一种新型的含mar核心片段的动物细胞表达载体的制作方法
【技术领域】
[0001] 本发明涉及生物技术领域，更具体地，公开了一种新型的含MAR核心片段的动物 细胞表达载体。
【背景技术】
[0002] 目前，很多用于生产重组蛋白的载体已被开发，重组蛋白在以细菌、真核微生物、 昆虫细胞等为宿主的表达中能获得较高的产量，但这些表达系统缺少类似于哺乳动物细胞 的蛋白质修饰机制(例如糖基化修饰等)，表达的动物蛋白易缺少生物活性或因折叠错误而 产生包涵体。而以哺乳动物细胞表达系统来生产重组蛋白，其产量往往较低，而且导入基因 的稳定性也会有一定的问题。后来人们发现，中国仓鼠卵巢细胞（CHO)是生产单克隆抗体 等复杂大分子的最佳系统，利用CHO表达系统生产单克隆抗体，其产率有了很大的提高，但 是筛选和维持高表达细胞株仍是件耗时耗力且结果不确定的工作。细胞转染后，融合基因 通常随机整合入宿主细胞的基因组中，大多数的重组发生于"静默区"，例如非转录区。通常 需要筛选上千个克隆才能得到几个产量尚可的细胞株。
[0003] 核基质附着区（matrix attachment region,简称MAR)元件是一种能帮助产生 并维持开放的染色质域的DNA序列。开放的染色质域能促进转录，表达及转基因的多拷贝 整合。将MAR元件放入载体中能增加细胞株的产量及高产细胞株的比例（Kwaks TH, Otte 八?20061'代11(18 8丨(^6(*11〇124:137 - 142)，但嫩1?元件较大（31*以上），而质粒转染细胞的 效率随着质粒大小的增加而降低（Yin W et al Anal Biochem. 2005Novl5; 346 (2) :289-94 )，从而限制了 MAR元件在双亚基共表达载体中的应用。
[0004] 因此，开发一种更为有效的哺乳动物细胞表达载体，一直是本领域的技术人员急 待解决的问题。
【发明内容】
[0005] 本发明的目的是提供一种可以提高导入基因在哺乳动物细胞中表达的表达载体， 所述表达载体两端含有人工转录因子结合位点的核基质附着区的MR核心片段。该表达载 体可有效提高蛋白在哺乳动物细胞中的产量并降低生产成本。具体地，发明公开了 ：
[0006] 1、一种分离的重组表达载体的MAR核心片段，其核苷酸碱基序列如SEQ ID NO :1、 SEQ ID NO :2 或 SEQ ID NO :3 所示。
[0007] 2、一种重组表达载体，所述载体两端含有上述1所述的MR核心片段。
[0008] 3、上述2所述载体，其所述MAR核心片段插入在启动子的上游及聚腺苷酸化位点 的下游。
[0009] 4、上述3所述载体，所述启动子为CMV、SV40或EF-Ia启动子。优选地，所述MAR 核心片段插在载体上游FSP I位点，或SV40PA下游Afe I位点，或PEF-Ia上游Nhe I位 点，或BGH PA下游EcoRV位点。最优选上游FSP I位点及PEF-Ia上游Nhe I位点。
[0010] 5、上述 2-4 任一所述载体，所述载体为 pBudCE4. l、pDRl、pcDNA3. I ( + )、pDHFF 或 pCHOl. 0,或者上述载体的改造载体。
[0011] 6、上述5所述载体，所述载体为pBudCE4. 1改造的载体，所述载体核苷酸序列如 SEQ ID NO :4、SEQ ID NO :5 或 SEQ ID NO :6 所示。
[0012] 7、上述2-6任一所述载体，其中所述载体包含一个或多个编码一种或多种重组蛋 白的功能重组基因。
[0013] 8、一种宿主细胞，其包含上述7所述的载体。
[0014] 9、上述8所述的细胞，其为哺乳动物细胞，包括但不限于选自以下所述的组：中 国仓鼠卵巢（CHO)细胞、COS细胞、Vero细胞、SP2/0细胞、NS/0骨髓瘤细胞、人类胚肾 (HEK293)细胞、幼仓鼠肾（BHK)细胞、Hela细胞、人类B细胞、CV-1/EBNA细胞、L细胞、3T3 细胞、HEPG2细胞、PerC6细胞和MDCK细胞。
[0015] 10、一种制备重组蛋白的方法，所述方法包括转录和翻译存在于上述任一所述表 达载体上的一个或多个编码所述重组蛋白的基因。
[0016] 本发明的表达载体尤其适合应用于哺乳动物细胞，特别是中国仓鼠卵巢细胞CHO 的表达。
[0017] 本发明的两端加有人工转录因子结合位点的MAR核心片段DNA序列可插入哺乳动 物细胞表达载体，从而大大提高导入的哺乳动物基因在哺乳动物细胞中表达，且稳定性很 好。
[0018] 本发明提供了一种哺乳动物细胞表达载体，所述表达载体含有两端加有人工转录 因子结合位点的MAR核心片段DNA序列.如本发明实例列举的，所述表达载体为改造的 pBudCE4. 1载体，所述改造的pBudCE4. 1载体，在SV40聚腺苷酸化位点及BGH聚腺苷酸化 位点下游分别插入Afe I和EcoR V限制酶切位点。用kanamycin抗性基因及DHFR基因替 换pBudCE4. 1中的Zeocin抗性基因。所述改造载体命名为pBCML 1，pBCML 2, pBCML 3,其 DNA序列分别为SEQ ID No. 4,5,6所示。不含上述核基质结合区元件片段及人工转录因子 结合位点DNA的改造载体命名为pBCMl. 0, DNA序列如SEQ ID No7所示。
[0019] 本发明的两端加有人工转录因子结合位点的MAR核心片段DNA序列可用常规的合 成方法制备。
[0020] 将本发明的两端加有人工转录因子结合位点的MAR核心片段的质粒与不含两端 加有人工转录因子结合位点的MAR核心片段的质粒做比较。通过测定外源蛋白在上述两种 质粒的表达量，结果表明，本发明的两端加有人工转录因子结合位点的MR核心片段的质 粒特别适用于CHO细胞，与不含两端加有人工转录因子结合位点的核基质结合区元件MAR 核心片段的质粒相比，动物细胞中的外源蛋白的表达量获得大幅提高，表达量提高了 10-17 倍。高产细胞株的比例提高了 25-40倍。
[0021] 将外源蛋白（例如治疗性蛋白、抗体）的基因插入本发明的表达载体中，然后转染 至哺乳动物细胞，可用于外源蛋白（例如治疗性蛋白、抗体）的生产。
【附图说明】
[0022] 附图1含本发明MAR核心片段的表达载体与不含MAR基因或含MAR全长基因序列 的表达载体平均GFP表达量对比图。
[0023] 附图2含本发明MAR核心片段的表达载体与不含MAR基因或含MAR全长基因序列 的表达载体的GFP平均高表达细胞株比例对比图。
[0024] 附图3含本发明MAR核心片段的表达载体与不含MAR基因或含MAR全长基因序列 的表达载体平均CAT表达量对比图。
[0025] 附图4含本发明MAR核心片段的表达载体与不含MAR基因或含MAR全长基因序列 的表达载体的CAT平均高表达细胞株比例对比图。
[0026] 附图5 pBCML 0质粒结构图。
【具体实施方式】
[0027] 以下实施例、实验例是对本发明进行进一步的说明，不应理解为对本发明的限制。
[0028] 本发明实施例所列举的表达载体，是由pBudCE4. 1载体(购自：Life Technologies)改造获得：包括在SV40聚腺苷酸化位点及BGH聚腺苷酸化位点下游分别 插入AfeI和EcoR V限制酶切位点；将卡那霉素抗性基因 （Kanamycin Resistance Gene), PGK 启动子，二氢叶酸还原酶（DHFR)，及 SV40PA 从 pCHOl.O (购自 Life Technologies)中 PCR出，并通过NheI和AfeI位点装入pBudCE4. 1中，并同时去除Zeocin抗性基因；将氯霉 素乙醜转移酶基因 （Chloramphenicol Acetyltransferase gene，CAT 基因）从 pBudCE4. 1/ lacZ/CAT(购自 Life Technologies)中 PCR 出，并通过 Kpn I 和 Bgl II 位点装入 pBudCE4.1 中；将绿色突光蛋白基因 （Green Fluorescent Protein gene，GFP 基因）从 PCDNA3. 1/ CT-GFP-T0P9 (购自 Life Technologies)中 PCR 出，并通过 Pst I 和 BamH I 位点装入 pBudCE4. 1。
[0029] 实施例lpBudCE4. 1中引入Afe I和EcoR V限制酶切位点
[0030] 通过点突变的方法将Afe I和EcoR V限制酶切位点引入SV40聚腺苷酸化位点及 BGH聚腺苷酸化位点下游。用Quickchange点突变试剂盒(购自安捷伦科技公司)进行点突 变。引入Afe I酶切位点。
[0031] 正向引物：5' -GGAAAACGATTCCGAAGC GCT AC-3'
[0032] 反向引物：5' -CCT TCT ATG AAA GGT AGC GCT TCG-3'
[0033] 定点突变PCR扩增条件如下：1、95C30秒；2、95C30秒；3、55C1分钟；4、68C5分钟； 5、2-4重复18循环。
[0034] 加入Dpn I酶将模板质粒消化，然后转化XLl-Blue感受态大肠杆菌。具体步骤 如下：1.新鲜制备的或-20°C下保存的IOOuL感受态细胞(购自安捷伦科技)，置于冰上，完 全解冰后轻轻地将细胞均匀悬浮。2.加入Dpn I酶(购自：NEB公司）消化后的质粒，轻轻 混匀。3.冰上放置30分钟。4.42 °C水浴热激60秒。5.冰上放置2分钟。6.