专利名称：移植肾排斥反应早期诊断试剂盒及其使用方法
技术领域：
本发明涉及ー种早期诊断试剂盒，具体讲，涉及ー种移植肾排斥反应早期诊断试剂盒及其使用方法。
背景技术：
全球因慢性肾功能衰竭而行透析的人数已由1990年的42. 6万人增加至2000年的106. 5万人，预计到2010年将达到200余万人。这ー人数的增长，致使全球透析费用迅速增长，对发达国家、发展中国家均造成了巨大的经济负担。我国约有100万尿毒症患者，每年新增12万人，每年约有50万患者需要肾移植。目前我国已累计开展各种器官移植近10 万例，成为世界第二器官移植大国，其中最多的是肾脏移植，累计达8万多例。移植受者和移植物有功能长期存活是器官移植追求的最終目标。随着手术技术的进步、组织配型技术的提高和免疫抑制剂的发展，肾移植术后I年存活率已大大提高，但长期预后仍有待改善。急性排斥反应的反复发作和慢性排斥反应是引起移植物失功的主要原因，长期服用免疫抑制剂所带来的毒副作用，如肾毒性、感染、诱发肿瘤等，亦影响移植物及受者的长期存活。反复发作的急性排斥反应与慢性排斥反应是引起移植物失功的重要原因，但临床上缺乏有效的动态监测与无创诊断手段。移植肾穿刺活检是目前最可靠的诊断方法，但具有创伤性，可引起感染、出血、甚至移植物丢失等，不易被患者接受且不利于动态观察。并且活检取材也有一定的局限性，根据Banff标准，许多临床怀疑移植肾排斥的患者在病理形态上可能并不能符合排斥的诊断标准。因此，迫切需要探索适合我国人群的、可靠的、可满足动态观察需要的移植肾排斥反应无创性诊断方法。该课题的完成将在很大程度上辅助延长患者移植后生存期，提高生存质量，減少国家医疗投入，节省家庭开支，具有极大的临床应用价值和社会、经济效益，并有助于我国移植界具有国际领先水平的自主知识产权成果的产出。移植肾排斥反应的无创诊断技术的研究现状自20世纪80年代起，移植学界已开始动态观察移植受者各种血清中多种细胞因子水平及变化，探索移植排斥反应的发生机制及其诊断方法。例如IL-6、可溶型IL-6受体(IL-6R)可溶性⑶30 (s⑶30)、肝细胞再生因子(hepatocyte growth factor, HGF)、IL_18、转移生长因子-β (Transforming GrowthFactor Beta, TGF-β )、IL-17、颗粒酶 B、穿孔素、FasL、粒溶素、CD154、I COS、CTLA4、PD-I等分子与移植肾排斥反应相关。中国人民解放军第三〇九医院器官移植中心在1994年对37例肾移植受者和55名正常人血清IL-6水平的动态測定，结果表明，移植肾急性排异患者血清IL-6水平明显升高，而慢性排异患者IL-6水平无显著变化，提示血清IL-6水平监测是移植肾排斥反应的重要诊断指标之ー；随后，又分别对血清免疫细胞抑制性受体(leukocyte-associated Ig-Iike receptor-l, LAIR-I),可溶型 LAIR-2 分子，HLA-G,血小板/T 细胞活化抗原 I (platelet and T cell activation antigenl,PTAl,CD226)和同种异体混合淋巴细胞反应中特异性表达的P140等与移植肾排斥反应的相关性进行了研究和报道。然而，尽管众多科研工作者致力于筛选移植排斥特异性的生物标记，但至今尚未筛选出特异性分子应用于排斥反应的无创性诊断和鉴别诊断。目前国际上仍缺乏移植肾排斥反应的无创诊断和预警体系。移植排斥反应是ー个非常复杂的过程，细胞免疫和体液免疫机制均參与这个过程，而且，移植物的差异，手术的影响，移植受者个体的差异以及临床上不同免疫抑制方案的应用等众多因素的參与使移植排斥反应的诊断更加复杂和困难。另外，既往研究表明，通过检测单个分子来明确诊断移植排斥反应有很大的难度。早期卵巣上皮癌的血清诊断体系的成功建立，为移植排斥反应的无创诊断提供了新的研究思路。2005年，耶鲁大学的Gil等通过对已知蛋白标记的筛选，成功建立了由Leptin,泌乳刺激素(prolactin),骨桥蛋白(osteopontin, 0ΡΝ)和胰岛素样生长因子II (IGF- II )组成的早期卵巣上皮癌的血清诊断体系，将诊断敏感度、特异性、阳性预测值(positive predictive value, PPV)和阴性预测值(negtive predictive value, NPV)分别提高至 95%、95%、95% 和 94%。因此，在鉴定移植 排斥特异性标志物的同时，对已知的移植排斥相关的生物标记进行筛选和组合，通过多分子综合分析，建立排斥反应的联合标志物群诊断和预警体系，具有更强的可行性和更高的敏感度。Luminex技术是ー种多功能的液相芯片分析平台。它整和了有色微球(color-coded microsphere or bead)、激光技术、应用流体学、高速数字信号处理器和计算机运算法则，具有极高的检测特异性和灵敏度。微球的顔色是通过两种荧光染料染色得到的，调节两种荧光染料的比例可以获得100种不同顔色的微球，每种颜色的微球可以携带ー种生物探针。探针通过羧基结合到微球表面，因此ー个反应孔内可以完成100种不同的生物学反应。Luminex技术通过鉴定微球的顔色来确定反应类型，而对反应的定量分析是通过靶物质上的报告分子完成的。它具备多參数高通量分析、节约试剂和标本、操作简单等多种优势。采用Luminex液态芯片系统定量检测候选分子，只需30ul样本即可同时检测多个指标，在4小时内可以完成分析，灵敏度可以达到3pg/ml。
发明内容
本发明的首要发明目的在于提供ー种移植肾排斥反应早期诊断试剂盒；本发明的第二发明目的在于提供ー种移植肾排斥反应预警试剂盒；本发明的第三发明目的在于提供以上试剂盒的使用方法；本发明的第四发明目的在于提供蛋白SCF、sRAGE、CXCL7NAP2、CCL14 a-HCCUsCD40L、GCSF、GRO、IL-IRa、MCP3、IL-20、MIPId、IL-28A、IL-29IFNA I 在移植肾急性排斥反应或移植肾排斥反应预警中的应用。为了实现本发明的第一个发明目的，采用的技术方案为本发明涉及ー种移植肾排斥反应早期诊断试剂盒，所述试剂盒包括检测移植肾排斥反应的蛋白的抗体，所述抗体选自抗EGF,抗Eotaxin,抗FGF-2,抗Flt_31igand,抗Fractalkine，抗 G-CSF,抗 GM-CSF,抗 GR0,抗 IFN- α 2，抗 IFN- Y，抗 IL-10，抗 IL-12 (ρ40)，抗 IL-12 (ρ70)，抗 IL-13,抗 IL-15,抗 IL-17，抗 IL-Ira,抗 IL-1 α，抗 IL-1 β，抗 IL-2，抗IL-3，抗 IL-4，抗 IL-5，抗 IL-6，抗 IL-T,抗 IL-8，抗 IL-9，抗 ΙΡ-10，抗 MCP-I,抗 MCP-3，抗 MDC (CCL22)，抗 MIP-I α，抗 MIP-I β，抗 PDGF-AA,抗 PDGF-AB/BB,抗 RANTES,抗 TGF- α，抗 TNF- α，抗 TNF- β，抗 VEGF,抗 sCD40L,抗 sIL_2R α，抗 6Ckine，抗 BCA-1,抗 CTACK,抗ENA-78，抗 Eotaxin-2，抗 Eotaxin-3，抗 1-309，抗 IL-16，抗 IL-20，抗 IL-21，抗 IL-23，抗IL-28a，抗 IL-33，抗 LIF，抗 MCP-2，抗 MCP-4，抗 ΜΙΡ-ld，抗 SCF，抗 SDF-ΙΑ+β，抗 TARC，抗TPO,抗 TRAIL,抗 TSLP，抗 GCP2,抗 HCC-1,抗 I-TAC,抗 IL-11,抗 IL-29,抗 Lymphotactin,抗 M-CSF,抗 MIG,抗 ΜΙΡ-3 α，抗 ΜΙΡ-3 β，抗 ΝΑΡ2,抗 sCD30 (sTNFRSF8)，抗 sEGFR,抗sIL-lRI(sCD121a),抗 sIL-lRII(sCD121b)，抗 sIL_2Ra (SCD25)，抗 sIL_4R(sCD124)，抗 sIL-6R(sCD126)，抗 sRAGE，抗 sTNFRI(sTNFRSFlA)，抗 sTNFRII(sTNFRSFIB)，抗sVEGFRl(sFlt-1),抗 sVEGFR2 (sFlk-1)，抗 sVEGFR3(sFlt-4)，抗 sgpl30，抗 MIF，抗PAI-I (Total),抗sFas,抗sFasL,抗sICAM-1或抗sVCAM-1抗体中的至少一种，优选至少两种抗体，更优选至少3种抗体，再优选至少4种抗体，最优选至少5种抗体。 本发明该技术方案的第一优选技术方案为所述试剂盒包括检测移植肾排斥反应的蛋白的抗体，所述抗体选自抗SCF，抗sEGFR,抗sIL-2Ra，抗sRAGE,抗sTNFRI,抗STNFR2,抗 SVEGFR2,抗 sVCAMl,抗 sFas,抗 CCL14 a-HCC1,抗 sCD40L,抗 Eotaxin,抗FGF2,抗 Flt31igand,抗 Fracktalkine,抗 GCSF,抗 GR0,抗 IFN Y，抗 IL-IRa，抗 IL-3,抗IL-4,抗 IL-6，抗 IL-12p70，抗 IL-13，抗 IP10，抗 MIPl a，抗 VEGF，抗 BCA-1，抗 IL-16，抗 MIPld,抗 IL-20,抗 IL-28A,抗 CXCL9MIG，抗 CXCL111TAC 或抗 CCL19MIP3 β 中的至少ー种抗体，优选至少两种抗体，更优选至少3种，再优选至少4种，最优选至少5种。本发明该技术方案的第三优选技术方案为所述试剂盒还含有(I) 96孔滤膜板和两张封板膜；(2)所述试剂盒中蛋白抗体的标准品；(3)质控对照；(4)血清基质；(5)实验液；(6)洗液；(7) streptavidin-phycoerythrin (藻红蛋白_链霉亲合素)标记抗体；(8)珠子稀释液；(9)权利要求I所述的检测移植肾排斥反应的蛋白的抗体；( 10)预包被抗体的珠子。本发明该技术方案的第四优选技术方案为所述试剂盒中(I)所述96孔滤膜板和两张封板膜购自Millipore公司，货号MX-PLATE ；(2)所述标准品购自 Millipore 公司，货号 MXH8060, MXH8062, MXH8063, LHSP-8063和 HSCR-8032 ；(3)所述质控对照购自 Millipore 公司，货号为MXH6060, MXH6062, MXH6063, LHSP-6063 和 HSCR-6032 ；(4)所述血清基质购自 Millipore 公司，货号为MXHSM，LHSP-SM, HSCR-SM ；(5)所述实验液购自Millipore公司，货号L-AB ；(6)所述洗液购自Millipore公司，货号L-WB ；(7)所述 streptavidin-phycoerythrin 标记抗体购自 Millipore 公司，货号L-SAPE9, L-SAPE3, L-SAPE10, L-SAPElI, L-SAPE6 ；(8)所述珠子稀释液购自Millipore公司，货号LBD ；(9)检测抗体购自 Millipore 公司，货号 MXH1060，MXH1062, MXH1063,LHSP-1063, HSCR-1032 ；(10)所述预包被抗体的珠子购自Millipore公司，货号MXHPMX39，MXHP2PMX23, HSP, HASP-PAII, MXH3PMX9, HSCRPMX14 为实现本发明的第二发明目的，采用的技术方案为ー种移植肾排斥反应预警试剂盒，所述试剂盒包括检测移植肾排斥反应的蛋白的抗体，所述抗体选自抗EGF，抗 Eotaxin,抗 FGF-2,抗 Flt_31igand,抗 Fractalkine,抗 G-CSF,抗 GM-CSF,抗 GR0,抗IFN- α 2，抗 IFN- Y，抗 IL-10，抗 IL-12 (ρ40)，抗 IL-12 (ρ70)，抗 IL-13，抗 IL-15，抗 IL-17， 抗 IL-Ira,抗 IL-I α，抗 IL-I β，抗 IL-2，抗 IL-3，抗 IL-4，抗 IL-5，抗 IL-6，抗 IL-T,抗IL-8，抗 IL-9，抗 IP-IO，抗 MCP-I,抗 MCP-3，抗 MDC(CCL22)，抗 MIP-I α，抗 MIP-I β，抗PDGF-AA，抗 PDGF-AB/BB，抗 RANTES，抗 TGF- α，抗 TNF- α，抗 TNF- β，抗 VEGF，抗 sCD40L，抗 sIL-2R α，抗 6Ckine,抗 BCA-1,抗 CTACK,抗 ENA-78,抗 Eotaxin-2,抗 Eotaxin-3,抗1-309，抗 IL-16,抗 IL-20,抗 IL-21，抗 IL-23，抗 IL_28a,抗 IL-33，抗 LIF,抗 MCP-2，抗 MCP-4，抗 MIP-ld，抗 SCF，抗 SDF-ΙΑ+β，抗 TARC，抗 ΤΡ0，抗 TRAIL,抗 TSLP，抗GCP2,抗 HCC-1,抗 I-TAC,抗 IL-11,抗 IL-29,抗 Lymphotactin,抗 M-CSF,抗 MIG,抗 ΜΙΡ-3 α，抗 ΜΙΡ-3 β，抗 ΝΑΡ2,抗 sCD30 (sTNFRSF8)，抗 sEGFR,抗 sIL-lRI (sCD121a)，抗 sIL-lRII(sCD121b),抗 sIL_2Ra (sCD25)，抗 sIL_4R(sCD124)，抗 sIL_6R(sCD126)，抗 sRAGE，抗 sTNFRI(sTNFRSFlA)，抗 sTNFRII(sTNFRSFIB)，抗 sVEGFRl(sFlt-1)，抗sVEGFR2 (sFlk-1)，抗 sVEGFR3 (sFlt-4)，抗 sgpl30,抗 MIF,抗 PAI-I (Total)，抗 sFas,抗sFasL，抗sICAM-I或抗sVCAM-1抗体中的至少ー种，优选至少两种抗体，更优选至少3种抗体，再优选至少4种抗体，最优选至少5种抗体。本发明该技术方案的第一优选技术方案为所述试剂盒包括检测移植肾排斥反应的蛋白的抗体，所述抗体选自抗SCF，抗sEGFR，抗sIL-2Ra，抗SRAGE，抗sTNFRI，抗STNFR2，抗 SVEGFR2，抗 sVCAMl，抗 sFas，抗 CCL14 a -HCCl，抗 sCD40L，抗 Eotaxin，抗 FGF2，抗 Flt31igand,抗 Fracktalkine,抗 GCSF,抗 GR0,抗 IFN Y，抗 IL-IR α，抗 IL-3,抗 IL-4,抗 IL-6，抗 IL-12p70，抗 IL-13，抗 IP10，抗 MIPl α，抗 VEGF，抗 BCA-1，抗 IL-16，抗 MIPId，抗IL-20，抗IL-28A，抗CXCL9MIG，抗0乂ぼ111了4(或抗0(し1910 3 0中的至少ー种抗体，优选至少两种抗体，更优选至少3种,再优选至少4种,最优选至少5种。本发明该技术方案的第二优选技术方案为，所述试剂盒还含有 (I) 96孔滤膜板和两张封板膜；( 2 )所述试剂盒中蛋白抗体的标准品；(3)质控对照；(4)血清基质；(5)实验液；(6)洗液；(7) streptavidin-phycoerythrin 你I己抗体；(8)珠子稀释液；
(9)权利要求10所述的检测移植肾排斥反应的蛋白的抗体；( 10)预包被抗体的珠子。本发明该技术方案的第三优选技术方案为所述试剂盒中(I)所述96孔滤膜板和两张封板膜购自Millipore公司，货号MX-PLATE ；(2)所述标准品购自 Millipore 公司，货号 MXH8060, MXH8062, MXH8063, LHSP-8063和 HSCR-8032 ；(3)所述质控对照购自 Millipore 公司，货号为MXH6060, MXH6062, MXH6063, LHSP-6063 和 HSCR-6032 ； (4)所述血清基质购自 Millipore 公司，货号为MXHSM，LHSP-SM, HSCR-SM ；(5)所述实验液购自Mi 11 ipore公司，货号L-AB ；(6)所述洗液购自Millipore公司，货号L-WB ；(7)所述 streptavidin-phycoerythrin 标记抗体购自 Millipore 公司，货号L-SAPE9, L-SAPE3, L-SAPE10, L-SAPElI, L-SAPE6 ；(8)所述珠子稀释液购自Millipore公司，货号LBD ；(9)检测抗体购自 Millipore 公司，货号 MXH1060，MXH1062, MXH1063,LHSP-1063, HSCR-1032 ；(10)所述预包被抗体的珠子购自Millipore公司，货号MXHPMX39，MXHP2PMX23, HSP, HASP-PAII, MXH3PMX9, HSCRPMX14 为了实现本发明的第三个发明目的，采用的技术方案为本发明的试剂盒的使用方法为包括以下步骤(I)采集全血，室温静置，IOOOrpm离心5 15分钟收取上清，分装后冷冻保存备用；(2)用实验液或洗涤液预湿实验板，置于振荡器振摇5 20分钟；吸走实验板孔中的液体，吸干实验板底；(3)相应孔分别加入梯度稀释的标准品、质控对照和样品；(4)在背景孔、标准品和质控对照孔中加入血清基质；(5)每孔加入珠子；(6)封板后将实验板振摇4°C孵育过夜或室温下孵育O. 5^2h ;吸走实验板孔中的液体，吸干实验板底；利用洗液洗涤实验板两次；(7)每孔加入相应的检测抗体；室温下振摇实验板O. 5^2h ；(8)姆孔加入streptavidin-phycoerythrin标记抗体；室温下振摇实验板孵育2(T40min ;用洗液洗涤洗扳两次；(9)每孔加入鞘液，检测分析得到实验結果。本发明所述的试剂盒的使用方法的第一优选技术方案为，包括以下步骤(I)采集全血，室温静置Ih后，IOOOrpm离心10分钟收取上清，分装后_80°C冰箱保存备用2ml ；(2)应用200 μ I实验液或洗涤液预湿实验板，置于振荡器振摇1(Γ15分钟；应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体，纸巾吸干实验板底；(3)相应孔分别加入25 μ I梯度稀释的标准品、质控对照和样品；(4)在背景孔、标准品和质控对照孔中加入血清基质25 μ I ;
(5)姆孔加入25 μ I珠子；(6)封板后将实验板置于振荡器振摇4°C孵育过夜或室温下孵育Ih ;应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体，纸巾吸干实验板底；每孔加入200μ I洗液，应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体，纸巾吸干实验板底，洗扳两次；(7)每孔加入25 μ I检测抗体，室温下振荡器振摇实验板Ih ；(8)姆孔加入25 μ I streptavidin-phycoerythrin标记抗体,室温下振荡器振摇实验板孵育30min ;每孔加入200 μ I洗液,应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体,纸巾吸干实验板底，洗扳两次；(9)每孔加入150 μ I鞘液，流式点阵仪检测，软件分析，得到实验結果。 本发明所述的试剂盒的使用方法的第二优选技术方案为，在步骤(3)中标准品、质控对照和样品的按照I :4 5的比例逐级稀释。标准品和质控对照的初始浓度米用了 与 Luminex 检测试剂盒 Human Cytokine/Chemokine (MPXHCYT0-60K) > HumanCytokine/Chemokine Panel II (MPXHCYP2-62K)、Human Cytokine/Chemokine Panel III(MPXHCYP3-63K)、 Human Soluble Cytokine Receptor Panel (HSCR-32K-PMX14)、 HumanSepsis Panel I (HSEP-63K)中相同的浓度。本发明所述的试剂盒的使用方法的第三优选技术方案为，在步骤(9)中所述的鞘液购自Iuminex公司，货号为#40-50000。本发明所述的试剂盒的使用方法的第四优选技术方案为，在步骤(9)中所述的流式点阵仪为luminex200，软件为MILLIPLEX Analyst分析。本发明的第四发明目的在于提供蛋白SCF、sRAGE、CXCL7NAP2、CCL14 a -HCCUsCD40L、GCSF、GRO、IL-IRa、MCP3、IL-20、MIPId、IL-28A、IL-29IFNA I 在移植肾急性排斥反应或移植肾排斥反应预警中的应用。其中，所述的蛋白的筛选方法为首先，采集肾移植受者的移植术后多个时间点的血清，并对临床病例进行分析和分组；然后应用Luminex系统对各组血清中96种细胞因子及趋化因子的表达水平进行检测；最后，统计学方法筛选出移植排斥反应相关的标志物，联合应用这些标志物群，建立以多因子综合分析为特征的移植肾排斥反应的诊断和预警体系O本发明应用美国密理博公司(Millipore)的Luminex检测试剂盒MPXHCYT0-60K、MPXHCYP2PMX23、MPXHCYP2-62K、MPXHCYP3-63K、HSCR-32K-PMX14、HSEP-63K-06，共检测 96种细胞因子、细胞因子受体以及趋化因子在急性排斥反应组和移植肾功能稳定组病人血清中的表达水平。具体实验过程见各试剂盒说明书。应用统计学分析软件SPSS16. O对检测数据进行正态性检验和方差齐性检验后，非正态分布资料应用minitabl5. O进行数据转换，经数据转换后为正态分布的应用T检验分析急性排斥反应组和移植肾功能稳定组间表达水平有显著性差异的标记物，未能转换为正态分布的资料经非參分析的方法分析表达水平有显著性差异的标记物。分析后共得到 35 个有显著性差异的标记物SCF, sEGFR, sIL_2Ra，sRAGE, sTNFRI, sTNFR2, sVEGFR2,sVCAMl, sFas, CCL14a -HCCl, sCD40L，Eotaxin, FGF2, Flt31igand, Fracktalkine, GCSF,GRO,IFNy,IL-IRa ，IL-3,IL-4,IL-6,IL_12p70，IL-13,ΙΡΙΟ,ΜΙΡΙa ,VEGF,BCA-1,IL-16,MIPId, IL-20, IL-28A, CXCL9MIG, CXCLl 11TAC, CCL19MIP3 β。其中，蛋白 SCF, 11 sRAGE,CXCL7NAP2, CCL14a -HCCl, sCD40L, GCSF, GRO, IL-IRa ， MCP3, IL-20, MIPId, IL-28A，IL-29IFNA I未见有在移植肾急性排斥反应或移植肾排斥反应预警中的报道。下面对本发明的内容进行详细说明发明人应用液态蛋白质芯片Iuminex检测技术对142例急性移植肾排斥反应病人和移植肾功能稳定的移植受者共266份血清中的96种细胞因子/趋化因子及其受体的表达水平进行了监测和综合分析，建立了含至少ー种联合标志物的移植肾排斥反应预警系统和含至少ー种因子联合标志物的移植肾排斥反应早期诊断系统，对急性排斥反应的预测和准确率达到98. 6%，内部交叉验证率分别为97. 1%和97. 2%。其中，优选的，移植肾排斥反应预警系统中优选含有至少3种所述的蛋白抗体，移植肾排斥反应早期诊断系统含有至少4种所述的蛋白抗体。其中，所述试剂盒中所含有的本发明所述的蛋白因子越多，其准确度越高，但会增加实际操作中的复杂性。 本发明所述的标记物蛋白的筛选过程为( I)采集肾移植受者的移植术前及术后多个时间点的血清、尿样和PBMC，并对临床病例进行分析和分组。(2)应用Luminex系统对各组血清和尿液中96种细胞因及趋化因子的表达水平进行检测。(3)统计学方法(ANOVA)筛选出移植排斥反应相关的标志物，联合应用这些标志物群，建立以多因子综合分析为特征的移植肾排斥反应的诊断和预警体系。本发明的试剂盒是在美国密理博公司(Mi 11 ipore )的Luminex检测试剂盒Human Cytokine/Chemokine (MPXHCYT0-60K)、Human Cytokine/Chemokine Panel II(MPXHCYP2-62K)、Human Cytokine/Chemokine Panel III (MPXHCYP3-63K)、Human SolubleCytokine Receptor Panel (HSCR-32K-PMX14)> Human Sepsis Panel I (HSEP-63K)的基础上，对急性移植肾排斥反应病人和移植肾功能稳定的移植受者血清中的96种细胞因子/趋化因子及其受体的表达水平进行了分析得到的，本发明试剂盒中的试剂的大部分购自Millipore公司，公众可通过本发明中公开的货号从市场上购得。Luminex检测试剂盒的原理为双抗体夹心法。本发明通过建立排斥反应的联合标志物群诊断和预警体系，具有更强的可行性和更高的敏感度。
图I为实施例2中移植肾排斥反应早期诊断试剂盒的诊断曲线下面积图；图2为实施例3中移植肾排斥反应早期诊断试剂盒的诊断曲线下面积图；图3为实施例5中移植肾排斥反应预警试剂盒的诊断曲线下面积图；图4为实施例6中移植肾排斥反应预警试剂盒的诊断曲线下面积图；图5为移植肾功能稳定组和急性移植肾排斥反应组在早期诊断系统中各因子在血清中的浓度比较图，其中O为稳定组，I为排斥组；图6为移植肾功能稳定组和急性移植肾排斥反应组在预警系统中各因子在血清中的浓度比较图，其中O为稳定组，I为排斥组。以下具体实施方式
仅对本发明的内容做进ー步的解释和说明，并不对本发明的内容构成限制。
具体实施例方式实施例I移植肾排斥反应早期诊断试剂盒显著性差异标记物的筛选I、采集肾移植受者的移植术后多个时间点的血清，并对临床病例进行分析和分组。I. I选取术前基础病或者并发症少，手术未发生严重并发症的移植肾受者，分别在肾移植受者移植术后I天、7天、14天、21天、28天、2个月、3个月 12个月采集全血2ml，室温静置Ih后，IOOOrpm离心10分钟收取上清，分装后_80°C冰箱保存备用。另外随时收取急性排斥反应组患者在急性排斥反应确诊后的血清。 I. 2根据肾移植患者血清肌酐、尿素氮、移植肾B超、临床表现、穿刺病理诊断结果和激素冲击治疗是否有效等综合分析和病例筛选，将收集病例分为两组急性排斥反应组和移植肾功能稳定组。急性排斥反应组33例，移植肾功能稳定组38例。I. 3急性排斥反应组入组标准①未发生肾移植外科并发症、感染以及其他严重并发症的肾移植患者；②活检穿刺病理诊断为急性排斥反应的病例；③未经活检穿刺的病例根据临床诊断和激素冲击治疗的有效性进行判断肾移植患者血清肌酐>120μ mol/L，尿素氮>8. 3mmol/L，移植肾B超显示移植肾体积増大、血流减少、血管阻力増加，临床表现为发热，伴乏力关节酸痛、体重増加、血压升高、尿量減少和移植肾胀痛等，穿刺病理诊断结果为急性排斥反应，激素冲击治疗后血清肌酐下降10%以上。1.4移植肾功能稳定组入组标准①未发生肾移植外科并发症、感染以及其他严重并发症的肾移植患者；②未发生排斥反应；③移植肾功能恢复较快(14天内血清肌酐降至正常(〈120 μ mol/L))。2、应用Luminex系统对各组血清中96种细胞因子及趋化因子的表达水平进行检測。2. I选取移植肾功能稳定组病人血清肌酐恢复正常时(肾移植木后7天或14天)的血清样本共38份急性排斥反应组发生排斥反应并确诊后时收取的血清32份；2. 2应用美国密理博公司(Millipore) Luminex检测试剂盒(MPXHCYT0-60K、MPXHCYP2PMX23、MPXHCYP2-62K、MPXHCYP3-63K、HSCR-32K-PMX14、HSEP-63K-06)共检测 96种细胞因子、细胞因子受体以及趋化因子在急性排斥反应组和移植肾功能稳定组病人血清中的表达水平；具体实验过程见各试剂盒说明书；其中，移植肾功能稳定组和急性移植肾排斥反应组早期诊断系统中各因子在血清中的浓度比较如图5所示，其中O为稳定组，I为排斥组；简要实验过程为应用assay buffer200 μ I预湿实验板，置于振荡器振摇10分钟后应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体，纸巾吸干实验板底后分别加入25μ I梯度稀释的标准品、对照和样品，随后每孔加入25μ I珠子，封板后将实验板置于振荡器振摇4°C孵育过夜，洗板后加入检测抗体，室温振荡器振摇实验板lh，再加入streptavidin-phycoerythrin 标记抗体后孵育 30min,洗板后 luminex200 上机检测，MILLIPLEX Analyst 软件分析；3、统计学方法筛选出移植排斥反应相关的标志物，联合应用这些标志物群，建立以多因子综合分析为特征的移植肾排斥反应的诊断体系。应用统计学分析软件SPSS16. O对检测数据进行正态性检验和方差齐性检验后，非正态分布资料应用minitabl5. O进行数据转换，经数据转换后为正态分布的应用T检验分析急性排斥反应组和移植肾功能稳定组间表达水平有显著性差异的标记物，未能转换为正态分布的资料经非參分析的方法分析表达水平有显著性差异的标记物。分析后共得到35个有显著性差异的标记物SCF, sEGFR, sIL-2Ra，sRAGE, sTNFRI, sTNFR2, sVEGFR2, sVCAMl,sFas, CCL14 a -HCCI, sCD40L, Eotaxin, FGF2, Flt31igand, Fracktalkine, GCSF, GRO, IFNy，IL-IR a，IL-3, IL-4, IL-6, IL_12p70, IL-13, IP10, MIPl a，VEGF, BCA-1, IL-16, MIPId, IL-20，IL-28A, CXCL9MIG, CXCLl11TAC, CCL19MIP3β。 实施例2将实施例I得到的35个有显著性差异的标记物进行分析，对这些表达水平有显著性差异的标记物进行Iogstic回归分析后得到4个因子SCF、sEGFR、sIL2Ralpha和Eotaxin组成的移植肾急性排斥反应的预警诊断系统，统计学分析得到预测阳性率为
91.4。ROC诊断曲线下面积为97. 5%，见附图I。其中，试剂盒的具体组成为(1)96孔滤膜板和两张封板膜；购自Millipore公司，货号MX-PLATE ；(2)所述试剂盒中蛋白抗体的标准品；购自Millipore公司，货号MXH8060，MXH8062，MXH8063, LHSP-8063 和 HSCR-8032 ；(3)质控对照；购自 Millipore 公司，货号为MXH6060, MXH6062, MXH6063, LHSP-6063 和 HSCR-6032 ；(4)血清基质；购自 Millipore 公司，货号为MXHSM，LHSP-SM, HSCR-SM ；(5)实验液；购自Millipore公司，货号L-AB ；(6)洗液；购自 Millipore 公司，货号 L-WB ；(7)streptavidin-phycoerythrin 标记抗体；购自 Millipore 公司，货号 L-SAPE9,L-SAPE3, L-SAPE10, L-SAPElI, L-SAPE6 ；(8)珠子稀释液；液购自Millipore公司，货号LBD ；(9)抗SCF的抗体、抗sEGFR的抗体、抗sIL2Ralpha的抗体和抗Eotaxin的抗体；购自 Millipore 公司，货号 MXH1060，MXH1062, M皿063，LHSP-1063, HSCR-1032 ；(10)预包被抗体的珠子，购自Millipore公司，货号L-AB ；货号MXHPMX39，MXHP2PMX23, HSP, HASP-PAII, MXH3PMX9, HSCRPMX14。实施例3 :移植肾急性排斥反应早期诊断试剂盒的组成将实施例I得到的35个有显著性差异的标记物进行分析，对这些表达水平有显著性差异的标记物进行Iogstic回归分析后得到14个因子sTNFR2、Flt3Ligand、Fractalkine、ILlra、IL2、MDC、MIPlalpha、SDFlalphabeta、TARC、TRAIL、SCF、CCL20、MIP3alpha和XCLlLymphotactin ;统计学分析得到早期诊断系统预测阳性率为98. 6%，ROC诊断曲线下面积为99. 8%，见附图2。其中，试剂盒的具体组成为
(1)96孔滤膜板和两张封板膜；购自Millipore公司，货号MX-PLATE ；(2)所述试剂盒中蛋白抗体的标准品；购自Millipore公司，货号MXH8060，MXH8062，MXH8063, LHSP-8063 和 HSCR-8032 ；(3)质控对照；购自 Millipore 公司，货号为MXH6060, MXH6062, MXH6063, LHSP-6063 和 HSCR-6032 ；(4)血清基质；购自 Millipore 公司，货号为MXHSM，LHSP-SM, HSCR-SM ；(5)实验液;购自Millipore公司，货号L-AB ；(6)洗液；购自 Millipore 公司，货号 L-WB ；(7)streptavidin-phycoerythrin 标记抗体；购自 Millipore 公司，货号 L-SAPE9, L-SAPE3, L-SAPE10, L-SAPElI, L-SAPE6 ；(8)珠子稀释液；液购自Millipore公司，货号LBD ；(9)抗 sTNFR2 的抗体、抗 Flt3Ligand 的抗体、抗 Fractalkine 的抗体、抗 ILlra的抗体、抗IL2的抗体、抗MDC的抗体、抗MIPlalpha的抗体、抗SDFlalphabeta的抗体、抗TARC的抗体、抗TRAIL的抗体、抗SCF的抗体、抗CCL20的抗体、抗MIP3alpha的抗体和抗 XCLlLymphotactin 的抗体；购自 Millipore 公司，货号 MXH1060，MXH1062, MXH1063,LHSP-1063, HSCR-1032 ；(10)预包被抗体的珠子，购自Millipore公司，货号L-AB ；货号MXHPMX39，MXHP2PMX23, HSP, HASP-PAII, MXH3PMX9, HSCRPMX14。实施例4移植肾排斥反应预警试剂盒的显著性差异标记物的筛选I、采集肾移植受者的移植术后多个时间点的血清，并对临床病例进行分析和分组。I. I选取术前基础病或者并发症少，手术未发生严重并发症的移植肾受者，分别在肾移植受者移植术后I天、7天、14天、21天、28天、2个月、3个月…12个月采集全血2ml，室温静置Ih后，IOOOrpm离心10分钟收取上清，分装后_80°C冰箱保存备用。另外随时收取急性排斥反应组患者在急性排斥反应确诊后的血清。I. 2根据肾移植患者血清肌酐、尿素氮、移植肾B超、临床表现、穿刺病理诊断结果和激素冲击治疗是否有效等综合分析和病例筛选，将收集病例分为两组急性排斥反应组和移植肾功能稳定组。急性排斥反应组33例，移植肾功能稳定组38例。1.3急性排斥反应组入组标准①未发生肾移植外科并发症、感染以及其他严重并发症的肾移植患者。②活检穿刺病理诊断为急性排斥反应的病例③未经活检穿刺的病例根据临床诊断和激素冲击治疗的有效性进行判断肾移植患者血清肌酐>120μ mol/L，尿素氮>8. 3mmol/L，移植肾B超显示移植肾体积増大、血流减少、血管阻力増加，临床表现为发热，伴乏力关节酸痛、体重増加、血压升高、尿量減少和移植肾胀痛等，穿刺病理诊断结果为急性排斥反应，激素冲击治疗后血清肌酐下降10%以上；1.4移植肾功能稳定组入组标准①未发生肾移植外科并发症、感染以及其他严重并发症的肾移植患者。②未发生排斥反应③移植肾功能恢复较快(14天内血清肌酐降至正常(〈120 μ mol/L))
2、应用Luminex系统对各组血清中96种细胞因子及趋化因子的表达水平进行检測。2. I选取移植肾功能稳定组病人血清肌酐恢复正常时(肾移植木后7天或14天)的血清样本共38份急性排斥反应组发生排斥反应并确诊后时收取的血清32份2. 2应用美国密理博公司(Millipore) Luminex检测试剂盒MPXHCYT0-60K、MPXHCYP2PMX23、MPXHCYP2-62K、MPXHCYP3-63K、HSCR-32K-PMX14、HSEP-63K-06 ;共检测 96种细胞因子、细胞因子受体以及趋化因子在急性排斥反应组和移植肾功能稳定组病人血清中的表达水平。具体实验过程见各试剂盒说明书。其中，移植肾功能稳定组和急性移植肾排斥反应组在预警系统中各因子在血清中的浓度比较如图6所示，其中O为稳定组，I为排斥组；
简要实验过程应用assay buff er200 μ I预湿实验板，置于振荡器振摇10分钟后应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体，纸巾吸干实验板底后分别加入25 μ I梯度稀释的标准品、对照和样品，随后每孔加入25 μ I珠子，封板后将实验板置于振荡器振摇4°C孵育过夜，洗板后加入检测抗体，室温振荡器振摇实验板lh，再加入streptavidin-phycoerythrin 标记抗体后孵育 30min,洗板后 luminex200 上机检测，MILLIPLEX Analyst 软件分析3、统计学方法筛选出移植排斥反应相关的标志物，联合应用这些标志物群，建立以多因子综合分析为特征的移植肾排斥反应预警体系。应用统计学分析软件SPSS16. O对检测数据进行正态性检验和方差齐性检验后，非正态分布资料应用minitabl5. O进行数据转换，经数据转换后为正态分布的应用T检验分析急性排斥反应组和移植肾功能稳定组间表达水平有显著性差异的标记物，未能转换为正态分布的资料经非參分析的方法分析表达水平有显著性差异的标记物。分析后共得到35个有显著性差异的标记物SCF, sEGFR, sIL-2Ra，sRAGE, sTNFRI, sTNFR2, sVEGFR2, sVCAMl,sFas, CCL14 a -HCCI, sCD40L, Eotaxin, FGF2, Flt31igand, Fracktalkine, GCSF, GRO, IFNy，IL-IR a，IL-3, IL-4, IL-6, IL_12p70, IL-13, IP10, MIPl a，VEGF, BCA-1, IL-16, MIPId, IL-20，IL-28A, CXCL9MIG, CXCLl11TAC, CCL19MIP3β。实施例5移植肾排斥反应预警试剂盒将实施例4得到的35个有显著性差异的标记物进行分析，对这些表达水平有显著性差异的标记物进行Iogstic回归分析后得到3个因子IL-lRa，s⑶40L和IL-20组成的移植肾急性排斥反应的预警诊断系统，统计学分析得到预测阳性率为91. 4。ROC诊断曲线下面积为97. 5%，见附图3。其中，试剂盒的具体组成为(I) 96孔滤膜板和两张封板膜；购自Millipore公司，货号MX-PLATE ；(2)所述试剂盒中蛋白抗体的标准品；购自Millipore公司，货号ΜΧΗ8060，ΜΧΗ8062，ΜΧΗ8063, LHSP-8063 和 HSCR-8032 ；(3)质控对照；购自 Millipore 公司，货号为MXH6060, MXH6062, MXH6063, LHSP-6063 和 HSCR-6032 ；(4)血清基质；购自 Millipore 公司，货号为MXHSM，LHSP-SM, HSCR-SM ；(5)实验液;购自Millipore公司，货号L-AB ；
(6)洗液；购自 Millipore 公司，货号 L-WB ；(7)streptavidin-phycoerythrin 标记抗体；购自 Millipore 公司，货号 L-SAPE9,L-SAPE3, L-SAPE10, L-SAPElI, L-SAPE6 ；(8)珠子稀释液；液购自Millipore公司，货号LBD ；(9)抗IL-IRa的抗体，抗sCD40L的抗体和抗IL-20的抗体；购自Millipore公司，货号 MXH1060，MXH1062, MXH1063, LHSP-1063, HSCR-1032 ；(10)预包被抗体的珠子，购自Millipore公司，货号L-AB ;货号MXHPMX39，MXHP2PMX23, HSP, HASP-PAII, MXH3PMX9, HSCRPMX14。实施例6移植肾排斥反应预警试剂盒 将实施例4得到的35个有显著性差异的标记物进行分析，对这些表达水平有显著性差异的标记物进行Iogstic回归分析后得到11个因子sIL-1R1，sVCAMl, SICAM-I,Fracktalkine, IL-IRa，IP10, MDC, MIPla，SDF α β，TRAIL 和 SCF 组成的移植肾急性排斥反应的预警诊断系统，统计学分析得到预测阳性率为98. 6%，ROC诊断曲线下面积为99. 8%。，见附图4。其中，试剂盒的具体组成为(1)96孔滤膜板和两张封板膜；购自Millipore公司，货号MX-PLATE ；(2)所述试剂盒中蛋白抗体的标准品；购自Millipore公司，货号MXH8060，MXH8062，MXH8063, LHSP-8063 和 HSCR-8032 ；(3)质控对照；购自 Millipore 公司，货号为MXH6060, MXH6062, MXH6063, LHSP-6063 和 HSCR-6032 ；(4)血清基质；购自 Millipore 公司，货号为MXHSM，LHSP-SM, HSCR-SM ；(5)实验液；购自Millipore公司，货号L-AB ；(6)洗液；购自 Millipore 公司，货号 L-WB ；(7)streptavidin-phycoerythrin 标记抗体；购自 Millipore 公司，货号 L-SAPE9,L-SAPE3, L-SAPE10, L-SAPElI, L-SAPE6 ；(8)珠子稀释液；液购自Millipore公司，货号LBD ；(9)抗 sIL-lRI 的抗体，抗 sVCAMl 的抗体,抗 SICAM-1 的抗体,抗 Fracktalkine的抗体,抗IL-IRa的抗体，抗IPlO的抗体，抗MDC的抗体，抗MIPl a的抗体，抗SDFa^的抗体，抗TRAIL的抗体和抗SCF的抗体；购自Millipore公司，货号MXH1060，MXH1062,MXH1063, LHSP-1063, HSCR-1032 ；(10)预包被抗体的珠子，购自Millipore公司，货号L-AB ；货号MXHPMX39，MXHP2PMX23, HSP, HASP-PAII, MXH3PMX9, HSCRPMX14。
权利要求
1.ー种移植肾排斥反应早期诊断试剂盒，其特征在于，所述试剂盒包括检测移植肾排斥反应的蛋白的抗体，所述抗体为 sTNFR2、Flt3Ligand、Fractalkine、ILlra、IL2、MDC>MIPlalpha、SDFlalphabeta、TARC, TRAIL、SCF, CCL20、MIP3alpha 和 XCLlLymphotactin。
2.根据权利要求I所述的移植肾排斥反应早期诊断试剂盒，其特征在于，所述试剂盒还含有 (1)96孔滤膜板和两张封板膜； (2)所述试剂盒中蛋白抗体的标准品； (3)质控对照； (4)血清基质； (5)实验液； (6)洗液； (7)藻红蛋白-链霉亲合素标记抗体； (8)珠子稀释液； (9)权利要求I所述的检测移植肾排斥反应的蛋白的抗体； (10)预包被抗体的珠子。
3.根据权利要求2所述的移植肾排斥反应早期诊断试剂盒，其特征在于，所述试剂盒中 (1)所述96孔滤膜板和两张封板膜购自Millipore公司，货号MX-PLATE； (2)所述标准品购自Millipore 公司，货号 MXH8060, MXH8062, MXH8063, LHSP-8063 和HSCR-8032 ； (3)所述质控对照购自Millipore 公司，货号为MXH6060, MXH6062, MXH6063, LHSP-6063 和 HSCR-6032 ； (4)所述血清基质购自Millipore公司，货号为MXHSM，LHSP-SM,HSCR-SM ； (5)所述实验液购自Millipore公司，货号L-AB； (6)所述洗液购自Millipore公司，货号L-WB； (7)所述藻红蛋白-链霉亲合素标记抗体购自Millipore公司，货号L-SAPE9，L-SAPE3，L-SAPE10, L-SAPElI, L-SAPE6 ； (8)所述珠子稀释液购自Millipore公司，货号LBD； (9)检测抗体购自Millipore 公司，货号 MXH1060，MXH1062，MXH1063，LHSP-1063, HSCR-1032 ； (10)所述预包被抗体的珠子购自Millipore公司，货号MXHPMX39，MXHP2PMX23,HSP,HASP-PAII, MXH3PMX9, HSCRPMX14。
4.权利要求I所述试剂盒的使用方法，其特征在于 (1)采集全血，室温静置，IOOOrpm离心5 15分钟收取上清，分装后冷冻保存备用； (2)用实验液或洗涤液预湿实验板，置于振荡器振摇5 20分钟；吸走实验板孔中的液体，吸干实验板底； (3)相应孔分别加入梯度稀释的标准品、质控对照和样品； (4)在背景孔、标准品和质控对照孔中加入血清基质； (5)每孔加入珠子；(6)封板后将实验板振摇4°C孵育过夜或室温下孵育0.5"2h ;吸走实验板孔中的液体，吸干实验板底；利用洗液洗涤实验板两次； (7)每孔加入相应的检测抗体；室温下振摇实验板0.5^2h ； (8)每孔加入藻红蛋白-链霉亲合素标记抗体；室温下振摇实验板孵育2(T40min;用洗液洗涤洗扳两次； (9)每孔加入鞘液，检测分析得到实验结果。
5.根据权利要求4所述的试剂盒的使用方法，其特征在于 (1)采集全血，室温静置Ih后，IOOOrpm离心10分钟收取上清，分装后_80°C冰箱保存备用2ml ； (2)应用200Ul实验液或洗涤液预湿实验板，置于振荡器振摇1(T15分钟；应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体，纸巾吸干实验板底； (3)相应孔分别加入25Ul梯度稀释的标准品、质控对照和样品； (4)在背景孔、标准品和质控对照孔中加入血清基质25iU; (5)每孔加入25y I珠子； (6)封板后将实验板置于振荡器振摇4°C孵育过夜或室温下孵育Ih;应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体，纸巾吸干实验板底；每孔加入200 Ul洗液，应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体，纸巾吸干实验板底，洗扳两次； (7)每孔加入25u I检测抗体，室温下振荡器振摇实验板Ih ； (8)每孔加入25Ul藻红蛋白-链霉亲合素标记抗体，室温下振荡器振摇实验板孵育30min ;每孔加入200 y I洗液,应用负压吸引器吸走实验板孔中的液体,纸巾吸干实验板底，洗扳两次； (9)每孔加入150Ul鞘液，流式点阵仪检测，软件分析，得到实验结果。
6.根据权利要求4所述的使用方法，其特征在于，在步骤(3)中标准品、质控对照和样品的按照I :4 5的比例逐级稀释。
7.根据权利要求4所述的使用方法，其特征在于，在步骤(9)中所述的鞘液购自Iuminex 公司，货号为 #40-50000。
8.根据权利要求4所述的使用方法，其特征在于，在步骤(9)中所述的流式点阵仪为luminex200,软件为 MILLIPLEX Analyst 分析。
全文摘要
本发明涉及一种早期诊断试剂盒，具体讲，涉及一种移植肾排斥反应早期诊断试剂盒及其使用方法。应用液态蛋白质芯片luminex检测技术对142例急性移植肾排斥反应病人和移植肾功能稳定的移植受者共266份血清中的96种细胞因子/趋化因子及其受体的表达水平进行了监测和综合分析，建立了一种移植肾排斥反应早期诊断系统，对急性排斥反应的预测和准确率达到98.6%，内部交叉验证率分别为97.1%和97.2%。
文档编号G01N33/68GK102854323SQ20121027435
公开日2013年1月2日 申请日期2011年12月23日 优先权日2011年12月23日
发明者石炳毅, 许晓光, 黄海燕 申请人:中国人民解放军第三〇九医院