CRISPER-Cas9系统介导的羊MSTN基因敲除和定点整合外源基因的方法

文档序号:9904683阅读:863来源:国知局
CRISPER-Cas9系统介导的羊MSTN基因敲除和定点整合外源基因的方法
【技术领域】
[0001] 本发明设及分子生物学及动物遗传育种领域,具体地说,设及CRISPER-化s9系统 介导的羊MSTN基因敲除和定点整合外源基因的方法。
【背景技术】
[0002] CRISPR-Cas9基因编辑系统是由规律成簇间隔短回文重复序列(Clustered regularly interspaced short palin化omic repeats,CRISPR)W及CRISPR相关蛋白9 (CRISPR-associated protein 9,Cas9)组成,是继锋指核酸酶(znic finger nuclease, ZFNs)和转录激活因子样效应物核酸酶(transcription activator-like effector nucleases, TALENs)技术之后迅速发展起来的基因组编辑技术,在细胞基因敲除中已被广 泛应用。CRISPR-Cas9通过小向导RNA(small guide RNA,sgRNA)识别祀序列并引导Cas9蛋 白对祀位点进行切割,使DNA发生双链断裂化NA double-strand break,DSB),断裂的DNA为 防止被降解会自动启动内源性修复机制,而内源修复机制通常有两种,在非同源末端连接 (Non-homologous end joining,NHEJ)修复机制下修复时并不是非常精确,在断裂缺口处 往往随机的插入或删除碱基,若突变位点位于蛋白编码区(codingsequence,CDS),将转录 错误mRNA,而导致翻译失败或蛋白失活从而实现基因敲除;而在同源重组化omologons recombination,皿)修复机制W及修复模板存在的条件下,也可W实现定点的单个碱基或 者长片段的插入、删除或者突变,形成基因的敲入与敲除。
[0003] 肌细胞生长抑制素(MSTN,Myostatin)是一类重要的肌细胞生长负调控因子,它通 过抑制MRFs家族成员转录活性负向控制肌细胞的生长发育,MSTN功能缺失后会刺激肌细胞 数量增加而出现"双肌现象"。因此人们通常采用突变、缺失、敲除等基因打祀技术对家畜 MSTN基因进行修饰,然后借助胚胎工程手段获得产肉性能高的转基因家畜。
[0004] Fat-1基因来源于秀丽线虫(Caenorhabditis elegans)四号染色体上,该基因编 码 ω -3多不饱和脂肪酸(polyunsaturated fatty acids,PUFAs)脱氨酶,可 W将PUFAs从 ω -6转化为ω -3形式,ω -3对维持机体的正常发育和生长至关重要,但人体内缺乏从ω -6 转化为ω-3形式的脱氨酶基因,所W每天必须摄入一定的ω-3。人们通过转基因的方法在 山羊细胞表达hfat-1基因,培育富含不饱和脂肪酸的高品质保健羊肉,使肉品质得到改善, 从而提高人们ω -3PUFAS日常摄入量。
[0005] 利用CRIS阳R-化s9系统敲除羊MSTN基因,同时在排ΝΑ识别位点定点整合hfat-1基 因的研究未见报道。

【发明内容】

[0006] 本发明的目的是提供CRISPER-Cas9系统介导的羊MSTN基因敲除和定点整合外源 基因的方法。
[0007] 为了实现本发明目的,本发明提供的CRISPER-化s9系统介导的羊MSTN基因敲除和 定点整合外源基因的方法,其是根据羊的MSTN基因序列(Gene ID 100860887),构建基于 CRISPER-化s9系统的gRNA表达载体,并根据gRNA作用位点构建含有外源基因的且可W整合 至宿主基因组中的供体质粒,然后将优化的CRIS阳R-Cas9载体、上述构建的排NA表达载体 和线性化的供体质粒共同转入羊的成纤维细胞中,获得羊MSTN基因敲除且定点整合外源基 因的细胞。
[000引本发明中述及的羊包括但不限于阿尔己斯绒山羊。
[0009]本发明中述及的外源基因包括脂肪酸去饱和酶化t-1基因,或fat-1基因经过人源 化修饰后的基因 hfat-1等。
[0010 ] 前述的方法,gRNA作用位点位于羊MSTN基因的巧外显子上。排NA作用位点的DNA 序列为5' -CGATGACTACCACGTTACGA-3'或5' -CGTTACGACGGAAACGGTCA-3'。优选地,gRNA作用 位点的DNA序列为5^ -CGTTACGACGGAAACGGTCA-3/。
[0011]前述的方法,所述供体质粒中含有如下顺次连接的表达元件:根据gRNA作用位点 设计的羊MSTN基因5'同源臂一CAG启动子一脂肪酸去饱和酶化t-1基因或化t-1基因经过人 源化修饰后的基因一ployA-根据gRNA作用位点设计的羊MSTN基因3'同源臂。其中,根据 曲NA作用位点设计的羊MSTN基因5'同源臂和3'同源臂大小约1.0化。
[001 ^ 前述的方法,所述优化的CRI SPER-Cas 9载体(即hCa S 9质粒)的核巧酸序列如SEQ ID N0:1所示化化s9质粒图谱见图1);所述排NA表达载体的核巧酸序列如SEQ ID N0:2所 示;所述供体质粒的核巧酸序列如SEQ ID N0:3所示。
[0013] 本发明还提供根据上述方法获得的羊MSTN基因敲除且定点整合外源基因的细胞。
[0014] 本发明进一步提供上述方法在生产羊MSTN基因敲除且定点整合外源基因的克隆 羊中的应用。该应用是指将所述羊MSTN基因敲除且定点整合外源基因的细胞为核移植供体 细胞,离体的羊卵母细胞为核移植受体细胞,通过核移植技术获得羊克隆胚胎,然后将克隆 胚胎通过非手术法移入羊子宫内进行妊娠,获得转基因羊。
[0015] 本发明的目的还可W采用W下的技术措施来进一步实现。
[0016] 1)CRIS阳R-Cas9载体的优化;2)根据羊的MSTN基因序列,构建基于CRISPER-Cas9 系统的排ΝΑ表达载体;3)根据排ΝΑ作用位点构建含有外源基因 fat-1 at-1)的且可W整 合至宿主基因组中的供体质粒;4)将上述优化的CRIS阳R-化s9载体、gRNA表达载体和线性 化的供体质粒共同转染到阿尔己斯绒山羊胎儿成纤维细胞中,通过口吸管法和流式细胞仪 筛选单克隆细胞系;5)通过PCR技术鉴定筛选单克隆细胞系,获得敲除MSTN基因同时在MSTN 基因组断裂位置定点整合化t-1 Afat-l)基因的单克隆细胞系。
[0017] 其中,步骤4)中利用口吸管法挑取单克隆细胞系是指用玻璃管拉制成保证可W使 单个细胞通过的合适直径口吸管,在显微镜下无菌操作,将单细胞分别接种于预先平衡后 含有细胞培养液的96孔细胞培养板中,进行细胞培养。待细胞生长呈簇后,分别用0.25%膜 酶消化,将细胞集落转移至24孔细胞培养板中继续扩大培养。待细胞继续生长需要再次传 代时,将细胞编号后一半细胞冻存,一半细胞用于基因组DNA的提取。
[0018] 步骤4)中利用流式细胞仪筛选单克隆细胞系是指当细胞转染24h后,用膜蛋白酶 消化细胞并将细胞重悬于PBS中,使用流式细胞仪将细胞筛选成单个细胞接种于96孔板。 7化后换培养液一次;第7天对形成单细胞克隆群的孔进行换液操作;在第10天时,在显微镜 下观察,将汇合度较高的细胞克隆传代至24孔板中继续扩大培养。
[0019] 步骤5)中鉴定敲除MSTN基因同时定点整合化t-1基因的单克隆细胞系主要采用设 计跨上游同源臂的PCR引物的方法,通过PCR技术扩增出包含基因组部分序列、上游同源臂 全部序列、CAG启动子部分序列的产物,目的是确定外源基因整合到MSTN基因组断裂处。
[0020] 本发明共成功获得156株单克隆细胞,鉴定MSTN基因敲除细胞系55株,其中通过同 源重组修复的单克隆细胞系有40株,通过非同源重组修复的细胞有15株,即发生同源重组 同时又发生非同源重组修复的单克隆细胞有4株。
[0021] 本发明具有W下优点:
[0022] (一) CRISPR-化s9基因编辑技术与常规的同源重组技术、TALEN技术和ZF化技术相 比,基因敲除效率显著提高。
[0023] (二)与传统的同源重组技术TALEN技术和ZF化技术相比,由CRISPR-Cas9介导的同 源重组使外源基因的整合效率显著提高。
[0024] (Ξ)由CRISPR-化s9介导的同源重组的同源臂(约1. Okb)与传统同源重组使用的 同源臂(约3.0-4.0化)相比长度大大减少,更加有利于后续检测工作的进行。
[0025] (四)通过CRISPR-Cas9系统的介导,实现了不加任何筛选标记即可筛选出MSTN基 因敲除且定点整合外源基因的转基因细胞系,运是传统同源重组技术、TALEN技术和ZF化技 术无法实现的,很大程度提高了转基因动物的安全性。
[00%](五)通过体细胞核移植技术制备MSTN基因敲除且定点整合外源基因 hfat-1的转 基因羊(例如转基因阿尔己斯绒山羊),为构建成熟的基因修饰动物研究和生产奠定基础。
【附图说明】
[0027] 图巧本发明实施例1中hCas9质粒图谱。
[0028] 图2为本发明实施例3中利用Surveyor突变检测试剂盒检测祀位点的电泳结果;其 中,Μ: 1 OObp marker; 1:排NA1 (666bp); 2 :酶切后的排NA1; 3:排NA2 (66化P); 4:酶切后的 gRNA2;5:阳性对照。
[00巧]图3为本发明实施例3中5'h-pCAGDNA3-hFat-1-3'h质粒酶切图;其中,Μ分别为 lOObp marker和Ikb marker; 1 :NdeI单酶切;2 :MluI和xholl双酶切;3 :EcoRI单酶切;4:质 粒。
[0030] 图4为本发明实施例4中供体质粒hfat-1的构建流程示意图。
[0031] 图5为本发明实施例6中MSTN基因敲除检测图;其中,M:DL1000bp;l-9为目的条带, 大小为66化P。
[0032] 图6为本发明实施例6中MSTN基
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