专利名称：人髓质素的免疫测定方法以及用该方法诊断多发性硬化的制作方法
技术领域：
本发明涉及免疫测定血液中人髓质素(medullasin)的方法，以及利用该测定方法诊断多发性硬化的方法。更具体地讲，本发明涉及一种免疫测定血液中人髓质素的方法，该方法包括这样一个步骤对血样进行预处理，以便精确测定血液中粒细胞中髓质素的含量，并涉及一种利用血液中髓质素的含量诊断多发性硬化的方法。
不过，业已观察到这样的现象，在免疫测定人髓质素的方法中，在用一种含水介质稀释血样之后，如果所述测定是在不进行一种处理以便将存在于粒细胞中的髓质素完全排出粒细胞的情况下进行的话，测定值的可再现性不高，会导致测定值的波动。因此，需要一种能以良好的可再现性免疫测定血液中人髓质素的量的方法。
就多发性硬化是否可以根据血液中髓质素的量进行诊断的问题而言，这种判断需要检查大量的临床资料。不过，到目前为止，尚不存在这种类型的资料，而且，也难于进行精确诊断，因为难于获得血液中粒细胞内髓质素的精确测定值，这是由于测定值有很大的波动。因此，根据血液中髓质素的量诊断多发性硬化是困难的。
另外，随着所述能以良好的可再现性精确地测定人髓质素方法的建立，本发明的发明人注意到在血样中测定的人髓质素含量的大小和变化与多发性硬化的发作及其程度等密切相关，本发明就是根据这些发现而完成的。
本发明的第一方面涉及一种免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其特征在于包括下面的步骤(a)-(b)(a)通过让所述血样与下面的含水液体(ⅰ)或(ⅱ)或(ⅰ)和(ⅱ)的含水液体的混合物接触，裂解血样中白细胞的步骤(ⅰ)渗透压为250mOsm/kg.H2O或更低的含水液体，或渗透压为310mOsm/kg.H2O或更高的含水液体；(ⅱ)含有一种溶血产物的含水液体；和(b)用一种抗人髓质素抗体免疫测定由在步骤(a)中裂解的白细胞释放到血样中的人髓质素的量。
本发明的第二方面涉及一种诊断多发性硬化的方法，其特征在于包括下面的步骤(a)、(b)和(c)(a)通过让所述血样与下面的含水液体(ⅰ)或(ⅱ)或(ⅰ)和(ⅱ)的含水液体混合物接触，裂解血样中白细胞的步骤(ⅰ)渗透压为250mOsm/kg.H2O或更低的含水液体，或渗透压为310mOsm/kg.H2O或更高的含水液体；(ⅱ)含有一种溶血产物的含水液体；(b)用一种抗人髓质素抗体免疫测定由在步骤(a)中裂解的白细胞释放到血样中的人髓质素的量；和(c)观察在步骤(b)中测定的血液中人髓质素含量的大小和/或变化。
图2是测定人髓质素的校正曲线，是通过用在实施例3中所述酶免疫测定方法测定的吸收值作为抗原浓度的函数作图制备的。
图3表示血样中人髓质素值(μg/108粒细胞)分别对正常个体、患有多发性硬化的患者和患有非炎性神经病的患者作图。
图4表示血样中人髓质素值(μg/108粒细胞)分别对患有多发性硬化的女性和男性患者作图。
图5表示血样中人髓质素值(μg/108粒细胞)分别对不同年龄的患有多发性硬化的患者作图。
优选实施方案的详细说明下面将对本发明作更详细的说明。本发明的优选实施方案包括下面的(1)和(2)(1)首先，提供了一种免疫测定血液中人髓质素含量的方法，包括(a)通过用下面的含水液体(ⅰ)或(ⅱ)或含水液体(ⅰ)和(ⅱ)的含水液体混合物稀释血样，裂解血样中白细胞的步骤(ⅰ)渗透压为250mOsm/kg.H2O或更低的含水液体，或渗透压为310mOsm/kg.H2O或更高的含水液体；(ⅱ)含有一种溶血产物的含水液体；(b)将人髓质素捕获在标记过的免疫复合体上的步骤，通过让含有由在步骤(a)中裂解的白细胞释放的所述人髓质素的血样在存在标记过的抗人髓质素抗体的条件下与固定在一种不溶性载体上的抗人髓质素抗体接触，以便通过抗原-抗体反应形成一种夹心复合体。
(c)测定在步骤(b)中获得的复合体中的标记材料的活性的步骤。
(2)还提供了一种诊断多发性硬化的方法，包括(a)通过用下面的含水液体(ⅰ)或(ⅱ)或含水液体(ⅰ)和(ⅱ)的含水液体混合物稀释血样，裂解血样中白细胞的步骤(ⅰ)渗透压为250mOsm/kg.H2O或更低的含水液体，或渗透压为310mOsm/kg.H2O或更高的含水液体；(ⅱ)含有一种溶血产物的含水液体；和(b)将人髓质素捕获在标记过的免疫复合体上的步骤，通过让含有由在步骤(a)中裂解的白细胞释放的所述人髓质素的血样在存在标记过的抗人髓质素抗体的条件下与固定在一种不溶性载体上的抗人髓质素抗体接触，以便通过抗原-抗体反应形成一种夹心复合体。
(c)测定在步骤(b)中获得的复合体中的标记材料的活性的步骤；(d)观察由在步骤(c)中获得的标记材料量的值获得的血样中人髓质素含量的大小和/或变化的步骤；和(e)根据在步骤(d)中获得的观察的结果诊断多发性硬化的发作和/或程度。
本发明要测定的血样中人髓质素的主要部分存在于粒细胞内，它是存在于血液中的白细胞的一种成分，因此，在进行测定之前必须完全裂解粒细胞，以便将所有的髓质素释放到细胞膜外面，从而进行精确测定。因此，如果没有完全满足这一要求，在测定方面会有很大的变化，并且，只能获得可再现性较差的测定数据。
机械方法、使用超声波的方法、以及包括反复冷冻和解冻的方法，都可以作为完全裂解血样中白细胞的方法。不过，本发明的发明人通过大量研究业已发现，下面的方法作为进行高精度测定的实用方法是十分有效的，并且，相对上述方法而言能以比较简单的方式进行。
(1)首先，一种用渗透压不同于血液的含水液体处理血样的方法；和(2)其次，一种用含有溶血产物的含水液体处理血样的方法，溶血产物是一种药物，用它可以在温和的条件下将粒细胞的细胞膜破坏。
人血液的渗透压大约为280-290mOsm/kg.H2O，因此使用渗透压为250-310mOsm/kg.H2O的含水液体将血液中的粒细胞完全裂解是困难的。
因此，完全裂解人血液中的粒细胞可以这样实现通过用渗透压低于250mOsm/kg.H2O的含水液体或渗透压高于310mOsm/kg.H2O的含水液体稀释血液。
可以使用的这种类型的含水液体包括纯水，它可以含有水溶性有机溶剂，以及含水溶液和缓冲液，它们是具有极高浓度或极低浓度的溶质的含水液体，所述溶质包括水溶性物质，如无机酸盐、有机酸盐、糖，糖醇，氨基酸，和蛋白，并且，它所具有的渗透压能够完全裂解粒细胞。具体地讲，氯化钠、磷酸钠等是优选的无机酸盐，而乙酸钠、柠檬酸钠等是优选的有机酸盐。另外，葡萄糖和山梨醇等是优选的糖和糖醇。具有极高浓度的上述溶质的含水溶液含有0.05mol％或更高，优选0.1mol％或更高的溶质，而具有极低浓度的上述溶质的含水溶液含有0.005mol％或更低，优选0.01mol％或更低的溶质。所使用的含水液体的量以体积为单位表示，为血样的100,000倍，优选100-10,000倍，更优选500-2000倍。
另外，用含有上述溶血产物的含水介质处理血样的方法也是优选的。溶血产物的非限定性具体例子包括诸如高级脂肪酸盐、烷基芳基磺酸盐、烷基磺酸盐和烷基磺酸酯的阳离子型表面活性剂，诸如烷基吡啶盐、烷基三甲基铵盐、和烷基聚氧乙烯胺的阴离子型表面活性剂；诸如聚氧乙烯烷基苯基醚、聚氧乙烯烷基醚和聚氧乙烯山梨糖醇酐脂肪酸酯的非离子型表面活性剂；诸如甜菜碱的兼性表面活性剂；诸如皂苷、卵磷脂和胆酸的天然表面活性剂；和诸如补体和蛇毒、蜂毒和诸如蛋白酶的酶的生物组分。所述溶血产物可以含水液体形式使用，其重量百分比为0.0001-10wt.％，优选0.001-5wt.％，更优选0.005-1wt.％。例如，所述含水液体介质可以是水或含有水和水溶性有机溶剂的混合介质。所使用的含水液体量以体积单位计为血样的50-100000倍，优选100-10000倍，更优选500-2000倍。
测定人髓质素的免疫学方法是通过用上述含水液体(ⅰ)或含水液体(ⅱ)处理血样获得的水稀释过的液体血样进行的，并且其中的粒细胞已经被完全裂解。所述方法包括一个免疫反应步骤，其中，在有标记过的抗原或抗体的条件下让待测定的样品与抗人髓质素抗体接触，以便通过抗原-抗体反应，以标记过的免疫复合体的形式固定人髓质素；以及一个检测步骤，其中，用存在于其分子上的标记材料测定由此所产生的免疫复合体。在所述免疫反应步骤中，可将任何方法用于抗原-抗体反应。
可以使用的方法的非限定性例子包括(1)夹心方法，其中，标记过的抗体与要测定的血样中的抗原起反应，该反应是在用固定在一种不溶性载体上的抗体对它进行固定以后进行；(2)双抗体方法，其中，使用不同于在夹心方法中固定在不溶性载体上的抗体的由动物产生的抗体，并且，其中，相对这种抗体的标记过的第二抗体与所产生的夹心复合体进一步起反应；(3)竞争方法，其中，在有过氧化物酶-标记过的抗原存在的条件下让待测定的血样抗原与固定在不溶性载体上的抗体起反应；(4)凝集-沉淀方法，其中，用标记过的抗体与包括待测定的抗原的血样处理含有待测定抗原的血样，所述抗体能与所述抗原特异性反应，以便实现凝集沉淀，然后检测通过离心分离的免疫复合体中的标记材料；和(5)生物素-亲合素方法，其中，让标记过的亲合素与生物素标记过的抗体起反应。
当不溶性载体被用于本发明的免疫测定人髓质素的方法中时，所述不溶性载体的例子包括聚合物，如聚苯乙烯、聚乙烯、聚丙烯、聚酯、聚丙烯腈、氟树脂、交联葡聚糖和多糖，以及玻璃、金属、磁性颗粒及其组合。所述不溶性载体可以各种形式使用，例如，盘状、球形、纤维、棒、圆片、容器、小室、微型平板、和试管。可以用任何方法将所述抗原或抗体固定在所述不溶性载体上。例如，可以使用物理吸附方法、共价结合方法和离子结合方法。
任何类型的免疫球蛋白抗体都可用于本发明的免疫测定人髓质素的方法中，不过优选使用IgG类型的抗体。可以使用单克隆抗体或多克隆抗体，但优选使用单克隆抗体。例如，所述抗体可以全抗体或诸如F(ab’)2和Fab的片段形式使用。抗体可以从任何来源获得，但优选使用获自小鼠、大鼠、兔、母牛、山羊、鸡等的抗体。
其次，优选使用酶、荧光物质、发光物质和放射性物质等作为标记材料，用于在所述检测步骤中测定以这种方式固定的人髓质素的标记过的免疫复合体。非限定性例子包括诸如过氧化物酶、碱性磷酸酶、和β-D-半乳糖苷酶的酶；诸如异硫氰酸荧光素和藻胆蛋白的荧光物质；诸如鲁米诺、dioxetanes和吖啶盐的发光物质；诸如125I、131I、111In和99mTc的放射性物质。当一种酶被用作标记材料时，根据需要，将一种底物、着色剂、荧光剂或发光剂用于测定其活性。如果过氧化物酶被用作所述酶的话，可将过氧化氢等用作底物，将2,2’-连氮-双-[3-乙基苯并噻唑啉磺酸]铵盐(ABTS)、5-氨基水杨酸、邻苯二胺、4-氨基安替比林、3,3’,5,5，-四甲基联苯胺等用作着色剂，将4-羟苯基乙酸、3-(4-羟苯基)丙酸等用作荧光剂，将鲁米诺、光泽精电荷转运复合物用作发光剂(例如，参见国际公开号WO00/09626)。另外，如果将碱性磷酸酶用作所述酶的话，可将4-硝基苯基磷酸酯、4-甲基伞形基磷酸酯、皮质醇-21-磷酸酯等用作底物；如果将β-D-半乳糖苷酶用作所述酶的话，可将2-硝基苯基-β-D-半乳糖苷、4-甲基伞形基-β-D-半乳糖苷、3-(2’-螺旋金刚烷)-4-甲氧基-4-(3”-β-D-半乳糖基羟苯基)-1,2-dioxetane(AMPGD)等用作底物。
可用于本发明的免疫测定人髓质素的方法中的优选的多克隆抗体，是一种作为抗体成分从抗人髓质素抗血清中获得的材料，所述抗血清是通过用人髓质素作抗原按照常规方法对动物进行免疫而获得的。例如，优选使用山羊抗人髓质素多克隆抗体和兔抗人髓质素多克隆抗体。可用于本发明的单克隆抗体及其生产方法详细披露于日本专利申请公开号151085/1999中。
就是说，可用于本发明的免疫测定人髓质素的方法中的抗人髓质素单克隆抗体，是通过在一种培养基中培养杂交瘤而生产的，所述杂交瘤是通过骨髓瘤细胞和从用人髓质素免疫过的动物体内回收的抗体产生细胞之间进行细胞融合而制备的，所述人髓质素是从由正常人体的血液中分离的粒细胞中提取的，并从所述培养物中回收单克隆抗体，或者通过腹膜内途径给动物服用所述杂交瘤，在腹水中繁殖所述杂交瘤，并从腹水中回收所述单克隆抗体。
能产生所述抗人髓质素单克隆抗体的杂交瘤可以通过细胞融合方法生产。就是说，可以这样获得所述需要的能产生单克隆抗体的杂交瘤从用人髓质素免疫过的动物体内回收可能产生抗体的细胞，让能产生抗体的细胞与骨髓瘤细胞融合，选择性地繁殖所获得的杂交瘤，从所获得的杂交瘤中筛选产生抗体的杂交瘤，并克隆所选择的杂交瘤。
上述能产生抗体的细胞的例子包括脾细胞、淋巴节细胞、和B-淋巴细胞等，这些细胞是从用人髓质素或含有人髓质素的细胞或组合物免疫过的动物体内获得的。用于免疫的动物的例子有小鼠、大鼠、兔、山羊、绵羊和马。例如，免疫可以通过皮下、肌内或腹膜内途径给动物服用人髓质素而进行，服用的剂量为每次大约1微克-1毫克，每月1-2次，服用1-6个月。抗体产生细胞的收集，可以在最后一次接种之后2-4天进行。
骨髓瘤细胞可来自小鼠、大鼠等。优选的是抗体产生细胞和骨髓瘤细胞来自同一种动物。
任何融合细胞的方法都可以使用；没有限制。例如，可以在有诸如聚乙二醇的融合促进剂存在的条件下，在诸如Dalbecco’s改进的Eagle培养基(DMEM)的培养基中混合抗体产生细胞和骨髓瘤细胞而进行。
在细胞融合操作之后，可以通过以下方法筛选杂交瘤用DMEM等适当稀释所述细胞，对所得到的稀释液进行离心，将沉淀物悬浮在诸如HAT培养基的选择培养基中，然后在该培养基中培养所述细胞。然后通过用所述培养物上清液进行酶免疫测定，筛选能产生抗体的杂交瘤，并通过有限稀释方法克隆筛选的杂交瘤，以便获得能产生抗人髓质素单克隆抗体的杂交瘤。
所述单克隆抗体可以这样获得在合适的培养基中或在动物体内培养由此获得的能产生抗体的杂交瘤，并从所述培养物中回收所述单克隆抗体。为了生产大量的单克隆抗体，所述方法优选给与骨髓瘤细胞的供体属于同一物种的动物通过腹膜内途径服用所述杂交瘤，在其腹水中积累所述单克隆抗体，并从腹水中回收所述单克隆抗体。
从所述培养物或腹水中分离单克隆抗体，可以通过阴离子交换柱或蛋白A、G等柱层析进行，或者通过用硫酸铵分离进行，硫酸铵通常被用于IgG纯化。
用这种方式获得的抗人髓质素单克隆抗体，根据用于产生这些抗体的杂交瘤的类型以四种形式存在3F03,3G03,2E04和1G12。上述单克隆抗体的每一种的免疫球蛋白类型是IgG，而亚类是IgG1，并且每一种抗体能与作为相应抗原的人髓质素特异性反应。因此，上述抗人髓质素单克隆抗体可用于本发明的免疫测定人髓质素的方法中。
然后，本发明的诊断多发性硬化的方法，包括根据血样中人髓质素含量测定值的大小或变化诊断多发性硬化的发作和/或程度或状态，所述测定值是通过上述免疫测定人髓质素的方法获得的。具体地讲，可以使用这样一种方法其中，根据在血样中测定的人髓质素的浓度，和用同一个血样测定的血样中粒细胞的数量，计算出108个粒细胞中人髓质素的量，通过比较所述测定值和截止值(正常个体的平均值±2SD(标准误))值的大小，判断多发性硬化的发作，或者通过比较在不同时间测定的所述值的变化，判断疾病程度随时间的改变。
在通过该方法诊断患有多发性硬化的112位患者中，有85位髓质素值不低于所述截止值的患者呈阳性，得到了75.8％的很高的阳性百分比。相反，在患有各种非炎性神经疾病的80位患者中，髓质素值不低于所述截止值的阳性患者的数量为13，得到16.3％的低的阳性百分比。由此可以看出，根据血液中人髓质素的值诊断多发性硬化的方法是一种可靠性极高的诊断方法。另外，正常个体(换句话说，健康人体)产生阳性髓质素值的百分比为0％(参见表5和图3)。还发现多发性硬化患者的髓质素含量值在男性和女性之间没有差别(参见图4)，在不同年龄之间也没有不同(参见图5)。
(2)筛选能产生抗人髓质素抗体的杂交瘤通过ELISA(酶联免疫吸附测定)测定所述杂交瘤的培养液中抗体的效价，以便进行筛选。就是说，将人髓质素吸附在用于ELISA的微型平板壁上，并用溶解在10mM磷酸缓冲的盐溶液(PBS)(pH7.4)中的2％的牛血清白蛋白(BSA)封闭所述孔。每孔加入50微升的杂交瘤培养液，并将所得到的平板放置1小时。在去掉杂交瘤培养物之后洗涤所述孔。向每一个孔中加入100微升用PBS制备的2微克/毫升的过氧化物酶标记的山羊抗小鼠IgG-Fc抗体溶液，并让所得到的混合物在37℃下反应1小时。在去掉所述酶标记过的抗体溶液并洗涤所述孔之后，加入200微升含有0.05％ABTS和0.0034％过氧化氢的0.1M磷酸柠檬酸缓冲液(pH4.6)，以便产生颜色，从而筛选能产生抗人髓质素抗体的杂交瘤。
(3)克隆产生抗体的细胞并制备单克隆抗体通过有限稀释方法对上述每一种能产生抗人髓质素抗体的杂交瘤的培养物进行克隆，以便最终获得四种单克隆杂交瘤。通过腹膜内途径分别给BALB/C小鼠服用所述杂交瘤，所述小鼠预先接受了降植烷，并让所述杂交瘤生长，以便获得分别含有所述单克隆抗体的腹水。然后，向所获得的腹水中添加50％的饱和硫酸铵，以便使所述抗体沉淀。分离所述沉淀物，溶解在PBS中。用含有3M氯化钠的50mM Tris-HCl缓冲液(pH7.8)对所得到的溶液进行透析，然后将其加样到蛋白A琼脂糖凝胶CL4B柱(由Pharmacia出售)上。用0.1M甘氨酸-盐酸缓冲液(pH5.0)洗脱吸附的抗体，并对洗脱液进行中和，然后从里面纯化抗体，以便获得四种单克隆抗体3F03,3G03,2E04和1G12。
(4)单克隆抗体的特性Western印迹通过Western印迹方法固定对应于所述单克隆抗体的抗原。
首先，对源于人粒细胞的髓质素进行SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳。以7V/cm的电压降，用在电解质溶液缓冲液中添加了25mM Tris(羟甲基)氨基甲烷，192mM甘氨酸和20％甲醇的溶液，用2小时时间将所述蛋白从凝胶板上转移到硝酸纤维素膜上。然后，切割所述纤维素膜上的每一个泳道，并用酰胺黑对其中的膜之一进行蛋白染色，并将其他的膜用于按以下方法进行酶免疫测定。就是说，在用2％BSA/PBS封闭所述膜之后，加入小鼠抗人髓质素单克隆抗体作为一级抗体，然后加入过氧化物酶标记的山羊抗小鼠IgG-Fc特异性抗体作为二级抗体作为二级抗体，并让所得到的混合物反应。在洗涤所述膜之后，加入用PBS制备的含有0.04％3,3’-二氨基联苯胺和0.0034％过氧化氢的底物溶液，以便产生颜色。通过这种方法证实，所有四种类型的小鼠抗人髓质素单克隆抗体能识别源于人粒细胞的髓质素。抑制试验让固定在微型平板的孔上的、用于ELISA的人髓质素与生物素化的第一抗体在有未标记过的第二抗体的条件下反应，然后亲和素缀合的过氧化物酶反应，然后添加底物溶液以便产生颜色，从而进行抑制试验。这样，对所述单克隆抗体的任何组合来说，反应的生物素化的抗体量不会改变。因此，证实了所述四种单克隆抗体能识别彼此不同的表位(抗原位点)。
在洗涤聚苯乙烯珠(直径6毫米)之后，在4℃下，在含有10微克/毫升小鼠抗人髓质素单克隆抗体(2E04)的PBS(pH7.4)溶液中浸泡所述珠1昼夜。然后用PBS洗涤，并通过在4℃下，在1％的BSA含水溶液中放置1昼夜进行封闭处理，以便获得在它上面固定了单克隆抗体的珠。
(2)制备过氧化物酶标记的单克隆抗体向用PBS溶液配制的1.0毫克/毫升的小鼠抗人髓质素单克隆抗体(2E04)的溶液中加入0.1毫升用二甲基甲酰胺配制的10毫克/毫升N-(m-马来酰亚胺苯甲酸)-N-琥珀酰亚胺酯(MBS)，并让该混合物在25℃下反应30分钟。然后将该反应混合溶液加样到装有SephadexG-25的柱上，并用0.1M的磷酸缓冲液(pH6.0)进行凝胶渗透层析，以便分离马来酰亚胺结合的单克隆抗体和未反应的MBS。
与此同时，将含有浓度为10毫克/毫升的N-琥珀酰亚胺基-3-(2-吡啶基硫基)丙酸酯(SPDP)的乙醇溶液加入含有1.0毫克/毫升辣根过氧化物酶作为过氧化物酶的PBS溶液中，在25℃下反应30分钟。然后，将该反应混合溶液加样到装有Sephadex G-25的柱上，并用10mM的乙酸缓冲液(pH4.5)进行凝胶渗透。收集含有吡啶基二硫化物结合的HRP的级份，在冰冷却的条件下，在火棉胶背层上将所收集的级份浓缩大约10倍。向浓缩物中添加含有0.1M二硫苏糖醇的0.1M乙酸缓冲的生理盐水溶液1毫升(pH4.5)，然后在25℃下搅拌30分钟，以便还原被引入HRP分子中的吡啶基二硫化物基团。然后用装有SephadexG-25的柱对该反应混合溶液进行凝胶渗透层析，并获得含有硫醇盐化的HRP的级分。
然后，混合所述马来酰亚胺结合的单克隆抗体和所述硫醇盐化的HRP，并在火胶棉袋中在冰冷却条件下将该混合物浓缩到蛋白浓度为4毫克/毫升。将所得产物在4℃下放置1天，然后用装有Ultrogel AcA44(由SEPRACOR生产)的柱对所得产物进行凝胶渗透层析，并获得由过氧化物酶标记的单克隆抗体。
(3)人髓质素的夹心酶免疫测定混合在它上面固定了小鼠抗人髓质素单克隆抗体(3F03)的珠、50微升含有2％BSA的、并含有浓度为0、1、10、100或200ng/ml纯化的人髓质素(标准参考材料)的PBS溶液，以及350微升含有2％BSA的PBS溶液，并在37℃下温育该混合物30分钟。
然后，在通过移液方式取出试管中的溶液之后，用生理盐水溶液洗涤所述珠，然后，再向该试管中加入400微升含有2％BSA、并含有浓度为0.2微克/毫升的HRP标记的小鼠抗人髓质素单克隆抗体(2E04)的PBS溶液，然后在37℃下温育30分钟。然后通过移液方式取出试管中的溶液，用生理盐水溶液洗涤。然后向每一个试管中加入400微升含有0.0034％过氧化氢和0.05％ABTS的0.1M磷酸缓冲液(pH4.6)，然后在37℃下温育30分钟。向每一个试管中加入1毫升0.1N草酸水溶液作为反应终止剂，终止所述酶反应。然后，用分光光度计测定所得到的溶液在420nm波长下的吸收值。通过用所测定的吸收值对标准参考材料的浓度作图，获得了
图1所示的具有良好浓度依赖性的校正曲线。
实施例2通过酶免疫测定临床样品中的髓质素在室温下，将从正常个体(健康人体)和从多发性硬化患者体内采集的冷冻血液样品解冻，并向10微升每一种样品中添加2毫升蒸馏水(渗透压=0mOsm/kgH2O)，并用涡旋搅拌器适度搅拌，以便获得样品溶液。然后将10微升样品溶液加入试管，并通过加入390微升含有2％BSA的PBS溶液(pH7.4)进行稀释。然后，向所述每一个试管中加入一个在它上面固定了小鼠抗人髓质素单克隆抗体(3F03)的珠，并在37℃下温育30分钟。在通过移液方式取出试管中的溶液之后，用生理盐水溶液洗涤。然后再向该试管中加入400微升含有2％BSA并含有浓度为0.2微克/毫升的HRP标记的小鼠抗人髓质素单克隆抗体(2E04)的PBS溶液，然后在37℃下温育30分钟。然后，通过与上文所述制备校正曲线完全相同的操作方法进行洗涤、酶反应和反应终止。然后用分光光度计测定420nm波长下的吸收值，并根据所述校正曲线测定人髓质素的浓度。为了研究该测定的可再现性，将从样品稀释处理开始的测定操作分别重复5次。结果，证实了所测定的血样中的人髓质素的浓度具有极高的可再现性，如表1所示。表1-血液中人髓质素的测定值
比较实施例1通过酶免疫测定测定临床样品中的髓质素通过使冷冻保藏的分别从正常个体和多发性硬化患者体内采集的血样恢复到室温而进行解冻。取10微升血样并加入2毫升PBS溶液(pH7.4)中(渗透压=290mOsm/kg.H2O)，并均匀混合，以便获得样品溶液。然后将10微升样品溶液加入试管中，并通过加入390微升含有2％BSA的PBS(pH7.4)进行稀释。然后，向每一个试管中加入在它上面固定了小鼠抗人髓质素单克隆抗体(3F03)的珠，并在37℃下温育30分钟。通过移液方式取出试管中的溶液之后，用生理盐水溶液洗涤。向该试管中加入400微升含有2％BSA并含有浓度为0.2微克/毫升的HRP标记的小鼠抗人髓质素单克隆抗体(2E04)的PBS溶液，然后在37℃下温育30分钟。然后，用与上述制备标准曲线完全相同的操作进行洗涤、酶反应和反应终止。用分光光度计测定420nm波长下的吸收值，并根据所述校正曲线测定人髓质素的浓度。为了研究该测定的可再现性，将从样品稀释处理开始的测定操作分别重复5次。结果，证实了测定血样中的人髓质素的浓度所得到的数据的可再现性并不总是像是在表2中所示的那样好。表2-血液中人髓质素的测定值
实施例3通过酶免疫测定测定临床样品中的髓质素在室温下，将从正常个体(健康人体)和从多发性硬化患者体内采集的冷冻血液样品解冻，取10微升样品加入2毫升含有0.01％的十二烷基三甲基溴化胺的蒸馏水中，并用涡旋搅拌器适度搅拌，以便获得样品溶液。然后将10微升样品溶液加入试管，并通过加入40微升含有2％BSA的PBS溶液(pH7.4)进行稀释，然后，将在它上面固定了小鼠抗人髓质素单克隆抗体(3F03)的一个珠和350微升含有2％BSA并含有浓度为0.2微克/毫升的HRP标记的小鼠抗人髓质素单克隆抗体(2E04)的PBS溶液加入每一支试管，然后在37℃下温育30分钟。然后，通过与上文所述制备校正曲线完成相同的操作方法进行洗涤、酶反应和反应终止。然后用分光光度计测定420nm波长下的吸收值，并根据所述校正曲线测定人髓质素的浓度。为了研究该测定的可再现性，将从样品稀释处理开始的测定操作分别重复5次。结果，证实了所测定的血样中的人髓质素的浓度具有极高的可再现性，如表3所示。表3-血液中人髓质素的测定值
比较实施例2通过酶免疫测定测定临床样品中的髓质素通过使冷冻保藏的分别从正常个体和多发性硬化患者体内采集的血样恢复到室温而进行解冻。取10微升血样并加入2毫升PBS溶液(pH7.4)中，并均匀混合，以便获得样品溶液。然后将10微升样品溶液加入试管中，并通过加入40微升含有2％BSA的PBS(pH7.4)进行稀释。然后，将在它上面固定了小鼠抗人髓质素单克隆抗体(3F03)的一个珠和350微升含有2％BSA并含有浓度为0.2微克/毫升的HRP标记的小鼠抗人髓质素单克隆抗体(2E04)的PBS加入所述试管中，然后在37℃下温育30分钟。然后，用与上述制备标准曲线完全相同的操作进行洗涤、酶反应和反应终止。用分光光度计测定420nm波长下的吸收值，并根据所述校正曲线测定人髓质素的浓度。为了研究该测定的可再现性，将从样品稀释处理开始的测定操作分别重复5次。结果，证实测定血样中的人髓质素的浓度所得到的数据的可再现性并不总是像是在表4中所示的那样好。表4-血液中人髓质素的测定值
实施例4计算血样中人髓质素值以及疾病诊断在室温下，将从正常个体、多发性硬化患者和非炎性神经疾病患者体内采集的冷冻血液样品解冻，取10微升血样加入2毫升蒸馏水(渗透压=0mOsm/kg.H2O)中，并用涡旋搅拌器适度搅拌，以便获得样品溶液。然后将10微升样品溶液加入试管，并通过加入390微升含有2％BSA的PBS溶液(pH7.4)进行稀释。然后，将在它上面固定了小鼠抗人髓质素单克隆抗体(3F03)的一个珠加入每一个试管中，在37℃下温育30分钟。在通过移液方式取出试管中的溶液之后，用生理盐水溶液洗涤。向该试管中加入400微升含有2％BSA并含有浓度为0.2微克/毫升的HRP标记的小鼠抗人髓质素单克隆抗体(2E04)的PBS溶液，然后在37℃下温育30分钟。然后，通过与上文所述制备校正曲线完全相同的操作方法进行洗涤、酶反应和反应终止。然后，用分光光度计测定420nm波长下的吸收值，并根据所述校正曲线测定人髓质素的浓度。
根据人髓质素浓度和测定的每一种血样中的粒细胞的数量计算表示108个粒细胞中髓质素的量的人髓质素值(微克/108粒细胞)，结果如图3所示。
图3表示正常个体、多发性硬化患者和非炎性神经疾病患者相应的髓质素值的比较。下面的结果是从图3中获得的。
·多发性硬化305±117(n=112)·非炎性神经疾病患者233±66(n=80)·正常个体 213±34(n=25)将上述结果与截止值(281微克/108粒细胞)进行比较，并归类为阳性或阴性。在表5中示出了阳性和阴性的数量以及阳性的百分比。表5-临床血样中的人髓质素值
从上述结果可以看出，根据血样中的髓质素值诊断多发性硬化是一种高可靠性的诊断方法。另外，在根据男性或女性(参见图4)以及根据不同年龄(参见图5)对多发性硬化患者的髓质素值水平进行分类之后获得了以下结果。
男性/女性·多发性硬化患者女性351±107(n=78)男性367±143(n=34)·正常个体214±34(n=24)·截止值281(微克/108粒细胞)根据年龄·多发性硬化患者10-19: 421±154(n=9)20-29: 329±94(n=26)30-39: 357±104(n=30)40-49: 330±157(n=17)50岁以上 375±125(n=25)·正常个体213±34(n=25)·截止值281(微克/108粒细胞)以上结果表明，在男性和女性之间没有发现差别，并且在不同年龄之间也没有发现差别。
本发明的效果通过以上所述的本发明，可以精确地、并且以良好的可再现性免疫测定血样中的人髓质素的含量。另外，可通过血液中人髓质素的测定值诊断多发性硬化的发作或这种病的程度或状态，以便诊断慢性炎性疾病，特别是多发性硬化。
权利要求
1．一种免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其特征在于包括下面的步骤(a)和(b)(a)通过让所述血样与下面的含水液体(ⅰ)或(ⅱ)或(ⅰ)和(ⅱ)的含水液体的混合物接触，裂解血样中白细胞的步骤(ⅰ)渗透压为250mOsm/kg.H2O或更低的含水液体，或渗透压为310mOsm/kg.H2O或更高的含水液体；(ⅱ)含有一种溶血产物的含水液体；和(b)用一种抗人髓质素抗体免疫测定由在步骤(a)中裂解的白细胞释放到血样中的人髓质素的量。
2．如权利要求1的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所述含水液体(ⅰ)是可包括水溶性有机溶剂的缓冲溶液和/或蒸馏水。
3．如权利要求1的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所述含水液体(ⅰ)是含有选自下列一组的水溶性物质的含水溶液无机酸盐、有机酸盐、糖、糖醇、氨基酸和蛋白物质。
4．如权利要求1的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所使用的所述含水液体(ⅰ)的量以体积单位计为血样的50-100000倍。
5．如权利要求1的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所述含水液体(ⅱ)是表面活性剂的水溶液。
6．如权利要求5的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所述含水液体(ⅱ)是具有至少一种类型的选自下列一组的溶血产物的含水溶液高级脂肪酸盐、烷基芳基磺酸盐、烷基磺酸盐、烷基磺酸酯盐、烷基吡啶盐、烷基三甲基铵盐、聚氧乙烯烷基苯基醚、聚氧乙烯烷基醚、聚氧乙烯山梨糖醇酐脂肪酸酯和烷基甜菜碱。
7．如权利要求1的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所使用的所述含水液体(ⅱ)的量以体积单位计为血样的50-100000倍。
8．如权利要求1的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所述免疫测定血样中人髓质素含量的步骤(b)包括，在有标记的抗人髓质素抗体的条件下，让含有从在步骤(a)中裂解的白细胞中释放的所述人髓质素的血样与固定在一种不溶性载体上的抗人髓质素抗体接触，以便形成夹心复合体，并通过抗原-抗体反应将人髓质素捕获在标记的免疫复合体上，然后测定所述复合体中标记材料的活性量。
9．如权利要求1的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所述步骤(b)包括，将所述血样中的人髓质素加在固定在不溶性载体上的抗人髓质素抗体和标记的抗人髓质素抗体之间，以便通过抗原-抗体反应形成复合体，并测定所述复合体中标记的量。
10．如权利要求8的免疫测定血液中人髓质素含量的方法，其中，所述抗人髓质素抗体的至少一种是抗人髓质素单克隆抗体。
11．一种诊断多发性硬化的方法，其特征在于包括下面的步骤(a)、(b)和(c)(a)通过让所述血样与下面的含水液体(ⅰ)或(ⅱ)或(ⅰ)和(ⅱ)的含水液体混合物接触，裂解血样中白细胞的步骤(ⅰ)渗透压为250mOsm/kg.H2O或更低的含水液体，或渗透压为310mOsm/kg.H2O或更高的含水液体；(ⅱ)含有一种溶血产物的含水液体；(b)用一种抗人髓质素抗体免疫测定由在步骤(a)中裂解的白细胞释放到血样中的人髓质素的量；和(c)观察在步骤(b)中测定的血液中人髓质素含量的大小和/或变化。
12．如权利要求11的诊断多发性硬化的方法，其中，所述抗人髓质素抗体的至少一种是抗人髓质素单克隆抗体。
13．如权利要求11的诊断多发性硬化的方法，其中所述含水液体(ⅰ)是可包括水溶性有机溶剂的缓冲溶液和/或蒸馏水。
14．如权利要求11的诊断多发性硬化的方法，其中所使用的所述含水液体(ⅰ)的量以体积单位计为血样的50-100000倍。
15．如权利要求11的诊断多发性硬化的方法，其中所述含水液体是表面活性剂的水溶液。
16．如权利要求11的诊断多发性硬化的方法，其中所使用的所述含水液体(ⅱ)的量以体积单位计为血样的50-100000倍。
17．如权利要求11的诊断多发性硬化的方法，其中，所述步骤(b)包括，在有标记的抗人髓质素抗体的条件下，让含有从在步骤(a)中裂解的白细胞中释放的所述人髓质素的血样与固定在一种不溶性载体上的抗人髓质素抗体接触，以便形成夹心复合体，并通过抗原-抗体反应将人髓质素捕获在标记的免疫复合体上，然后测定所述复合体中标记材料的活性量。
18．如权利要求11的诊断多发性硬化的方法，其中所述步骤(b)包括将所述血样中的人髓质素加在固定在不溶性载体上的抗人髓质素抗体和标记的抗人髓质素抗体之间，以便通过抗原-抗体反应形成复合体，并测定所述复合体中标记的量。
全文摘要
一种髓质素的免疫测定方法,其中,当使用抗人髓质素抗体测定血液中的髓质素时,用所述抗人髓质素抗体测定血样中人髓质素的量是在用一种含水液体处理所述血样之后进行的,所述含水液体的比渗透压不同于血液的渗透压,以便完全裂解白细胞;和一种诊断多发性硬化的方法,其特征在于,血样中的人髓质素的含量是用一种免疫测定方法测定的,并且,根据该测定值的大小或变化诊断多发性硬化的发作和疾病的程度。
文档编号G01N33/577GK1307237SQ0013443
公开日2001年8月8日 申请日期2000年11月30日 优先权日2000年2月3日
发明者铃木英明, 高桥树由, 葛城寿史, 青木洋祐 申请人:大日精化工业株式会社