专利名称：一种可同步检测Tm和Pa过敏原的磁性免疫层析方法
技术领域：
本发明涉及一种过敏原的磁性免疫检测技术，尤其是一种可同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析方法，属于食品的检验领域，涉及食物过敏原的检测技术领域，也涉及过敏原的临床检测领域。
背景技术：
食物过敏是一个世界性公共卫生问题。调查显示世界上约4%的人口对食物过敏。 为了保护易感者健康，部分国家和地区对食物过敏原的标签标注进行了严格规定，并列入立法范围，因此食物过敏原的检测越来越重要。食物过敏是由食物引起的机体对免疫系统的异常反应，食物过敏原为食物中引发或激起过敏反应的物质，通常是在特定食物中含有的含量丰富、天然存在的蛋白质。根据过敏原反应的速度、机制及临床特点将致敏机制分为 I型、II型、III型、IV型，其中大部分食物过敏是由IgE介导的I型超敏反应，一般症状包括呕吐、腹痛、腹泻等，也包括皮肤反应及呼吸道症状，严重情况下甚至会出现过敏性休克或死亡，目前尚无有效的治疗方法。为了保护易感者健康，部分国家和地区对食物过敏原的标签标注进行了严格规定并列入了立法范围。目前，已被确定的过敏性食物多达180种以上，联合国粮农组织(Food and Agriculture Organization, FAO)报告了 90%以上食物过敏原存在于八大类食物中，即牛奶、鸡蛋、鱼、甲壳类水产品、花生、大豆、坚果类及小麦，其中就包括鱼类和甲壳类水产品及其制品。据调查，在我国15 M岁年龄段人群中，约6%的人有过食物过敏的经历，在我国青少年过敏人群中对鱼类等海产品过敏的约占3-6%，位居其他致敏食物的首位。水产品的主要过敏原可分为两大类，一为贝类及虾蟹等甲壳类动物中的原肌球蛋白(Tropomyosin， 简称Tm)，另外一种则是鳕鱼等鱼类中的小清蛋白(Parvalbumin，简称1^)。由于食物成分的复杂性，加之食品加工过程中使用各种配料和添加剂，传统的化学分析很难满足食物过敏原的检测要求，因此，食物过敏原的快速检测技术研究一直是国内外科学家的研究热点。目前，食物过敏原的检测技术以分析全蛋白或酶解后肽段氨基酸序列的质谱技术、检测编码过敏原DNA片段的聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction, PCR)技术及分析过敏原性的免疫学检测技术为代表。质谱技术能精确测定全蛋白或酶解后肽段的氨基酸序列，再根据相应数据库来确定致敏蛋白，但是质谱技术存在着费时、所用仪器昂贵、 检测费用相对较高等缺点。PCR方法则在检测过程中易因操作不当受到污染而产生假阳性结果，存在操作要求技术性强、不能反映食物的真正过敏性即人们摄入该食物后会产生过敏反应等缺陷。食物过敏原的免疫学检测技术有酶联免疫吸附法(ELISA)，生物传感器法和免疫层析法。其中ELISA法是目前技术较为成熟的方法，市场上已有杏仁、大豆、花生、甲壳类、芝麻、芥末、羽扇豆、牛奶等食物过敏原的ELISA检测试剂盒，这些试剂盒可在30 60min中内实现定性或半定量检测，但是存在假阳性和假阴性反应。生物传感器法是根据待测物质和分子识别元件特异性结合，发生生物化学反应， 产生的生物学信息通过信号转换器转化为可以定量处理的电、光等信息，再经仪表放大和输出，从而达到分析和检测的目的。目前，微型SI^R生物检测器已应用于食品生产过程中花生过敏原的检测，该检测器可实现在线定量检测。但是生物传感器法需要特定的设备和配件，检测成本高，对硬件设施要求极高。由于食品工业界需要的是快速、简便、高效、特异性强且成本低廉的检测方法，因此，上述这些方法皆无法满足食品工业界的需求。免疫层析技术是ELISA技术原理的扩展应用，一般使用乳胶颗粒、胶体硒、胶体金、脂质体及上转磷等作为着色标记物。在层析时，标记物与待测物之间形成的复合物可被相应的配体所捕获而聚集于硝化纤维膜上的检测线并呈现出标记物所带有的颜色，因此可以通过纤维膜上显色条的有无、颜色深浅和反射光线等从而实现检测目的，具有操作简便、 快速的优点。在目前公开的报道中，大都以胶体金作为指示剂，因此又被称为胶体金检测法。公开号为101881769A的中国专利文献公开了一种检测虾过敏原的免疫胶体金试纸条及其制备方法，可以实现过敏原的定性检测，但是难以进行定量检测，而且目视检测使检测结果不易记录和保存。另外，在待测物质的高通量快速检测方面，也多以胶体金为标记物，如公开号为 CN101358972中国专利文献公开了检测一种或多种猪病毒性腹泻疾病抗体的试纸条。公开号为CN101363856中国专利文献公开了一种同时检测麻疹、风疹病毒特异性抗体IgG抗体的快速检测试纸条。公开号为CN1866021中国专利文献，提出了一种同时快速检测霍乱弧菌01群、0139群及霍乱毒素的试纸条。公开号为CN1904615的中国专利文献提供了一种能同时检测流感A、B病毒抗原的快速检测试纸条。在免疫层析检测技术中，除了采用胶体金作为标记物外，也有采用其它标记物作为指示剂的报道。专利号为US5753517的美国专利公开了一种使用乳胶颗粒作为标记物的定量免疫层析方法和仪器。公开号为CN2014^607的中国专利文献公开了一种以上转磷为标记物检测病毒的免疫层析方法。公开号为CN1645146A中国专利文献公开了一种用荧光稀土纳米颗粒作为标记物的免疫层析方法及其检测试纸条，可用于定量的新型免疫层析检测。此外，以磁性纳米颗粒(简称磁珠)作为标记物的免疫层析检测报道近年来也陆续出现。如公开号为CN101750494A中国专利文献，公开的是乙肝表面抗体的磁性免疫层析试纸条。公开号CN101762690A中国专利文献，公开的是一种定量检测血液中C反应蛋白的磁性免疫层析试纸条及制备方法。公开号CN101551391中国专利文献，公开的是用于检测氯霉素的免疫磁珠层析试纸条技术。公开号US2008/013884A1美国专利文献，公开了在标记物上偶联生物素，利用亲和素与生物素之间的亲和作用在结合双抗夹心模式设计的试纸条检测方法，包括磁性颗粒标记物层析法。另外，近些年在实现待测物质的高通量检测方面也取得一定进展，如公开号CN101566631A中国专利文献，公开的是用于联合检测HIV-1+2抗体和PM抗原的磁颗粒标记层析试纸条。 上述这些公开的专利技术皆采用了磁性免疫层析技术，它以超顺磁性颗粒代替传统的标记物来进行免疫层析，通过检测结合在超顺磁性纳米颗粒上的目标物来提供对生物样本的定量检测数据，再利用被磁颗粒标记抗体所捕获的免疫复合物与磁信号之间的线性关系即可实现对生物样本的快速定量检测目的，磁性免疫层析技术具有灵敏度高、稳定性强、线性范围宽、操作简便、快速等优点。
目前，市场上至少有14种商业免疫层析检测试剂盒，检测物质包括牛奶、花生、榛子、甲壳类水产品等过敏原的产品，但是这些产品一般采用的都是胶体金免疫层析法，只能进行单一物质的定性或半定量监测，目前国内外尚无可以实现同时检测水产品中甲壳类和鱼类的主要过敏原的快速现场检测技术。
发明内容
本发明的目的针对现有技术不能同时检测过敏原Tm和1 的不足和缺陷，提供一种以免疫磁珠为标记物的免疫层析方法，既可单独捕获Tm或1 过敏原，也可同时捕获Tm 和1 过敏原，从而实现同步检测水产品主要过敏原Tm和1 目的。本发明提出的这种可同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫方法，其技术解决方案为
将样品垫、结合了抗-Tm和抗-Pa免疫磁珠的结合垫、层析膜、吸水垫依次相互交错约 2mm粘贴在底板上，然后在上层覆盖透明塑料密封膜，构建一种可同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析试纸条；其中所述的层析膜上预包被有1 抗原检测线Tl、Tm抗原检测线 T2和山羊抗小鼠IgG质控线C，通过层析作用可以捕获免疫磁珠，依据样品层析后形成肉眼可见的1-3条显色条带，实现Tm和1 过敏原的快速定性检测，或者将所构建的磁性免疫层析试纸条通过磁性分析仪进行检测，依据样品层析后形成的检测线和控制线的磁信号检测值来实现单一过敏原的定量分析，或两种过敏原的同步定量检测。其中所述的免疫磁珠是Tm过敏原的特异性鼠系单克隆抗体(简称单抗)修饰磁珠与1 过敏原的特异性鼠系单抗修饰磁珠的混合物；所述的Tm特异性单抗是采用杂交瘤技术制备筛选所得，对甲壳类的Tm过敏原和部分软体动物的Tm过敏原都有特异性反应；所述的1 特异性单抗是采用杂交瘤技术制备筛选所得，对鱼类的1 过敏原具有特异性反应。所述的磁珠为表面修饰有羧基的超顺磁性纳米颗粒，水力学平均尺寸为 50 200nm。所述的甲壳类水产品为虾类和蟹类，所述的部分软体动物水产品为双足纲的牡蛎、蛤蜊，头足纲的鱿鱼、章鱼等。所述的底板为不吸水的硬质塑胶条，单面有背胶；所述的样品垫为玻璃纤维膜； 所述的结合垫为玻璃纤维膜；所述的层析膜可以选用尼龙膜、聚偏二氟乙烯膜、聚酯膜、硝酸纤维素膜、醋酸纤维素膜；所述的吸水垫为吸水滤纸。可同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析试纸条的制备方法包括以下步骤 A、 抗原的制备与纯化Tm过敏原以虾为原料，Pa过敏原以鲫鱼为
原料，采用实验室自行设计的方法分别进行制备与纯化。B、抗体的制备与纯化先将Tm和1 过敏原的特异性抗体细胞株增殖培养，然后注射到BALB/C小鼠中制备腹水；制备所得腹水经50% (w/v)硫铵浓缩后
再采用商业化的protein-G亲和层析柱，按照所附产品操作说明书进行纯化。C、免疫磁珠的制备选用直径为50-200nm的磁珠，使用碳二甲胺(EDC)和琥珀酰亚胺(NHS)共价交联的方式分别将抗-Tm单抗和抗-Pa单抗标记在磁珠上形成免疫磁珠， 将抗-Tm免疫磁珠和抗-Pa免疫磁珠1 :1均勻混合后待用。D、结合垫的处理将制备好的Tm和1 的免疫磁珠混合液喷点在结合垫上以形成免疫磁珠标记结合垫，喷点时可以采用人工手动喷液或定量喷液装置来进行。E、进行层析膜的包被用20mM PBS, pH7. 0包被缓冲液将纯化的Tm
抗原、Pa抗原、山羊抗小鼠IgG分别稀释到0. 05mg/mL、0. 2mg/mL,2mg/mL浓度；然后分别以3-4 μ L/试纸条的量手工均勻喷点在层析膜上，进行层析膜的包被，形成1 抗原检测线Tl、Tm抗原检测线T2和山羊抗小鼠IgG质控线C ；包被时线与线间的间隔距离为 0. 5-1. Ocm ；包被后的层析膜(简称包被膜)于37°C的干燥箱中烘干4_6小时，置于干燥瓶中保存备用。F、试纸条的组装与制备将样品垫、结合了抗-Tm和抗-Pa免疫磁珠的结合垫、包被膜、吸水垫依次相互交错约2mm粘贴在底板上，然后在上层覆盖透明塑料密封膜；根据要求宽度切割即可得到磁性免疫层析试纸条。所述步骤A中Tm和1 过敏原的纯化方法
1)甲壳类主要过敏原Tm的纯化取虾的肌肉组织制备成丙酮粉， 按1 :10 1 15的比例在丙酮粉中加入含1 mol/L KCl的20mmolL Tris-HCl ( pH 7. 5)溶液过夜抽提，离心后取上清液置于100 V水浴中煮lOmin，然后离心回收上清液；所得上清液经PI 4. 5等电点沉淀处理，将沉淀溶于20mmol/L Tris-HCl (pH 7. 5)，用1 mol/ L N aOH调节pH至7. 5后，进行40%硫酸铵盐析，离心后回收上清重复等电点操作并进行 60%硫酸铵盐析，离心后所得沉淀溶于PBS中，-20度冷冻保存备用。2)鱼类主要过敏原1 的纯化取新鲜鲫鱼白肌，搅碎后加入小清蛋
白提取缓冲液(IOmM CaCl2, IOOmM PMSF, IOmM Tris-HCl, pH7. 5)，勻浆、离心后回收上清液；在上清液中缓慢加入100% (w/v)三氯乙酸(简称TCA)，使TCA终浓度达到3% (ν/ν), 冰浴下搅拌lOmin。然后用6M NaOH溶液调节pH到5. 2，冰浴下搅拌lh，再离心回收上清液，在上清液中再次加入3% TCA,搅拌10分钟，离心后取沉淀用PBS溶解，-20度保存备用。所述C中免疫磁珠的制备方法为
1)、吸取ang羧基磁珠于离心管中，用500 μ L 0. OlM含0. 5% (v/v) Tween-20，pH为 5.0的MES溶液(简称MEST)作为活化缓冲溶液清洗磁珠，将离心管置于磁分离架上使得磁珠与活化溶液分离，重复清洗几次，最后重悬磁珠。2)、随后将新鲜配制的2. 6Μ EDC和NHS加入磁珠悬液中活化羧基30min，反应结束后先用MEST缓冲液洗涤磁珠，再用0. 005M硼酸盐吐温溶液(简称BST)作为偶联缓冲液洗涤磁珠2遍。3)、加入100 μ g抗Tm单克隆抗体或100 μ g抗Pa单克隆抗体，在旋转混合器上反应3小时。4)、然后用1% (w/v) BSA溶液对免疫磁珠表面没有完全反应的活化基团进行封闭，以降低在以后试验中可能发生的非特异性吸附，室温下封闭反应30min。5)、用BST溶液洗涤封闭后的免疫磁珠4次，弃去洗涤液，将磁珠重悬，4°C保存备用。
本发明与现有技术相比具有以下优点
(1)通过对结合垫的Tm和1 免疫磁珠的双标记处理、以及在层析膜上预设两条检测线这些改进措施，实现了 Tm和1 的同步检测。(2)将超顺磁性纳米材料、免疫层析技术和磁性检测仪相结合，通过构建以免疫磁珠为标记物的免疫层析试纸条，既可满足定性检测需求，又能实现快速定量检测。定量检测结果稳定性强、准确可靠。
图1为以免疫磁珠作为标记物的免疫层析试纸条的结构示意图。图1所示的磁性免疫层析试纸条由依序排列的样品垫1、结合垫2、层析膜3(硝酸纤维素膜)、吸水垫4及PVC底板5组成。层析膜3上包被有三条线，其中检测线Tl处喷点的是纯化的鱼类主要过敏原Pa，检测线T2处喷点的是纯化的甲壳类主要过敏原Tm，控制线 C处喷点的是山羊抗小鼠IgG。图2-5为应用所构建磁性免疫层析试纸条进行过敏原Tm和1 的检测结果设定示意图。其中
图2为采用所述磁性免疫层析试纸条对阴性样品的检测结果即检测线Tl、检测线T2 和控制线C均有显色条带。图3为采用所述磁性免疫层析试纸条对过敏原1 的强阳性检测结果即检测线 T2和控制线C有显色条带，而检测线Tl处为无显色条带。图4为采用所述磁性免疫层析试纸条对过敏原Tm的强阳性检测结果即检测线 Tl和控制线C有显色条带，而检测线T2处为无显色条带。图5为采用所述磁性免疫层析试纸条对过敏原1 和Tm的强阳性同步检测结果 即检测线Tl和检测线T2处为无显色条带，控制线C有显色条带。图6为采用所述磁性免疫层析试纸条对甲壳类和软体动物类水产品主要过敏原 Tm的定量检测曲线。图7为采用所述磁性免疫层析试纸条检测鱼类水产品主要过敏原1 的定量检测曲线。图8为采用所述磁性免疫层析试纸条检测甲壳类、软体动物和鱼类水产品的定性检测结果。其中
①号检测样品为阴性对照；
②号为鲫鱼的肌肉蛋白提取液样品；
③号为虾的肌肉蛋白提取液样品；
④号为蛤蜊的肌肉蛋白提取液样品；
⑤号为虾和鲫鱼肌肉蛋白提取液的混合样品。为进一步说明本发明可同步检测甲壳类和部分软体动物主要过敏原Tm和鱼类主要过敏原1 的磁性免疫层析试纸条及其制备方法，特举以下的实施例进行说明，该实施例是为了解释而不是以任何方式限制本发明。
具体实施例方式本发明所述的这种可同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析方法如下将样品垫、结合了抗-Tm和抗-Pa免疫磁珠的结合垫、层析膜、吸水垫依次相互交错约 2mm粘贴在底板上，然后在上层覆盖透明塑料密封膜，构建成一种可同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析试纸条；其中所述的层析膜上预包被有1 抗原检测线Tl、Tm抗原检测线 T2和山羊抗小鼠IgG质控线C，通过层析作用可以捕获免疫磁珠，依据样品层析后形成肉眼可见的1-3条显色条带，实现Tm和1 过敏原的快速定性检测；或者将所构建的磁性免疫试纸条通过磁性分析仪进行检测，依据样品层析后形成的检测线和控制线的磁信号检测值来实现单一过敏原的定量分析，或两种过敏原的同步定量检测。所述的免疫磁珠是Tm过敏原的特异性鼠系单克隆抗体(简称单抗)修饰磁珠与1 过敏原的特异性鼠系单抗修饰磁珠的混合物；所述的Tm特异性单抗是采用杂交瘤技术制备筛选所得，对甲壳类的Tm过敏原和部分软体动物的Tm过敏原都有特异性反应；所述的 1 特异性单抗是采用杂交瘤技术制备筛选所得，对鱼类的1 过敏原具有特异性反应。所述的磁珠为表面修饰有羧基的超顺磁性纳米颗粒，水力学平均尺寸为 50 200nm。所述的甲壳类水产品为虾类和蟹类，所述的部分软体动物水产品为双足纲的牡蛎、蛤蜊、扇贝，头足纲的鱿鱼、章鱼等。所述的底板为不吸水的硬质塑胶条，单面有背胶；所述的样品垫为玻璃纤维膜； 所述的结合垫为玻璃纤维膜；所述的层析膜可以选用尼龙膜、聚偏二氟乙烯膜、聚酯膜、硝酸纤维素膜、醋酸纤维素膜；所述的吸水垫为吸水滤纸。可同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析试纸条的制备方法包括以下步骤 C、 抗原的制备与纯化Tm过敏原以虾为原料，Pa过敏原以鲫鱼为
原料，采用实验室自行设计的方法分别进行制备与纯化。D、抗体的制备与纯化先将Tm和1 过敏原的特异性抗体细胞株增殖培养，然后注射到BALB/C小鼠中制备腹水；制备所得腹水经50% (w/v)硫铵浓缩后
再采用商业化的protein-G亲和层析柱，按照所附产品操作说明书进行纯化。C、免疫磁珠的制备选用直径为50-200nm的磁珠，使用碳二甲胺(EDC)和琥珀酰亚胺(NHS)共价交联的方式分别将抗-Tm单抗和抗-Pa单抗标记在磁珠上形成免疫磁珠， 将抗-Tm免疫磁珠和抗-Pa免疫磁珠1 :1均勻混合后待用。D、结合垫的处理将制备好的Tm和1 的免疫磁珠混合液喷点在结合垫上以形成免疫磁珠标记结合垫，喷点时可以采用人工手动喷液或定量喷液装置来进行。E、进行层析膜的包被用20mM PBS, pH7. 0包被缓冲液将纯化的Tm
抗原、Pa抗原、山羊抗小鼠IgG分别稀释到0. 05mg/mL、0. 2mg/mL,2mg/mL浓度；然后分别以3-4 μ L/试纸条的量手工均勻喷点在层析膜上，进行层析膜的包被，形成1 抗原检测线Tl、Tm抗原检测线T2和山羊抗小鼠IgG质控线C ；包被时线与线间的间隔距离为 0. 5-1. Ocm ；包被后的层析膜(简称包被膜)于37°C的干燥箱中烘干4_6小时，置于干燥瓶中保存备用。F、试纸条的组装与制备将样品垫、结合了抗-Tm和抗-Pa免疫磁珠的结合垫、包被膜、吸水垫依次相互交错约2mm粘贴在底板上，然后在上层覆盖透明塑料密封膜；根据要求宽度切割即可得到磁性免疫层析试纸条。所述步骤A中Tm和1 过敏原的纯化方法 3)甲壳类主要过敏原Tm的纯化取虾的肌肉组织制备成丙酮粉， 按1 :10 1 15的比例在丙酮粉中加入含1 mol/L KCl的20mmolL Tris-HCl ( pH 7. 5)溶液过夜抽提，离心后取上清液置于100 V水浴中煮lOmin，然后离心回收上清液；所得上清液经PI 4. 5等电点沉淀处理，将沉淀溶于20mmol/L Tris-HCl (pH 7. 5)，用1 mol/ L N aOH调节pH至7. 5后，进行40%硫酸铵盐析，离心后回收上清重复等电点操作并进行 60%硫酸铵盐析，离心后所得沉淀溶于PBS中，-20度冷冻保存备用。4)鱼类主要过敏原1 的纯化取新鲜鲫鱼白肌，搅碎后加入小清蛋
白提取缓冲液(IOmM CaCl2, IOOmM PMSF, IOmM Tris-HCl, pH7. 5)，勻浆、离心后回收上清液；在上清液中缓慢加入100% (w/v)三氯乙酸(简称TCA)，使TCA终浓度达到3% (ν/ν), 冰浴下搅拌lOmin。然后用6M NaOH溶液调节pH到5. 2，冰浴下搅拌lh，再离心回收上清液，在上清液中再次加入3% TCA,搅拌10分钟，离心后取沉淀用PBS溶解，-20度保存备用。所述C中免疫磁珠的制备方法为
1)、吸取ang羧基磁珠于离心管中，用500 μ L 0. OlM含0. 5% (v/v) Tween-20，pH为 5.0的MES溶液(简称MEST)作为活化缓冲溶液清洗磁珠，将离心管置于磁分离架上使得磁珠与活化溶液分离，重复清洗几次，最后重悬磁珠。2)、随后将新鲜配制的2. 6Μ EDC和NHS加入磁珠悬液中活化羧基30min，反应结束后先用MEST缓冲液洗涤磁珠，再用0. 005M硼酸盐吐温溶液(简称BST)作为偶联缓冲液洗涤磁珠2遍。3)、加入100 μ g抗Tm单克隆抗体或100 μ g抗1 单克隆抗体，在旋转混合器上反应3小时。4)、然后用1% (w/v) BSA溶液对免疫磁珠表面没有完全反应的活化基团进行封闭，以降低在以后试验中可能发生的非特异性吸附，室温下封闭反应30min。5)、用BST溶液洗涤封闭后的免疫磁珠4次，弃去洗涤液，将磁珠重悬，4°C保存备用。在具体实施例中所采用的Tm和1 抗原及其特异性单抗都是非商业化产品，由单抗细胞株自己制备纯化所得。所述的磁性免疫层析试纸条采用的是竞争法检测原理，当待测样本中含有Tm或1 过敏原时，过敏原先被结合垫上的免疫磁珠所捕获，随着层析作用的进行，当经过检测线Tl和T2时，未结合过敏原的免疫磁珠即可分别被Tl或T2线上的过敏原所捕获从而停留在检测线处，未被检测线捕获的免疫磁珠会继续前行到达质控线C时， 被C线上的二抗所捕获而停留在C线处。整个层析反应在30分钟内完成，一般反应20分钟后在检测线和质控线上肉眼可清晰见到显色条带。将试纸条放入磁性分析仪的读卡槽中， 即可在T1、T2和C线处获得相应的磁信号检测值。阳性样品的Tl和Τ2处磁信号值一般弱于阴性样品，差别越大就表示阳性反应越强。实施例1 磁性免疫层析法检测甲壳类主要过敏原Tm
(1) 甲壳类主要过敏原Tm和鱼类主要过敏原1 的制备与纯化取虾丙酮粉 2g，加入 30mL 含 1 mol/L KCl 的 20mmol/L Tris-HCl ( pH 7. 5)溶液过夜抽提， 离心后取上清置于100 V水浴中煮lOmin，然后离心回收上清。所得上清经PI 4. 5等电点沉淀处理，将沉淀溶于20mmol/L Tris-HCl (pH 7.5)，用1 mol/L NaOH调节pH至7. 5后，进行40%硫酸铵盐析，离心后回收上清液重复等电点操作并进行60%硫酸铵盐析，离心后所得沉淀溶于PBS中，-20度冷冻保存备用。鱼类主要过敏原1 的纯化方法为取新鲜鲫鱼白肌，搅碎后加入小清蛋白提取缓冲液((IOmM CaCl2, IOOmM PMSF, IOmM Tris-HCl, pH7. 5))，勻浆、离心后回收上清。在上清中缓慢加入100%三氯乙酸(简称TCA)，使TCA终浓度达到3%，冰浴下搅拌lOmin。然后用6M NaOH溶液调节pH到5. 2，冰浴下搅拌lh，再离心回收上清液，在上清液中再次加入3% TCA, 搅拌10分钟，离心后取沉淀用PBS溶解，-20度保存备用。(2) 抗体的制备与纯化先将Tm和1 过敏原的特异性抗体细胞株增殖培养， 然后注射到BALB/C小鼠中制备腹水。制备所得腹水经50%硫铵浓缩后再采用商业化的 protein-G亲和层析柱，按照所附产品操作说明书进行纯化。(3) 免疫磁珠的制备选用直径为200nm的磁珠，吸取^iig羧基磁珠于离心管中，用 500 μ L 0. OlM 含 0.5% (v/v) Tween-20，pH 为 5. 0 的 MES 溶液(简称 MEST)作为活化缓冲溶液清洗磁珠，将离心管置于磁分离架上使得磁珠与活化溶液分离，重复清洗几次后重悬磁珠。随后将新鲜配制的2. 6Μ EDC和NHS加入磁珠悬液中活化羧基30min，反应结束后先用MEST缓冲液洗涤磁珠，再用0. 005M硼酸盐吐温溶液(简称BST)作为偶联缓冲液洗涤磁珠2遍。接着加入100 μ g抗Tm单克隆抗体或100 μ g抗1 单克隆抗体，在旋转混合器上反应3小时。然后用1% (w/v) BSA溶液对免疫磁珠表面没有完全反应的活化基团进行封闭，以降低在以后试验中可能发生的非特异性吸附，室温下封闭反应30min。反应结束后用BST溶液洗涤封闭后的免疫磁珠4次，弃去洗涤液，将磁珠重悬，4°C保存备用。(4) 将制备好的免疫磁珠手动喷涂在结合垫上制备成磁性结合垫。(5) 进行层析膜的包被用20mM PBS，pH7.0包被缓冲液将纯化的 ιι抗原、Pa 抗原、山羊抗小鼠IgG分别稀释到0. 05mg/mL、0. ang/mL、2mg/mL浓度。然后分别以3_4μ L/ 试纸条的量手工均勻喷点在层析膜上，进行层析膜的包被，以形成1 抗原检测线Tl、Tm抗原检测线T2和山羊抗小鼠IgG质控线C，线与线间的间隔距离为0. 5-1. Ocm0包被后的层析膜(简称包被膜)于37°C的干燥箱中烘干4-6小时，置于干燥瓶中保存备用。(6) 试纸条的组装与制备将样品垫、结合了抗-Tm和抗-Pa免疫磁珠的结合垫、包被膜、吸水垫依次相互交错约2mm粘贴在底板上，然后在上层覆盖透明塑料密封膜， 裁切成Icm宽的试纸条。(7) 样品的检测在构成免疫层析检测试纸条的样品垫上加IOOyL的以 PBS-T (l%Tween-20)梯度稀释Tm纯化样品。层析20min后，观察结果。阴性结果呈三条明显的条带；Tm阳性结果在Tl线，控制线C处出现条带或者T2线，Tl线，控制线C均出现条带，但T2线处条带较阴性样品处颜色较浅；也可将滴有待测样品液的磁性免疫层析试纸条装入专用的试纸条卡槽，插入磁信号阅读器MAR仪中阅读磁信号进行定量分析，绘制标准曲线。
实施例2 磁性免疫层析法检测鱼类主要过敏原1
除了样品检测步骤中，检测样品为纯化的鱼类主要过敏原1 外，其它步骤同实例1。实施例3 磁性免疫层析法检测水产品中的过敏原Tm和1 (1)食物样品抽提液的制备以水产品中的甲壳类中的虾、鱼类中的鲫鱼、软体动物类的蛤蜊为例。分别取2g水产品的肌肉组织，与40mL PBS-T搅勻后，沸水煮15min，10，OOOg离心20min后取上清，冷冻保存-20°C，待用。(2)样品检测
在试纸条的样品垫上加IOOyL的待测食物样品。层析20min后，观察结果。阴性结果呈三条明显的条带；Tm阳性结果在Tl线、控制线C处出现条带或者T2线、Tl线、控制线C均出现条带，但T2线处条带较阴性样品处颜色较浅；也可将滴有待测样品液的磁性免疫层析试纸条装入专用的试纸条卡槽，插入磁信号阅读器MAR中阅读磁信号进行定量检测，结合标准曲线，计算出待测样品中Tm或者1 的浓度。所构建的磁性免疫层析试纸条通过用磁性分析仪(Magnetic Assay Reader，简称 MAR仪)进行检测，依据样品层析后形成的检测线和控制线的磁信号检测值，可实现单一过敏原的定量分析或两种过敏原的同步定量检测。
1权利要求
1.一种同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析方法，其特征在于将样品垫、结合了抗-Tm和抗-Pa免疫磁珠的结合垫、层析膜、吸水垫依次相互交错约 2mm粘贴在底板上，然后在上层覆盖透明塑料密封膜，构建成一种可同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析试纸条；其中所述的层析膜上预包被有1 抗原检测线Tl、Tm抗原检测线 T2和山羊抗小鼠IgG质控线C，通过层析作用可以捕获免疫磁珠，依据样品层析后形成肉眼可见的1-3条显色条带，实现Tm和1 过敏原的快速定性检测；或者将所构建的磁性免疫试纸条通过磁性分析仪进行检测，依据样品层析后形成的检测线和控制线的磁信号检测值来实现单一过敏原的定量分析，或两种过敏原的同步定量检测。
2.如权利要求1所述的一种同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析方法，其特征在于所述的免疫磁珠是Tm过敏原的特异性鼠系单克隆抗体修饰磁珠与1 过敏原的特异性鼠系单抗修饰磁珠的混合物；所述的Tm特异性单抗是采用杂交瘤技术制备筛选所得，对甲壳类的Tm过敏原和部分软体动物的Tm过敏原都有特异性反应；所述的1 特异性单抗是采用杂交瘤技术制备筛选所得，对鱼类的1 过敏原具有特异性反应。
3.如权利要求1所述的一种同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析方法，其特征在于所述的磁珠为表面修饰有羧基的超顺磁性纳米颗粒，水力学平均尺寸为5(T200nm。
4.如权利要求1所述的一种同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析方法，其特征在于所述的甲壳类水产品为虾类和蟹类，所述的部分软体动物水产品为双足纲的牡蛎、蛤蜊、扇贝，头足纲的鱿鱼、章鱼等。
5.如权利要求1所述的一种同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析方法，其特征在于，层析试纸条的制备方法包括以下步骤A、抗原的制备与纯化Tm过敏原以虾为原料，1 过敏原以鲫鱼为原料，采用实验室自行设计的方法分别进行制备与纯化；B、抗体的制备与纯化先将Tm和1 过敏原的特异性抗体细胞株增殖培养，然后注射到 BALB/C小鼠中制备腹水；制备所得腹水经50%硫铵浓缩后再采用商业化的protein-G亲和层析柱，按照所附产品操作说明书进行纯化；C、免疫磁珠的制备选用直径为50-200nm的磁珠，使用碳二甲胺(EDC)和琥珀酰亚胺(NHS)共价交联的方式分别将抗-Tm单抗和抗-Pa单抗标记在磁珠上形成免疫磁珠，将抗-Tm免疫磁珠和抗-Pa免疫磁珠1 :1均勻混合后待用；D、结合垫的处理将制备好的Tm和1 的免疫磁珠混合液喷点在结合垫上以形成免疫磁珠标记结合垫，喷点时可以采用人工手动喷液或定量喷液装置来进行；E、层析膜的包被用20mMPBS, pH7. 0包被缓冲液将纯化的Tm抗原、1 抗原、山羊抗小鼠IgG分别稀释到0. 05mg/mL、0. 2mg/mL,2mg/mL浓度，然后分别以3-4 μ L/试纸条的量手工均勻喷点在层析膜上，进行层析膜的包被，以形成1 抗原检测线Tl、Tm抗原检测线T2 和山羊抗小鼠IgG质控线C，线与线间的间隔距离为0. 5-1. 0cm，将包被后的层析膜于37°C 的干燥箱中烘干4-6小时，置于干燥瓶中保存备用；F、试纸条的组装与制备将样品垫、结合了抗-Tm和抗免疫磁珠的结合垫、包被膜、吸水垫依次相互交错约2mm粘贴在底板上，然后在上层覆盖透明塑料密封膜；根据要求宽度切割即可得到适用的磁性免疫层析试纸条。
6.如权利要求3—种同步检测Tm和1 过敏原的磁性免疫层析方法，其特征在于所述的Tm和1 过敏原的同步快速免疫层析试纸条的制备方法，包括以下步骤1)、吸取ang羧基磁珠于离心管中，用500μ L 0. OlM含0. 5% (v/v) Tween-20，ρΗ为 5.0的MES溶液(简称MEST)作为活化缓冲溶液清洗磁珠，将离心管置于磁分离架上使得磁珠与活化溶液分离，重复清洗几次，最后重悬磁珠；2)、随后将新鲜配制的2.6Μ EDC和NHS加入磁珠悬液中活化羧基30min，反应结束后先用MEST缓冲液洗涤磁珠，再用0. 005M硼酸盐吐温溶液(简称BST)作为偶联缓冲液洗涤磁珠2遍；3)、加入100μ g抗Tm单克隆抗体或100 μ g抗1 单克隆抗体，在旋转混合器上反应3 小时；4)、然后用1%(w/v) BSA溶液对免疫磁珠表面没有完全反应的活化基团进行封闭，以降低在以后试验中可能发生的非特异性吸附，室温下封闭反应30min ；5)、用BST溶液洗涤封闭后的免疫磁珠4次，弃去洗涤液，将磁珠重悬，4°C保存备用。
全文摘要
一种同步检测Tm和Pa过敏原的磁性免疫层析方法，其特征在于将样品垫、结合了抗-Tm和抗-Pa免疫磁珠的结合垫、层析膜、吸水垫依次相互交错约2mm粘贴在底板上，然后在上层覆盖透明塑料密封膜，构建成一种可同步检测Tm和Pa过敏原的磁性免疫层析试纸条；其中所述的层析膜上预包被有Pa抗原检测线T1、Tm抗原检测线T2和山羊抗小鼠IgG质控线C，通过层析作用可以捕获免疫磁珠，依据样品层析后形成肉眼可见的1-3条显色条带，实现Tm和Pa过敏原的快速定性检测；或者将所构建的磁性免疫试纸条通过磁性分析仪进行检测，依据样品层析后形成的检测线和控制线的磁信号检测值来实现单一过敏原的定量分析，或两种过敏原的同步定量检测。
文档编号G01N33/543GK102156191SQ20111012908
公开日2011年8月17日 申请日期2011年5月18日 优先权日2011年5月18日
发明者卢瑛, 王锡昌, 石良 申请人:上海海洋大学