一种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA标志物及其应用

一种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA标志物及其应用
【专利摘要】本发明公开一种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA标志物及其应用，该标志物为miR?10b?5p、miR?132?3p、miR?185?5p、miR?195?5p、miR?20a?3p和miR?296?5p中的一种或多种。血清miRNA作为新型的生物标志物，具有稳定性好、微创易获取、灵敏性和特异性高的特点。这类分子标志物的开发利用将为包括肿瘤在内的各种疾病的诊断以及进一步治疗提供新的方向。本研究将更有针对性的得出具有临床诊断潜能的胃癌血清miRNA标记物。研究证实了这组miRNA作为诊断胃癌的无创标记物的可靠性以及可重复性。
【技术领域】
[0001]本发明属于基因工程及肿瘤学领域，涉及一种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA 标志物及其应用。 一种与胃癌辅助诊断相关的血清m i RNA标志物及其应用
【背景技术】
[0002] 胃癌(Gastric cancer,GC)是全球发病率和死亡率较高的恶性肿瘤之一。在中国， 胃癌的死亡率仍居肿瘤第二位。由于胃癌患者早期临床表现无明显特异性，在我国早期诊 断率较低，就诊的胃癌患者大多数已属于晚期。目前在日本以及韩国，已经推广了以胃镜为 基础的早期胃癌筛查项目。但由于经济条件和人群接受水平，我国尚未能展开此类项目。而 且由于胃镜检测依赖于检查者经验，且有一定的创伤风险，亦导致无法推广。目前临床应用 最为广泛的肿瘤标志物，如癌胚抗原(CEA)和糖类抗原19-9(CA19-9)，也缺乏一定的灵敏性 和特异性。随着基因组学、蛋白组学以及代谢组学等生物技术的发展，越来越多的生物标志 物已被发现或研究。因此，发现新的能够早期诊断胃癌的标记物指日可待，从而促进胃癌早 期干预和治疗，延长病人的生存期。
[0003] 微小RNA(miRNAs)是一类长度在22个左右的核苷酸的小非编码RNA分子，其通过转 录后调控广泛参与了各种生命活动过程，包括肿瘤的发生、侵袭及转移等。研究发现，miRNA 的表达在肿瘤中有不同程度的上调和下调，为其能够作为一种新兴的肿瘤标志物奠定了基 础。2008年，Mitchell在外周血中检测到游离的miRNA，发现其能够稳定存在于外周血中，并 且可以作为诊断肿瘤的无创标志物。现已有研究证实了循环miRNA在胃癌、肺癌、乳腺癌、结 直肠癌等肿瘤中的潜在诊断价值。但由于研究方法及纳入人群的差异，导致研究结果不完 全一致。因此，本研究利用Exiqon miRNA qPCR panel芯片以及基于qRT-PCR的绝对定量 法，通过对大样本的胃癌血清的研究，旨在寻找对胃癌具有潜在诊断价值的血清miRNA。并 对这些miRNA在胃癌组织中以及外周血清外泌体中的表达进行验证，以进一步明确其与胃 癌的关系。若根据这类miRNA设计针对于胃癌的诊断试剂盒，将会推动我国胃癌的诊治水 平，也为将来对胃癌的进一步研究提供思路。

【发明内容】

[0004] 本发明的目的在于提供一种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA标志物。
[0005] 本发明的另一目的在于提供上述血清miRNA标志物及其引物在制备胃癌辅助诊断 试剂盒以及在制备治疗胃癌的药物中的应用。
[0006] 本发明的又一目的在于提供用于胃癌辅助诊断和治疗的试剂盒及药物。
[0007] 本发明的目的可以通过以下技术方案实现：
[0008] -种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA标志物，该标志物为miR-10b-5p (UACCCUGUAGAACCGAAUUUGUG)，miR-132-3p(UAACAGUCUACAGCCAUGGUCG)，miR-185-5p (UGGAGAGAAAGGCAGUUCCUGA)，miR-195-5p(UAGCAGCACAGAAAUAUUGGC)，miR-20a-3p (ACUGCAUUAUGAGCACUUAAAG)和miR-296-5p (AGGGCCCCCCCUCAAUCCUGU)中的一种或多种。该 血清 miRNA 标志物优选为 111丨1?-1013-5?、111丨1?-132-3?、111丨1?-185-5?、111丨1?-195-5?、111丨1?-2(^-3口和 miR-296-5p中两种或两种以上的组合，进一步优选为111丨1?-1013-5口、111丨1?-132-3口、111丨1?-185-5p、miR-195-5p、miR-20a-3p 和 miR-296-5p 六种 miRNA 所组成的组合。
[0009] 上述的血清miRNA标志物在辅助诊断胃癌中的应用。
[0010] 上述的血清miRNA标志物在制备胃癌辅助诊断试剂盒或治疗胃癌药物中的应用。
[0011] 一种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA标志物的引物，该引物包含miR-10b-5p、 11^1?-132-3口、111丨1?-185-5口、111丨1?-195-5口、111丨1?-2(^-3口和111丨1?-296-5口中的一种或多种111丨1?熟的 引物；优选为包含血清 miRNA 中 miR-10b-5p、miR-132-3p、miR-185-5p、miR-195-5p、miR-20a_3p和miR-296_5p中两种或两种以上miRNA的引物;进一步优选为包含血清miRNA *miR-1013-5?、11^1?-132-3?、11^1?-185-5?、11^1?-195-5?、11^1?-20&-3?和11^1?-296-5?六种11^1?祖的引 物。
[0012]上述的引物在辅助诊断胃癌或制备胃癌辅助诊断试剂盒中的应用。
[0013] -种胃癌辅助诊断试剂盒，该试剂盒中含有血清miRNA ψπ?Κ-10?3-5ρ、π?Κ-132- 3口、111丨1?-185-5口、111丨1?-195-5口、111丨1?-2(^-3口和111丨1?-296-5口中的一种或多种111丨尺祖的引物 ；优选 为含有血清 miRNA 中 111丨1?-1013-5口、111丨1?-132-3口、111丨1?-185-5口、111丨1?-195-5口、111丨1?-2(^-3口和11^1?-296_5p中两种或两种以上miRNA的引物;进一步优选为含有血清miRNA *miR-10b-5p、miR-132-3p、miR-185-5p、miR-195-5p、miR-20a-3p和 miR-296-5p 六种 miRNA的引物。
[0014] 该试剂盒中还包括PCR技术常用的试剂常用的试剂。
[0015] 该试剂盒还可以包括PCR反应常用试剂，如逆转录酶，缓冲液，dNTPs ,MgCl2，DEPC 水和Taq酶等;还可以含有标准品和/或对照品。
[0016] 本发明所涉及的与胃癌诊断相关的血清miRNA标志物miR-10b-5p、miR-132_3p、 miR-185-5p、miR-195-5p、miR-20a-3p 和 miR-296-5p 中的每种 miRNA 的序列均已公开，但是 将各miRNA标志物进行组合作为胃癌辅助诊断标志物需要本领域技术人员付出创造性劳 动。各miRNA标志物的扩增引物均可通过市场购买获得，本发明实施例中使用的血清miRNA 标志物的引物为购自广州锐博公司所合成生产的特异性miRNA茎环RT-PCR引物。
[0017] 具体地说，本发明解决问题的技术方案包括：（1)建立统一标准的标本库和数据 库：以标准操作程序(S0P)采集符合标准的血液样本，系统收集完整的人口学资料和临床资 料。（2)血清miRNA差异表达谱分析:分析胃癌和正常对照人群中差异表达的血清miRNA，并 对差异表达miRNAs进行进一步大样本多阶段验证。（3)通过多阶段的验证，明确这些miRNA 诊断胃癌的能力。（4)血清miRNA诊断试剂盒的研制:根据胃癌患者与正常人群血清中的差 异表达miRNA开发miRNAs诊断试剂盒，实现对胃癌患者的无创辅助诊断。（4)分析这些miRNA 在胃癌组织以及外泌体中的表达情况，揭示这些miRNA与胃癌的关系，为将来研制可能与这 些miRNA相关的治疗胃癌的药物提供依据。
[0018] 本发明人以标准操作程序(SOP)采集符合标准的血液样本，系统收集完整的人口 学资料、临床资料，并采用了Exiqon miRNA qPCR panel芯片以及qRT-PCR方法等。
[0019 ]具体来说研究的实验方法主要包括以下几个部分：
[0020] 1.研究样本选择:初治、未行手术以及放化疗干预且经病理确认为胃癌的患者。正 常对照为在医院进行体检的正常人群。
[0021] 2.Exiqon miRNA qPCR panel芯片初筛：利用TRIZ0L-LS试剂对血清混合样本进行 RNA提取，并进行qRT-PCR操作获得初筛结果。
[0022] 3.训练集、验证集:利用AMl556试剂盒(ABI公司）对每个血清样本进行RNA提取，通 过逆转录反应得到cDNA样品，加入PCR引物和SYBR Green荧光染料进行PCR反应。通过比对 标准品的Ct值，得出样本中的miRNA含量。
[0023] 4.利用TRIZ0L-LS试剂提取胃癌和癌旁组织中的RNA，ExoQuick试剂盒（SBI公司） 和AMl 556试剂盒(ABI公司）提取外泌体中的RNA，通过qRT-PCR的方法，检测miRNA在组织以 及外泌体中的表达差异。
[0024] 5.统计分析:运用X2检验、配对t检验以及非参数秩和检验比较miRNA表达水平在 不同研究组中的差异。通过计算ROC曲线分析证实血清m i RNA的诊断价值。
[0025] 本发明研究组目前通过对胃癌病人的外周血清中的miRNA进行系统的表达分析， 现已发现了一组6个具有临床诊断潜能的胃癌血清microRNA #E*(miR-10b-5p、miR_132-3p、miR-185-5p、miR-195-5p、miR-20a_3p和miR-296_5p)。
[0026] 本发明的有益效果：
[0027] 1.相较于传统的肿瘤标志物，血清miRNA作为新型的生物标志物，具有稳定性好、 微创易获取、灵敏性和特异性高的特点。这类分子标志物的开发利用将为包括肿瘤在内的 各种疾病的诊断以及进一步治疗提供新的方向。
[0028] 2.研究者通过Exiqon miRNA qPCR panel芯片以及基于qRT-PCR的绝对定量法，对 胃癌和正常对照人群血清中的差异表达miRNA进行严密、多阶段的验证和评价。证实了这组 miRNA作为诊断胃癌的无创标记物的可靠性以及可重复性。
[0029] 3.研究者发现miR-10b-5p和miR-296-5p在III期和IV期胃癌患者中的表达明显高 于I期和II期的胃癌患者。另外，其在胃癌组织中的表达也与血清中表达一致，显示了这组 miRNA与胃癌之间的紧密关系。同时miR-10b-5p、miR-195-5p、miR-20a-3p和miR-296-5p在 血清外泌体中的表达也是高于正常对照的。这些结果将给未来研究这些miRNA对于胃癌的 机制以及针对这些miRNA对于胃癌的治疗提供新的思路。
【附图说明】
[0030] 图1:实验流程图
[0031] 图2:在胃癌血清中高表达的6个miRNA [0032]图3:对所获得的miRNA进行ROC曲线分析。
[0033] A:训练集与验证集的合集;B:训练集;C:验证集。
[0034] 图4:6个miRNA在不同TNM分期胃癌血清中的表达情况 [0035] 图5:6个miRNA在胃癌组织中的表达情况
[0036] 图6:6个miRNA在胃癌患者血清外泌体中的表达情况
【具体实施方式】
[0037]发明人于2013年至2015年从南京医科大学第一附属医院收集了大量的胃癌患者 和正常体检人群的静脉血清样品，通过对样品资料的整理，从中选择了203例胃癌和167例 正常对照的样本作为Exiqon miRNA qPCR panel芯片初筛和后续一系列qRT-PCR验证的实 验样品。同时还留取了 188例胃癌组织和28例癌旁组织。所选择的患者血清样本均来自于初 治、未行手术以及放化疗干预且经病理确认为胃癌的病人。并系统采集了这些样本的人口 学资料、临床资料。
[0038] 参照流程图（图1)，从胃癌以及正常对照血清样本中随机选择了30例胃癌样本以 及10例正常对照，并且分别混合成了3例胃癌血清混合样本和1个正常混合样本(一个混合 样本由10例200ul血清样本汇合形成2ml的样本）。对这4例混合样本进行Exiqon miRNA qPCR panel芯片初筛和分析，具体步骤参照Exiqon miRNA qPCR panel芯片的说明书：
[0039] 1.血清抽提
[0040] 取出血清样品，样品化冻后3000xg离心5min去除一些碎片及一些不溶成分。转移 上清至新的1.5ml管中，加入750ul TRIZ0L-LS后，剧烈震荡5s。
[0041 ] 2.两相分离
[0042] 匀浆后样品于15到30°C孵育5分钟。每1ml的TRIZ0L-LS试剂匀浆的样品中加入 0.2ml的氯仿，盖紧管盖。手动剧烈振荡管体15秒后，15到30°C孵育2到3分钟。4°C下13,000g 离心15分钟。
[0043] 3 .RNA 沉淀
[0044] 将水相转移到新离心管中。水相与异丙醇混合以沉淀其中的RNA，加入异丙醇的量 为：Iml TRIZ0L-LS试剂匀浆的样品中加0.5ml的异丙醇和5ul的糖元。4°C静置半小时，让 RNA尽可能的析出。于4 °C 13，OOOg离心15分钟。
[0045] 4. RNA 清洗
[0046] 移去上清液，每1ml TRIZ0L-LS试剂匀浆的样品中加入至少Iml的75% (v/v)乙醇， 清洗RNA沉淀。静置10分钟，然后4°C下1000 Og离心5分钟。
[0047] 5.重新溶解RNA沉淀
[0048]去除乙醇溶液，空气中干燥RNA沉淀5-10分钟，加入无 RNA酶的水用枪反复吹打几 次，然后55到60°C孵育10分钟。
[0049] 6.测量浓度：
[0050] 通常能得到~5yg RNA/50ml血清。
[0051 ] 7.cDNA 合成
[0052] (1)稀释模板RNA:使用DEPC水将20 - 25ng模板RNA稀释至Hul (终浓度为1.492 - 1.786ngAU)。
[0053] (2)准备反应液:将5 X Reaction Buffer以及DEPC水置于冰上溶解，并震荡混匀。 Enzyme mix置于-20°C冰盒，使用前轻弹混匀后置于冰上。所有试剂均离心后使用。
[0054] i W配罟皮府液，配罟下耒由的皮府液
[0057] (4)混合并离心试剂:震荡或者抽吸混匀反应液后离心，以保证所有溶液彻底混合 均匀。
[0058] (5)逆转录反应及热失活:将反应液于42°C温育60分钟后，于95°C温育5分钟以失 活逆转录酶。
[0059] 8.Real-Time PCR
[0060] 试剂：
[0061] Nuclease free water(Exiqon)
[0062] SYBR? Green master mix(Exiqon)
[0063] cDNA 模板
[0064] ROX(Invitrogen)
[0065] miRNA PCR ARRAY(Exiqon)
[0066] 仪器：
[0067] ABI PRISM7900 system(Applied Biosystems)
[0068] (I)准备Real-time PCR试剂：将制备的cDNA模板，DEPC水和SYBR? Green master mix置于冰上溶解15-20分钟。
[0069] (2)稀释cDNA模板：将RT反应获得的cDNA模板用nuclease free water稀释110倍 (例如，向反应液中加入2l8〇ul nuclease free water)。
[0070] (3)混合所有反应试剂：
[0071] A.将PCR板简单离心后，移去封膜。
[0072] B.将110倍稀释的cDNA模板与2 X SYBR Green master mix按照1:1体积比混合。
[0073] C.倒置混匀反应液并离心
[0074] D.将混合反应液加入板中的每个孔
[0075] E.重新封好PCR板
[0076] (4)将PCR板简单低温离心
[0077] (5)Real_time PCR扩增:根据下表中的反应条件进行Real-time PCR扩增和溶解 曲线分析。
[0078] Real-time PCR循环条件如下表： L0081J 数据分析：采用δ Δ Ct方法
[0082]使用PCR仪器附带的软件进行初步数据分析，获得原始的Cq值(Cp或Ct，依仪器不 同名称可能不同）。
[0083]我们建议使用GenEx qPCR分析软件(www.exiqon.com/mirna-pcr-analysis)对数 据进行标准和深入的数据分析。
[0084] a.计算每个处理组中的每个通路相关基因的ACt。
[0085] Δ Ct(group I)=average Ct-average of HK genes'Ct for group I array
[0086] Δ Ct(group 2)=average Ct-average of HK genes'Ct for group 2 array
[0087] b.计算2个PCR Array(或两组）中每个基因的Δ Δ Ct。
[0088] Δ ACt= ACt(组2)-ACt(组I)
[0089] 备注:通常组1是对照，组2是实验组。
[0090] c.通过2-Δ ACt计算组2与组1对应基因的表达差异。
[0091]在芯片初筛后，得到了如下表中的58个差异表达miRNA(3个胃癌血清混合样本中 相对于正常样本都超过了 1.5倍差异）。

[0094] 对于初筛得到的58个差异表达miRNA，通过训练集和验证集，采用基于qRT-PCR的 绝对定量法进行验证，具体步骤为：
[0095] 1.血清RNA提取:选用ABI公司血清RNA提取试剂盒(AM1556)，参照试剂盒说明，每 个样本吸取200ul进行提取RNA，并最后用IOOul DEPC水进行溶解。
[0096] 2.CDNA 的制备：
[0097] 1)采用50yL反应体系进行逆转录实验
L0106」反应体糸混匀，瞬时离心后，放置于实时定量PCR仪中，以下列程序进行反应：
[0108] 反应结束后添加溶解曲线。
[0109] 数据分析:通过比对不同浓度的标准品的Ct值，汇成标准曲线后可以计算获得每 个样本中的miRNA的绝对浓度。利用SPSS 16.0软件进行统计分析，得到了一组在训练集和 验证集中均一致于胃癌血清中高表达的6个miRNA:miR-10b-5p、miR-132-3p、miR-185-5p、 miR-195-5p、miR-20a-3p和miR-296-5p(在训练集和验证集中P值都小于0.05,图2)。通过这 6个miRNA，可以计算每个样本的ROC曲线。如图3，这6个miRNA组成的分子标志物能够很好的 区分胃癌患者和正常人群。并且通过亚组分析，发现miR-10b-5p和miR-296-5p在III期和IV 期胃癌患者中的表达明显高于I期和II期的胃癌患者(图4)。
[0110] 研究组之后进一步检测了这6个miRNA在胃癌组织以及血清中外泌体的表达，胃癌 组织提取RNA利用TRIZ0L，外泌体提取试剂盒为ExoQuick试剂盒(SBI公司）。20〇111血清所提 取出的外泌体用200ul DEPC水重悬后，利用AM1556试剂盒(ABI公司）对外泌体RNA进行提 取，步骤同血清RNA提取过程。
[0111] 运用非参数检验分析发现，miR-10b-5p和miR-296-5p在胃癌组织中的表达要高于 癌芳组织（图 5) <3miR_10b_5p、miR_195_5p、miR _20a_3p和miR_296_5p在胃癌血清外泌体中 的表达亦明显高于正常人群（图6)。
[0112] 试剂盒包括一批血清miRNA qRT-PCR引物，还可以有相应PCR技术所需的常用试 剂，如:逆转录酶，缓冲液，dNTPs，MgCl 2，DEPC水，荧光探针，RNA酶抑制剂，Taq酶等，可根据 具体采用的实验方法选用，这些常用试剂都是本领域技术人员熟知的，另外还可以有标准 品和对照（如定量标化的正常人样本等）。此试剂盒的价值在于只需要血清而不需要其它组 织样品，通过最精简的荧光法检测血清样本中miRNA的表达含量，来辅助诊断该样本来源患 者的罹患胃癌的可能性。血清miRNA检测方便，且定量精确，大大提高疾病诊断的敏感性和 特异性，因此将此试剂盒投入实践，可以帮助指导诊断以及进一步的个体化治疗。
【主权项】
1. 一种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA标志物，其特征在于该标志物为miR-10b-5p、 11^1?-132-3口、11^1?-185-5口、11^1?-195-5口、11^1?-2(^-3口和11^1?-296-5口中的一种或多种。2. 根据权利要求1所述的血清mi RNA标志物，其特征在于该血清mi RNA标志物为!^!?-1013-5口、11^1?-132-3口、11^1?-185-5口、11^1?-195-5口、11^1?-2(^-3口和11^1?-296-5口中两种或两种以 上的组合，优选为 11^1?-1013-5?、111丨1?-132-3?、111丨1?-185-5?、111丨1?-195-5?、111丨1?-2(^-3?和11^1?-296-5p六种miRNA所组成的组合。3. 权利要求1或2所述的血清miRNA标志物在辅助诊断胃癌中的应用。4. 权利要求1或2所述的血清miRNA标志物在制备胃癌辅助诊断试剂盒或治疗胃癌药物 中的应用。5. -种与胃癌辅助诊断相关的血清miRNA标志物的引物，其特征在于该引物包含!1^1?-1013-5口、11^1?-132-3口、11^1?-185-5口、11^1?-195-5口、11^1?-2(^-3口和11^1?-296-5口中的一种或多种 miRNA 的引物;优选为包含血清 miRNA 中 miR-10b-5p、miR-132-3p、miR-185-5p、miR-195-5p、 miR-20a_3p和miR-296_5p中两种或两种以上miRNA的引物;进一步优选为包含血清miRNA中 11^1?-1013-5?、11^1?-132-3?、11^1?-185-5?、11^1?-195-5?、11^1?-2(^-3?和砧1?-296-5?六种砧尺祖的 引物。6. 权利要求5所述的引物在辅助诊断胃癌或制备胃癌辅助诊断试剂盒中的应用。7. -种胃癌辅助诊断试剂盒，其特征在于该试剂盒中含有血清miRNA中miR-10b-5p、 11^1?-132-3口、111丨1?-185-5口、111丨1?-195-5口、111丨1?-2(^-3口和111丨1?-296-5口中的一种或多种111丨1?熟的 引物；优选为含有血清 miRNA 中 miR-10b-5p、miR-132-3p、miR-185-5p、miR-195-5p、miR-20a_3p和miR-296_5p中两种或两种以上miRNA的引物;进一步优选为含有血清miRNA *miR-1013-5?、11^1?-132-3?、11^1?-185-5?、11^1?-195-5?、11^1?-20&-3?和11^1?-296-5?六种11^1?祖的引 物。8. 根据权利要求7所述的诊断试剂盒，其特征在于该试剂盒中还包括PCR技术常用的试 剂常用的试剂。
【文档编号】C12Q1/68GK106086178SQ201610429472
【公开日】2016年11月9日
【申请日】2016年6月16日
【发明人】朱伟, 黄泽波, 刘平, 束永前, 周鑫, 朱丹霞, 吴俚蓉, 单霞
【申请人】朱伟