一种类海马抗菌肽hkplpl-2的制作方法

文档序号:10621841阅读:627来源:国知局
一种类海马抗菌肽hkplpl-2的制作方法
【专利摘要】本发明涉及一种类海马抗菌肽hkplpl-2,其包含源于大海马的抗菌肽hkplp保守区域GIVHAGKT-NH2的序列。主要对抗菌肽hkplp进行同源比对,分析出保守区域后,以hkplp为主体,与抗菌肽piscidin-like antimicrobial peptide precursor[Epinephelus bleekeri]的保守区域IHRRR-NH2杂合,设计并合成了hkplpl-2,序列为:GFLFHGLLHAGKVIHGIVHRRG。本发明的有益效果是:本发明所述的抗菌肽,具有高效广谱抑菌作用,低毒性。可作为抗生素替代品使用。
【专利说明】一种类海马抗菌肽hkpIp 1-2
[0001] 专利申请号:
技术领域 [0002] :本发明为一种类海马抗菌肽hkplpl-2。
【背景技术】 [0003] :近年来随着抗生素的滥用,抗药菌越来越多,耐药性日益严重。据资 料显示,在美国临床上分离到的金葡菌有95 %对青霉素耐药,50 %以上对甲氧西林耐药 (Frindkin SK, Gaynes RP. Antimicrobial resistance in intensive care units. Clin Chest Med. 1999, 20 (2) :303-316) ;2012年我国临床检测发现,金葡菌和凝固酶阴性葡萄 球菌中甲氧西林耐药株(MRSA和MRCNS)的检出率平均分别为47. 9%和77. 1% (2012年中 国 CHINET 细菌耐药性监测 Chin J Infect Chemother,2013,13 (5) :321-330)。这种情况 逐渐严重威胁着人类的生产生活,从而导致人们对此潜在威胁意识的觉醒及食品安全级别 意识的提高,产生了替代旧抗生素且绿色环保、安全抗耐药的新一代抗生素的迫切需要。
[0004] 抗菌肽是生物体内免疫防御系统的重要组成部分,是一类小分子肽,被称为安全 的天然抗生素,具有抗菌谱广、无耐药性、热稳定好、水溶性高、无毒无残留等优点。据统计, 目前我国尚有多达20种人畜共用或畜禽专用的抗生素作饲料添加剂,除此之外,抗菌肽还 被并将被广泛用于化妆品、食品保鲜剂、药物、转基因表达等与人类生产生活当中。将抗菌 肽产品开发成新的代替传统抗生素的产品,将给我国的相关行业注入一针强心剂,推动我 国相关行业不断向前发展。
[0005] 抗菌肽 hkplpl-2 序列:GFLFHGLLHAGKVIHGIVHRRG ;分子式:C113H177N37023,分子量 丽[AV] :2421.8 ;不含有稀有氨基酸和外源化学成分,具有免疫原性小、水溶性好、广谱杀 菌等优点,能耐受胃肠道中蛋白酶及肽酶的降解。特别是在酸性条件下,加热甚至是高温高 压处理对其抗菌活性没有影响。可以在产品保存过程中持续发挥其功能,保持产品品质,延 长贮存期限。Hkplpl-2可以作为新一代的添加剂,是很好的传统抗生素替代品,能有效得解 决人和动物药残和病原菌耐药性的问题。

【发明内容】
[0006] :本发明的目的在于提供一种人工构建的抗菌肽序列。我们在具有很好 的抗菌活性的抗菌肽hkplp原有序列的基础上,我们对其进行人工改造设计,根据同源性 比对,分析出保守序列 GIVHAGKT。与抗菌肽plapp (piscidin-like antimicrobial peptide precursor
【发明内容】
[Epinephelus bleekeri])的保守序列IHRRR进行杂合,设计出十种人工抗菌 肽,通过筛选,最终获得序列:GFLFHGLLHAGKVIHGIVHRRG。
[0007] 本发明的方法包括如下步骤:
[0008] 步骤⑴本发明利用生物信息学方法对抗菌体hkplp进行BLAST比对,分析并选 出保守区域PI :GIVHAGKT ;
[0009] 步骤(2)选择与其功能相近的抗菌肽plapp的保守区域P2 :IHRRR,与hkplp进行 杂合设计;
[0010] 步骤(3)采用化学合成法合成hkplpl系列抗菌肽十组;
[0011] 步骤(4)采用平板培养法对合成抗菌肽hkplpl系列设计抗菌肽进行筛选,并对效 果明显的抗菌肽进行对金黄色葡萄球菌、大肠杆菌DH5a、沙门氏菌、动物致病大肠杆菌和 医院临床病例分离的大肠埃希菌、溶血葡萄球菌的抗菌实验如图1所示,结果显示抗菌肽 hkplpl-2对以上各菌均有良好的抗菌活性。
[0012] 步骤(5)中采用倍比稀释的方法配制不同浓度的hkplpl-2溶液,加入到培养菌液 中培养16h后测0D 63。值,确定人工合成hkplpl-2对不同菌株的最小抑菌浓度MIC。 【附图说明】:
[0013] 图为合成抗菌肽hkplpl-2对金黄色葡萄球菌、大肠杆菌DH5 α、沙门氏菌、动物致 病大肠杆菌和医院临床病例分离的大肠埃希菌、溶血葡萄球菌的抗菌实验结果,图中表 示氨苄青霉素的抗菌活性;〇为阴性对照ddH 20 ;2、3、4为人工合成抗菌肽的抗菌活性。 【具体实施方式】:
[0014] 以下给出实施例对本发明进行具体描述,但需指出的是本发明不限于具体实施 例,实施例只用于对本发明的进一步说明,不能理解为对本发明范围的限制。
[0015] 具体实施例说明:
[0016] 实施例1 :Fmoc-Arg(pbf)-氨基树脂的制备
[0017] 将氨基树脂Fmoc-Rink Amide 10. 03g,替代度0. 84mmol/g,加入到固相反应器中, 加入DMF浸泡,使其充分溶胀30min,抽干,加20 %哌啶/DMF溶液脱Fmoc 5min、15min,用 DMF、DCM、MeOH洗涤干净。取 1L lg Fmoc-Arg(Pbf)-OH,2.24gH0Bt,6. 14gHBTU用 DMF溶解后 加入到反应器中平衡5min,加入6. 0ml DIPEA室温反应1小时,抽干,先后用DMF、DCM、MeOH 各洗涤3次,干燥称重17. 12g Fmoc-Arg(pbf)-Rink Amide树脂,检测取代度为0. 67mmol/ g°
[0018] 实施例2 :hkplpl-1-氨基树脂的制备
[0019] 将上述树脂放于接肽瓶中,加入20%哌啶/1)1^溶液脱?111〇〇51^11、151^11,用01^、 DCM、MeOH洗涤干净。然后按序列GFLFHGLLHAGKVIHGIVHRRG-My^]顺序依次接Fmoc保护 的氨基酸,反应体系摩尔比为Fmoc-AA :DIC. HOBt按1 : 1 : 1投放,在此例中Fmoc-AA按 树脂量的3倍加入,每次DIC加4. 10g左右,HOBt加4. 27g左右。期间依次20%哌啶/DMF 脱除Fmoc保护基团2次,第一次反应5min,第二次反应15min ;每一步氨基酸缩合反应一次 2-4小时,均采用Kaise Test检测反应是否缩合完全,如显色反应呈阳性重复缩合该氨基 酸,序列缩合最后直接脱除Fmoc保护基团,DMF、DCM、MeOH洗涤几次。
[0020] 实施例3 :hkplpl-l粗品的制备
[0021] 他?1?1-1氨基树脂用了?4:118:?11611〇1按体积比95:2.5:2.5的混合溶液处理 肽树脂3-4小时,把肽从树脂上切下来及切除侧链保护基,浓缩至干后用冰乙醚析出固体, 离心干燥得粗品29. 51g。
[0022] 实施例4 :hkplpl-l成品的制备
[0023] Hkplpl-Ι粗品用1%醋酸溶液溶解后,离心取上清过G10柱,收集抗菌肽hkplpl-1 峰浓缩干燥得成品17. 71g。纯度大于60%,总收率达54%。
[0024] 实施例5 :按实施例1至4合成其余hkplpl系列的多肽。序列如下:
[0025] hkplpl-2 :GFLFHGLLHAGKVIHGIVHRRG
[0026] hkplpl-3 :GLIFKGIVHAGKT LHRVIHRRG
[0027] hkplpl-4 :GLFIKGIVHAGKT LHRVIHRRG
[0028] hkplpl-5 :GLIKFGIVHAGKT LHRVIHRRR
[0029] hkplpl-6 :GLIFKGIVHAGKT KHRVIHRRR
[0030] hkplpl-7 :GLIFKGIVHAGKT HLRVIHRRR
[0031] hkplpl-8 :GILKFGIVHAGKT LHRVIHRRR
[0032] hkplpl-9 :GILKFGIVHAGKT IKRVIHRRR
[0033] hkplpl-10 :GLIFHGIVHAGKT LKRVIHRRR
[0034] 实施例6 :hkplpl系列筛选
[0035] 从YPD平板上挑取PCR鉴定为阳性的单菌落接种于lOOmlBMGY培养基,30°C振荡 培养至〇D_2~6,去上清,加入20mlBMMY培养基重悬菌体,30°C振荡培养96小时,每隔24 小时取lml样品于Eppendorff管中,取上清用于抗菌活性检测。
[0036] 将琼脂培养基在水浴中加热熔化,冷却至50°C左右,用无菌操作法吸取60 μ 1的 金黄色葡萄球菌(0D600 = 0. 3),加入20ml琼脂培养基中,迅速混勾,倾倒入直径为9cm的 无菌平面皿内,水平放置待凝固。在琼脂上打直径为2. 7_的圆孔,分别在孔中加入用磷酸 盐缓冲液配制的合成hkplpl,无菌水和100mg/ml Amplicin。将平皿倒置于37°C培养过夜, 次日观察结果。结果见表1。
[0037] 表1金黄色葡萄球菌Hkplpl系列多肽筛选
[0038]
[0039] 实施例7 :合成抗菌肽hkplpl-2抗菌谱的测定
[0040] 从YPD平板上挑取PCR鉴定为阳性的单菌落接种于lOOmlBMGY培养基,30°C振荡 培养至〇D_2~6,去上清,加入20mlBMMY培养基重悬菌体,30°C振荡培养96小时,每隔24 小时取lml样品于Eppendorff管中,取上清用于抗菌活性检测。
[0041] 将琼脂培养基在水浴中加热熔化,冷却至50°C左右,用无菌操作法吸取60 μ 1的 生测菌(0D600 = 0. 3),加入20ml琼脂培养基中,迅速混勾,倾倒入直径为9cm的无菌平面 皿内,水平放置待凝固。在琼脂上打直径为2. 7mm的圆孔,分别在孔中加入用磷酸盐缓冲液 配制的合成hkplpl-2,无菌水和100mg/ml Amplicin。将平皿倒置于37°C培养过夜,次日 观察结果。
[0042] 人工合成的抗菌肽hkplpl-2对金黄色葡萄球菌、大肠杆菌DH5 α、沙门氏菌、动物 致病大肠杆菌和医院临床病例分离的大肠埃希菌、溶血葡萄球菌的抗菌实验如图1所示, 该抗菌肽对以上各菌均有良好的抗菌活性。
[0043] 实施例8 :人工合成hkplpl-2最小抑菌浓度(MIC)的测定
[0044] MIC :将测试菌株培养至对数生长期的菌液稀释为约5X 106CFU/ml,加入96孔培 养板中,测试孔每孔加入菌液90 μ 1,然后加入倍比稀释的不同浓度的合成抗菌肽溶液, 10 μ 1/孔。阳性对照为100 μ 1/孔的菌液,阴性对照为相应的100 μ 1培养基。然后于37°C 慢摇培养约16h,用酶标仪测0D63。。抑制细菌生长的最低浓度即为MIC,结果见表2。
[0045] 表2重组抗菌肽HKPLPL-2的MIC
[0046]
[0047] 实施例9 :人工合成抗菌肽hkplpl-2抗菌活性单位确定
[0048] 我们将lmg纯度不低于95%的固相化学合成的抗菌肽hkplpl-Ι的抗菌活力定义 为1000U。因此人工合成的抗菌肽hkplpl-2的抗菌活力不低于630U/mg。
[0049] 以上内容是结合具体的优选实施方式对本发明的进一步详细说明,不能认定本发 明的具体实施只局限于这些说明。在不脱离本发明构思的前提下,本发明所属技术领域的 技术人员可以做出若干推演或替换,都应视为本发明的保护范围。
【主权项】
1. 一种类海马抗菌肽hkplpl-2的化学合成方法及其部分抗菌谱功能,主要包括以下 步骤: 1) 以Fmoc-氨基树脂为载体,按照固相合成的方法依次连接具有保护基团的氨基酸, 获得hkplpl-2-氨基树脂,期间依次脱除Fmoc保护基团; 2) 用三氟乙酸混合溶液把肽从树脂上切下,处理干燥得粗品; 3) 粗品过G10柱纯化,浓缩干燥获得成品; 4) 测定人工合成的抗菌肽hkplpl-2的抗菌谱; 5) 测定人工合成的抗菌肽hkplpl-2的最小抑菌浓度(MIC)。2. 根据权利要求1所述方法,其特征是:固相合成连接氨基酸过程中,Fmoc保护基团脱 除剂用20%哌啶/DMF,Fmoc-AA按缩合量的2-5倍量加入,其中Fmoc-AA、缩合剂比例按摩 尔比1 : 1投放,缩合反应每次2-4小时。3. 根据权利要求1和2所述方法,其特征是:在氨基酸连接过程中,每一步氨基酸缩合 均采用Kaise Test检测反应是否缩合完全,如显色反应呈阳性重复缩合该氨基酸。4. 根据权利要求1和2所述方法,其特征是:缩合剂体系采用DIC+A或A+B+C,其中A 为HOBt或H0At,B为HBTU、HATU、PyBOP或TBTU,C为DIPEA或TMP,可以采用排列组合的方 式相互组合。5. 根据权利要求1中2)所述方法,其特征是:三氟乙酸混合溶液为 丁卩八:118:?11611〇1按体积比95:2.5:2.5,反应时间为3-4小时。6. 根据权利要求1中2)所述方法,其特征是:处理干燥是指切割液浓缩或吹至干后用 冰乙醚析出固体,离心干燥。7. 根据权利要求1中3)所述方法,其特征是:用1 %的醋酸溶液处理hkplpl-2粗品, 离心取上清过G10柱。8. 根据权利要求1中3)所述方法,其特征是:收集的hkplpl-2过柱液经浓缩后干燥。9. 根据权利要求1中4)所述内容,其特征是:用平板培养法表明人工合成的hkplpl-2 对金黄色葡萄球菌、大肠杆菌K12D 31、大肠杆菌DH5 α、沙门氏菌、动物致病大肠杆菌和医院 临床病例分离的大肠埃希菌、尿肠球菌、溶血葡萄球菌均有良好的抗菌活性。10. 根据权利要求1中5)所述内容,其特征是:采用倍比稀释的方法配制不同浓度的 hkplpl-2溶液,加入到培养菌液中培养16h后测0D63。值,确定人工合成hkplpl-2对不同菌 株的最小抑菌浓度MIC。
【文档编号】C07K7/06GK105985407SQ201510060607
【公开日】2016年10月5日
【申请日】2015年2月4日
【发明人】梁东, 张广献, 詹朝宇, 刘瑞兰
【申请人】广东中大南海海洋生物技术工程中心有限公司
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