检测f8基因突变的扩增引物、试剂盒及方法

文档序号:9838681阅读:1966来源:国知局
检测f8基因突变的扩增引物、试剂盒及方法
【技术领域】
[0001] 本发明属于体外基因检测领域,尤其设及一种检测F8基因突变的扩增引物、试剂 盒及方法
【背景技术】
[0002] 血友病化emo地ilia)是一种遗传性凝血功能障碍的出血性疾病,患者由于凝血因 子基因突变而导致凝血因子浓度下降或缺乏,从而造成凝血时间延长、轻微创伤后有出血 倾向性。根据缺乏凝血因子的不同,临床上分为血友病A(hemophiIia A,HA)和血友病B 化emopMlia B,皿)。其临床表现主要为自发性、轻微外伤后出血难止或创伤、手术后严重 出血等。出血的部位常见于负重的大关节(如膝、肘、踩、腕、骼、肩等)和肌肉/软组织,也可 表现为内脏出血(如腹腔内、腹膜后、泌尿、消化、呼吸道等)、皮肤、黏膜出血(如皮肤渺血、 鼻出血、口腔出血、牙銀出血等)。由于凝血因子VDKVDI因子)和凝血因子K(IX因子)的编码 基因位于X染色体上,因此大多数血友病患者分布于男性,男性人群中血友病A和B的发病率 分别约为1/5000和1/30000。其中,血友病A化emophilia A,HA)是最常见的X连锁隐性遗传 性出血性疾病,由于FVIII的遗传性缺陷或缺乏所致,从而引起凝血功能障碍,发病率在男 性中约为1/5000,女性通常为携带者,约60 %患者有遗传病家族史。患者常常发生自发性或 者外伤后出血不止,反复关节出血往往导致关节崎形,重要脏器出血可危及生命,目前尚无 有效的根治方法,患者主要输注FVIII制品或新鲜全血预防和治疗出血。由于HA的危害性、 遗传性及终生性,有必要开展HA的基因检测,为临床干预和遗传咨询提供依据。遗传学研究 表明血友病A主要由F8基因突变引起;该基因位于X性染色体长臂末端((Xq28,ChrX: 154, 064,070-154,250,998,in hgl9),其长度约有18化b并转录形成大约化b的mRNA;该基因含 有26个外显子(exon),各外显子的大小不一,范围在69bp至3106bp之间。F8基因结构复杂, 突变种类多,包括基因点突变、缺失、插入和倒位等,可能设及整个基因,几乎覆盖了所有外 显子的区域,因此特异性检巧权8基因突变较为困难。很多年来,F8基因的复杂性导致很难对 F8基因进行有效地突变分析。直到1991年,Higuchi等人首次使用变性梯度凝胶电泳法 (denaturing gradient gel elec1:;rophoresis,DGGE) W分析F8基因的整个编码区,在29个 轻度或中度血友病A患者(包括15名德国人和14名日本人)中发现25名(86 % )患者F8基因致 病突变,而在重度血友病A患者中仅发现53%的患者F8基因致病突变。在1998年,Liu等首先 基于LD-PCR技术建立了Inv22突变检测方法,随后Bagnall等在2002年基于LD-PCR技术建立 了 Invl突变检测方法,运两种方法一直沿用至今。随后,多种突变筛查方法,如单链构象多 态性(single strand conformation polymorphism, SSCP)、构象敏感凝胶电泳 (conformation sensitive gel electrophoresis)、DGGE和化学裂解错配(chemical cleavage mismatch)分析方法,被使用于许多实验室。但运些分析方法仍只能检出的血友 病A患者中80-90 %的F8基因突变。对F8基因的直接测序(PCR扩增+Sanger测序),并且针对 血友病A患者的F8基因突变检出率可达97%。最近几年随着二代测序技术的发展,二代测序 技术也逐渐在各实验室使用并应用于血液疾病的遗传检测分析。目前,对PCR产物进行直接 Sanger测序是常用的F8基因检测方法,虽然该方法更为准确,但测序工作量巨大、效率低, 对操作人员要求较高,限制了该方法的大规模临床应用,仅能在有条件的实验室开展。
[0003] 当前,CN102230002A公开了一种检测血友病致病基因 F8基因和F9基因是否发生突 变的试剂盒,但其在扩增F8基因过程中所需要使用的引物组达24对,每对引物需要单独扩 增,虽然较为准确,但方法过于繁琐,反应体系需要后续纯化,再结合Sanger进行后续处理, 检测成本过高、效率低、分析困难。蔡晓红等(女性血友病A FVIII基因的双重杂合突变一例 基因分析,《血栓与止血学》,2005年,第11卷第02期,52-56页)采用的方法与CN102230002A 类似,也有类似的缺陷。
[0004] 第二代测序技术(next-generation sequencing,NGS)具有高通量、快速、准确和 成本低的优点,可实现多样本、多个基因、多外显子的同时检测。其中,Life Technologies 公司的Ion torrent PGM高通量测序平台是其中的代表,它是基于半导体忍片的新一代革 命性测序技术,使用一种布满小孔的高密度半导体忍片,一个小孔就是一个测序反应池;当 DNA聚合酶把核巧酸聚合到延伸中的DNA链上时会释放出一个H+,反应池中的pH值发生变 化,位于池下的离子感受器感受到此信号,把化学信号直接转化为数字信号,从而读出DNA 序列。Ion Torrent测序平台原理不同于其他第二代测序技术,不属于核酸标记、巧光检测 的生化技术,相比其他测序技术,更简单、经济,具有强大的扩展性。在上千万个纳米孔中, 同时对上百万的序列进行大规模平行测序,此项技术的产生摆脱了一代测序技术效率低, 费时费力的特点。因此,Ion torrent PGM测序技术可W对PCR产物进行直接测序,而不需要 片段化处理,而且采用标签技术,不需要对每个样本单独建库,可W显著提高检测通量,降 低单个样品的检测成本。目前还未有将多重PCR技术和Ion torrent PGM测序技术结合,并 将其应用于F8基因检测的研究。

【发明内容】

[0005] 本发明的目的是为了克服W上不足,将多重PCR技术和Ion torrent PGM测序技术 结合,并将其应用于F8基因检测。本发明通过设计了一组多重的引物,结合多重PCR技术,实 现了对F8基因26个外显子编码区的同步扩增富集,大大简化了实验操作;再结合标签技术, 使多个样本混合成一个文库通过Ion Torrent PGM测序文库构建环节同时处理,大大简化 了实验操作,最终每个样本的检测结果可W通过其独特的标签序列找回,实现多样本平行 测序,提高了检测效率,降低了检测成本。而在本发明的优化PCR引物设计,采用65个PCR反 应可W在单管中同步扩增获得F8基因全部外显子序列及侧翼内含子序列,与其它目标区域 捕获技术(如忍片捕获技术)相比,该方法操作更为简单,成本较低,而且结合Ion Torrent 半导体测序技术后更为节约了检测时间和检测成本,弥补了已有二代高通量测序方法工作 时间过长的缺陷
[0006] 本发明提供的技术方案为:
[0007] 用于多重PCR特异性扩增检测F8基因突变的引物组,所述PCR引物共65对,分别如 下:
[000引用于扩增F8基因外显子1和内含子1的引物,其正向引物如SEQ ID NO: 1所示,反向 引物如沈Q ID NO:2所示;
[0009] 用于扩增F8基因内含子巧Ij外显子2的引物,其正向引物如SEQ ID N0:3所示,反向 引物如沈Q ID NO :4所示;
[0010] 用于扩增F8基因外显子巧Ij内含子2的引物,其正向引物如SEQ ID N0:5所示,反向 引物如沈Q ID NO:6所示;
[0011]用于扩增F8基因内含子巧IJ内含子3的引物,其正向引物如SEQ ID N0:7所示,反向 引物如沈Q ID NO:8所示;
[001引用于扩增F8基因内含子巧Ij外显子4的引物,其正向引物如SEQ ID N0:9所示,反向 引物如SEQ ID NO: 10所示;
[001引用于扩增F8基因外显子巧IJ内含子4的引物,其正向引物如SEQ ID N0:11所示,反 向引物如沈Q ID NO: 12所示;
[0014]用于扩增F8基因内含子巧IJ内含子5的引物,其正向引物如SEQ ID NO: 13所示,反 向引物如沈Q ID NO: 14所示;
[001引用于扩增F8基因内含子巧IJ内含子6的引物,其正向引物如SEQ ID NO: 15所示,反 向引物如沈Q ID NO: 16所示;
[0016]用于扩增F8基因内含子巧IJ外显子7的引物,其正向引物如SEQ ID N0:17所示,反 向引物如沈Q ID NO: 18所示。
[0017]用于扩增F8基因外显子巧IJ内含子7的引物,其正向引物如SEQ ID N0:19所示,反 向引物如SEQ ID NO: 20所示。
[0018]用于扩增F8基因内含子7到外显子8的引物,其正向引物如SEQ ID N0:21所示,反 向引物如SEQ ID NO: 22所示。
[0019]用于扩增F8基因外显子巧IJ内含子8的引物,其正向引物如SEQ ID N0:23所示,反 向引物如SEQ ID NO: 24所示。
[0020]用于扩增F8基因内含子8到外显子9的引物,其正向引物如SEQ ID N0:25所示,反 向引物如SEQ ID NO: 26所示。
[0021 ]用于扩增F8基因外显子巧IJ内含子9的引物,其正向引物如SEQ ID N0:27所示,反 向引物如SEQ ID NO: 28所示。
[0022] 用于扩增F8基因内含子9到外显子10的引物,其正向引物如SEQ ID N0:29所示,反 向引物如SEQ ID NO: 30所示。
[0023] 用于扩增F8基因内含子10到外显子11的引物,其正向引物如SEQ ID N0:31所示, 反向引物如SEQ ID NO: 32所示。
[0024] 用于扩增F8基因外显子11到内含子11的引物,其正向引物如SEQ ID N0:33所示, 反向引物如SEQ ID NO: 34所示。
[0025] 用于扩增F8基因内含子11到内含子12的引物,其正向引物如SEQ ID N0:35所示, 反向引物如SEQ ID NO: 36所示。
[0026] 用于扩增F8基因外显子12到内含子12的引物,其正向引物如SEQ ID N0:37所示, 反向引物如SEQ ID NO: 38所示。
[0027] 用于扩增F8基因内含子12到外显子13的引物,其正向引物如SEQ ID N0:39所示, 反向引物如SEQ ID NO:40所示。
[002引用于扩增F8基因外显子13到内含子13的引物,其正向引物如SEQ ID N0:41所示, 反向引物如SEQ ID N0:42所示。
[0029] 用于扩增F8基因内含子13到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:43所示, 反向引物如SEQ ID NO:44所示。
[0030] 用于扩增F8基因外显子14到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:45所示, 反向引物如SEQ ID NO:46所示。
[0031 ] 用于扩增F8基因外显子14到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:47所示, 反向引物如SEQ ID NO:48所示。
[0032] 用于扩增F8基因外显子14到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:49所示, 反向引物如SEQ ID NO: 50所示。
[0033] 用于扩增F8基因外显子14到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:51所示, 反向引物如SEQ ID NO: 52所示。
[0034] 用于扩增F8基因外显子14到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:53所示, 反向引物如SEQ ID NO: 54所示。
[003引用于扩增F8基因外显子14到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:55所示, 反向引物如SEQ ID NO: 56所示。
[0036] 用于扩增F8基因外显子14到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:57所示, 反向引物如SEQ ID NO: 58所示。
[0037] 用于扩增F8基因外显子14到外显子14的引物,其正向引物如SEQ ID N0:59所示, 反向引物如SEQ ID N0:60所示。
[003引用于扩增F8基因外显
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