涂敷微针阵列的遮蔽方法

专利名称：：涂敷微针阵列的遮蔽方法
技术领域：
：本发明涉及涂敷微针阵列的方法。
背景技术：
：即使在使用改进的化学增强剂的情况下，也仅有少量具有示例治疗价值的分子能穿过皮肤。分子穿过皮肤的主要障碍是角质层(皮肤最外面的一层)。已经公开了用于结合将治疗剂和其他物质传送通过皮肤或其他表面一起使用的设备，这些设备包括相对较小结构的阵列，有时称为微针或微钉。通常将这些设备尽力压靠在皮肤上以刺穿角质层，使得治疗剂和其他物质可穿过该层，并进入下面的组织中。已经提出了具有流体储藏器和导管的微针设备，通过该导管可将治疗物质传送到皮肤中，但是这样的系统仍存在若干困难，诸如制作非常精细、能可靠用于流体流动的通道的能力。在微针阵列的表面上具有干涂层的微针设备，较之流体储藏器设备拥有理想的特征。这些设备通常更简单并可直接将治疗物质注入到皮肤中，而无需在微针设备中提供流体流过非常精细通道的可靠控制。
发明内容在微针阵列的一个或多个所需位置上提供连续涂敷的能力，是具有干涂层的微针设备的重要特征。虽然有很多方法，用于在大体平坦的表面上提供干涂层，但是由于在任何阵列设计中固有的较高表面不平整，致使微针阵列的涂敷提供了挑战。已经发现通过遮蔽微针阵列的基底，可调整和控制涂敷液体的干燥率和涂敷位置。尤其是，本发明提供了一种涂敷微针的方法，包括提供具有基底和至少一个针的微针阵列；在微针阵列上，提供可去除的遮蔽层，使得基底至少部分地被该遮蔽层覆盖，并且至少一个针保持至少部分地暴露；并将涂敷物质施用到微针阵列的暴露部分的至少部分上。在考虑了本公开的其余部分之后，包括详细说明所附权利要求，本领域的技术人员将进一步理解本发明。如此处所使用的，特定术语将被理解为具有如下阐述的意义"阵列"表示此处所描述的医疗设备，其包括能刺穿角质层便于经皮传送治疗药剂或通过皮肤采样液体的一个或多个结构。"微结构"、"微针"或"微阵列"表示与阵列相关联的特定微观结构，该阵列能刺穿角质层，以便于经皮传送治疗药剂或通过皮肤采样液体。作为示例，微结构可包括针或针状结构以及能刺穿角质层的其他结构。在思考优选实施例的详细描述以及所附权利要求后，将会理解本发明的特点和优势。下面结合本发明的各个说明性实施例来描述本发明的这些以及其他特点和优势。本发明的以上概述并非意图描述本发明每个公开的实施例或每个执行。随后的附图和详细的说明更具体地例示了说明性实施例。下面参考附图，更详细地描述本发明优选的实施例，附图中图1是未涂敷的微针阵列的示意性截面图。图2是基底上已经施加遮蔽液体的阵列的示意性截面图。图3A是已经施加涂敷液体的阵列的示意性截面图。图3B是当部分涂敷液体已经蒸发的阵列的示意性截面图。图3C是当涂敷液体已经蒸发留下干涂层的阵列的示意性截面图。图3D是当部分遮蔽液体已经蒸发的阵列的示意性截面图。图3E是当遮蔽液体已经蒸发留下针尖上的干涂层的阵列的示意性截面图。图4是对基底施加遮蔽液体的微针阵列的另一实施例的示意性截面图。图5是施加遮蔽膜的微针阵列的示意性截面图。图6A、B是已经施加涂敷液体的、图5的微针阵列的示意性截面图和平面图。图6C是当涂敷已经蒸发留下干涂层的阵列的示意性截面图。图7是补片微针设备的示意性透视图。具体实施例方式图1到3显示了本发明方法的一个实施例。图1显示了未涂敷微针阵列200，其具有基底220，和从该基底220突出的微针210。将遮蔽液体230施用到微针阵列200(如图2所示)从而涂敷基底220。接着施用涂敷液体235(如图3A)所示。期望这样施用涂敷液体235，使其不会干扰遮蔽液体230。该涂敷液体235理想地在遮蔽液体230上形成分离的层。如图3B所示，该涂敷液体部分地蒸发。如图3C所示，该涂敷液体已经完全蒸发，在微针210的尖端上留下干涂层240。如图3D所示，遮蔽液体230已经部分蒸发。如图3E所示，遮蔽液体230已经完全蒸发。应当理解的是，上述蒸发的顺序无需以这样不连续、逐步的方式发生。即，涂敷液体和遮蔽液体可同时蒸发，使得在所有涂敷液体蒸发之前，遮蔽液体的水平可如图3B所示的下降。类似的，图3E所示的干涂层可呈现很多不同形状的任一种。如图所示，它可以是涂敷在每个微针上部的薄层，也可以在尖端上形成更大的小滴状，或者部分涂敷在微针的下部分。期望调整遮蔽和涂敷液体相对的蒸发率和/或混合率以便调整干涂层的位置。干涂层的部分还可淀积到基底上。遮蔽液体无需如图2所示均匀地覆盖基底，而是由于表面张力效应可形成弯月形，诸如图4中所示。该弯月形被显示为凹面形状，但它也可为凸面形状。该弯月形的形状受若干因素的调整，包括遮蔽液体的类型、基底和微针材料的类型，微针的大小、微针间的间隔以及基底和/或微针的任何表面处理。在一个实施例中(未显示)，最初可施用遮蔽液体，使得它覆盖所有的微针。接着使该遮蔽液体部分蒸发或以其他方式部分去除，从而部分地暴露待施用涂敷物质的微针。在微针暴露之后，可以接着施加涂敷材料；或者在遮蔽液体依然完全覆盖微针的同时，可以在该遮蔽液体上施加涂敷材料。当去除遮蔽液体以暴露阵列时，则接着对微针阵列的暴露部分施用涂敷物质。所选的遮蔽液体的类型可广泛地变动并取决于若干因素，包括基底和微针的材料类型、微针的大小、微针之间的间距、基底和/或微针的任何表面处理、涂敷液体的的类型、包含在该涂敷液体中的任何治疗剂，以及干涂敷微针阵列预期的应用。在一个方面，遮蔽层液体的密度高于涂敷溶液的密度。微针阵列典型地被放置在这样的定向，以从下面支撑基底并从上面施用涂敷液体的方向上。在这种情况下，遮蔽层液体更高的密度可帮助防止遮蔽液体和涂敷溶液的混合或使该混合最小。在一个方面，遮蔽液体基本上不与涂敷液体融合。就基本不融合来说，应当理解遮蔽液体和涂敷液体无需完全地不融合，而是一种在另一种中的相对溶解度非常小并可以忽略，例如，遮蔽液体在涂敷液体中的溶解性(或反之亦然)按重量计会小于大约5%，优选按重量计小于大约1%。在一个方面，在涂敷溶液中所含的一种或多种溶质基本上不溶于遮蔽液体中。就基本不溶来说，应当理解一种或多种溶质无需完全不溶，而是一种或多种溶质的溶解度很小并可以忽略，例如，涂敷液体溶质在遮蔽液体中的溶解度是该溶质在涂敷液体中的溶解度的10%，优选小于1%。在一个方面，遮蔽液体理想地具有低于涂敷液体的蒸汽压的蒸汽压。即，遮蔽层液体的挥发性低于涂敷液体的挥发性。这有助于使涂敷液体在遮蔽液体蒸发之前充分地蒸发。在一个实施例中，在干燥温度下确定和比较挥发性或蒸汽压，遮蔽液体和涂敷液体都经受该干燥温度。可在任何适当的温度下进行遮蔽和/或涂敷液体的干燥。例如，可在环境条件(例如大约20到23。C)下进行干燥，而且除了由典型的大气条件所自然提供的蒸发之外，本质上没有对于蒸发的限制。替代地，可通过将阵列保持在部分或完全浸透遮蔽和/或涂敷液体蒸汽的环境中，从而改变干燥的速率。这可通过直接将蒸汽加入到围绕阵列的环境中，或通过将阵列放置在部分封闭的环境中使得在围绕阵列的区域内积聚蒸汽来进行。例如，在干燥期间，可以将阵列保持在封闭的皮氏培养皿中。在又一替代方案中，可将阵列保持在干燥的烘箱中，该烘箱可结合增加的温度和/或气流来加速干燥的速度。在又一替代方案中，可将该遮蔽液体保持在与涂敷液体不同的温度(例如更低的温度)下，以便于两种液体不同的蒸发。在一个替代方案中，期望调整遮蔽液体的蒸汽压，使其以与涂敷液体相同的速率进行蒸发，或以比涂敷液体更快的速率进行蒸发。这种调整可允许例如，涂敷微针的整个侧面，或对于基底的部分涂敷，这根据干涂敷微针阵列的预期使用可能是需要的。在另一实施例中，在涂敷溶液干燥后，可简单地使遮蔽液体从基底流出。氟化溶剂，诸如氢氟醚、氢氟垸烃、全氟烷烃和其他全氟化合物，因为它们具有相对高的密度并且与水和/或许多常规有机溶剂相对不混溶，所以特别适用于用作遮蔽液体。合适的氟化溶剂例子包括3-乙氧基-l,l,l,2，3，4,4,5，5,6，6,6-十二氟-2隱三氟甲基-己烷(可从3M公司得到的3MTMNovecEngineeredFluidHFE-7500)、乙基九氟异丁基醚和乙基九氟丁基醚(可从3M公司得到的3MTMNovecEngineeredFluidHFE-7200的混合物)、FC-43FLUORINERT电子液(可从3M公司得到的主要是12碳全氟化合物的混合物)、以及FC-5312FLUORINERTTM电子液(可从3M公司得到的主要是15碳全氟化合物的混合物)。例如，当涂敷溶液包含更低密度的有机溶剂，诸如己烷或庚烷时，水可适于作为遮蔽液体。该涂敷溶液包含载液或溶剂和至少一种溶解或散布的物质，该物质最终将变为微针阵列上的干涂层。应当选择载液或溶剂，使其可溶解或分散试图涂敷的物质。分散的物质可以为悬浮的形式，S卩，作为分散或悬浮在载液或溶剂中的颗粒。合适的载液或溶剂的示例包括水、乙醇、甲醇、异丙醇、乙酸乙酯、己垸和庚垸。涂敷溶液可含有额外的赋形剂，诸如粘性调节剂、稳定剂、表面活性剂和其他添加剂。合适的其他赋形剂的示例包括蔗糖、海藻糖、蜜三糖、乳糖、卵白蛋白、柠檬酸钾、聚乙烯吡咯垸酮、聚氧乙烯山梨醇酯(即，聚山梨醇酯)和羟乙基纤维素。在一个实施例中，涂敷溶液优选将遮蔽层湿润，即涂敷溶液将相对均匀地涂布在遮蔽层上。这种涂布理想地导致对微针阵列相对均匀地应用涂敷物质。替代地，可调节涂敷溶液和/或遮蔽液体的表面属性，以控制涂敷溶液的涂布量，从而允许在微针阵列上的特定位置处应用可控量的涂敷物质。允许在环境条件下发生载液蒸发，或通过改变围绕微针阵列的大气温度和压力来调节载液的蒸发。选择理想的蒸发条件，以避免涂敷物质的降解。对微针阵列添加第一遮蔽液体后，可任选地加入第二遮蔽液体。例如，对阵列添加氢氟醚遮蔽液体，然后添加乙醇，从而制备遮蔽层。接着如上所述顺序地添加涂敷溶液。第二遮蔽液体有助于改变蒸发的相对速度或调整不同液体间的表面张力。在另一实施例中，可直接用固体诸如通过喷涂来施加涂敷，在该情况下载液是可选或不必要的。在另一实施例中，该遮蔽层可以为固体或半固体层的形式。图5显示了遮蔽膜300形式的遮蔽层。这种膜可以是例如薄的聚合膜，其能被微针穿透预定高度，从而仅露出微针尖端。如图6所示，可将涂敷溶液施用到针尖上。该涂敷溶液还可作为连续层来施用，诸如图3A所示。干燥后的涂敷物质淀积到微针阵列上。在一个实施例中，干燥后的涂敷物质优选淀积到微针上。优选淀积意味着，微针上每单位表面区域的干燥后的涂敷量将比基底上大。更具体的，优选在微针的尖端或其附近淀积干燥后的涂敷物质。在一些情况中，按重量计超过一半、有时大于90%、偶尔大于95%的干燥后涂敷物质被淀积到微针上。在一些情况中，干燥后的涂敷优选存在于微针的上半部，g卩，远离基底的微针部分。在一个实施例中，基本上没有干燥后的涂敷物质淀积到基底上，即，基本上所有干燥后的涂敷物质都淀积到微针上。在一个实施例中，基本上所有的干燥后的涂敷物质都淀积到微针的上半部上。就基本上所有而言，其应当被理解为，可忽略量的干燥后的涂敷物质，例如按重量计小于5%、优选按重量计小于1%的干燥后的涂敷物质没有淀积到微针的上半部上。干燥后的涂敷物质的厚度可根据微针阵列上的位置和涂敷的微针阵列的预期应用而改变。典型的干燥后的涂敷厚度小于50微米，常常小于20微米并且有时小于IO微米。理想的是涂敷厚度在微针尖端附近更小，从而不会干扰微针有效刺入皮肤的能力。在一个实施例中，涂敷物质的不同部分可优选地淀积在微针阵列上的不同位置上。例如，在涂敷物质包含药效物质(诸如抗原)的情况下，理想地将药效物质优选淀积在微针上或其附近。在一些情况中，按重量计超过一半、有时大于90%、偶尔大于95%的药效物质淀积到微针上。在一些情况中，优选将药效物质驻留在微针的上半部即远离基底的微针部分上。在一个实施例中，基本上没有药效物质淀积到基底上，目卩，基本上所有的药效物质都淀积到微针上。在一个实施例中，基本上所有的药效物质都淀积到微针的上半部上。就基本上所有而言，应当理解为可忽略量的药效物质，例如按重量计小于大约5%、优选小于大约1%的药效物质，没有淀积到微针的上半部上。干燥后的涂敷物质可以是去除载液之后剩余的固体或半固体。应当理解的是，当提到干燥后的涂敷物质时，在生成的干燥后的涂敷物质中，可以保留相对少量的载液和/或遮蔽液体。例如，在载液包含水的情况下，生成的干燥后涂层典型地含有按重量计大约0.1到30%之间的水，常常含有按重量计大约1%到20%的水，有时含有按重量计在大约1%到10%之间的水。当使用遮蔽膜时，该遮蔽膜理想地是液体不透过的膜并优选为聚合物膜。合适的聚合物膜的示例包括聚丙烯、聚乙烯或聚对苯二甲酸乙二醇酯。遮蔽膜还可具有表面涂层，诸如硅或含氟化合物释放涂层，其可使遮蔽膜与水涂敷液体隔离，并促使涂敷溶液聚结在暴露的针尖上。可选地，遮蔽膜可具有使遮蔽膜与有机涂敷液体隔离的亲水涂层。在一个方面中，在载液已经蒸发后，去除遮蔽膜，留下诸如图3E所示的干涂敷微针阵列。可选地，可将遮蔽膜留在适当的位置，并且将如图6C所示具有遮蔽膜的干涂敷微针阵列直接应用到皮肤表面上。在另一替代方案(未显示)中，可向下推动该膜，并在载液已经蒸发后接触基底。具有遮蔽膜的涂敷阵列可进一步具有如美国专利申请公布2003/0135161中所描述的效用，其公开通过参考结合于此。该遮蔽膜可被微针阵列通过任何适当的方面刺穿，该适当方法包括同步传递力和超声能量，以及在美国专利申请公开2003/0135161中所描述的其他方法。在一个实施例中，可摇动或搅动两种不混溶的溶液，以形成施加到微针阵列上的临时均匀乳液。在施加到微针阵列后，接着可将该乳液进行相位分离，留下紧靠基底的液体层作为遮蔽层，并留下该液体层之上的液体层作为涂敷溶液。接着将这些层进行蒸发，以留下如上所述的干燥后的涂敷膜。在另一实施例中，遮蔽层可以是转变成液体并随后去除的半固体或固体层。合适的遮蔽层的示例包括热响应凝胶、电流变液体、可逆凝胶，诸如对pH值或离子敏感的二氧化硅或聚合凝胶，或者任何其他合适的短暂凝胶或可逆凝胶。可用作遮蔽层的代表性热响应凝胶是由环氧丙垸-环氧乙烷嵌段共聚物构成的凝胶，诸如Pluronic^F-77(可从BASF获得)。通过对基底施用热响应环氧丙烷-环氧乙垸嵌段共聚物的溶液，在微针阵列上制备大约1%的水凝胶，接着将阵列加热到34°C或更髙的温度以形成凝胶。可将涂敷溶液施加到暴露的微针，并然后进行干燥。接着可以将干涂敷阵列冷却到室温，从而使凝胶返回到能从阵列上流出的液体状态。热响应凝胶的其他示例可在美国专利No.4，474,751中找到，其公开通过参考结合于此。当暴露给盐时形成凝胶的低固体含量水凝胶溶液，诸如在美国专利Nos.5,340,572和5,192,535中所公开的，其公开通过参考结合于此，可将它们施加到微针阵列基底上，以提供遮蔽层。接着可将盐溶液加入到水凝胶溶液中，使得水凝胶溶液形成凝胶。接着将涂敷溶液施用到成凝胶状的遮蔽层并进行干燥，从而在微针的暴露部分上留下干涂敷微针阵列。接着改变成凝胶状的遮蔽层的pH或离子含量，以便使凝胶返回到易于从微针阵列上去除的液体状态。带电的胶状液体可作为遮蔽层应用。在施加电场后，胶状液体可形成凝胶，该凝胶用作半固体遮蔽层。接着将涂敷溶液施用到凝胶状遮蔽层并进行干燥，从而在微针的暴露部分上留下干涂敷微针阵列。接着去除电场，将遮蔽层转变成液体状态，并使该液体从阵列流出和/或蒸发掉。在另一实施例中，遮蔽层可以是包含冻结液体诸如冰的固体层。施用涂敷溶液冰并进行干燥，从而在微针的暴露部分上留下干涂敷微针阵列。接着使该层冰升温，使得冰变成可以任何便利方式去除的液体水。在前述实施例的任一个中，可使用许多常规涂敷方法来将遮蔽液体施用到阵列基底上，或将涂敷溶液施用到遮蔽好的微针阵列上，这些常规涂敷方法包括浸渍、刷涂、滴、精确的体积分配、照相凹板式涂敷和喷涂。在一个实施例中，涂敷溶液和/或遮蔽溶液可作为一滴或多滴的计量的量进行施加，并能够遍布在阵列基底上。在一个实施例中，可将图3E所示的微针阵列以图7中更详细示出的补片形式施用到皮肤表面上。图7示出微针设备，其包括补片20，该补片20采用阵列22、压力感应粘合剂24和背衬26的结合形式。阵列22的一部分示出为具有从微针基底表面14突出的微针10。该微针10以任何期望图案进行布置，或随机地分布在微针基底表面14上。如图所示，微针IO布置成均匀间隔开的行。在一个实施例中，本发明的阵列具有大于大约0.1cn^而小于大约20cm2、优选大于大约0.5cn^而小于大约5cn^的末端表面面积。在一个实施例中(未显示)，补片20的基底表面14的一部分是无图案的。在一个实施例中，该无图案的表面具有设备表面总面积的大于大约1%而小于大约75%的面积，该设备表面面对患者皮肤表面。在一个实施例中，无图案表面具有大于大约0.10平方英寸(0.65cm2)到小于大约1平方英寸(6.5cm2)的面积。在另一实施例(图7所示)中，在基本上阵列22的整个表面区域上布置微针。用在本发明各种实施例中的微针设备，包含多种构造的任一种，诸如在下面专利和专利申请中所描述的，它们的公开通过参考结合于此。微针设备的一个实施例包含在美国专利申请公布No.2003/0045837中所公开的结构。在上述专利申请中所公开的微结构采用具有锥形结构的微针形式，该锥形结构包含在每个微针的外表面上形成的至少一个通道。这些微针可具有在一个方向上伸长的基部。具有细长基部的微针中的通道，可从该细长基部的其中一端朝着微针的尖端延伸。沿微针侧面所形成的通道除了微针的尖端外可任选地终止。微针阵列还可以包括基底表面上所形成的导管结构，微针阵列位于该基底上。微针中的通道可与该导管结构液体连通。微针设备的另一实施例包含在2003年7月17日提交的、共同未决的美国专利申请序列号no.10/621620中公开的结构，其说明了具有截顶锥状和可控纵横比的微针。微针设备的又一实施例包含在美国专利No.6，091,975(Daddona等人)中公开的结构，其描述了用于穿刺皮肤的刀刃状微突。微针设备的又一实施例包含在美国专利No.6,313，612(Sherman等人)中公开的结构，其描述了具有中空的中央通道的锥形结构。微阵列的又一实施例包含在国际公布No.WOOO/74766(Gartstein等人)中公开的结构，其描述了这样的中空微针，其在该微针尖端顶面处具有至少一个纵向刀刃。在施加遮蔽层和涂敷物质之前，可以利用涂层或表面预处理来改变微针阵列的一个或多个表面。例如，在应用遮蔽层之前，可将物质的薄层施加到阵列的整个表面上。这种涂敷可改变阵列的亲水性或疏水性，从而影响遮蔽层和/或涂敷溶液湿润阵列的能力。这种涂层还可部分或完全与涂敷溶液混溶，使得该涂层在载体溶剂完全蒸发之前被部分或全部溶解在涂敷溶液中，从而留下涂敷预处理物质和随后施加的涂敷物质的干燥后的混合物。这些涂层的示例包括聚合物涂层、干粉和无定形玻璃。适当的聚合物涂层的示例包括聚乙烯吡咯烷酮、聚乙烯醇、聚乙二醇、含氟聚合物及它们的混合物。通过将聚合物溶液(例如水或乙醇溶液)应用到阵列上并允许溶剂蒸发，从而留下干燥后的聚合物涂层，来在阵列上制备这种聚合物涂层。替代地，该涂层诸如通过使用加热或等离子淀积，可作为固体物质直接施用。干粉的示例包括硫酸钾铝十二水化物、氢氧化铝一水合物、蔗糖、海藻糖和乳糖。在阵列上固化的物质薄层的示例包括淀积为钻石状玻璃膜的等离子体，诸如在美国专利No.6,881,538(Haddad等人)中所公开的紫外线聚丙烯酸脂，诸如在美国专利No.5,440446(Shaw等人)中所公开的淀积为含氟聚合物的等离子体，或任何其他利用常规涂敷方法施用的薄层，该常规涂敷方法诸如为喷涂或辊涂并接着用任何合适的辐射进行交联。微针的表面还可用表面预处理进行改变，该表面预处理简单地改变表面的化学性能。典型的表面预处理包括多种等离子处理，该多种等离子处理能改变表面性能。例如，用氮的等离子体对聚碳酸酯进行等离子体处理以促使酰胺起作用，或用氧气等离子体处理该聚碳酸酯以促使羧酸酯起作用。氮和氧等离子的处理的组合可用于给出混合表面的性能。涂敷溶液可包含一种或多种生物活性物质、药效物质和治疗活性物质。在一个实施例中，适用在本发明中的微针设备可用于在经皮传送的变形中通过皮肤传送药物(包括任何药学制剂或多种药学制剂)，或者用于皮肤的皮内或局部治疗，诸如接种疫苗。在一个方面，可经皮传送大分子量的药物。药物的渐增分子量通常造成无助经皮传送的降低。适用在本发明中的微针设备具有大分子的功效，这些大分子通常难以通过被动经皮传送来进行运送。这些大分子的示例包括蛋白质、縮氨酸、核苷序列、单克隆抗体、DNA疫苗、多聚糖诸如肝磷脂以及抗生素诸如头孢曲松(ceftriaxone)。在另一方面，适于用在本发明的微针设备可具有增强或允许经皮传送小分子的效用，这些小分子以其他方式难以或不可能通过被动经皮输送进行传送。这种分子的例子包括盐形式；离子型分子，诸如二膦酸盐，包括阿仑膦酸钠或帕米膦酸二钠；以及具有利用被动经皮传送不能传导的物理化学属性的分子。在另一方面，适用在本发明的微针设备诸如在皮肤病治疗、疫苗传送或在疫苗佐剂的增强免疫响应中，可具有增强分子到皮肤的传输的效用。适合疫苗的示例包括流感疫苗、莱姆病疫苗、狂犬病疫苗、麻疹疫苗、腮腺炎疫苗、水痘疫苗、天花疫苗、肝炎疫苗、白喉疫苗、风疹疫苗、白喉疫苗、脑炎疫苗，黄热病疫苗、重组蛋白质疫苗、DNA疫苗、脊髓灰质炎疫苗、治疗癌症的疫苗、疱疹疫苗、肺炎球菌疫苗、脑膜炎疫苗、百日咳疫苗、破伤风疫苗、伤寒疫苗、霍乱疫苗、肺结核疫苗及它们的组合。术语"疫苗"在此包括但不限于蛋白质、多醣、低聚糖，或者减弱或灭活病毒形式的抗体。在美国专利申请公布No.2004/0049150中公开了合适的疫苗和疫苗佐剂的另外示例，该公开通过参考结合于此。微针设备可用于即时传送，也就是其中，它们施加并从该施加位置立即去除，或者可将它们留在适当位置达一定的延长时间，该延长时间可在几分钟到长达1周之内。在一方面，传送的延长时间可从1到30分钟，从而允许比施加并立即去除所获得的药物传送更完备的药物传送。在另一方面，传送的延长时间可以从4小时到1周以提供持续的药物释放。示例利用高性能液相色谱(HPLC)的破伤风类毒素总阵列含量分析制备含有50mM高氯酸钾、50mM柠檬酸钾、20mM磷酸钠、376mM氯化钠和100/xg/mL牛血清白蛋白的样本提取溶剂。通过将阵列放入聚丙烯杯中，给杯中加入l.OmL的样本提取溶剂，将帽盖扣合到该样本杯上并超声波降解30分钟，从而制备HPLC样本溶液。梯度洗脱HPLC(流动相A):0.2%(V/V)高氯酸；流动相B:10%水，88%氰化甲烷，2%异丙醇，0.2%高氯酸(70%);溶剂程序0.00min，22%B，1.0mL/min;6.00min，58%B，1.0mL/min;6.01min，100%B，1.0mL/min;6.50min，100%B，0.5mL/min;lO.Omin，0%B，0.5mL/min;注射体积100/xL;柱Zorbax300SB-C850X4.6mm，3.5微米)用于量化HPLC样本溶液中的破伤风类毒素。依靠冻干的TT原始标准(ListBiologies)来校准非佐助破伤风类毒素(TT)疫苗(Aventis)并将其用作工作标准。该工作标准用于获得从近似1/ig-TT/mL到28/ig-TT/mL的校准曲线。用于该校准曲线的线性回归的相关系数典型地大于0.999。破伤风类毒素内容结果是6和10次之间的次数的再实验的平均数。利用高性能液相色谱(HPLC)的破伤风类毒素尖端含量分析通过在基底上的适当位置处以及微针的下部分处固定类毒素，来测量微针尖端上的破伤风类毒素尖端内容，以至于不能将该类毒素提取到HPLC样本溶液中。针朝上地将微针阵列放置在平坦表面上，并且将lC^L的油基聚亚安酯涂敷溶液(Minwax速干聚亚安酯)施加到该阵列上，并能够涂敷该阵列的基底。在环境条件下，使聚亚安酯固化至少3个小时。随后按总含量方法中所描述那样，来提取该阵列并进行分析。利用感应耦合等离子体(ICP)的铝含量分析将0.5mL试样量的HPLC样本溶液(上面所描述的)用4%的硝酸稀释到5.0mL，用于利用(ICP)进行铝分析。通过用处于l、2、4、5、6、8和11/ig/mL处的铝标准来校准该分析。该校准曲线的线性回归的相关系数典型地大于0.999。酶联免疫吸附分析(ELISA)通过ELISA，执行来自兔子血清的抗破伤风类毒素IgG的定量确定。将破伤风类毒素涂敷在固相上，并结合来自兔子血清样本的抗破伤风类毒素IgG。清洗平皿并用抗兔子IgG-HRP轭合物来检测结合的兔子IgG。该分析依照EP兽医标准的兔子抗-破伤风类毒素BRPBatchl(EDQM-欧洲药典委员会目录号C2425600)进行标准化。来自这一ELISA的1000个任意单位(AU)等于l个国际单位(IU)。除非另有说明，否则将抗破伤风类毒素IgG的结果报告为5次再实验的几何平均数。微针阵列如下制备微针阵列。制备圆盘(面积2cm2，厚度1.02mm)，在该圆盘一侧居中的正方形形状(1cm2)内，部分地形成微针阵列(37X37)的图案。呈方形图案的邻近针的尖端之间，将这些针均匀地间隔开275微米的距离。单个针形状为锥体，具有250微米的高度和具有83.3微米边长的正方形基部。利用具有5微米边长的平坦正方形顶部将这些尖端截平，。根据国际专利申请公开No.W005/82596中所提供的大体描述，对这些阵列进行注模，并由聚碳酸酯制成(LexanHPSlR-1125,GEPlastics,Pittsfield，MA)。接着将盘的中心冲切，以在盘的形成图案的表面的近似90%上，提供带有微针的微针阵列(面积二lcm2)。该微针阵列具有近似1200个微针。示例1制备6.0g硫酸钾铝十二水化物(Penta，USP等级)、0.24g氢氧化铝一水合物和100mL水的铝混合物，并进行超声处理，直到溶液将近清澈。接着用改进的六喷嘴喷雾器(Model9306，TSIInc.Shoreview,MN)将该铝混合物在阵列上喷涂1分钟，该六喷嘴喷雾器具有小体积储液器、湍流发生器以及阵列保持器。涂敷率为标称每分钟20Mg的铝。接着将微针阵列针尖向上地放置在平坦表面上。HFE-75003MNOVECTMEngineeredFluid,3-乙氧基-l，l，l，2,3，4,4,5,5，6,6，6-十二氟f^-2-三氯甲基-己烷，(3MCo.,St.Paul，MN)用作遮蔽液体。使用移液管，对阵列中心施加试样量(25/xL)的遮蔽液体，并允许遮蔽液体遍布在阵列上。通过混合等份的破伤风类毒素(StatensSerumInstituteLot92-1，888Lf/mL)和乙醇来制备抗原涂敷配方。利用移液管将10/iL试样量的抗原涂敷配方施用到阵列上遮蔽液体的中央。在所用的抗原涂敷配方中，破伤风类毒素的标称量是16;xg。在环境条件下使抗原涂敷配方和遮蔽液体干燥大约30分钟，以在阵列上提供干燥后的抗原涂层。通过扫描电子显微术(SEM)进行的抗原涂敷阵列的检査显示出在微针表面上相对平滑的涂层。由反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是18.2(st.dev.=1.2/xg)。通过ICP测量的涂敷阵列的铝含量是40/ig(st.dev.=10/ig)。示例2除了在施用抗原涂敷配方和使用13ML试样量的遮蔽液体之前在阵列上喷涂铝混合物3分钟以外，根据示例1中所述的过程制备涂敷阵列。通过扫描电子显微术(SEM)进行的抗原涂敷阵列的检查，显示出在微针尖端处或其附近的物质块或球。由反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列内容是19.1/ig(st.dev,l.O]Ug)。通过ICP测量的涂敷阵列的铝含量是57/ig(st.dev.=21/xg)。示例3除了下面的之外，根据示例1中所述的过程来制备涂敷阵列。通过混合1份破伤风类毒素、3份水和4份乙醇来制备抗原涂敷配方。使用13/iL试样量的遮蔽液体。在所用的抗原涂敷配方中破伤风类毒素的标称量是4/ig。通过扫描电子显微术(SEM)进行的抗原涂敷阵列的检査显示出在微针表面上相对平滑的涂层。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是4.4Mg(st.dev.=0.2Mg)。通过ICP测量的涂敷阵列的铝含量是13Mg(st.dev.=6jug)。示例4除了在施用抗原涂敷配方之前在阵列上喷涂铝混合物5分钟之外，根据示例3中所述的过程制备涂敷阵列。通过扫描电子显微术(SEM)进行的抗原涂敷阵列的检査显示出在微针尖端处或其附近的物质块或球。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是4.7Mg(st.dev.=0.4pg)。通过ICP测量的涂敷阵列的铝含量是94/ig(st.dev.=19jLtg)。示例5除了在施用抗原涂敷配方之前在阵列上喷涂铝混合物5分钟之外，根据示例2中所述的过程制备涂敷阵列。通过扫描电子显微术(SEM)进行的抗原涂敷阵列的检查显示出在微针表面上相对平滑的涂层。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是17.9Mg(st.dev.=0.8/ig)。通过ICP测量的涂敷阵列的铝含量是65/xg(St.dev.=8Mg)。示例6除了下面的之外，根据示例1中所述的过程制备涂敷阵列。在施用抗原涂敷配方之前在阵列上喷涂铝混合物3分钟。通过混合2份破伤风类毒素、2份水和4份乙醇来制备抗原涂敷配方。在所用的抗原涂敷配方中破伤风类毒素的标称量是8/ig。通过扫描电子显微术(SEM)进行的抗原涂敷阵列的检查显示出在微针表面上相对平滑的涂层。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是7.6/ig(st.dev.=0.7jiig)。通过ICP测量的涂敷阵列的铝含量是23/ig(st.dev.=6/ig)。示例7除了下面的之外，根据示例1中所述的过程来制备涂敷阵列。用6.0g硫酸钾铝十二水化物(Penta，USP等级)、0.06g氢氧化铝一水合物和lOOmL水的比率来制备铝混合物。通过将一份破伤风类毒素与一份水混合来制备抗原涂敷配方。使用13ML试样量的遮蔽液体。在施用抗原涂敷配方之前，使用移液管在阵列上的遮蔽液体中间施用乙醇(13/iL)。接着将抗原涂敷配方施用到乙醇上。在所用的抗原涂敷配方中破伤风类毒素的标称量是16)Ltg。通过扫描电子显微术(SEM)进行的抗原涂敷阵列的检査显示出在微针表面上相对平滑的涂层。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是16.8jag(st.dev.=0.8/ig)。通过ICP测量的涂敷阵列的铝含量是15Mg(st.dev.=3pg)。活体内抗破伤风类毒素IgG和破伤风类毒素的去除通过如示例1到7中所述将涂敷有抗原的阵列黏附在粘性背衬上，来制备微针设备。利用大体如美国专利申请序列No.60/578，651中所述的敷贴器，将该阵列施用到雌性新西兰白兔(N=5)中，该专利申请的公开通过参考结合于此。该敷贴器活塞的质量是2.88g并以6.19米/秒的速度应用该设备。将每只兔子腹部上的一个区域夹住并剃毛，小心不要刺激皮肤。对每只兔子应用一个设备，并且在去除之前使其在适当的位置上保持20分钟。在初次应用14天后，对每只兔子应用第二个设备(具有像第一设备一样的相同涂层)，并再次在去除之前使其在适当的位置保持20分钟。在初次应用21天后，从每只兔子抽取血清样本，并通过ELISA来分析抗破伤风类毒素IgG的水平。表1中总结了所得结果。通过HPLC来测量从兔去除的阵列中破伤风类毒素的剩余量。通过获取初始破伤风类毒素水平和剩余破伤风类毒素水平之间的差异，来确定从该阵列去除的破伤风类毒素的量。在表2中对该结果进行总结。表l<table>tableseeoriginaldocumentpage22</column></row><table>示例8除了所用的遮蔽液体是FC-43FLUORINERT电子液以及所用遮蔽液体的量是15/xL之外，根据示例1中所述的过程来制备涂敷阵列，其中，该电子液为主要是12碳全氟化物的混合物(3M公司，St.Paul，MN)。通过反相HPLC测量的涂敷阵列的破伤风类毒素含量是17.6pg(st.dev1.8/ig)。通过ICP测量的微针尖端上的破伤风类毒素含量测量为2.7pg(st.dev.=0.2/ig)。示例9将微针阵列针尖朝上地放置在平坦表面上。使用FC-43FLUORINERTTM的电子液作为遮蔽液体。利用移液管，对阵列的中央施试样量(15pL)的遮蔽液体，并允许该遮蔽液体遍布在阵列上。通过混合等份的破伤风类毒素(StatensSerumInstituteLot92-1，888Lf/mL)和乙醇来制备抗原涂敷配方。利用移液管，将10pL试样量的抗原涂敷配方施用到阵列上的遮蔽液体的中央。在所用的抗原涂敷配方中破伤风类毒素的标称量是16/xg。在环境条件下，使抗原涂敷配方和遮蔽液体干燥大约30分钟，以在阵列上提供干燥后的抗原涂层。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是23.6Mg(st.dev.=0.1/ig)。破伤风类毒素尖端含量测量得出为21.7/ig(st.dev.=1.2Mg)。示例10通过将825mg的PVP(PlasdoneK-29/32，PovidoneUSP,ISPTechnologies,Wayne，NJ)加入到25mL的水中并且混合，直到PVP溶解，从而制备聚乙烯吡咯垸酮(PVP)储备溶液。通过将50mg的聚山梨醇酯80(Tween-80,SigmaChemicalCo.,St,Louis,MO)加入到25mL的乙醇中来制备储备溶液。通过将2mL的聚山梨醇酯储备溶液加入到18mL乙醇中来制备稀释的储备溶液。通过将lmL的PVP储备溶液加入到9mL稀释的聚山梨醇酯储备溶液中来制备PVP预充溶液。将微针阵列针尖朝上地放置在平坦的表面上，并利用移液管，在阵列的中央上施加30/XL试样量的PVP预充溶液，并允许该预充溶液遍布在阵列上。在环境条件下，使PVP预充溶液干燥。将Tween-80(90mg)加入到水(30mL)中，从而制备浓度为3mg/mL的Twee,-80储备溶液。将PVP(1.8g)加入到水(20mL)中来制备浓度为90mg/mL的PVP储备溶液。将蔗糖(1.8g)加入到水(20mL)中，来制备浓度为90mg/mL的蔗糖储备溶液。将柠檬酸钾(1.8g)加入到水(20mL)中，来制备浓度为90mg/mL的柠檬酸钾储备溶液。通过将破伤风类毒素(StatensSerumInstituteLot92-1,888Lf/mL)与试样量的Tweei^-80、PVP、蔗糖和拧檬酸钾储备溶液混合，从而制备抗原涂敷配方。利用移液管将试样量(15nL)的遮蔽液体(FC-43FLUORINERT电子液)施用到阵列的中央，并允许该遮蔽液体遍布在阵列上。利用移液管，将10/iL试样量的抗原涂敷配方施用到阵列上的遮蔽液体的中央。在所用的抗原涂敷配方中破伤风类毒素的标称量是10pg。在所用的抗原涂敷配方中Tween⑧-80的标称量是6/ig。PVP、蔗糖和柠檬酸钾的标称量是100/zg。在环境条件下，使抗原涂敷配方和遮蔽液体干燥大约30分钟，以在阵列上提供干燥后的抗原涂层。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是11.9/ig(st.deV.=0.5/xg)。测量得到的破伤风类毒素的尖端含量是5.0(st.dev.=1.2]Lig)。示例11-14除了如表2所示改变PVP、蔗糖和柠檬酸钾的标称量外，根据示例IO中所述的过程来制备涂敷阵列。通过反相HPLC测量的涂敷阵列的破伤风类毒素含量，并且测量微针尖端上的破伤风类毒素含量。结果如表2所示。表2<table>tableseeoriginaldocumentpage25</column></row><table>示例15如下制备聚乙烯醇预充溶液。将一定量(250mg)的聚乙烯醇(80%水解，典型的Mw=9，000-10,000，CAS9002-89-5，Aldrich,St.Louis,MO)加入到水(25mL)中，从而制备聚乙烯醇储备溶液。将试样量的聚乙烯醇储备溶液(2mL)加入到乙醇(18mL)中，来制备聚乙烯醇预充溶液。将微针阵列针尖朝上地放置在平坦表面上，并利用移液管，将聚乙烯醇预充溶液施用到阵列的中央，并允许该预充溶液遍布在阵列上。在环境条件下，使聚乙烯醇预充溶液干燥。接着利用移液管，将试样量(15/xL)的遮蔽液体(FC-43FLUORINERT电子液)施用到阵列的中央，并允许该遮蔽液体遍布在阵列上。利用移液管，将IOML试样量的抗原涂敷配方施用到阵列上的遮蔽液体的中央。根据示例IO中所述的通用过程，来制备抗原涂敷配方。在所用的抗原涂敷配方中破伤风类毒素的标称量是10;xg。在所用的抗原涂敷配方中Tween-80的标称量是6pg。PVP、蔗糖和柠檬酸钾的标称量是100/ig。在环境条件下，使抗原涂敷配方和遮蔽液体干燥大约30分钟，以在阵列上提供干燥后的抗原涂层。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是10.4Mg(st.dev.=0.7pg)。测量得到的破伤风类毒素的尖端含量是9.3jug(st.dev.=0.4jitg)。示例16-23除了如表4所示改变PVP、蔗糖和柠檬酸钾的标称量外，根据示例15中所述的过程来制备涂敷阵列。通过反相HPLC来测量涂敷阵列的破伤风类毒素含量，并且测量微针的尖端上的破伤风类毒素含量。结果显示在表4中。表4<table>tableseeoriginaldocumentpage27</column></row><table>示例24根据示例16中所述的过程来制备涂敷阵列。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是10.7Mg(st.dev.=0.9/ig)。测量得到的破伤风类毒素的尖端含量为8.7/ig(st.dev.=0.6Mg)。如在上面"活的有机体内破伤风类毒素的淀积"部分中所述，将阵列施用到无毛豚鼠上。通过HPLC测量从无毛豚鼠上去除后的阵列上剩余破伤风类毒素的量。结果总结在表5中。示例25根据示例17中所述的过程来制备涂敷阵列。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是11.4ittg(st.dev.=0.3/ig)。测量得到的破伤风类毒素的尖端含量为8.6(st.dev.=0.5pg)。如在上面"活的有机体内破伤风类毒素的淀积"部分中所述，将阵列施用到无毛豚鼠上。通过HPLC测量从无毛豚鼠上去除后的阵列上的破伤风类毒素的量。结果总结在表5中。示例26根据示例18中所述的过程来制备涂敷阵列。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是10.8/xg(st.dev.=0.3Mg)。测量得到的破伤风类毒素的尖端含量为6.8(st.dev.=0.9ptg)。如在上面"活的有机体内破伤风类毒素的淀积"部分中所述，将阵列施用到无毛豚鼠上。通过HPLC测量从无毛豚鼠上去除后的阵列上的破伤风类毒素的量。结果总结在表5中。示例27根据示例22中所述的过程来制备涂敷阵列。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是11.7pig(st.dev.=0.3/zg)。测量得到的破伤风类毒素的尖端含量为5.3/xg(st.dev.=1.0Mg)。如在上面"活的有机体内破伤风类毒素的淀积"部分中所述，将阵列施用到无毛豚鼠上。通过HPLC测量从无毛豚鼠上去除后的阵列上的破伤风类毒素的量。结果总结在表5中。表5<table>tableseeoriginaldocumentpage28</column></row><table>示例28如上所述来制备微针阵列，并如下进行处理。利用Plasma-ThermVII7000系列等离子体处理系统对阵列进行等离子体处理。通过施加15秒的2000WRF功率，把四甲基硅(150标准立方厘米每分钟，sccm)和氧气(200seem)的混合物馈入未压縮等离子体中，从而通过等离子体淀积来形成钻石状玻璃薄膜。接着随后，利用300W功率，在150mTorr的压力下，利用氧等离子体(400sccm)接着对阵列处理60秒，以便从表面原子层去除元素碳和共价键的碳，从而使表面亲水。利用移液管，将试样量(15pL)的遮蔽液体(FC-43FLUORINERTTM电子液)施用到阵列的中央，并允许该遮蔽液体遍布在阵列上。利用移液管，将10pL试样量的抗原涂敷配方施用到阵列上的遮蔽液体的中央。根据示例IO中所述的大体过程，来制备抗原涂敷配方。在所用的抗原涂敷配方中破伤风类毒素的标称量是10Mg。在所用的抗原涂敷配方中Tween-80的标称量是6/xg。PVP、蔗糖和柠檬酸钾的标称量是100/xg。在环境条件下，使抗原涂敷配方和遮蔽液体干燥大约30分钟，以在阵列上提供干燥后的抗原涂层。通过反相HPLC测量的破伤风类毒素总阵列含量是12.1/ig(st.deV.=0.6pg)。测量得到的破伤风类毒素的尖端含量为9.6/ig(st.dev.=1.2pg)。如在上面"活的有机体内破伤风类毒素的淀积"部分中所述，将阵列施用到无毛豚鼠上。通过HPLC测量从无毛豚鼠去除后的阵列上的破伤风类毒素的量。结果总结在表7中。示例29-32除了如表6所示改变PVP、蔗糖和柠檬酸钾的标称量外，根据示例28中所述的过程来制备涂敷阵列。通过反相HPLC测量涂敷阵列的破伤风类毒素含量，并且测量微针尖端上的破伤风类毒素含量。结果显示在表6中。如在上面"活的有机体内破伤风类毒素的淀积"部分中所述，将阵列施用到无毛豚鼠上。通过HPLC测量从无毛豚鼠上去除后的阵列上的破伤风类毒素的量。结果总结在表7中。表6<table>tableseeoriginaldocumentpage30</column></row><table>示例33通过将蔗糖(1.053g)和Tween-80(0.1053g)混入lOOmL的水中来制备储备溶液。将一定量(l.OmL)的0.02微米荧光珠(来自MolecularProbes,Inc.,Eugene,Oregon的FluoSpherescarboxylate-modifiedmicrospheres,redfluorescent(580/605),2.0"X)固体)加入到19mL的蔗糖储备溶液中，来制备涂敷配方。蔗糖的标称浓度是1.0%(w/v)，Tween-80的标称浓度是0.1%(w/v)，而荧光珠的标称浓度是0.1%(w/v)。如上所述制备微针阵列，并如下进行处理。利用Plasma-ThermVII7000系列等离子体处理系统来对阵列进行等离子体处理。通过施加2分钟的500WRF功率，在300mTorr压力下，馈送四甲基硅(150标准立方厘米每分钟，sccm)和氧气(500sccm)的混合物，以通过等离子体淀积从而形成钻石状玻璃薄膜。接着，通过施加2分钟的300W功率，随后在300mTorr的压力下，利用氧等离子体(500sccm)来对阵列处理2分钟，以便从表面原子层去除元素碳和共价键的碳，从而使表面亲水。平坦聚碳酸酯片的等同表面处理，得到了这样的材料，其在室温下具有与去离子水的8。的前进接触角。将处理后的微针阵列针尖朝上地放置在平坦表面上。使用FC-43FLUORINERTTM电子液作为遮蔽液体。利用移液管，将试样量(15/xL)的遮蔽液体施用到阵列的中央，并允许该遮蔽液体遍布在阵列上。利用移液管，将10pL试样量的涂敷配方施用到阵列上的遮蔽液体的中央，并允许该涂敷配方扩散。在环境条件下，使涂敷配方和遮蔽液体干燥12小时，以在阵列上提供干燥后的涂层。通过视觉显微镜法来观察该阵列，并确定被干燥后的涂层所覆盖的微针的百分比。大约100%的微针被干燥后的涂层所覆盖。示例34除了用四甲基硅(50sccm)和氧(500sccm)混合来形成钻石状玻璃薄膜外，如示例33所示涂敷微针阵列。平坦聚碳酸酯片的等同表面处理得到了这样的材料，其在室温下具有与去离子水的前进接触角。通过视觉显微镜法来观察该阵列，并确定由干燥后的涂层所覆盖的微针的百分比。大约24%的微针被干燥后的涂层所覆盖。示例35除了用四甲基硅(150sccm)和氧(500sccm)混合来形成钻石状玻璃薄膜外，如示例33所示涂敷微针阵列。平坦聚碳酸酯片的等同表面处理得到了这样的材料，其在室温下具有与去离子水的40。的前进接触角。通过视觉显微镜法观察该阵列，并确定由干燥后的涂层所覆盖的微针的百分比。大约20%的微针被干燥后的涂层所覆盖。示例36除了用25%(w/v)的标称蔗糖浓度来制备涂敷配方外，如示例33所示涂敷微针阵列。通过视觉显微镜法观察该阵列，并确定由干燥后的涂层所覆盖的微针的百分比。大约61%的微针被干燥后的涂层所覆盖。示例37除了用25%(w/v)的标称蔗糖浓度来制备涂敷配方外，如示例34所示涂敷微针阵列。通过视觉显微镜法观察该阵列，并确定由干燥后的涂层所覆盖的微针的百分比。大约27%的微针被干燥后的涂层所覆盖。示例38除了用25%(w/v)的标称蔗糖浓度来制备涂敷配方外，如示例35所示涂敷微针阵列。通过视觉显微镜法观察该阵列，并确定由干燥后的涂层所覆盖的微针的百分比。大约19%的微针被干燥后的涂层所覆盖。本发明已经参考此处的若干实施例进行了描述。前面详细的描述和示例仅用于提供清晰的理解，不应当将其理解为不必要的限制。本领域的技术人员将会意识到的是在不脱离本发明精神和范围的情况下，可对所述的实施例做出很多改变。因此，本发明的范围不应限定为在此所描述的组成和结构的特定细节，而是由权利要求的语言来限定。权利要求1.一种涂敷微针阵列的方法，包含提供具有基底和至少一个针的微针阵列；在该微针阵列上提供可去除的遮蔽层，使得所述基底至少部分地由该遮蔽层覆盖，并且所述至少一个针至少部分地露在外面；和将涂敷物质施用到该微针阵列的暴露部分的至少一部分上。2.根据权利要求1的方法，其中所述遮蔽层是流体。3.根据权利要求1或2的方法，其中从涂敷溶液中施用所述涂敷物质，该涂敷溶液包含载液，并且该方法进一步包含蒸发该载液的步骤，从而提供干燥后的涂层。4.根据权利要求3的方法，其中所述遮蔽层流体的密度高于所述载液的密度。5.根据权利要求3或4的方法，其中所述遮蔽层流体的挥发性低于所述载液的挥发性。6.根据权利要求3到5的任一项的方法，其中所述载液基本上不与所述遮蔽层流体互溶。7.根据权利要求2到6的任一项的方法，进一步包含使所述遮蔽层流体蒸发的步骤。8.根据权利要求3到7的任一项的方法，其中，在所述遮蔽层流体完全蒸发之前使所述载液完全蒸发。9.根据权利要求2到8的任一项的方法，其中所述遮蔽层流体是氟化液体。10.根据前述权利要求的任一项的方法，其中所述微针阵列包含多个针。11.根据权利要求10的方法，其中施用到所述微针阵列上的涂敷物质按重量计超过50%存在于所述针上。12.根据权利要求1的方法，其中所述遮蔽层是能转变成液体的固体或半固体。13.根据权利要求12的方法，其中通过改变温度、电场或pH值，来促使所述遮蔽层的转变。14.根据权利要求3到13的任一项的方法，其中所述涂敷溶液包含治疗活性物质。15.根据权利要求14的方法，其中施用到所述微针阵列上的治疗活性物质按重量计超过50%存在于所述针上。16.根据权利要求3到15的任一项的方法，其中所述涂敷溶液包括水。17.根据权利要求3到16的任一项的方法，其中所述涂敷溶液包括疫苗、疫苗佐剂或它们的混合物。18.根据前述权利要求的任一项的方法，其中所述涂敷物质优选地淀积到所述微针上。19.根据前述权利要求的任一项的方法，其中所述涂敷物质优选地淀积到所述微针的尖端上或其尖端附近。20.根据前述权利要求的任一项的方法，其中最初将可去除遮蔽层施用到所述微针阵列上，使得没有微针暴露，并且接着使所述遮蔽层部分蒸发，从而提供至少一个部分暴露的针。21.根据权利要求20的方法，借此将所述涂敷物质最初施用到遮蔽层上，并且将该涂敷物质施加到所述微针阵列的暴露部分的至少一部分上，该暴露部分随着所述遮蔽层蒸发而出现。22.根据权利要求1或2的方法，其中所述涂敷溶液包括载液。23.根据前述权利要求的任一项的方法，其中所述涂敷溶液包括分散颗粒的悬浮液。24.根据前述权利要求的任一项的方法，其中，在所述微针阵列上提供可去除的遮蔽层步骤之前，对微针表面的至少一部分进行等离子体处理。25.根据权利要求24的方法，其中所述等离子体包括氧或氮。26.根据前述权利要求的任一项的方法，其中在所述微针阵列上提供可去除的遮蔽层步骤之前，在微针表面的至少一部分上提供固体涂层。27.根据权利要求26的方法，其中所述固体涂层包括聚乙烯吡咯烷酮、聚乙烯醇、柠檬酸钾或钻石状玻璃。28.根据前述权利要求的任一项的方法，其中在对所述微针阵列暴露部分的至少一部分施加涂敷物质的步骤之前，对所述遮蔽层施用溶剂。全文摘要一种涂敷微针阵列的方法，包含提供具有基底和至少一个针的微针阵列；在该微针阵列上提供可去除的遮蔽层，使得基底至少部分地由该遮蔽层覆盖，以及至少一个针保持为至少部分地露在外面；以及将涂敷物质施用到该微针阵列暴露部分的至少一部分上。文档编号B05D1/00GK101102809SQ200580046742公开日2008年1月9日申请日期2005年11月18日优先权日2004年11月18日发明者丹尼尔·C·段,崔惠沃,彼得·R·约翰逊,珍妮弗·E·雷德-德文斯,莫塞斯·M·大卫,詹姆斯·T·沃尔特,马拉·R·埃默里申请人:3M创新有限公司