一种用于检测B族链球菌的RPA荧光定量引物对、探针、试剂盒及检测方法与流程

文档序号:15457588发布日期:2018-09-15 01:34阅读:639来源:国知局

本发明涉及生物医学检测技术领域,特别是涉及一种用于检测b族链球菌的rpa荧光定量引物对、探针、试剂盒及检测方法。



背景技术:

b族链球菌(gbs)学名为无乳链球菌(streptococcusagalactiae),为兼性厌氧的革兰氏阳性链球菌,通常寄居于人体阴道和直肠。自20世纪70年代,gbs已被证实是围产期母婴感染的主要致病菌之一,在围产医学中占有不可忽视的地位。现有的研究表明,正常孕妇gbs的带菌率为6.5%-36%,国内的妊娠妇女gbs带菌率为6.5%-15%。gbs感染是胎膜早破的重要发病因素,孕妇在分娩或发生胎膜早破时,gbs可经产道上行感染胎儿,可引起新生儿爆发性败血症、化脓性脑膜炎、肺炎等疾病,有较高的致死率。因此,孕妇产前筛查gbs越来越受到重视。

现有的b族链球菌检测方法主要以下几种:细菌培养法、抗原抗体测定法、核酸探针检测、荧光原位杂交法、脉冲场凝胶电泳法、聚合酶链反应、革兰染色法等。其中,细菌培养法是当前检测gbs的“金标准”,该方法操作简单、价格适中,但检测周期长(至少需要48h),且灵敏度不高,有较高的假阴性率。随着分子生物学检验的普及,越来越多的研究证实聚合酶链式反应(pcr)检测法比传统的细菌培养法具有更高的灵敏度和特异性,可提高gbs的检出率。然而,pcr技术通常需要特制的仪器以及复杂的反应程序,成本高,耗时长,对于需要实时、现场、快速的非实验室环境检测及分析通常难以实现。

核酸体外恒温扩增(nucleicacidisothermalamplification,ncia)技术是近年来发展起来的新的分子检测技术。该技术能在恒温条件下,模拟体内核酸复制机制,实现对核酸的扩增。恒温扩增无需反复热变性,不仅简化了对仪器的要求,还大大缩短了反应时间。其中重组酶聚合酶扩增技术(recombinasepolymeraseamplification,rpa)能够在恒温条件下(37℃-42℃)实现对核酸的快速特异性扩增,且在20min内可将核酸扩增至可检测水平,具有良好的可操作性,能够在非实验室条件下完成核酸检测,被称为是最具有可替代pcr潜力的核酸检测技术。

rpa技术的关键在于引物和探针的设计。rpa所用引物和探针都比常规pcr的引物和探针长,多数pcr引物和探针不适用于rpa反应,且目前尚无可用于rpa引物设计的软件,因此rpa引物和探针的设计难度较大。rpa引物通常需30-38个碱基,这既有利于重组酶与引物结合形成蛋白-核苷酸复合物启动反应,又保证扩增产物的特异性。rpa探针长度约为46-52个碱基,内部添有酶切位点,3’端含有阻断物。仅当探针与模板互补结合,才可发生切割产生信号。

综上所述,基于gbs感染引起孕妇和新生儿相关症状、疾病的严峻性,产前筛查gbs显得尤为重要。rpa检测技术反应时间短、对硬件设备的要求低,可解决临床上gbs感染确诊时间长、对检测人员技术和实验室平台要求高等问题。通过对gbs基因组dna片段的序列分析,筛选出适用于rpa技术的引物和探针,可望研发出一种基于rpa技术的gbs快速诊断方法和试剂盒,为临床上早期诊断和及时治疗提供便利。



技术实现要素:

本发明针对现有技术中存在的不足,提供了一种用于特异性检测b族链球菌的rpa荧光定量引物对、探针、试剂盒及检测方法。

一种用于检测b族链球菌的rpa荧光定量引物对,包括上游引物和下游引物,序列选自下列引物对中的一对:

引物对1上游引物5’-tttcaccagctgtattagaagtacatgctgatc-3’

下游引物5’-actgtctcagggttggcacgcaatgaagtc-3’;

引物对2上游引物5’-tttcaccagctgtattagaagtacatgctgatc-3’

下游引物5’-attcaaatcataaactgtctcagggttggcacgca-3’;

引物对3上游引物5’-tttcaccagctgtattagaagtacatgctgatc-3’

下游引物5’-aactgtctcagggttggcacgcaatgaagtcttt-3’;

引物对4上游引物5’-tctggaactctagtggctggtgcattgttatttt-3’

下游引物5’-actgtctcagggttggcacgcaatgaagtc-3’;

引物对5上游引物5’-tctggaactctagtggctggtgcattgttatttt-3’

下游引物5’-attcaaatcataaactgtctcagggttggcacgca-3’;

引物对6上游引物5’-tctggaactctagtggctggtgcattgttatttt-3’

下游引物5’-aactgtctcagggttggcacgcaatgaagtcttt-3’。

rpa分析的关键在于扩增引物和探针的设计,普通pcr引物多半是不适用的,因为rpa引物比一般pcr引物长,通常需要达到30-38个碱基。引物过短会降低重组率,影响扩增速度和检测灵敏度。在设计rpa引物时,变性温度不再是影响扩增引物的关键因素。

优选的,所述的rpa荧光定量引物对,序列为:

引物对6上游引物5’-tctggaactctagtggctggtgcattgttatttt-3’

下游引物5’-aactgtctcagggttggcacgcaatgaagtcttt-3’。

本发明又提供了一种用于检测b族链球菌的rpa荧光定量探针,序列为:

5’-gcttgatcaagatagcattcagttgagaaatatcaaagataatgttcaggg-3’,探针的其中两个核苷酸上连接有荧光基团和淬灭基团,且位于这两个核苷酸之间的某一个核苷酸为脱碱基位点;3’末端标记阻抑聚合酶延伸或扩增的修饰基团。在rpa体系中引入一个带有荧光标记的探针,一方面可以提高rpa检测的特异性,另一方面还能实现对rpa扩增进行实时监控。所述的脱碱基位点是指该位点无法形成配对,所以能被相关的核酸外切酶识别,可以是缺失含氮碱基的脱氧核糖核酸,或者该位点的脱氧核糖核酸不仅缺失含氮碱基,其五碳糖部分还用四氢呋喃取代,四氢呋喃的结构与五碳糖结构类似。

探针长度通常在46-52bp之间,在探针上分别设计两个基团(一个荧光基团,一个淬灭基团),两个基团之间设计一个脱碱基位点,该位点能被一核酸外切酶特异性识别,该酶具有3’-5’外切酶活性,可以使荧光基团与淬灭基团分离,从而产生荧光信号。该酶只能特异性识别双链dna,对单链dna无活性,因而产生的荧光信号强度可与扩增产物同步增长。探针3’末端标记阻抑聚合酶延伸或扩增的修饰基团。

优选的,所述的rpa荧光定量探针,序列为:

5’-gcttgatcaagatagcattcagttgagaaafhqcaaagataatgttcaggg-3’,其中f表示连接有荧光基团的dt(dt表示胸腺嘧啶脱氧核糖核苷酸),q表示连接有淬灭基团的dt,h表示缺失含氮碱基的脱氧核糖核酸,3’末端标记阻抑聚合酶延伸或扩增的修饰基团。由于rpa荧光定量探针相对于普通荧光定量pcr探针来说,序列较长,如果将荧光基团和淬灭基团连接的两端,则效果相对于这样靠近设计来说,淬灭基团的对荧光基团的淬灭效果可能稍差。根据探针设计的常规要求,荧光基团不能连接到g上,因为g会淬灭荧光;而a与c连接荧光基团后,不如连接在t上稳定,所以选择将荧光基团连接到t上。

所述荧光基团为fam、tet、joe、hex或tamra,所述淬灭基团为bhq1或bhq2,本发明对荧光基团和淬灭基团的选择并没有特殊性,常用的用于荧光定量pcr的荧光基团和淬灭基团均可使用。所述修饰基团为c3-spacer(间隔子修饰)、磷酸化或biotin-teg(生物素修饰)。普通引物序列3’没有磷酸基团而是-oh,只有3’末端是-oh的片段才可以被聚合酶延伸,但3’修饰了上述修饰基团后,所得探针只能结合到模板上而不能扩增。

本发明还提供了一种用于检测b族链球菌的rpa荧光定量试剂盒,包含所述的rpa荧光定量引物对和所述的rpa荧光定量探针。

所述的rpa荧光定量试剂盒,包括核酸外切酶exoⅲ。外切酶exoⅲ可作用于平末端或3'凹陷末端双链dna3'→5'外切酶活性。对单链dna及3'突出末端双链dna无活性。外切酶exoⅲ也有rnaseh、3'磷酸酶和脱嘌呤/嘧啶-核酸内切酶活性。本发明就是基于外切酶exoⅲ的脱嘌呤/嘧啶-核酸内切酶活性,即ap(apurinic/apyrimidinic)位点内切酶活性功能设计。

所述的rpa荧光定量试剂盒,包括试剂盒liquidexo/exortquickkit中的所有试剂和醋酸镁溶液,镁离子能够激活聚合酶和外切酶ⅲ的活性,控制rpa反应启动。

所述的rpa荧光定量试剂盒,包括浓度已知的标准品,所述标准品为包含如seqidno.1所示序列的质粒。如seqidno.1所示序列为gbs的camp基因序列。

本发明还提供了一种非医学诊断为目的的检测b族链球菌的方法,使用所述的rpa荧光定量试剂盒进行检测,包括以下步骤:

(1)提取样本dna作为模板;

(2)分别使用所述rpa荧光定量引物对及rpa荧光定量探针对步骤(1)所得模板及标准品进行rpa荧光定量扩增;

(3)对比样本与标准品的荧光定量信号得出样本中b族链球菌的含量。

该方法可以用于离体检测b族链球菌,而并非一定要用于检测疾病。离体检测可以是环境样品的检测、实验室或医院消毒后材料检测是否残留b族链球菌,或者可以对输血或输液制品进行检测以确保没有b族链球菌污染等。

本发明rpa荧光定量引物对是针对b族链球菌的基因组中的camp因子设计筛选获得的,能够特异性扩增b族链球菌,且扩增效果好。

本发明检测方法为基于rpa技术的荧光定量检测方法,可用于特异性检测b族链球菌,该方法操作简便,灵敏度高,反应条件温和,反应时间短,结合便携式的荧光检测仪即可进行病原微生物的快速定量检测。本发明检测方法的灵敏度可以达到5拷贝/μl。

附图说明

图1为实施例2中引物初筛过程rpa扩增产物电泳图,其中,泳道m为dnamarkerdl500(下同),泳道1~11分别对应引物对1s/1a(251bp)、1s/2a(531bp)、1s/3a(231bp)、1s/4a(393bp)、2s/2a(173bp)、3s/1a(193bp)、3s/2a(473bp)、3s/3a(173bp)、3s/4a(335bp)、4s/2a(373bp)、4s/4a(235bp)。

图2为实施例3中引物优化过程rpa扩增产物电泳图,其中泳道1~9分别对应引物对4s/4a(235bp)、4s/5a(248bp)、4s/6a(236bp)、5s/4a(266bp)、5s/5a(279bp)、5s/6a(267bp)、6s/4a(200bp)、6s/5a(213bp)、6s/6a(201bp)。

图3为实施例4中荧光定量体系下不同引物进行rpa反应的gbs检测结果图,其中,曲线1~6分别对应引物对4s/4a(235bp)、4s/5a(248bp)、4s/6a(236bp)、5s/4a(266bp)、5s/5a(279bp)、5s/6a(267bp)。

图4为实施例5中荧光定量rpa反应体系的特异性验证结果图。

图5为实施例6中荧光定量rpa反应体系的灵敏度测试结果图,其中曲线1~9分别对应模板浓度108copy/μl、106copy/μl、105copy/μl、104copy/μl、103copy/μl、102copy/μl、10copy/μl、5copy/μl、0copy/μl。

图6为实施例7中防污染试剂(尿嘧啶-dna糖基化酶(udg)和尿嘧啶糖基化酶抑制剂(ugi))不会影响rpa反应体系的测试结果图,其中曲线1为不加防污染试剂,曲线2为加入防污染试剂。

具体实施方式

实施例1

b族链球菌基因组提取。

从中国微生物菌种查询网购买并获得gbs菌种冻干粉(atcc编号:12386)。用无菌水溶解冻干粉,并接种于哥伦比亚血琼脂平板上活化。经两次继代培养后挑取菌落于thb培养基37℃培养。收集菌液通过基因组提取试剂盒提取gbs全基因组dna。

实施例2

靶标序列确定和引物设计。

b族链球菌能产生camp因子,可促进金黄色葡萄球菌β-溶血素活性。大量研究表明,camp因子是gbs的主要致病因子。因此,本发明检测的靶标确定为b族链球菌基因组中编码camp因子的基因序列(genbank:x72754.1)。

通过对camp因子的序列分析,设计并合成了以下4对引物:

第一对

gbs-1s:5’-tttgacgaccttttggacaagtagtaagatacc-3’;

gbs-1a:5’-ccatttgctgggcttgattattactatttacat-3’。

第二对

gbs-2s:5’-ttaaagacttcattgcgtgccaaccctgagaca-3’;

gbs-2a:5’-actagcttagttatcccaaatcccatatcaata-3’。

第三对

gbs-3s:5’-actgcagtagaagtgattttagtttaaaggagg-3’;

gbs-3a:5’-ttactatttacatgatttaccacttgtggagttgtca-3’。

第四对

gbs-4s:5’-tttcaccagctgtattagaagtacatgctgatc-3’;

gbs-4a:5’-actgtctcagggttggcacgcaatgaagtc-3’。

将设计的4对引物通过两两交叉配对组合,选择扩增产物长度在100bp-550bp之间的引物对,使用twistdx公司的liquidbasic试剂盒进行扩增。rpa反应体系如下:

将rpa反应液混合均匀后加入2.5μl280mm的mgoac溶液(醋酸镁溶液),混匀后37℃放置40min完成扩增反应。利用1.5%琼脂糖凝胶电泳进行rpa扩增产物检测(图1)。实验结果显示gbs-4s/4a的引物组合用于rpa扩增的产物条带单一且产物量最多,因此该对引物初筛效果最佳。

实施例3

为了进一步优化引物在rpa反应体系中的扩增效率和特异性,在gbs-4s/4a引物的基础上进行了部分位点的修改,并合成了2对新引物。

第一对

gbs-5s:5’-tctggaactctagtggctggtgcattgttatttt-3’;

gbs-5a:5’-attcaaatcataaactgtctcagggttggcacgca-3’。

第二对

gbs-6s:5’-gtgacaactccacaagtggtaaatcatgta-3’;

gbs-6a:5’-aactgtctcagggttggcacgcaatgaagtcttt-3’。

采用两两交叉配对组合方式进行rpa扩增反应(图2),筛选结果显示gbs-4s/4a,gbs-4s/5a,gbs-4s/6a,gbs-5s/4a,gbs-5s/5a和gbs-5s/6a这6对引物组合的扩增产物单一且扩增效率较高,均能在琼脂糖凝胶电泳检测体系下实现基于rpa技术扩增检测gbs的要求。

实施例4

荧光定量体系检测gbs。

荧光定量检测体系相比于琼脂糖凝胶电泳的终点检验系统,其操作简便,可对扩增过程进行实时监控,更加适用于临床检验。为了考评筛选获得的rpa引物对在临床荧光定量检测体系中的检测性能,根据扩增产物序列引入一个带有荧光标记的探针。

gbs-p1:

5’-gcttgatcaagatagcattcagttgagaaafhqcaaagataatgttcaggg-3’,

其中f表示连接有荧光基团的dt,q表示连接有淬灭基团的dt,h表示缺失含氮碱基的脱氧核糖核酸,为脱碱基位点。探针3’末端标记阻抑聚合酶延伸或扩增的修饰基团,该修饰基团为c3-spacer。

该探针一方面可以提高rpa检测的特异性,另一方面还能实现对rpa扩增进行实时监控。在该探针中部的两个t碱基位置处分别设计了两个基团(一个荧光基团,一个淬灭基团),两个基团之间设计一个脱碱基位点,该位点能被具有3’-5’外切酶活性的核酸外切酶特异性识别,使荧光基团与淬灭基团分离,从而产生荧光信号。该核酸外切酶只能特异性识别双链dna,对单链dna无活性,因而产生的荧光信号强度可与扩增产物同步增长。

将筛选获得的引物对与探针配合使用,选用twistdx公司的liquidexo试剂盒进行荧光定量检测。rpa反应体系如下:

将rpa反应液混合均匀后加入2.5μl280mm的mgoac溶液,混匀后放入荧光定量pcr仪,反应程序为37℃,20s,50cycles/80cycles(循环数)。由于引物和探针的位置会影响到rpa反应对gbs检测的灵敏度和扩增信号,因此在荧光定量检测体系中再次对引物进行筛选(图3)。实验结果显示,最佳引物为gbs-5s/6a。

实施例5

基于荧光定量rpa反应检测gbs的特异性验证。

以b族链球菌(gbs)dna,人类乳头状瘤病毒(hpv)dna,人胎盘dna,鱼精dna和hela细胞基因组dna为检测模板,各样本均稀释至108copy/μl(拷贝/微升),分别通过twistdx公司的liquidexo试剂盒进行荧光定量rpa检测,以灭菌水作为阴性对照。实验结果显示(图4),只有b组链球菌能够被gbs-5s/6a引物和gbs-p1探针特异地检出,而其他样本均无扩增条带,因此采用该引物和探针具有很好的特异性。

实施例6

基于荧光定量rpa反应检测gbs的灵敏度测试。

以含有b族链球菌camp因子基因序列的质粒为模板,计算并稀释成108copy/μl,106copy/μl,105copy/μl,104copy/μl,103copy/μl,102copy/μl,10copy/μl,5copy/μl共计8个浓度梯度作为灵敏度检测的模板,以灭菌水作为阴性对照。荧光定量rpa结果显示(图5),该方法的检测灵敏度可以达到5copy/μl,具有很好的敏感度和较广的检测范围,能够满足临床gbs快速检测的要求。

实施例7

反应体系中加入尿嘧啶-dna糖基化酶(udg)和尿嘧啶糖基化酶抑制剂(ugi)来防控污染。

在实施例4的体系中加入0.5μldutp,0.5μl的尿嘧啶-dna糖基化酶(udg)37℃孵育5min,孵育结束后加入1.25μl的尿嘧啶糖基化酶抑制剂(ugi),2.5μl醋酸镁混匀后放入荧光定量pcr仪。结果如图6所示,其中曲线1为不加防污染试剂,曲线2为加入防污染试剂,可以看出加入用于防污染的尿嘧啶-dna糖基化酶(udg)和尿嘧啶糖基化酶抑制剂(ugi)对rpa检测结果没有影响。

序列表

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<120>一种用于检测b族链球菌的rpa荧光定量引物对、探针、试剂盒及检测方法

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<212>dna

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<213>人工序列(artificial)

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