嵌合抗原受体及其基因和重组表达载体、car133-nkt细胞及其制备方法和应用
【专利摘要】本发明属于肿瘤生物制品领域,公开了一种嵌合抗原受体及其基因和重组表达载体、CAR133?NKT细胞及其制备方法和应用,所述嵌合抗原受体为CD133ScFv?CD8?CD137?CD3ζ,包括串联的大鼠生长激素信号肽、CD133ScFv、CD8的铰链区和跨膜区、CD137的胞内信号结构域和CD3ζ的胞内信号结构域。采用本发明的CAR133?NKT细胞与CD133阳性的上皮肿瘤细胞共培养时,对CD133阳性上皮肿瘤细胞具有很好的特异杀伤活性。
【专利说明】
嵌合抗原受体及其基因和重组表达载体、CAR133-NKT细胞及 其制备方法和应用
技术领域
[0001 ]本发明属于肿瘤生物制品领域,具体地,涉及过继免疫治疗中的一种嵌合抗原受 体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G及其基因和重组表达载体、工程化CD133靶向性的NKT细胞 (CAR133-NKT细胞)及其制备方法和应用。
【背景技术】
[0002] 自然杀伤细胞(NKT)是一种特殊类型的T淋巴细胞亚群,具有T细胞和NK细胞细胞 两重性质。NKT细胞能表达T细胞的TCR与NK细胞的NKR-P1两种受体,在TCR和NKR介导下,NKT 细胞能够产生大量的IL-4及INF γ,对肿瘤细胞发挥细胞杀伤作用。NKT细胞通过自身表面 的CD16与特异性抗体的Fc段结合,发挥抗体依赖性的细胞介导的细胞毒作用(ADCC, antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity)。但在抗体依赖的细胞介导的杀伤作 用过程中,由于抗体能与靶细胞上的相应抗原表位特异性结合,NKT细胞可杀伤任何已与抗 体结合的靶细胞,因此抗体与靶细胞上的抗原结合是特异性的,但NKT细胞对靶细胞的杀伤 作用是非特异性的。另外,通常情况下,输注的NKT细胞在患者体内半衰期为2周左右,有效 期短暂,需要反复多次输注。而且,NKT细胞本身缺少特异性抗体,不足以在肿瘤周围或者瘤 巢中富集,制约了NKT细胞对恶性肿瘤的靶向治疗。再者,研究表明,NKT细胞并不是对所有 的肿瘤都有杀伤效果,且对部分肿瘤的杀伤作用比较弱,特异杀伤活性有待提高,NKT细胞 对肿瘤干细胞的免疫监视目前仍然存在争议。
[0003] 肿瘤干细胞是一类特殊的肿瘤细胞,其占肿瘤细胞的比率较低,但具有自我更新, 并分化为其他不同肿瘤细胞的潜能。大量研究指出,肿瘤干细胞与肿瘤的复发及远端转移 具有很大的相关性,并且可能是肿瘤对放化疗产生抵抗的缘由。CD133是细胞表面的糖蛋 白,可作为分离肿瘤组织中肿瘤干细胞的标记。另外,CD133在多种肿瘤细胞表面呈现高表 达,如结直肠癌、肝癌、胆管癌、胰腺癌、食管癌、胃癌、卵巢癌、肺癌、前列腺癌、膀胱癌、乳腺 癌、子宫内膜癌、脑肿瘤、黑色素瘤或神经胶质瘤等。研究发现肿瘤起始细胞群里含有大量 的⑶133阳性的细胞,同时,⑶133的高表达与肿瘤治疗差的预后有关,由于以上特性,⑶133 抗原成为以抗体为基础治疗的理想靶点,但目前仍没有一种对肿瘤特异杀伤活性较高的制 剂。
【发明内容】
[0004] 本发明的目的是为了克服现有技术中NKT细胞对肿瘤的杀伤作用比较弱、特异杀 伤活性有待提高的缺陷,充分利用CD133治疗肿瘤的理想靶点的作用,提供一种嵌合抗原受 体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G及其基因和重组表达载体、工程化CD133靶向性的NKT细胞 (CAR133-NKT细胞)及其制备方法和应用。
[0005] 本发明的发明人在研究中意外发现,采用本发明的嵌合抗原受体⑶133ScFv_⑶8-CD137-CD3G修饰的NKT细胞与CD133阳性的上皮肿瘤细胞共培养时,对肿瘤细胞具有很好的 特异杀伤活性。
[0006] 因此,为了实现上述目的,第一方面,本发明提供了一种嵌合抗原受体,所述嵌合 抗原受体为CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G,包括串联的大鼠生长激素信号肽、CD133ScFv、CD8 的铰链区(hinge区)和跨膜区、CD137的胞内信号结构域和CD3G的胞内信号结构域。
[0007] 第二方面,本发明提供了编码上述嵌合抗原受体的基因。
[0008] 第三方面,本发明提供了含有上述基因的重组表达载体。
[0009] 第四方面,本发明提供了 一种工程化⑶133靶向性的NKT细胞,所述NKT细胞是上述 嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G修饰的NKT细胞。
[0010] 第五方面,本发明提供了一种工程化⑶133靶向性的NKT细胞的制备方法,所述方 法包括:包装携带pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的慢病毒,得到病毒浓缩液;利用得到 的病毒浓缩液感染NKT细胞,使NKT细胞表达嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G。
[0011] 第六方面,本发明提供了上述方法制备得到的工程化CD133靶向性的NKT细胞。 [0012]第七方面,本发明提供了上述工程化CD133靶向性的NKT细胞在制备用于治疗肿瘤 的制剂中的应用。
[0013] 第八方面,本发明提供了一种治疗CD133阳性的上皮肿瘤和/或抑制肿瘤复发与转 移的方法,该方法包括:向CD 133阳性的上皮肿瘤患者体内回输本发明的工程化CD 133靶向 性的NKT细胞。
[0014] 在与CD133阳性的上皮肿瘤细胞共培养时,本发明的嵌合抗原受体CD133ScFv-⑶8-⑶137-⑶3ζ修饰的NKT细胞,即工程化⑶133靶向性的NKT细胞能够特异性结合⑶133抗 原,增强免疫细胞靶向识别癌细胞表面CD 133抗原的能力,加强对CD 133阳性靶细胞的特异 杀伤活性。本发明的工程化CD133靶向性的NKT细胞为治疗CD133阳性的肿瘤及阻遏肿瘤转 移与复发提供了一种新的选择,具有良好的产业应用前景。
[0015] 本发明的其它特征和优点将在随后的【具体实施方式】部分予以详细说明。
【附图说明】
[0016] 图1为流式细胞术对分离培养的NKT细胞表型分析的结果。
[0017] 图2为本发明的慢病毒表达载体pWPXL-CD8-CDl 37-〇)3ζ的限制性内切酶Mlul/ Ndel双酶切片段的电泳鉴定图。
[0018] 图3为本发明的慢病毒表达载体pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的限制性内切 酶BamHI/Ndel双酶切片段的电泳鉴定图。
[0019] 图4为本发明的慢病毒表达载体pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的结构示意 图,其中,逆时针序列为正向基因片度,顺时针为反向基因片段。
[0020] 图5为流式细胞术检测含有嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的病毒浓缩 液对NKT细胞的感染效率。
[0021] 图6为流式细胞术检测嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G修饰的NKT细胞 (CAR133-NKT细胞)表型鉴定的结果。
[0022] 图7(A)-图7(C)为本发明的实施例4中不同CD133表达水平的上皮肿瘤细胞的 ⑶133表达水平分析图。
[0023]图8为本发明的实施例4中CAR133-NKT细胞对不同⑶133表达水平的上皮肿瘤细胞 的杀伤作用分析图(4小时)。
[0024]图9为本发明的实施例4中CAR133-NKT细胞对不同⑶133表达水平的上皮肿瘤细胞 的杀伤作用分析图(8小时)。
[0025] 图10为本发明的实施例5中SW620和HT29的CD133表达水平分析图。
[0026] 图11为本发明的实施例5中注射生理盐水、NKT细胞、Mock细胞、CAR133-NKT细胞后 的肿瘤组织体积图。
[0027]图12为本发明的实施例6中CAR133-NKT细胞对造血系统的功能影响分析图。
[0028]图13(A)-图13(D)为本发明的实施例7中CAR133-NKT细胞对肝癌患者治疗的毒副 反应的分析图,分别显示了不同细胞回输后天数时血红蛋白(Hgb )、白细胞(WBC)、血小板 (PLT)和网织红蛋白(Ret)的变化趋势。
[0029]图14为本发明的实施例7中CAR133-NKT细胞拷贝数与肝癌患者CD133阳性细胞数 的变化曲线图。
[0030]图15为本发明的实施例7中肝癌患者的治疗效果的分析图。
[0031 ]图16为本发明的实施例8中CAR133-NKT细胞对胰腺癌患者的治疗效果图。
【具体实施方式】
[0032] 以下对本发明的【具体实施方式】进行详细说明。应当理解的是,此处所描述的具体 实施方式仅用于说明和解释本发明,并不用于限制本发明。
[0033] 本发明提供了一种嵌合抗原受体,所述嵌合抗原受体为⑶133ScFv_⑶8-⑶137-⑶3ζ,包括串联的大鼠生长激素信号肽、⑶133单链抗体⑶133ScFv、⑶8的铰链区和跨膜区、 CD137的胞内信号结构域和CD3G的胞内信号结构域。
[0034]优选情况下,嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G由大鼠生长激素信号肽、 CD133ScFv、CD8的铰链区和跨膜区、CD137的胞内信号结构域和CD3G的胞内信号结构域串联 构成。进一步优选地,嵌合抗原受体具有如SEQ ID NO. 1所示的氨基酸序列,更进一步优选 地,嵌合抗原受体的氨基酸序列如SEQ ID NO. 1所示。
[0035] 本发明提供了编码上述嵌合抗原受体的基因。优选情况下,所述基因具有如SEQ ID NO.2所示的核苷酸序列,进一步优选地,编码上述嵌合抗原受体的基因的核苷酸序列如 SEQIDN0.2**。
[0036] 本发明提供了含有上述基因的重组表达载体。优选情况下,重组表达载体为慢病 毒表达载体。对于慢病毒表达载体没有特别的限定,只要能够与辅助载体共转染包装细胞 如293T包装细胞,获得病毒浓缩液及嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G修饰的NKT 细胞即可,优选情况下,慢病毒表达载体为pWPXL-CDl 33ScFv-CD8-CDl 37-〇)3ζ。
[0037] 对于慢病毒表达载体pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的制备方法没有特别的 限定,可以为本领域技术人员能够想到的各种方法,优选情况下,慢病毒表达载体口1?父1^-CD133ScFv-CD8-CDl 37-〇)3ζ的制备方法包括以下步骤:
[0038] (1)从ΝΚΤ细胞cDNA中分别扩增CD8的hinge区和跨膜区、CD137的胞内信号结构域 和〇)3ζ的胞内信号结构域,并克隆至载体pWPXL-GFP中,构建得到pWPXL-CD8-CDl37-〇)3ζ; [0039] (2)合成编码大鼠生长激素信号肽和⑶133ScFv的核苷酸序列,并克隆至pWPXL- CD8-CD137-CD3G 中,经测序验证后得到序列正确的 pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G。
[0040] 步骤(1)中,对于从NKT细胞cDNA中分别扩增CD8的hinge区和跨膜区、CD137的胞内 信号结构域和CD3G的胞内信号结构域的方法没有特别的限定,可以为本领域常用的各种方 法,例如可以为RT-PCR法。其中,NKT细胞可以通过分离人静脉血中的单个核细胞,然后进行 培养获得。
[0041 ] 具体地,得到pWPXL-CD8-CD137-CD3G的方法可以包括:提取NKT细胞的总RNA,逆转 录获得NKT细胞cDNA,以得到的NKT细胞cDNA为模板,利用引物PI (SEQID NO. 11)和P2(SEQID N0.12)进行PCR扩增获得CD8基因的hinge区和跨膜区(SEQIDN0.3);利用引物P3(SEQID N0.13)和P4(SEQIDN0.14)进行PCR扩增获得CD137基因的胞内信号结构域(SEQIDN0.4) ; 利用引物P5(SEQID N0.15)和P6(SEQID N0.16)进行PCR扩增获得0)3ζ基因的胞内信号结构 域(SEQID勵.5),将获得的?0?产物分别进行双酶切,然后与組111/制61双酶切后的慢病毒 表达载体pWPXL-GFP连接。
[0042]步骤(2)中,对于合成编码大鼠生长激素信号肽和⑶133ScFv的核苷酸序列的方法 没有特别的限定,可以为本领域常用的各种方法,例如可以通过全基因合成技术合成。 [0043] 具体地,得到序列正确的pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的方法可以包括:通 过全基因合成技术合成编码大鼠生长激素信号肽和CD133ScFv融合基因的核苷酸序列 (SEQID N0· 8),克隆至载体pGSI 中,得到pGSI-CD133ScFv;然后将pGSI-CD133ScFv进行 BamHI/MluI双酶切,与用BamHI/MluI双酶切后的步骤(1)得到的重组质粒pWPXL-CD8-CD137-〇)3ζ连接,经测序鉴定,得到序列正确的pWPXL-CD 133ScFv-CD8-CD 137-〇)3ζ。其中, 大鼠生长激素信号肽的核苷酸序列如SEQID NO. 6所示,CD133ScFv核苷酸序列如SEQID NO. 7所示。
[0044] 本发明还提供了 一种工程化⑶133靶向性的NKT细胞,所述NKT细胞是由上述嵌合 抗原受体 CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G 修饰的 NKT 细胞(即 CAR133-NKT 细胞)。
[0045] 本发明还提供了 一种工程化⑶133靶向性的NKT细胞的制备方法,该方法包括:包 装携带pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的慢病毒,得到病毒浓缩液;利用得到的病毒浓 缩液感染NKT细胞,使NKT细胞表达嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G。
[0046] 对于包装携带pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的慢病毒的方法没有特别的限 定,可以为本领域技术人员常用的各种方法,优选情况下,将慢病毒表达载体PWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G 与辅助质粒(如 psPAX2、pMD2.G)共转染293T 包装细胞,转染 48-72h时收集病毒上清,离心、过滤,在滤液中添加5 X PEG6000-NaCl进行混匀,离心后弃上清, 沉淀用0-4 °C预冷的无菌PBS溶解,获得病毒浓缩液。
[0047]本发明的方法中,还包括通过如下方法制备NKT细胞:
[0048] (1)在CD3单克隆抗体、白介素-2和白介素-15存在下,将单个核细胞进行第一阶段 培养;
[0049] (2)在白介素-2存在下,将所述第一阶段培养的细胞进行第二阶段培养。
[0050] 优选情况下,所述第一阶段培养的实施方式包括:将单个核细胞培养于第一 NKT细 胞培养液中,所述第一NKT细胞培养液含有NKT细胞培养基、CD3单克隆抗体、白介素-2和白 介素-15;进一步优选地,第一NKT细胞培养液中,所述⑶3单克隆抗体的浓度为30-70ng/mL, 和/或所述白介素-2的浓度为300-700U/mL,和/或所述白介素-15的浓度为30-70ng/mL。
[0051] 优选情况下,所述第二阶段培养的实施方式包括:将所述第一阶段培养的细胞培 养于第二NKT细胞培养液中,所述第二NKT细胞培养液中含有NKT细胞培养基和白介素-2;进 一步优选地,第二NKT细胞培养液中,所述白介素-2的浓度为300-700U/mL。
[0052]对于NKT细胞培养基没有特别的限定,可以为本领域常用的各种用于培养NKT细胞 的培养基,例如可以为GT-T551培养基。
[0053]在制备NKT细胞时,对于第一阶段培养和第二阶段培养的条件没有特别的限定,可 以为本领域常用的各种条件,例如可以在30-37Γ、饱和湿度为3-6%的C02培养箱中进行培 养。本领域技术人员可以对培养的时间进行适应性调整,此为本领域技术人员所公知,在此 不再赘述。
[0054] 本发明制备得到的NKT细胞中,CD3+细胞平均比率>90%,⑶3+⑶8+细胞占总⑶3+细 胞的平均比率>70%;⑶3+CD56+细胞占总⑶3+细胞的平均比率>15%。
[0055]对于感染NKT细胞的方法没有特别限定,可以为本领域常用的各种方法,优选情况 下,该方法包括:
[0056] (1)在病毒浓缩液、鱼精蛋白和白介素_2存在下,将NKT细胞进行第一阶段感染培 养;
[0057] (2)在CD3单克隆抗体、白介素-2和白介素-15存在下,将所述第一阶段感染培养的 细胞进行第二阶段感染培养。
[0058]优选地,所述第一阶段感染培养的实施方式包括:将NKT细胞培养于第三NKT细胞 培养液中,所述第三NKT细胞培养液含有NKT细胞培养基、病毒浓缩液、鱼精蛋白和白介素-2;进一步优选地,第三NKT细胞培养液中,所述白介素-2的浓度为300-700U/mL。
[0059] 优选地,所述第二阶段感染培养的实施方式包括:将所述第一阶段感染培养的细 胞培养于所述第一NKT细胞培养液中。第一NKT细胞培养液的具体组成可参见前述相应内 容,在此不再赘述。
[0060] 在感染NKT细胞时,对于第一阶段感染培养和第二阶段感染培养的条件没有特别 的限定,可以为本领域常用的各种条件,例如可以在30-37 °C、饱和湿度为3-6 %的⑶2培养 箱中进行培养。本领域技术人员可以对培养的时间进行适应性调整,此为本领域技术人员 所公知,在此不再赘述。
[0061 ]具体地,感染NKT细胞的方法包括:取1 X 107-5X 107个NKT细胞,弃掉旧的培养液, 加入2-4mL新鲜GT-T551培养液,再加入200-400yL病毒浓缩液、2-4yL 1 X 10-6mg/mL鱼精蛋 白和终浓度为300-700U/mL的IL-2,置于30-37°C、饱和湿度为3-6%的C0 2培养箱中感染12-16h后,弃培养液,将细胞转至未包被的培养瓶中,加入20-50mL的GT-T551培养基,再加入终 浓度为300-700U/mL的IL-2、终浓度为30-70ng/ml的CD3单克隆抗体和终浓度为30-70ng/mL 的白细胞介素15,于30-37°C、饱和湿度为3-6 %的⑶2培养箱中培养12-18h,获得嵌合抗原 受体 CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G 修饰的 NKT 细胞。
[0062]进一步优选地,感染NKT细胞的方法还包括:
[0063] (3)先在白介素-2存在下,将所述第二阶段感染培养的细胞进行体外诱导,待细胞 的密度为80-90 %时,再在CD3单克隆抗体、白介素-2和白介素-15存在下,将细胞进行扩增 培养。
[0064]优选情况下,所述体外诱导的实施方式包括:将所述第二阶段感染培养的细胞培 养于所述第二NKT细胞培养液中,所述扩增培养的实施方式包括:将细胞培养于所述第一 NKT细胞培养液中。第一NKT细胞培养液和第二NKT细胞培养液的具体组成可参见前述相应 内容,在此不再赘述。
[0065]具体地,感染NKT细胞的方法还包括:将第二阶段感染培养后获得的慢病毒感染的 NKT细胞用IL-2的终浓度为300-700U/mL的GT-T551培养液进行体外诱导,待细胞的密度为 80-90%时将细胞转入细胞培养袋中,隔1.5-2.5天加入IL-2的终浓度为300-700U/mL、CD3 单克隆抗体的终浓度为30_70ng/ml、白细胞介素 -15的终浓度为30-70ng/mL的新鲜GT-T551 培养液进行扩增培养并将细胞扩增至总量为IX 109-2X 109个细胞。经过本发明的慢病毒对 靶向CD133抗原的嵌合抗原受体进行NKT细胞感染,其感染效率高达30%-60%,而获得的 CAR133-NKT细胞,其⑶3+CD56+细胞占总⑶3+细胞的比率在15 % -40 %范围之内。
[0066] 嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G修饰的NKT细胞表达的嵌合抗原受体的 蛋白氨基酸序列如SEQID NO. 1所示。其中,本领域技术人员应该理解的是,嵌合抗原受体前 体蛋白由大鼠生长激素信号肽、⑶133ScFv、⑶8的hinge区和跨膜区、⑶137的胞内信号结构 域和CD3G的胞内信号结构域串联构成,蛋白质翻译后在细胞内粗面型内质网切除信号肽后 成为成熟嵌合抗原受体蛋白,分泌输出后并定位于NKT细胞的细胞膜上。该嵌合抗原受体的 蛋白氨基酸序列对应的基因编码序列如SEQID N0.2所示。该嵌合抗原受体以基因 CD8的 hinge区和跨膜区及CD137和CD3G的胞内信号结构域串联而成的结构为信号传导结构域,其 氨基酸序列如SEQIDN0.9所示,对应的基因编码序列如SEQIDN0.10所示。
[0067]本发明还提供了上述方法制备得到的工程化⑶133靶向性的NKT细胞。
[0068]本发明还提供了工程化CD133靶向性的NKT细胞在制备用于治疗肿瘤的制剂中的 应用。优选情况下,肿瘤是CD133阳性的上皮肿瘤,进一步优选地,所述上皮肿瘤为结直肠 癌、肝癌、胆管癌、胰腺癌、食管癌、胃癌、卵巢癌、肺癌、前列腺癌、膀胱癌、乳腺癌、子宫内膜 癌、脑肿瘤、黑色素瘤或神经胶质瘤等。
[0069] 本发明的应用中,对于用于治疗CD133阳性的肿瘤的制剂的组成没有特别的限定, 只要含有本发明所述CAR133-NKT细胞或是由CAR133-NKT细胞制备而成即可,制剂的具体组 成和制备方法为本领域技术人员所熟知,在此不再赘述。
[0070] 本领域技术人员应该理解的是,上皮肿瘤为结直肠癌、肝癌、胆管癌、胰腺癌、食管 癌、胃癌、卵巢癌、肺癌、前列腺癌、膀胱癌、乳腺癌、子宫内膜癌、脑肿瘤、黑色素瘤或神经胶 质瘤等时,本发明的CAR133-NKT细胞能够识别CD133阳性的细胞,包括肿瘤起始细胞、肿瘤 干细胞、上皮祖细胞及肿瘤细胞,并发挥靶向杀伤活性,从而对前述不同种类的CD133阳性 上皮瘤均有杀伤作用,不仅能够清除原位肿瘤并且可抑制肿瘤细胞的转移,还可能减少肿 瘤的复发。
[0071] 本发明还提供了一种治疗CD133阳性的上皮肿瘤和/或抑制肿瘤复发与转移的方 法,该方法包括:向⑶133阳性的上皮肿瘤患者体内回输本发明的工程化⑶133靶向性的NKT 细胞。优选地,所述上皮肿瘤为结直肠癌、肝癌、胆管癌、胰腺癌、食管癌、胃癌、卵巢癌、肺 癌、前列腺癌、膀胱癌、乳腺癌、子宫内膜癌、脑肿瘤、黑色素瘤或神经胶质瘤。
[0072]实施例
[0073] 以下的实施例将对本发明作进一步的说明,但并不因此限制本发明。
[0074] 以下实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为本领域常规方法。下述实施例中所 用的实验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到,其中:
[0075] NKT细胞培养基GT-T551购自TaKaRa公司。
[0076] 淋巴细胞分离液购自TBD公司。
[0077] ⑶3单克隆抗体、重组纤维连接蛋白(retronectin)均购自TaKaRa公司。
[0078] 重组人蛋白干扰素_γ、重组人白介素2、重组人白介素15均购自protech公司。
[0079] 总RNA提取试剂盒RNAiso Reagent、高保真DNA聚合酶(primeSTARXHS DNA Polymerase)、T4 DNA连接酶购自 TaKaRa公司。
[0080] RevertAid? First Strand cDNA Synthesis Kit购自Fermentas公司。
[0081] Bgl Π 、EcoRI、MluI、BamHI、NdeI、EcoR V购自Fermentas公司。
[0082] 琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒、普通DNA产物纯化试剂盒、质粒小提试剂盒均购自天 根生化科技有限公司。
[0083] pWPXL-GFP、psPAX2、pMD2 · G均购自 Addgene 公司。
[0084] pGSI购自北京天一辉远生物科技有限公司。
[0085] Transl-Tl Phage Resistant化学感受态细胞购自北京全式金生物技术有限公 司。
[0086] Lipofectamine? 2000 Transfection Reagent转染试剂购自 Invitrogen公司。
[0087] 293T包装细胞购自美国ATCC。
[0088] PEG6000-NaCl中PEG6000终浓度为25.5质量%,NaCl终浓度为1.2M,PEG6000和 NaCl均购自上海索莱宝生物科技有限公司。
[0089] 胎牛血清购自德国PAA公司。
[0090] CD107a-PECy5抗体购自美国BD公司。
[0091] ⑶133阳性的结直肠癌细胞系HT29购自美国ATCC公司。
[0092] CD133阳性的人肝癌细胞Hep3B购自美国ATCC公司。
[0093] CD133阳性的人胰腺癌细胞SW1990购自美国ATCC公司。
[0094] ⑶133阳性的人结直肠癌细胞DLD1购自美国ATCC公司。
[0095] ⑶133阳性的人结直肠癌细胞SW620购自美国ATCC公司。
[0096] ⑶133阴性的人结直肠癌细胞L0V0购自美国ATCC公司。
[0097] CD133阴性的人肝癌细胞HepG2购自美国ATCC公司。
[0098] 5-羧基荧光素琥珀酰亚胺酯购自上海谱振生物科技有限公司。
[0099]膜联蛋白V-RPE试剂盒购自美国BD公司。
[0100] MethoCult? H4434经典细胞培养基购自stem cell公司。
[0101] 所有引物均由北京天一辉远生物科技有限公司合成。
[0102] 实施例1 NKT细胞的制备
[0103] (1)取人静脉血于含肝素的真空管中。采用淋巴细胞分离液,通过密度梯度离心方 法分离获得单个核细胞(PBMCs)。
[0104] (2)PBMCs洗三次后,采用含有0.6体积%的人自体血清的NKT细胞培养基GT-T551 调整细胞终浓度为2X 106个细胞/mL;将细胞接种于预先经过终浓度为10yg/mL的 retronectin包被的75cm2细胞培养瓶中。然后在培养基里加入终浓度为500U/mL的重组人 白介素2、50ng/ml CD3单克隆抗体和50ng/mL的重组人白介素-15,在37°C、饱和湿度为5% 的C02培养箱中培养。
[0105] (3)培养第4天,将细胞转移至未包被的培养瓶中,每2天按照细胞生长数量加入 NKT细胞培养基GT-T551,控制细胞浓度为1 X 108个细胞/mL,并加入终浓度为500U/ml的重 组人白介素2;培养至第12天,得到NKT细胞,流式细胞术对NKT细胞表型进行分析。结果见图 1,其中 CD3+: 95 · 04 % ; CD3+CD8+: 90 · 99 % ; CD3+CD56+: 24 · 12 % ; CD8+CD56+: 24 · 63 %。
[0106] 实施例2慢病毒表达载体pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的构建
[0107] (l)NKT 细胞 cDNA 的制备
[0108] 离心沉淀实施例1培养得到的NKT细胞,用总RNA提取试剂盒RNAiso Reagent提取 细胞的总RNA,-80°C保存备用。提取的总RNA用逆转录试剂盒RevertAid? First Strand cDNA Synthesis Kit逆转录得NKT细胞cDNA,-20°C保存备用。
[0109] (2)慢病毒质粒 pWPXL-CD8-CD137-CD3G 的制备
[0110] 设计并合成如下引物序列(其中,下划线标记为保护碱基,方框为酶切位点):
[0113] 以步骤(1)中NKT细胞cDNA为模板,用引物P1和P2进行PCR扩增,得到长287bp的⑶8 的hinge区和跨膜区,核苷酸序列如SEQID勵.3所示,两端分别含有組111和88111酶切位点 和保护碱基;用引物P3和P4进行PCR扩增,得到长146bp的CD137胞内信号结构域,核苷酸序 列如SEQID N0.4所示,两端分别含有Bgl Π 和EcoR頂每切位点及保护碱基;用引物P5和?6进 行PCR扩增,得到长359bp的⑶3ζ的胞内信号结构域,核苷酸序列如SEQIDN0.5所示,两端分 另IJ含有EcoRI和Ndel酶切位点及保护碱基。各步PCR扩增反应体系相同,以扩增CD137胞内信 号结构域为例,进行PCR扩增,PCR反应条件参照p rimeSTAR?HS DNA Polymerase的说明 书,反应体系(50yL)如下:
[0114] 双蒸水:32.5yL
[0115] 5X 反应 buffer:10yL
[0116] dNTP 混合物(每种 2.5mM):4yL
[0117] P3(10mM):lyL
[0118] P4(10mM):lyL
[0119] NKT 细胞 cDNA(200ng/ul):lyL
[0120] PrimeSTAR?HS DNA Polymerase:0.5yL
[0121] 将上述PCR产物用1%的琼脂糖凝胶进行分离,用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒进行 DNA片段回收。得到片段后分别进行双酶切反应,酶切产物用普通DNA产物纯化试剂盒回收 备用。
[0122] 慢病毒表达载体pWPXL-GFP用Mlul/Ndel双酶切,酶切产物经1%的琼脂糖凝胶进 行分离,用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收大的载体片段,然后与之前回收的CD8、CD137、 0)3ζ片段通过T4 DNA连接酶连接,连接产物转化Transl-Tl Phage Resistant化学感受态 细胞,37°C培养16h后挑取单克隆,37°C,250rpm培养12h后用质粒小提试剂盒提取质粒。提 取的质粒经限制性内切酶Mlul和Nde I双酶切鉴定,鉴定电泳图见图2,其中,Ml: DNA分子量 标记D15000;l泳道:质粒pWPXL-CD8-CD137-CD3G的未酶切片段;2泳道:质粒pWPXL-CD8-CD137-CD3G的酶切片段(751bp);M2:DNA分子量标记D2000。将鉴定正确的质粒送北京天一 辉远生物科技有限公司对插入的融合基因片段进行测序。将测序结果正确的重组质粒命名 为pWPXL-CD8-CD137-CD3ζ,其中,CD8的hinge区和跨膜区的核苷酸序列如SEQIDN0.3所示, CD137的胞内信号结构域的核苷酸序列如SEQID腸.4所示,003(的胞内信号结构域的核苷 酸序列如SEQIDN0.5所示。
[0123] (3)慢病毒质粒 pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G 的制备
[0124] 全基因合成编码大鼠生长激素信号肽和⑶133ScFv融合基因的核苷酸序列,序列 如SEQID如.8所示,由北京天一辉远生物科技有限公司合成,其5'端含有8 &111!11、1?)似1^序 列,3'端含有Mlul酶切位点,将前述融合基因克隆在质粒pGSI中,命名为pGSI-CD133ScFv。 质粒经BamHI/MluI双酶切,酶切产物经1 %琼脂糖凝胶进行分离,用琼脂糖凝胶DNA回收试 剂盒回收目的片段备用。
[0125] pWPXL-CD8-CD137-CD3G质粒经限制性内切酶BamHI/MluI酶切,酶切产物经1%琼 脂糖凝胶进行分离,用琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收载体片段备用。然后与回收的含有大 鼠生长激素信号肽和CD133ScFv的DNA片段通过T4 DNA连接酶进行连接,具体方法见说明 书。将连接产物转化Transl-Tl Phage Resistant化学感受态细胞,37°C培养16h后挑取单 克隆,37°C,250rpm培养12h后,用质粒小提试剂盒提取质粒。提取的质粒经限制性内切酶 BamHI/Ndel双酶切鉴定,鉴定结果如图3所示,其中,其中,M1:DNA分子量标记D15000;l泳 道:质粒pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G未酶切片段(11281p) ;2泳道:质粒pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G 的酶切片段(65(^口,956匕口);]?2:0嫩分子量标记02000。将鉴定 正确的质粒送北京天一辉远生物科技有限公司对插入的融合基因片段进行测序。将测序结 果正确的重组质粒命名为pWPXL-⑶133ScFv-⑶8-⑶137-⑶3ζ,其结构示意图如图4所示,其 中包括大鼠生长激素信号肽(核苷酸序列如SEQID Ν0.6所示)、抗⑶133单链抗体(核苷酸序 列如SEQID N0.7所示)、⑶8的hinge区和跨膜区及⑶137的胞内信号结构域和⑶3ζ的胞内信 号结构域,其中,该嵌合抗原受体以基因 CD8的hinge区和跨膜区及CD137和CD3G的胞内信号 结构域串联而成的结构为信号传导结构域,其氨基酸序列如SEQID N0.9所示,对应的基因 编码序列如SEQIDN0.10所示。
[0126] 实施例3嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G修饰的NKT细胞的制备
[0127] (1)慢病毒的包装和浓缩
[0128] 用分光光度计分别测定慢病毒表达质粒pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G和辅 助质粒psPAX2、pMD2.G的浓度,三种质粒以4:2:1的质量比用Lipofectamine? 2000 Transfection Reagent转染试剂共转染293T包装细胞。分别在转染48h、72h时收集病毒上 清于50mL EP管中,4°C,2000g离心10min,转移两次得到的上清至新EP管中,用4.5μπι滤器过 滤病毒上清;过滤的病毒上清与5 X PEG6000-NaCl按照4:1的体积比混匀,4°C静置2h,然后4 °C,10000g离心20min,弃上清,沉淀用lmL的4°C预冷的无菌PBS溶解,即得嵌合抗原受体的 病毒浓缩液,按每管l〇〇yL进行分装,-80 °C保存备用。
[0129] 按照上述方法,利用慢病毒表达质粒pWPXL-GFP和辅助质粒psPAX2、pMD2.G共转染 293T包装细胞,收集病毒上清,浓缩,获得表达GFP绿色荧光蛋白的慢病毒浓缩液。
[0130] (2)慢病毒感染NKT细胞及感染后细胞的扩增培养
[0131] 取实施例1的在75cm2培养瓶中培养的1 X 107个NKT细胞,弃掉旧的培养液,加入2mL 新鲜NKT细胞培养基GT-T551、200yL步骤(1)得到的病毒浓缩液、2yL 1 X 10-6mg/mL鱼精蛋 白,终浓度为500U/mL的重组人白介素2,置于37°C、饱和湿度为5%的C0 2培养箱中感染12小 时后,弃培养液。同时用表达GFP绿色荧光蛋白的慢病毒浓缩液对NKT细胞进行同步感染(得 到的NKT细胞称为CART-GFP细胞),用于计算该病毒的感染效率。将感染后的细胞转至未经 CD3和retronectin包被的75cm2培养瓶中,加入20mL的NKT细胞培养基GT-T551,再加入终浓 度为500U/mL的重组人白介素2、终浓度为50ng/ml的⑶3单克隆抗体和终浓度为50ng/mL的 重组人白介素15,于37 °C、饱和湿度为5 %的C02培养箱中培养18h,得到的NKT细胞称为 CAR133-NKT细胞。按照CN 105384823 A中公开的方法制备CAR33-NKT细胞作为Mock细胞。用 流式细胞术检测该病毒的感染效率,结果如图5所示,CAR133-NKT细胞的感染效率为 36.32%〇
[0132] (3)体外诱导扩增CAR133-NKT细胞群
[0133] 将上述培养后的NKT细胞用重组人白介素2的终浓度为500U/mL的NKT细胞培养基 GT-T551进行体外诱导,待细胞的密度为85%时将细胞转入细胞培养袋中,隔2天加入重组 人白介素2的终浓度为500U/mL、⑶3单克隆抗体的终浓度为50ng/ml、重组人白介素15的终 浓度为50ng/mL的新鲜NKT细胞培养基GT-T551进行扩增培养,待细胞扩增到总量为1.5 X 1〇9个细胞左右后,采用流式细胞仪对感染的细胞群体进行鉴定,细胞表型一般达到CD3阳 性细胞比例>90% ;CD3⑶8双阳性细胞比例>70% ;CD3⑶56双阳性细胞比例>15%,结果见 图 6,CD3+: 94 · 09 % ; CD3+CD4+: 8 · 79 % ; CD3+CD8+: 79 · 95 % ; CD3+CD56+: 27 · 68 % ; CD8+CD56+: 奴.41%〇
[0134] 实施例4 CAR133-NKT细胞对不同⑶133表达水平的上皮肿瘤细胞杀伤作用分析
[0135] 分别取实施例3中制备的CAR133-NKT细胞、CAR33-NKT细胞和实施例1中培养的NKT 细胞接种于96孔板,与不同CD133表达水平的上皮肿瘤细胞(高水平表达CD133的癌细胞系: Hep3B、SW1990;中等水平表达CD133的癌细胞系:HT29、DLD1;及不表达CD133的癌细胞系 L0V0、HepG2)以效靶比(杀伤细胞:祀细胞)20:1的比率进行共培养,经过4小时的共培养后, 加入莫能菌素,终浓度为2μπι 〇 1 /L,孵育2小时,然后用PE标记的⑶107a抗体孵育15分钟,用 PBS缓冲液洗涤3次后,流式分析⑶107a的表达水平。
[0136] 分别取实施例3中制备的CAR133-NKT细胞、CAR33-NKT细胞和实施例1中培养的NKT 细胞接种于96孔板,用5-羧基荧光素琥珀酰亚胺酯(CFSE)进行染色,与不同⑶133表达水平 的上皮肿瘤细胞(高水平表达⑶133的癌细胞系:Hep3B、SW1990;中等水平表达⑶133的癌细 胞系:HT29、DLD1;及不表达CD133的癌细胞系L0V0、HepG2)以效靶比(杀伤细胞:靶细胞)20: 1的比率进行共培养,经过8小时的共培养后,将细胞用膜联蛋白V-RPE试剂盒染色,同时设 置对照组分别为未加入免疫细胞杀伤处理的各不同CD133表达水平的上皮肿瘤细胞,并将 细胞用膜联蛋白V-RPE试剂盒染色。流式细胞术对细胞凋亡进行检测,细胞凋亡的量根据下 面的公式计算:凋亡率=(对照-样品)/对照X 100%,对照为未加免疫细胞杀伤处理的细胞 存活数目;样品为加入相对应的效靶比(杀伤细胞:靶细胞)的免疫细胞杀伤处理的细胞存 活数目。
[0137] 其中,不同⑶133表达水平的上皮肿瘤细胞的⑶133表达水平分析图见图7(A)-图7 (C),CAR133-NKT细胞对不同CD133表达水平的上皮肿瘤细胞的杀伤作用分析图(4小时)见 图8,CAR133-NKT细胞对不同CD133表达水平的上皮肿瘤细胞的杀伤作用分析图(8小时)见 图9。由图7-9可知,嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G修饰的NKT细胞对高水平表达 和中等水平表达的CD133癌细胞均具有较高的特异杀伤活性,而对不表达CD133的细胞系无 杀伤活性,且CAR133-NKT细胞的特异杀伤活性明显优于NKT细胞和Mock细胞(CAR33-NKT细 胞)。
[0138] 实施例5动物实验水平分析CAR133-NKT细胞对结直肠癌小鼠模型治疗效果
[0139] 分别采用培养至对数生长期的⑶133阳性表达的人结直肠癌细胞SW620和HT29(数 量均为5\106个,其中〇)133的表达率分别为99.43%和66.67%,其中,31620和則'29的 ⑶133表达水平分析图见图10),稀释到100μΙ生理盐水中,注射到裸鼠皮下。经15天,皮下形 成结直肠癌小鼠模型。
[0140] 在结直肠癌小鼠模型中通过腹腔分别给予生理盐水、ΝΚΤ细胞、Mock细胞、CAR133-NKT细胞(细胞数量均为2 X107)进行治疗,每天注射一次,连续注射2天,于40天处死小鼠, 去除肿瘤组织,测量肿瘤组织体积大小,结果见图11。由图11可知,注射CAR133-NKT细胞的 结直肠癌小鼠模型的瘤体明显缩小,说明在动物实验水平上本发明的CAR133-NKT细胞能够 发挥靶向杀伤肿瘤细胞的功能。
[0141] 实施例6本发明的CAR133-NKT细胞对造血系统的功能影响
[0142] 取脐带血采用Ficoll单核分离液分离原始祖细胞,分别与CAR133-NKT细胞、NKT细 胞、生理盐水和Mock细胞(CAR33-NKT细胞)以1:20的比例混匀,接种于MethoCult? H4434经 典细胞培养基,于37°C,5%C02的孵箱培养2周,然后分别对克隆进行计数。
[0143] CAR13 3-NKT细胞对造血系统的功能影响分析图见图12,该图示出了造血细胞的克 隆数,其中,BFU-E为红细胞爆裂型集落形成单位(burst forming unit:early erythroid progenitor cell),CFU_GM为粒细胞-巨细胞集落形成单位(colony forming unit: granulocyte and macrophage),CFU_GEMM为粒细胞、红细胞、单核细胞和巨核细胞集落形 成单位(colony forming unit: granulocyte , erythrocyte ,monocyte and megakaryocyte),CFU_E为早期红细胞祖细胞集落形成单位(colony forming unit:early erythroid progenitor cell)。如图12所示,本发明的CAR133-NKT细胞对造血系统无明显 不良影响。造血干细胞也表达⑶133,因此,排除了对造血系统的影响,保证了CAR133-NKT细 胞治疗的安全性。
[0144] 实施例7本发明的CAR133-NKT细胞对⑶133阳性的上皮肿瘤(以肝癌为代表)患者 治疗效果
[0145] 取CAR133-NKT细胞,经过100ml生理盐水稀释后,连续三天以剂量递增的形式静脉 回输到CD133阳性的肝癌患者(在利用本发明的CAR133-NKT细胞进行靶向免疫治疗前,已经 过多次治疗(如放疗、化疗及其他药物对症治疗等),但均无明显疗效)体内,其中患者1、患 者2、患者3经过了安全性剂量输注,连续三天的输注剂量总量分别为:0.03 X 107/kg、0.06 X 107/kg和0.03 X 107/kg;患者1、患者2、患者3、患者4进行了发挥治疗效果的最低剂量输 注,连续三天的输注剂量总量分别为:0.39 X 107/kg、0.25 X 107/kg、0.4 X 107/kg和0.33 X l〇7/kg;患者5、患者6、患者7、患者8进行了发挥临床疗效的有效剂量输注,连续三天的输注 剂量总量分别为:0.5 X 107/kg、0.5 X 107/kg、0.5 X 107/kg和0.79 X 107/kg;回输后对患者 的治疗状况进行评估。
[0146] 治疗患者输注CAR133-NKT细胞的剂量分为三个梯度:1)安全性剂量输注,细胞回 输量为〇. 〇 1 -〇. 06( X 10Vkg),2)发挥治疗效果的最低剂量输注,细胞回输量为0.1 -0.5( X l〇7/kg),3)发挥临床疗效的有效剂量输注,细胞回输量为0.5-1.0( X 107/kg)。
[0147] 图13(A)-图13(D)为CAR133-NKT细胞治疗肝癌患者的毒副反应分析图,分别显示 了不同细胞回输后天数时血红蛋白(Hgb)、白细胞(WBC)、血小板(PLT)和网织红蛋白(Ret) 的变化趋势。如图13(A)-图13(D)所示,血液系统的毒副反应主要为轻微的血红蛋白和血小 板水平的降低,毒副反应较低,患者可耐受;其他毒副反应如回输相关的寒颤、高热、头疼、 头晕、乏力、恶心、呕吐等,患者耐受性良好,通过给予解热镇痛制剂得以缓解。回输后毒副 反应如皮疹、腹水、胆红素升高等,给予对症治疗后均可以缓解。其他毒性结果如表1所示。
[0148] 表1
[0150] 图14为CAR133-NKT细胞拷贝数与肝癌患者CD133阳性细胞数的变化曲线图,其中, CAR133-NKT细胞拷贝数与⑶133阳性细胞的百分比呈现负相关,表明CAR133-NKT能够杀伤 ⑶133阳性的靶细胞。
[0151] 图15为8例肝癌患者的治疗反应图,其中,一位患者治疗第一周期后疾病进展,第 二周期后疾病稳定;剩余七位患者治疗第一周期后疾病稳定。说明CAR133-NKT细胞对肝癌 患者有一定的治疗效果。
[0152] 实施例8本发明的CAR133-NKT细胞对⑶133阳性的上皮肿瘤(以胰腺癌为代表)患 者治疗效果
[0153] 取CAR133-NKT细胞,经过100ml生理盐水稀释后,连续三天以剂量递增的方式静脉 回输到CD 133阳性的胰腺癌患者(在利用本发明的CAR133-NKT细胞进行靶向免疫治疗前,已 经过多次治疗(如放疗、化疗及其他药物对症治疗等),但均无明显疗效)体内,连续三天细 胞回输总量为〇.8X107/kg,回输后对患者的治疗状况进行评估。
[0154] 图16为CAR133-NKT细胞对胰腺癌患者的治疗效果图,由图16可知,胰腺癌患者经 过4周治疗后瘤灶缩小,经过10周治疗后肿瘤缩小更加明显。说明CAR133-NKT细胞对胰腺癌 患者有一定的治疗效果。
[0155] 以上详细描述了本发明的优选实施方式,但是,本发明并不限于上述实施方式中 的具体细节,在本发明的技术构思范围内,可以对本发明的技术方案进行多种简单变型,这 些简单变型均属于本发明的保护范围。
[0156] 另外需要说明的是,在上述【具体实施方式】中所描述的各个具体技术特征,在不矛 盾的情况下,可以通过任何合适的方式进行组合,为了避免不必要的重复,本发明对各种可 能的组合方式不再另行说明。
[0157] 此外,本发明的各种不同的实施方式之间也可以进行任意组合,只要其不违背本 发明的思想,其同样应当视为本发明所公开的内容。
【主权项】
1. 一种嵌合抗原受体,其特征在于,所述嵌合抗原受体为⑶133ScFV-⑶8-⑶137-⑶3ζ, 包括串联的大鼠生长激素信号肽、⑶13 3 ScFv、⑶8的铰链区和跨膜区、CD 13 7的胞内信号结 构域和CD3G的胞内信号结构域;优选地,所述嵌合抗原受体具有如SEQ ID NO. 1所示的氨基 酸序列,进一步优选地,所述嵌合抗原受体的氨基酸序列如SEQ ID NO. 1所示。2. 编码权利要求1所述的嵌合抗原受体的基因,优选地,所述基因具有如SEQ ID NO.2 所示的核苷酸序列,进一步优选地,所述基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.2所示。3. 含有权利要求2所述的基因的重组表达载体,优选地,所述重组表达载体为慢病毒表 达载体,进一步优选地,所述慢病毒表达载体为pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G。4. 一种工程化CD133靶向性的NKT细胞,其特征在于,所述NKT细胞是由权利要求1所述 的嵌合抗原受体修饰的NKT细胞。5. -种工程化⑶133靶向性的NKT细胞的制备方法,其特征在于,所述方法包括: 包装携带pWPXL-CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G的慢病毒,得到病毒浓缩液;利用得到的 病毒浓缩液感染NKT细胞,使NKT细胞表达嵌合抗原受体CD133ScFv-CD8-CD137-CD3G。6. 根据权利要求5所述的方法,其中,所述方法还包括通过如下方法制备NKT细胞: (1) 在CD3单克隆抗体、白介素-2和白介素-15存在下,将单个核细胞进行第一阶段培 养;优选地,所述第一阶段培养的实施方式包括:将单个核细胞培养于第一 NKT细胞培养液 中,所述第一NKT细胞培养液含有NKT细胞培养基、CD3单克隆抗体、白介素-2和白介素-15; 进一步优选地,第一NKT细胞培养液中,所述CD3单克隆抗体的浓度为30-70ng/mL,和/或所 述白介素-2的浓度为300-700U/mL,和/或所述白介素-15的浓度为30-70ng/mL; (2) 在白介素-2存在下,将所述第一阶段培养的细胞进行第二阶段培养;优选地,所述 第二阶段培养的实施方式包括:将所述第一阶段培养的细胞培养于第二NKT细胞培养液中, 所述第二NKT细胞培养液中含有NKT细胞培养基和白介素-2;进一步优选地,第二NKT细胞培 养液中,所述白介素-2的浓度为300-700U/mL。7. 根据权利要求6所述的方法,其中,所述感染NKT细胞的方法包括: (1) 在病毒浓缩液、鱼精蛋白和白介素-2存在下,将NKT细胞进行第一阶段感染培养;优 选地,所述第一阶段感染培养的实施方式包括:将NKT细胞培养于第三NKT细胞培养液中,所 述第三NKT细胞培养液含有NKT细胞培养基、病毒浓缩液、鱼精蛋白和白介素-2;进一步优选 地,第三NKT细胞培养液中,所述白介素-2的浓度为300-700U/mL; (2) 在CD3单克隆抗体、白介素-2和白介素-15存在下,将所述第一阶段感染培养的细胞 进行第二阶段感染培养;优选地,所述第二阶段感染培养的实施方式包括:将所述第一阶段 感染培养的细胞培养于所述第一 NKT细胞培养液中。8. 根据权利要求7所述的方法,其中,所述感染NKT细胞的方法还包括: (3) 先在白介素-2存在下,将所述第二阶段感染培养的细胞进行体外诱导,待细胞的密 度为80-90 %时,再在CD3单克隆抗体、白介素-2和白介素-15存在下,将细胞进行扩增培养; 优选地,所述体外诱导的实施方式包括:将所述第二阶段感染培养的细胞培养于所述第二 NKT细胞培养液中,所述扩增培养的实施方式包括:将细胞培养于所述第一NKT细胞培养液 中。9. 权利要求5-8中任意一项所述方法制备得到的工程化CD 133靶向性的NKT细胞。10. 权利要求4或9所述的工程化CD133靶向性的NKT细胞在制备用于治疗肿瘤的制剂中 的应用,优选地,所述肿瘤是CD133阳性的上皮肿瘤,进一步优选地,所述上皮肿瘤为结直肠 癌、肝癌、胆管癌、胰腺癌、食管癌、胃癌、卵巢癌、肺癌、前列腺癌、膀胱癌、乳腺癌、子宫内膜 癌、脑肿瘤、黑色素瘤或神经胶质瘤。
【文档编号】A61P35/00GK105936649SQ201610248750
【公开日】2016年9月14日
【申请日】2016年4月20日
【发明人】韩为东, 伍志强, 王晓慧, 吕海燕, 王瑶, 罗灿, 黄建华, 陈美霞
【申请人】中国人民解放军总医院