克隆抗体制备方法如下:

由于羊痘病毒K3L基因中GC含量很高,经过前期摸索发现,通过常规方法直接克隆羊痘病毒的基因并不能表达获得K3L可溶性蛋白。因此,本发明根据SPVK3L基因序列,进行密码子偏好性分析和密码子优化改造后合成K3L基因全序列,与pUC57载体连接后,再将连接产物转化至DH5α感受态细胞,提取质粒并测序,将测序正确的重组质粒命名为pUC57-K3L。将K3L基因亚克隆至原核表达载体pET11d中,重组质粒命名为pET11d-K3L,再将重组质粒转化至BL21(DE3)plysS感受态细胞中,以IPTG为诱导剂对重组菌进行诱导表达,得到重组K3L可溶性蛋白,大量表达后通过收集上清,进行蛋白的收集和处理,最终将获得蛋白免疫Balb/c小鼠,并将小鼠的脾脏采集分离脾淋巴细胞与准备好的SP2/0细胞进行融合杂交,经细胞融合与杂交瘤细胞的选择性培养后,进行杂交瘤细胞的筛选和杂交瘤细胞的克隆化,冻存细胞并进行获得的单克隆抗体的特性鉴定后获得本发明的单克隆抗体。

K3L作为痘病毒的Hrf之一,其免疫调节基因功能一直是本领域的研究热点。2002年Langland通过构建K3L和E3L基因VACV缺失毒株后,发现K3L基因缺失的病毒能够在Vero上复制,但是不能够在BHK细胞上复制,而E3L基因缺失的病毒能够在BHK细胞上复制,但不能在Hela细胞中复制,从而证明了K3L和E3L是VACV宿主范围因子(Langlandetal.,2002)。相关研究发现,K3L包含两个功能区域,N末端的Z-DNA结合区域,与RNA编辑酶(ADAR)同源,与病毒的致病性有关。VACV的K3LN末端缺失病毒能在鼻黏膜上有效复制,但不能从鼻腔转移至肺或脑,大大降低病毒对宿主的致病力(Kimetal.,2009);K3L基因的C末端具有dsRNA结合域,抑制PKR的活性。VACV的K3L与eIF2a同源,其可模拟eIF2a结合PKR抑制eIF2a的磷酸化,从而干扰细胞IFN抗病毒的信号通路。

本发明所制备的抗K3L蛋白的C末端单克隆抗体在羊痘病毒感染与免疫研究中的应用,也可在制备羊痘病毒检测试剂或试剂盒中的应用。传染病的防控过程中,如有针对病原的某一特定分子进行早期的检测可为后期的防控措施的制定带来极大便利,为减少疾病的进一步传播带来好处。目前羊痘病毒的诊断主要是对临床样品和细胞培养物PCR分析。而目前已报到的血清学方法,主要是羊痘病毒晚期表达基因的来建立,如基于结构蛋白P32(王永志等,2011,中国畜牧兽医,38(9):101-105),其主要用于病毒感染后期(如细胞感染48h以上)的检测和诊断。而本发明所制备的抗K3L蛋白的单克隆抗体在羊痘病毒早期感染检测中的应用,最早可在病毒感染细胞2小时检测到K3L的表达,24小时达到最大。因此,本发明涉及到的K3L抗体的制备可在羊痘病毒早期检测试剂或试剂盒中的应用。

附图说明

图1为SPVK3L在密码子优化前的密码子质量分布GC含量图。

图2为SPVK3L在密码子优化后的密码子质量分布GC含量图。

图3为SPVK3L在密码子优化前所使用的密码子某一位置的质量分布图。

图4为SPVK3L在密码子优化后所使用的密码子在与附图3同一位置的质量分布图。

图5为SPVK3L在优化前密码子GC含量分布图。

图6为SPVK3L在优化后密码子GC含量分布图。

图7为重组pUC57-K3L载体用克隆引物进行PCR扩增后的电泳图。

图8分别为图5pUC57-K3L和pET11d-K3L进行双酶切后的电泳图,其中:图A为5pUC57-K3L;图B为pET11d-K3L。

图9为pET11d-K3L序列测序结果。

图10为SPVK3L蛋白表达的SDS-PAGE分析电泳图。

图11为K3L重组蛋白的纯化后的电泳图。

图12为WesternBlot分析纯化后的K3L重组蛋白图。

图13为K3LC末端单抗经MouseMonoclonalAntibodyIsotypingKit检测结果。

图14为K3L的C末端合成肽的质谱图。

图15为K3L的N末端合成肽的质谱图。

图16WesternBlot鉴定单克隆抗体的电泳图。

图17为细胞接种羊痘病毒后不同时间点检测K3L表达量图。

图18为显示被检测到细胞中羊痘病毒的K3L蛋白定位的免疫荧光分析图。

图19为DAPI对细胞核进行的染色后的免疫荧光分析图。

图20为图18和19叠合后的免疫荧光分析图。

具体实施方式

本发明以下结合实施例进行解说。以下内容仅用于说明本发明的相关内容细节,不应将其理解为对本发明保护范围的限定。

以下实施例中:

1.毒株和细胞

本发明所使用的毒株系绵羊痘病毒古浪株,所使用的Vero细胞和SP2/0细胞均由申请人(中国农业科学院兰州兽医研究所)保存。

2.主要试剂

pUC57克隆载体、Top10感受态细胞、质粒提取试剂盒、XbaⅠ及BamHⅠ限制性内切酶、T4DNA连接酶均购自大连宝生物工程有限公司;DMEM培养基、RPMI-1640细胞培养基和胎牛血清均购自Gibco公司;胶回收试剂盒购自AXYGEN公司;pET11d表达载体、BL21(DE3)plysS宿主菌、His结合树脂和硝酸纤维素膜购自Novagen公司;琼脂粉、蛋白胨和酵母粉均购自OXOID公司;氨苄青霉素(AMP)、IPTG、辣根过氧化物酶(HRP)标记的兔抗山羊IgG以及弗氏完全佐剂和弗氏不完全佐剂均购自Sigma公司;辣根过氧化物酶(HRP)标记的山羊抗鼠IgG购自Biowrold公司;预染蛋白marker、SuperSignalWestFemto化学发光底物购自ThermoFisher公司;X光底片、显影及定影液均购自柯达公司;A型口蹄疫病毒(FMDV-A)、羊口疮病毒(ORFV)和小反刍兽疫病毒(PPRV)三种病原的抗体ELISA检测试剂盒均购自中国农业科学院兰州兽医研究所诊断中心;K3L的N末端C末端合成肽于上海生工合成,纯度为99%。其他试剂均为国产分析纯。

3.主要仪器

智诚ZWY-240恒温培养振荡器,Eppendorf5417R高速冷冻离心机,Eppendorf5810R高速冷冻离心机,MastercycleEppendorfPCR仪,精宏DNP-9052电热恒温培养箱,良平JA2003电子天平,HealForceBIOsafe12生物安全柜,伯乐半干转膜仪。

一、SPVK3L全基因密码子优化合成、克隆与鉴定

根据SPVK3L基因序列,进行密码子偏好性分析和密码子优化后合成全序列。合成产物经1%的琼脂糖凝胶电泳分析,在紫外灯下切下大小约为300bp的目的条带,用AXYGEN公司DNA凝胶回收试剂盒对目的基因进行纯化;将绵羊痘病毒K3L基因PCR产物与pUC57载体4℃连接过夜,反应体系为:回收的DNA片段4μL,pUC57载体1μL,SolutionⅠ5μL;将连接产物转化至DH5α感受态细胞,37℃静置培养过夜;用灭菌的枪尖挑取单克隆菌落置于含有AMP抗性的LB培养基中,37℃振荡培养过夜;取2ml过夜培养物,按照大连宝生物质粒提取试剂盒说明书提取重组质粒并进行酶切鉴定,反应体系为:pUC57-SPVK3L10μL,BamHⅠ1μL,XbaⅠ1μL,10×Kbuffer2μL,加入ddH2O至20μL;将20μL重组质粒的酶切鉴定产物全部用于琼脂糖胶核酸电泳,电泳结果通过紫外凝胶成像系统进行分析并拍照。结果如图8所示,酶切后的小片段大小约为270bp,表明SPVK3L基因正确插入pUC57载体中。将重组质粒送Invitrogen公司测序鉴定,结果表明插入片段正确未产生突变。

密码子优化前的SPVK3L基因序列为:SEQIDNO1;

密码子优化后的SPVK3L基因序列为:SEQIDNO2;

编码SPVK3L蛋白序列为:SEQIDNO3。

经过本发明的密码子优化后,密码子等级提高,质量更高,GC含量明显下降,相应的结果参见附图1至附图6。图2中显示密码子优化后SPV的高质量的密码子占的比例比优化前(图1)大大提高,而图4中显示的密码子优化后的SPVK3L所有的核苷酸序列位点的质量比优化前(图3)有所提高,而图6显示的是SPVK3L密码子优化后的GC含量比优化前(图5)有所下降。这将有利于K3L在大肠杆菌中可溶性表达。

二、SPVK3L基因原核表达载体的构建

将pET11d原核表达载体与鉴定正确的pUC57-SPVK3L重组质粒于37℃水浴条件下进行BamHⅠ和XbaⅠ双酶切,反应体系为:pET11d/pUC57-SPVK3L10μL,BamHⅠ1μL,XhoⅠ1μL,2×Kbuffer2μL,加入ddH2O至20μL,电泳显示均有预期大小的片段(参见附图8A);按胶回收试剂盒说明书回收载体及目的片段,将载体及目的片段于16℃水浴条件下进行连接,反应体系为:SPVK3L基因回收片段15μL,pET11d载体回收片段3μL,10×T4连接酶buffer2.5μL,T4DNA连接酶1μL加入ddH2O至25μL;将连接产物转化至BL21(DE3)plysS感受态细胞,37℃振荡培养过夜;取2mL过夜培养物,按照大连宝生物质粒提取试剂盒说明书提取重组质粒并进行酶切鉴定,反应体系为:pET11d-SPVK3L10μL,BamHⅠ1μL,XhoⅠ1μL,10×Kbuffer2μL,加入ddH2O至20μL;将20μL重组质粒的酶切鉴定产物全部用于琼脂糖胶核酸电泳,电泳结果通过紫外凝胶成像系统进行分析并拍照。酶切后的小片段大小约为270bp,参见图8B,表明SPVK3L基因正确插入pET11d载体中。将重组质粒送Invitrogen公司测序鉴定,测序结果如图9所示,结果表明插入片段正确未产生突变。

三、K3L基因的诱导表达

取50μL阳性菌液过夜培养物至5mLLB培养基,37℃振荡培养至OD600=0.6时,加入IPTG至终浓度为1mM诱导表达4h。吸取1mL诱导后的菌液,5500r/min离心10min收集菌体,加入80μLPBS重悬菌体后加入20μL5×SDS-PAGEloadingbuffer,混合均匀,置于沸水中处理5min,SDS-PAGE检测目的蛋白表达情况。结果如图10所示,重组蛋白大小约为10ku,与预期大小一致。

四、SPVK3L重组蛋白的抗原性分析

蛋白样品经SDS-PAGE电泳后,半干法转印至NC膜。将膜浸在封闭液中4℃封闭过夜,分别用SPV标准阳性血清为一抗,HRP标记的兔抗山羊IgG为二抗进行Western-blot分析,最后参照ThermoFisher公司SuperSignalWestFemto化学发光底物操作说明,对目的条带进行显影,对重组蛋白反抗原性进行分析。结果如图8所示,SPV标准阳性血清能够识别SPVK3L重组蛋白,表明SPVK3L蛋白能够刺激动物机体产生特异性抗体,即SPVK3L具有抗原性,能够作为检测SPV感染的候选蛋白。

五、SPVK3L重组蛋白的纯化

将1mL重组菌接入100ml含有AMP抗性的LB培养基,37℃振荡培养至OD600=0.6,按优化的表达条件进行诱导表达;5500r/min离心10min收集菌体,弃上清,用10mLPBS重悬菌体后进行超声破碎,超声程序为:超声5s,停8s;超声完毕后,取1mL菌体裂解液12000r/min离心10min,分别收集上清及沉淀,沉淀用与上清相同体积的PBS重悬,SDS-PAGE分析SPVK3L重组蛋白的可溶性。各取10μL上清和沉淀进行SDS-PAGE凝胶电泳分析,结果如图10所示,重组蛋白大部分以可溶形式存在于上清之中。重组蛋白使用Novagen公司His结合树脂说明书进行纯化,各取10μL样品进行SDS-PAGE凝胶电泳分析,结果如图11所示,纯化后的重组蛋白条带较为单一,没有其他杂蛋白的污染。

六、用重组蛋白SPVK3L免疫BALB/c小鼠

选取6~8周龄的BALB/c小鼠进行如下免疫程序:初次免疫时,用100μg纯化后的重组蛋白SPVK3L与等量弗式完全佐剂混合,经乳化后皮下多点注射;首免后14天,用相同剂量的重组蛋白与弗氏不完全佐剂混合,乳化后加强免疫。二免后14天采血并分离血清,用0.2μg纯化的重组蛋白SPVK3L包被ELISA板,进行间接ELISA试验,测定血清效价,结果显示制备的鼠抗血清效价为1:100000。

纯化的重组蛋白SPVK3L经SDS-PAGE电泳后,半干法转印至NC膜。将膜浸在封闭液中4℃封闭过夜,分别用制备的鼠抗血清为一抗,HRP标记的山羊抗鼠IgG为二抗进行Western-blot分析,最后参照ThermoFisher公司SuperSignalWestFemto化学发光底物操作说明,对目的条带进行显影,对制备的SPVK3L蛋白鼠抗血清进行鉴定。结果如图12所示,制备的鼠抗血清能够特异的识别SPVK3L蛋白,表明制备的鼠抗血清质量可靠,可用于基础试验中SPVK3L蛋白的检测。

七、细胞融合

在加强免疫小鼠3d后进行细胞融合。摘出小鼠眼球取血后,脱臼处死小鼠,放入70%酒精瓶中放置2min后,于超净工作台内将小鼠固定于泡沫板上,解开腹部皮肤找到脾脏,用镊子取下,放入200目不锈钢滤膜中轻轻研碎,用PBS轻轻冲洗下细胞,之后放入37℃下的离心机中3000rpm离心10min,弃上清后备用;制备饲养细胞时,脱臼处死小鼠,放入70%酒精瓶中放置2min后,于超净工作台内将小鼠固定于泡沫板上,解开腹部皮肤,用注射器吸取PBS轻轻注入腹膜下,从另一边再将含有饲养细胞的液体洗出,之后放入37℃下的离心机中3000rpm离心10min,弃上清后备用。于40℃水浴烧杯中,为了减轻PEG2000毒性,缓慢将PEG2000滴加到轻轻顺时针摇动的融合离心管中,时间控制在1min之内,之后加入20%FBS的1640细胞培养基,轻轻吹起细胞,将细胞铺到6个96空培养板中,每孔100μL。将培养板标记好后,放入37℃的含5%CO2-的细胞培养箱中培养,在用HAT选择培养1~2天内,将有大量瘤细胞死亡,3~4天后瘤细胞消失,杂交细胞形成小集落,HAT选择培养液维持7~10天后应换用HT培养液,再维持2周,改用一般培养液。在上述选择培养期间,杂交瘤细胞布满孔底1/10面积时,即可开始检测特异性抗体,筛选出所需要的杂交瘤细胞系。在选择培养期间,一般每2~3天换一半培养液。

将所得到杂交瘤细胞系送交中国典型培养物保藏中心进行保藏,保藏物命名为:杂交瘤细胞株K3L35,其保藏编号为CCTCCNo:C2015223。

八、阳性杂交瘤细胞株的筛选及亚克隆培养

首先,通过方正实验确定K3L作为抗原最佳包被量。将0.5、1.0、2.0、4.0μg的K3L纯化蛋白包被96孔板,每个浓度6个孔分别设置为3个阳性3个阴性。用不同稀释倍数的K3L纯化蛋白免疫鼠阳性血清进行方正滴定,同时以未免疫鼠阴性血清作为阴性对照。

用每孔0.5μg纯化的K3L蛋白包被96孔ELISA板,4℃过夜;PBST洗涤3-4次,每次3-5min;每孔加入200μL的5%脱脂奶粉的PBST,37℃封闭2h;PBST洗涤3-4次,每次3-5min,于折叠的纱布上拍干;加样:加待检样品0.1ml于反应孔中,置37℃温育1~2小时,然后洗涤(同时做空白孔(不加样品),阴性对照孔(野生型)及阳性对照孔)。各反应孔中加入新稀释的抗体0.1ml。置37℃温育1~2小时。然后洗涤。加酶标二抗:各反应孔中加入新稀释的酶标抗体0.1ml。37℃温育45分钟~1小时,洗涤5次。加底物液显色:各反应孔中加入刚刚配制的OPD底物溶液0.1ml,37℃暗处温育10min分钟。各反应孔中加入2M硫酸0.05ml。测OD值判断结果,在ELISA检测仪上,使用492nm检测。以阴性对照OD值的2.1倍以上为阳性(以空白对照孔调零后计算)。挑选出抗羊痘病毒K3L蛋白的杂交瘤细胞单克隆。

按照上述方法,将筛选得到的阳性杂交瘤细胞进行亚克隆,通过有限稀释法将原有的孔用HAT选择培养基稀释后重新分到96孔培养板中,之后观察细胞的形态和数量。调整细胞为3~10个细胞/ml。取头天准备的饲养细胞层的细胞培养板,每孔加入稀释细胞100μl。孵育于37℃、5%CO2孵箱中。在第7天换液,以后每2~3天换液1次。8~9天可见细胞克隆形成,及时检测抗体活性。将阳性孔的细胞移至24孔板中扩大培养。每个克隆应尽快冻存。

九、单克隆抗体的大量制备及抗体、效价测定

通过腹腔注射0.5ml降植烷于8周龄BALB/C鼠,2周后腹腔注射1×106个杂交瘤细胞,接种细胞7~10天后可产生腹水,密切观察动物的健康状况与腹水征象,待腹水尽可能多,而小鼠频于死亡之前,处死小鼠,用滴管将腹水吸入试管中,一只小鼠可获5~10ml腹水。也可用注射器抽提腹水,可反复收集数次。将获得的腹水于1000g离心10min,弃去上层油脂和底部沉淀,收集上清分装与-20℃,测定腹水中单克隆抗体含量可达到8mg/ml。

十、单克隆抗体的生物学分析

(1)单克隆抗体亚型鉴定

采用Sigma公司的免疫球蛋白标准亚类鉴定试剂盒进行鉴定,主要参照试剂盒说明书进行操作。鉴定结果见图13,表明本发明获得的单克隆抗体为IgG2b。

(2)免疫活性分析(WB)

采用Westernblot分析获得的单克隆抗体的免疫活性。将K3L的C末端(合成质谱图见图14)、N末端合成肽(合成质谱图见图15)、重组纯化K3L蛋白、绵羊痘病毒感染12h和24h的细胞收集裂解产物以及未感染细胞蛋白上样进行SDS-PAGE电泳,之后转印到NC膜上,将膜浸在封闭液中4℃封闭过夜,分别1:100稀释的单克隆抗体诱导小鼠的腹水为一抗,HRP标记的山羊抗鼠IgG为二抗进行Western-blot分析,最后参照ThermoFisher公司SuperSignalWestFemto化学发光底物操作说明,对目的条带进行显影,对制备的SPVK3L蛋白单克隆抗体进行鉴定。结果如图16所示,制备的鼠腹水抗体能够特异的识别K3LC末端合成肽,但不能够识别N末端合成肽,并且能够识别SPVK3L蛋白,表明制备的抗体质量可靠,可用于基础试验中SPVK3L蛋白的检测和K3LC末端的检测。

(3)K3L抗体检测病毒感染细胞后不同时间的分析

将羊痘病毒接种Vero细胞,分别于感染后2小时、4小时、6小时、8小时、12小时、24小时和48小时收集细胞及培养液,然后包被ELISA板子,用抗羊痘病毒K3L蛋白杂交瘤细胞上清为抗体,检测SPV感染细胞后K3L蛋白的表达量,结果见图17。表明在羊痘病毒感染细胞后2小时就可以检测K3L蛋白。随着时间的增加,强度越来越强。显然K3L单克隆抗体可以用于羊痘病毒感染的早期诊断。

(4)免疫荧光分析亚细胞定位

将羊痘病毒GY株感染Vero细胞和对照组的Vero细胞用4%的多聚甲醛固定20min,室温干燥后,用含有0.1%Tween-20,pH7.4的PBS洗涤3次,10min/次;5%BSA温育30min后,加入用0.1%Tween-20,pH7.4的PBS1:100倍稀释的羊痘病毒K3L蛋白C末端单克隆抗体诱导小鼠的腹水为一抗,于37℃作用1h后,用上述方法洗涤;再加入1:100倍稀释的罗丹明标记的山羊抗鼠IgG抗体,于37℃作用30min后,用同样的方法洗涤。最后用90%的甘油封片,荧光显微镜观察结果。间接免疫荧光检测结果见图18至20。其中图18显示的是被检测到羊痘病毒表达K3L蛋白,19为DAPI对细胞核进行的染色,图20为图18和19叠合后对K3L对蛋白情况的观察。结果表明感染组出现明显的红色荧光,通过绿色荧光可见细胞出现明显的聚合,且聚合度越高的地方,荧光越强,细胞浆内有荧光,而细胞核中没有荧光,表明K3L主要在细胞浆中存在。

(5)抗体特异性分析

分别采用A型口蹄疫病毒(FMDV-A)、羊口疮病毒(ORFV)和小反刍兽疫病毒(PPRV)和SPV四种病原包被ELISA板,用抗羊痘病毒K3L蛋白杂交瘤细胞上清为抗体进行检测。检测结果参见表1。结果表明,上述三种病毒均不能与本发明中的单克隆抗体发生反应,而能与SPV发生反应。

结论

通过上述方法,可获得绵羊痘病毒重组K3L蛋白及其高免血清,结果表明该蛋白具有良好的抗原性,可作为检测绵羊痘病毒检测的候选蛋白;用该重组K3L蛋白免疫BALB/c小鼠,制备的单克隆抗体能够特异性识别SPVK3L蛋白,经过对病毒感染细胞后不同时间点对K3L蛋白额检测发现,最早可在细胞接种2小时就能检测到K3L蛋白,表明其可用于基础试验中对SPVK3L蛋白的检测。

<110>中国农业科学院兰州兽医研究所

<120>抗羊痘病毒K3L蛋白C末端的单克隆抗体及其应用

<160>3

<210>1

<211>267

<212>DNA

<213>优化前的SPVK3L基因序列

<400>

atgtcatcgaatagcgatttggcattttgttacgttttacctaacattaatgaagtaaca60

gatggtattgtgtgtataagagataacattgtatatgtaaaactaattaactatggtttg120

gaagcacttgtaatagattatgttaatataaacatggatcaaatgaataatataaaaaaa180

acattagttaataaattaattaatgtgcaaattataaggatgaacaaaataaaaggatat240

attgatgtaaaaatttataataacaac267

<210>2

<211>267

<212>DNA

<213>优化后的SPVK3L基因序列

<400>

atgtcaagtaactccgacctggcgttttgctatgtgctgccgaatatcaacgaagtcacg60

gatggtattgttttcattaaagataacattgtgtatgttaaactgatcaactacggcctg120

gaagcgctggtcattgattatgtggacatcaacatggatcagatgaacaacattaagaaa180

accctggttaacaaactgatcaatgtccaaatcgtgcgtatgaataaaatcaaaggctac240

atcgacgtgaaagtccacaataataat267

<210>3

<211>89

<212>PRT

<213>编码SPVK3L蛋白序列

<400>

MetSerSerAsnSerAspLeuAlaPheCysTyrValLeuProAsn

151015

IleAsnGluValThrAspGlyIleValCysIleArgAspAsnIle

16202530

ValTyrValLysLeuIleAsnTyrGlyLeuGluAlaLeuValIle

31354045

AspTyrValAsnIleAsnMetAspGlnMetAsnAsnIleLysLys

46505560

ThrLeuValAsnLysLeuIleAsnValGlnIleIleArgMetAsn

61657075

LysIleLysGlyTyrIleAspValLysIleTyrAsnAsnAsn

76808589

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