用于检测樱桃ssr标记的引物的制作方法

文档序号:9575262阅读:585来源:国知局
用于检测樱桃ssr标记的引物的制作方法
【技术领域】
[0001] 本发明设及分子生物学DNA标记技术与应用领域,特别设及用于检测樓桃SSR标 记的引物。
【背景技术】
[0002] 简单重复序列(SimpleSequenceR巧eat,SSR),也称为串联重复序列或微卫星标 记,是一种共显性标记,具有多态性高,重复性好,易于检测的优点,被广泛应用于种质资源 亲缘关系鉴定、遗传图谱构建、功能基因的筛选和分子标记辅助育种等工作中。SSR标记的 获取通常有3种途径,分别是:利用已公布的表达序列标签、利用已完成测序的基因组序列 和利用转录组序列。
[0003] 中国樓桃(Primuspseudocerasus)的近缘物种有桃(P.persica)、杏 (P.armeniaca)、李(P.salicina)和欧洲甜樓桃(P.avium)等,其中桃的基因组已经完成测 序。尽管用于桃遗传图谱构建、功能基因的筛选和分子标记辅助育种的SSR标记比较丰富, 而且同科或同属植物SSR标记有一定程度的转移性,但是多数情况下,侧翼序列突变导致 SSR标记向近缘物种转移的成功概率很低。截至2015年11月20日,GenBank公布的欧洲 甜樓桃表达序列标签巧ST)有6496条,中国樓桃仅有185条,但利用EST序列开发中国樓 桃SSR标记的研究尚未见报道。显然,由于GenBank登录的欧洲甜樓桃和中国樓桃的表达 序列标签数量非常有限,所能开发的SSR标记的数量也是有限的。应用新一代高通量测序 平台IlluminaHiseqTM2000能够W较低的价格、较快的速度获得较多的转录组信息,是大 量开发中国樓桃SSR标记的有效方法。因此,如能利用EST序列开发中国樓桃SSR标记,增 加樓桃属分子标记的数量,势必会对今后的樓桃育种工作带来极大的便利。

【发明内容】

[0004] 本发明要解决的技术问题是,克服现有技术中樓桃分子标记数量不足的缺点,提 供一组用于检测樓桃属植物SSR标记的引物,增加樓桃属分子标记的数量W应用于今后的 育种工作中。
[0005] 为了解决技术问题,本发明提出了用于检测樓桃SSR标记的引物,该检测引物共 有9个引物对,其核巧酸序列如下:
[0006] 化2632-F和化2632-R的核巧酸序列分别如沈QIDNO: 1、2所示;
[0007] 化3793-F和化3793-R的核巧酸序列分别如沈QIDN0:3、4所示;
[0008] 化4400-F和化4400-R的核巧酸序列分别如沈QIDN0:5、6所示;
[0009] Unigenel3394-F和Unigenel3394-R的核巧酸序列分别如沈QIDN0:7、8 所示;
[0010] Unigenel3887-F和Unigenel3887-R的核巧酸序列分别如沈QIDN0:9、10 所示;
[0011] 化1旨611616590斗和化1旨611616590-1?的核巧酸序列分别如沈9 10側:11、12所示;
[0012] 化1旨611619771斗和化1旨611619771-1?的核巧酸序列分别如沈9 10側:13、14所示;
[0013] Unigene8656-F和Unigene8656-R的核巧酸序列分别如沈QIDNO: 15、16 所示;
[0014] 化4698-F和化4698-R的核巧酸序列分别如沈QIDNO: 17、18所示。
[0015] 本发明还提出上述用于检测樓桃SSR标记的引物在樓桃遗传多样性分析中的应 用。
[0016] 此外,本发明还提出利用上述用于检测樓桃SSR标记的引物进行樓桃遗传多样性 分析的方法,所述方法包括如下步骤:
[0017] 步骤I,各樓桃材料的DNA提取; 阳01引步骤II,微卫星分析:
[0019] (1)、PCR扩增:W步骤I提取的DNA为模板进行PCR扩增;
[0020] A:20μL反应体系包含:TaKaRaPremixTaq? 10化、正向引物0. 1化,反向引物 0. 5μL巧光修饰的M13引物0. 4μLlOngDNA模板和双蒸水; 阳02UB:反应程序:94°C预变性4min;94°C变性40s,54°C退火40s,72°C延伸40s,30个 循环后,改变循环条件为94°C变性40s,53°C退火40s,72°C延伸40s,进行8个循环,最后 72°C延伸6min; 阳02引 似、电泳检测:
[0023] 取上述扩增产物5μL加入1μL6XLoadingbuffer;在含有0. 5μg/μL邸的 1. 5%的琼脂糖凝胶上电泳,紫外灯下拍照记录结果;
[0024] (3)、SSR基因分型和GeneMapper软件统计:
[00巧]选取上述在不同樓桃材料中电泳条带粗细、明暗、片段长度变化不一的标记1μL约lOOng的PCR产物与12μL变性剂和0. 25μL内参混匀,使用lippendorfMasteixycler PCR仪在95°C下变性5min,取出立即放置冰上5min,然后使用ABI3130遗传分析仪进行分 析,同时使用GeneMa卵er软件读取片段长度;
[0026] 步骤III,遗传多样性分析
[0027] 将GeneMa卵er统计得到的标记长度数据按照标准格式输入GenA化X6. 501,计 算樓桃材料的遗传多样性参数,绘制聚类图。 阳02引优选的,在上述正向引物的5'端统一加18bp的M13序列: 5' -TGTAAAACGACGGCCAGT-3'。
[0029] 优选的,所述巧光标识引物为5'端分别使用Fam和Hex两种巧光基团修饰的Ml3 引物,其中M13引物的序列为5' -TGTAAAACGACGGCCAGT-3'。
[0030] 优选的,所述樓桃材料为中国樓桃材料,来自如下:朱红1、临海地方品种1、朱砂 红、山樓1、朱红2、朱红3、山樓2、早红宝石1、朱红4、浙闽樓、早红宝石2、临海地方品种2、 诸暨地方品种、朱红5、仙居地方品种、中国樓桃1、中国樓桃2、中国樓桃3、中国樓桃4、大鹰 嘴、中国樓桃5、高盆樓桃。 阳〇3U 优选的,所述步骤I的DM提取步骤为:(1)配制DM提取液:2 %CTAB,0. 1M Tris,20mM邸TA,1. 4M化Cl,p册.0;DNA溶解缓冲液:10mMTris;lmM邸ΤΑ;PH=8. 0 ;似 对中国樓桃材料进行如下处理: 阳03引①在10血离屯、管中加入4血的DNA提取液和80μLβ-琉基乙醇,放置在65°C水 浴中预热lOmin;
[0033] ②取Ig中国樓桃材料的新鲜叶片,在研鉢放入少许PVP,加入液氮充分研磨;将研 磨好的叶片转移至含DNA提取液的离屯、管中,混匀后放入65°C水浴锅中水浴30min,每隔 lOmin摇匀一次,使叶片细胞充分裂解;
[0034] ③水浴结束后,取出离屯、管冷却至室溫;加入4血的预冷V:V= 24:1的氯仿/异 戊醇混合溶液,充分混匀后使用离屯、机在10 00化pm下离屯、15min;
[0035] ④用移液器小屯、吸取上清液,转移至新的10血离屯、管中,加入4血的异丙醇和 400化的3M的醋酸钢溶液,轻轻颠倒混匀,静置10-15min至产生絮状沉淀,然后使用离屯、 机在10 000巧m下离屯、lOmin;
[0036] ⑥离屯、后弃上清液,将底部白色沉淀即:DNA小屯、取出,转入1. 5血离屯、管中,加入 700μL70 %的乙醇洗涂两次;
[0037] ⑧离屯、后弃上清液,用移液器吸干剩余酒精,将白色沉淀物收集在侧管壁上,尽可 能铺平打薄,放入37Γ保溫箱中烘干;
[0038] ⑦加入500μLDNA溶解缓冲液将烘干后的DNA重新溶解,完全溶解后加入1μL RNase,用移液器轻轻吸打DM溶液,混匀后将离屯、管放入37°C保溫箱中保溫比;
[0039] ⑨取4μΙDNA在1%的琼脂糖凝胶上进行电泳检测其完整性。 W40] ⑨吸取一部分DNA稀释至10-3化g·μL/用于后续的PCR反应,剩余部分置 于-20°C保存。
[0041] 相对于现有技术,本发明的有益效果是:
[0042] (1)本发明利用本课题组前期开发的中国樓桃"短柄"品种休眠花芽组织的转录组 信息寻找SSR位点,经13种中国樓桃品种或地方品种及7个野生中国樓桃共22个不同樓 桃基因型筛选,得到9个具有多态性的通用型标记。
[0043] 本发明筛选出9个SSR标记在22个中国樓桃种或品种中有多态性,在22个中国樓 桃种或品种
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