， 便于GA 3的进入种子胚根内部（打磨过程中避免损坏种子胚根），再将打磨好的种子浸入 300mg/L、600mg/L、900mg/L、1200mg/L和1500mg/L赤霉素溶液中，在避光处存放12h。将赤 霉素处理后的种子放入铺有两层湿润滤纸的培养皿中，置于25°C、12h黑暗/30°C、12h光照 的人工智能气候箱中进行萌发。种子的萌发以胚根的出现为标志，并将已萌发的种子移走。 种子萌发过程中每24h检测1次种子的萌发率，当连续3d萌发数没有变化则可记录为种子 萌发结束。
[0023] 实施例3 :盘果碱蓬种子休眠破除方法
[0024] 用100目的砂纸进行轻柔打磨盘果碱蓬种子I. 5min，进行机械破皮，使种皮开裂， 便于GA3的进入种子胚根内部（打磨过程中避免损坏种子胚根），再将打磨好的种子浸入 300mg/L、600mg/L、900mg/L、1200mg/L和1500mg/L赤霉素溶液中，在避光处存放24h。将赤 霉素处理后的种子放入铺有两层湿润滤纸的培养皿中，置于25°C、12h黑暗/30°C、12h光照 的人工智能气候箱中进行萌发。种子的萌发以胚根的出现为标志，并将已萌发的种子移走。 种子萌发过程中每24h检测1次种子的萌发率，当连续3d萌发数没有变化则可记录为种子 萌发结束。
[0025] 实施例4 :刺藜种子休眠破除方法
[0026] 用150目的砂纸进行轻柔打磨刺藜种子I. 5min，进行机械破皮，使种皮开裂，便于 GA3的进入种子胚根内部（打磨过程中避免损坏种子胚根），再将打磨好的种子浸入300mg/ L、600mg/L、900mg/L、1200mg/L和1500mg/L赤霉素溶液中，在避光处存放24h。将赤霉素处 理后的种子放入铺有两层湿润滤纸的培养皿中，置于25°C、12h黑暗/30°C、12h光照的人工 智能气候箱中进行萌发。种子的萌发以胚根的出现为标志，并将已萌发的种子移走。种子 萌发过程中每24h检测1次种子的萌发率，当连续3d萌发数没有变化则可记录为种子萌发 结束。
[0027] 实施例5 :盐角草种子休眠破除方法
[0028] 用100目的砂纸进行轻柔打磨盐角草种子2min，进行机械破皮，使种皮开裂，便于 GA3的进入种子胚根内部（打磨过程中避免损坏种子胚根），再将打磨好的种子浸入300mg/ L、600mg/L、900mg/L、1200mg/L和1500mg/L赤霉素溶液中，在避光处存放36h。将赤霉素处 理后的种子放入铺有两层湿润滤纸的培养皿中，置于25°C、12h黑暗/30°C、12h光照的人工 智能气候箱中进行萌发。种子的萌发以胚根的出现为标志，并将已萌发的种子移走。种子 萌发过程中每24h检测1次种子的萌发率，当连续3d萌发数没有变化则可记录为种子萌发 结束。
[0029] 经检测：从表1可以看出，实施例1中经打磨及赤霉素溶液浸泡后碱蓬种子，最终 萌发率随着赤霉素溶液浓度的上升而增高，表明高浓度赤霉素溶液对碱蓬种子萌发起到促 进作用。在赤霉素溶液浓度为1500mg/L时，种子的最终萌发率达到73. 3%，显著高于其他 赤霉素溶液浓度下的最终萌发率以及对照。
[0030] 从表1可以看出，实施例2中经打磨及赤霉素溶液浸泡后硬枝碱蓬种子，最终萌发 率随着赤霉素溶液浓度上升而增高，表明高浓度赤霉素溶液对硬枝碱蓬种子萌发起到促进 作用。在赤霉素溶液浓度为900mg/L、1200mg/L、1500mg/L时，种子的最终萌发率分别达到 87%、88%、92%，无显著差异，并且显著高于其他赤霉素溶液浓度处理下的最终萌发率。
[0031] 从表1可以看出，实施例3中经打磨及赤霉素溶液浸泡后盘果碱蓬种子，最终萌发 率随着赤霉素溶液浓度上升而增高，说明高浓度赤霉素溶液对盘果碱蓬种子萌发起到促进 作用。在赤霉素溶液浓度为900mg/L、1200mg/L和1500mg/L时，种子的最终萌发率分别达到 88. 6%、90%和89. 3%，三个浓度下最终萌发率无显著差异，但显著高于其他赤霉素溶液浓 度下的最终萌发率以及对照。
[0032] 从表1可以看出，实施例4中经打磨及赤霉素溶液浸泡后刺藜种子，最终萌发率随 着赤霉素溶液浓度上升而增高，表明高浓度赤霉素溶液对刺藜种子萌发起到促进作用。在 赤霉素溶液浓度为120〇1^/1和150〇11^/1时，种子的最终萌发率分别达到88%和92%并且 无显著差异，但显著高于其他赤霉素溶液浓度下的最终萌发率以及对照。
[0033] 从表1可以看出，实施例5中经打磨及赤霉素溶液浸泡后盐角草种子，最终萌发 率随着赤霉素溶液浓度上升而增高，说明高浓度赤霉素溶液对盐角草种子萌发起到促进作 用。在赤霉素溶液浓度为900mg/L、1200mg/L和1500mg/L时，种子的最终萌发率分别达到 88. 6%、90%和90. 6%，三个浓度下最终萌发率无显著差异，然而显著高于其他赤霉素溶液 浓度下的最终萌发率以及对照。
[0034] 综合以上分析，藜科植物的种子休眠的破除最佳方法为：50目砂纸轻磨 I. 5min+1500mg/L赤霉素浸泡24h，若在25°C、12h黑暗/30°C、12h光照的条件下萌发，效果 会更好。
[0035] 表1打磨后GA3的浓度对种子最终发芽率的影响
[0036]
【主权项】
1. 一种破除藜科植物种子休眠的方法，其特征在于，包括以下步骤：1)通过机械处理 将种子破皮至种皮开裂；2)将经步骤1)处理的种子浸入300mg/L-1500mg/L赤霉素溶液 中，避光处存放12-36h;3)将经步骤2)处理的种子置于光暗交替的条件中萌发。
2. 如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述藜科植物为碱蓬、硬枝碱蓬、盘果碱蓬、 刺藜、盐角草。
3. 如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述步骤1)采用50-150目砂纸，打磨植物 种子l-2min进行机械破皮至种皮开裂。
4. 如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述步骤2)为将打磨好的种子浸入300mg/ L-1500mg/L赤霉素溶液中，避光处存放24h。
5. 如权利要求4所述的方法，其特征在于，所述步骤2)为将打磨好的种子浸入900mg/ L-1500mg/L赤霉素溶液中，避光处存放24h。
6. 如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述步骤3)为将赤霉素处理后的种子放入 铺有湿沙或湿土或湿滤纸的容器中，萌发培养条件为25°C、12h黑暗/30°C、12h光照。
7. 如权利要求1所述的方法，其特征在于：1)用50目砂纸打磨植物种子外皮I. 5min; 2)将打磨好的种子浸入1500mg/L赤霉素浸泡24h;3)将赤霉素处理后的种子放入铺有湿 沙或湿土或湿滤纸的容器中，在25°C、12h黑暗/30°C、12h光照的条件下萌发。
【专利摘要】本发明公开了一种破除藜科植物种子休眠的方法，采用机械处理与赤霉素处理相结合的技术手段打破植物种子休眠，促进种子萌发。实验结果表明，本发明的方法可以快速高效地破除藜科植物种子休眠，显著提高种子萌发率，大大缩短植物育苗时间，有效提高植物产量，对农牧业生产、环境保护、医药卫生等经济领域的发展意义重大。
【IPC分类】A01C1-00
【公开号】CN104686008
【申请号】CN201510107142
【发明人】韩占江, 王伟华, 李志军, 程龙
【申请人】塔里木大学
【公开日】2015年6月10日
【申请日】2015年3月10日