一种川党参采后保鲜方法与流程

1.本发明属于中药材保鲜技术领域，具体涉及一种川党参采后保鲜方法。


背景技术：

2.川党参为桔梗科植物川党参(codonopsis tangshen oliv)的根，属2020年版《中国药典》收载党参药材的重要来源之一，以根入药，性平味甘，具有补中益气、养血生津之功效。党参在我国分布广泛，是我国传统大宗补益类中药材。党参中主要含有糖类、甾体、萜类、聚炔、黄酮、有机酸等化学成分，其中党参炔苷、紫丁香苷和苍术内酯ⅲ等小分子特征性成分常用作指标成分来评价党参药材的真伪优劣或鉴别品种、年限以及采收期。党参作为“药食同源”中药材，兼具治病和养生功效。但在食用时，干药材因口感以及加工形态的局限，极大的限制了其在食品领域的使用，鲜药材因具有更好的口感、风味独特、营养丰富、保健功能显著、食用和加工方便等特点，而深受人们青睐。但是党参的最佳采收期非常集中而且很短，采收后的新鲜党参各种酶活性较强，含水量高，呼吸强度大，营养成分消耗快。采后若不及时加工处理干制或保鲜，易出现失水皱缩、软化褐变、霉变腐烂等生理变化，进一步导致党参中的有效成分快速降解，严重地影响鲜党参的色泽、气味、口感、质地以及营养价值，从而缩短了货架期，限制了党参产业的发展。
3.目前，市场上新鲜党参多采用现挖现售，带土运输的方式进行销售，受时间和空间的限制极大，难以满足市场对新鲜党参的消费需求。而针对新鲜党参采后保鲜的系统性研究几乎空白，现代保鲜技术在新鲜党参保鲜中的应用暂时未见报道。如何延长新鲜党参的货架期，提高其商业价值，已成为亟待解决的问题。


技术实现要素：

4.为了解决现有技术中存在的问题，本发明提供了一种川党参采后保鲜方法。
5.本发明提供一种川党参采后保鲜方法，将预冷的新鲜川党参放入保鲜剂中浸泡，沥干后放入pa/pe微孔保鲜袋中，将袋内空气挤出，密封后在-12℃-20℃下贮藏；所述保鲜剂为乳酸链球菌素和/或ε-聚赖氨酸的水溶液。
6.作为优选，所述保鲜剂中，乳酸链球菌素的重量百分浓度为0.02-0.10％；和/或
7.所述保鲜剂中，ε-聚赖氨酸的重量百分浓度为0.02-0.10％。
8.作为优选，所述保鲜剂中，乳酸链球菌素的重量百分浓度为0.05-0.08％；和/或
9.所述保鲜剂中，ε-聚赖氨酸的重量百分浓度为0.05-0.10％。
10.作为优选，所述保鲜剂为乳酸链球菌素和ε-聚赖氨酸的水溶液。
11.作为优选，所述保鲜剂由以下重量百分比的各组分组成：乳酸链球菌素0.05％，ε-聚赖氨酸0.05％，水余量。
12.作为优选，所述预冷为在0
±
1℃预冷。
13.作为优选，所述浸泡时间为1.5-2.5min。
14.作为优选，密封后在-4-12℃下贮藏。
15.作为优选，密封后在2℃下贮藏。
16.本发明的有益效果如下：
17.本发明采用响应面法对川党参采后保鲜的方法进行优化，得到最优方案，为生产实践提供了理论依据。此保鲜方法在80天内可有效保持新鲜川党参的感官品质，降低失重率，延缓其衰老、软化和褐变等生理劣变过程，并有效维持了川党参主要活性成分党参炔苷、苍术内酯ⅲ、紫丁香苷含量和抗氧化能力，并且在贮藏末期，新鲜川党参中风味物质成分得到了有效保留。本方法操作简单、绿色安全、无设备要求且效果显著。能够提高党参的商品价值，经济效益显著。
附图说明
18.附图用来提供对本发明的进一步理解，并且构成说明书的一部分，与本发明的实施例一起用于解释本发明，并不构成对本发明的限制。在附图中：
19.图1为乳酸链球菌素浓度对新鲜川党参保鲜效果的影响。
20.图2为ε-聚赖氨酸浓度对新鲜川党参保鲜效果的影响。
21.图3为贮藏温度对新鲜川党参保鲜效果的影响。
22.图4温度(a)与乳酸链球菌素浓度(b)交互作用响应曲面图。
23.图5温度(a)与乳酸链球菌素浓度(b)交互作用等高线图。
24.图6温度(a)与ε-聚赖氨酸浓度(c)交互作用响应曲面图。
25.图7温度(a)与ε-聚赖氨酸浓度(c)交互作用等高线图。
26.图8乳酸链球菌素浓度(b)与ε-聚赖氨酸浓度(c)交互作用响应曲面图。
27.图9乳酸链球菌素浓度(b)与ε-聚赖氨酸浓度(c)交互作用等高线图。
28.图10不同储存期川党参的挥发性物质gallery plot图(指纹图谱)。
29.图11不同储存期川党参的挥发性物质pca图。
具体实施方式
30.以下的实施例便于更好地理解本发明，但并不限定本发明。下述实施例中的实验方法，如无特殊说明，均为常规方法。下述实施例中所用的实验材料，如无特殊说明，均购自常规生化试剂公司。
31.实施例1
32.川党参采后保鲜最优条件的筛选方法包括以下步骤：
33.一、单因素实验
34.1.实验材料
35.新鲜川党参，样品采摘后带土立即送往兰州大学药学院(运输1-2天)。筛选出外观完好、根条肥壮、无虫蛀霉变、无破损、形态大小相近的新鲜川党参，洗净，去掉非药用部分，沥干表面水分，将药材于冷库0
±
1℃预冷24h后备用。
36.预冷可以消除田间热，防止保鲜处理前堆积造成的霉变；也可以统一川党参的温度，便于接下来的温度调节。
37.pa/pe微孔保鲜袋(厚度0.1mm，距保鲜袋两边5cm各有8对孔径为0.1mm的孔)(采购于沧州拓飞塑业有限公司，大小为20cm
×
45cm)；乳酸链球菌素(采购于郑州拜纳佛生物工
程股份有限公司)；ε-聚赖氨酸(采购于郑州拜纳佛生物工程股份有限公司)。
38.2.保鲜方法
39.2.1不同保鲜剂对新鲜川党参保鲜效果的影响研究
40.将预冷后的新鲜川党参随机分为6根每组，每组川党参分别浸入不同浓度的保鲜剂水溶液(溶剂为重蒸馏去离子水)中2min左右，料液的质量比为6：5，即，料液比是为了保证新鲜川党参全部浸没在保鲜剂水溶液中，浸泡2min左右是为了保证新鲜川党参表面全部被保鲜液覆盖，沥干，称重后放入pa/pe微孔保鲜袋中，将袋内空气挤出，密封后在25℃恒温恒湿箱内贮藏，在贮藏第3、6、9、12d对川党参感官品质(色泽、气味、硬度、口感)和失重率进行测定，并在第12d时，取一定量样品(液氮冷冻后保存于-80℃冰箱内)，对h2o2含量和
·o2-产生速率进行测定，每个处理重复3次，其中，保鲜剂分别为乳酸链球菌素和ε-聚赖氨酸。以不做任何处理，pa/pe微孔保鲜袋包装并贮藏在25℃恒温恒湿箱内的新鲜川党参为对照，各保鲜剂水溶液的浓度梯度如表1。
41.表1各保鲜剂水溶液的处理浓度梯度
[0042][0043]
2.2不同贮藏温度对新鲜川党参保鲜效果的影响研究
[0044]
将预冷后的新鲜川党参随机分为6根每组，称重后放入0.2mm厚的pa/pe微孔保鲜袋中，将袋内空气挤出，密封后分别在-12℃、-4℃、4℃、12℃、20℃、25℃下贮藏，在贮藏第3、6、9、12d对川党参感官品质(色泽、气味、硬度、口感)和失重率进行测定，并在第12d时，取一定量样品(液氮冷冻后保存于-80℃冰箱内)，对h2o2含量和
·o2-产生速率进行测定，每个处理重复3次，以不做任何处理，pa/pe微孔保鲜袋包装并贮藏在25℃恒温恒湿箱内的新鲜川党参为对照。
[0045]
3.指标测定
[0046]
3.1感官评分
[0047]
从色泽、气味、硬度和口感四个方面对新鲜川党参的外观性状按照ⅰ、ⅱ、ⅲ、ⅳ(极好、良好、一般、较差)四个等级进行评价，ⅰ级对应于25-21分，ⅱ级对应于20-16分，ⅲ级对应于15-11分，ⅳ级对应10分以下。感官综合评分＝色泽评分+气味评分+硬度评分+口感评分。
[0048]
表2感官评分标准表
[0049][0050]
3.2失重率
[0051]
采用称重法测定。失重率％＝(贮藏前重量-贮藏后重量)/贮藏前重量
×
100％。
[0052]
3.3 h2o2含量测定
[0053]
实验步骤参考曹建康《果蔬采后生理生化实验指导》的方法。以相当于h2o2量(μmol)为横坐标(x)，a415 nm值为纵坐标(y)，得标准曲线y＝0.0775x+0.0003(r2＝0.9991)。以每克鲜重组织中所含h2o2的量作为h2o2含量，表示为μmol/g，计算公式如(1)：
[0054][0055]
式中，c为标准曲线查的样品中h2o2浓度(μmol)；v
t
为样品提取液总体积(ml)；v1为测定时所用样品提取液体积(ml)；fw为样品鲜重(g)。
[0056]
3.4 ·o2-产生速率测定
[0057]
实验步骤参考王鸿飞《果品蔬菜贮藏与加工》的方法。以相当于超氧阴离子的物质的量(umol)为横坐标(x)，a530 nm值为纵坐标(y)，得标准曲线y＝5.1232x-0.0006(r2＝0.9998)。以每分钟每克鲜重样品产生的超氧阴离子的物质的量作为超氧阴离子产生速率，表示为nmol/(min
·
g)。计算公式如(2):
[0058][0059]
式中，n为标准曲线查得的溶液中超氧阴离子的物质的量(μmol)；v为样品提取液的体积(ml)；vs为测定时所取样品提取液的体积(ml)；t为样品与羟胺反应的时间(min)；m为样品鲜重(g)。
[0060]
3.5数据分析
[0061]
采用wps office 2021进行数据处理，spss 22.0软件进行pearson显著性相关分析，graphpad prism 8.0.1软件进行数据处理和绘图。
[0062]
4.结果分析
[0063]
4.1乳酸链球菌素浓度对新鲜川党参保鲜效果的影响
[0064]
图1为乳酸链球菌素浓度对新鲜川党参保鲜效果的影响。
[0065]
从图1可看出，当乳酸链球菌素浓度在0.02-0.10％时，能显著保持新鲜川党参的感官品质；显著降低
·o2-产生速率，延缓品质劣变。其中乳酸链球菌素浓度为0.06％时，新鲜川党参贮藏末期感官评分最高，失重率最低，h2o2含量和
·o2-产生速率最低，保鲜效果最好。
[0066]
4.2ε-聚赖氨酸浓度对新鲜川党参保鲜效果的影响
[0067]
图2为ε-聚赖氨酸浓度对新鲜川党参保鲜效果的影响。
[0068]
从图2可看出，当ε-聚赖氨酸浓度在0.02-0.10％时，能显著保持新鲜川党参的感官品质；显著降低
·o2-产生速率，延缓品质劣变。其中ε-聚赖氨酸浓度为0.06％时，新鲜川党参贮藏末期感官评分最高，失重率最低，h2o2含量和
·o2-产生速率最低，保鲜效果最好。
[0069]
4.3贮藏温度对新鲜川党参保鲜效果的影响
[0070]
图3为贮藏温度对新鲜川党参保鲜效果的影响。
[0071]
从图3可看出，当贮藏温度在-12-20℃时，能显著保持新鲜川党参的感官品质；显著降低失重率和
·o2-产生速率，延缓品质劣变。其中贮藏温度为4℃时，新鲜川党参贮藏末期感官评分最高，失重率最低，h2o2含量和
·o2-产生速率较低，保鲜效果最好。
[0072]
综上所述，通过上述单因素实验选出两种保鲜剂的最佳处理浓度和最佳贮藏温度。当乳酸链球菌素和ε-聚赖氨酸浓度在0.02-0.10％，贮藏温度在-12-20℃时，可以显著地延长新鲜川党参的贮藏时间，一级新鲜川党参在贮藏末期仍为二级较好川党参。
[0073]
二、响应面实验
[0074]
1.实验材料
[0075]
同单因素实验。
[0076]
2.保鲜方法
[0077]
在3个单因素实验的基础上，利用design-expert 11软件设计响应面方案。贮藏温度(a)、乳酸链球菌素浓度(b)和ε-聚赖氨酸浓度(c)分别为3个独立变量，采用层次分析法-基于指标相关性的权重确定方法(ahp-critic)确定各指标权重系数，得到感官评分，失重率，有效成分指标(党参炔苷、紫丁香苷和苍术内酯ⅲ)，抗氧化活性指标(总黄酮、总酚、dpph自由基清除率)，衰老相关生理指标(h2o2含量、
·o2-产生速率、丙二醛含量、超氧化物歧化酶、过氧化氢酶)，褐变相关生理指标(多酚氧化酶、过氧化物酶)，软化相关生理指标(果胶甲酯酶、多聚半乳糖醛酸酶、纤维素酶、β-葡萄糖苷酶)共19个评价指标的综合评分，以此综合评分为响应值。选择各单因素实验中的最优值为零水平，进行17个处理组合的响应面实验。其中实验设计的中心及水平见表3，各个处理组合的具体分组情况以及对应综合评分见表4。
[0078]
表3响应面分析实验中的独立变量及其编码值
[0079][0080]
表4响应面实验分组及综合评分
[0081][0082][0083]
将预冷后的新鲜川党参随机分为6根每组，浸入混合保鲜剂中2min，料液比为6：5，沥干，称重后放入pa/pe微孔保鲜袋中，将袋内空气挤出，密封后在对应温度下贮藏，贮藏期内于第80d取样，对上述19个指标进行测定，每个处理重复3次。
[0084]
其中，混合保鲜剂的制备方法为：按照料液的质量比计算并称量乳酸链球菌素和ε-聚赖氨酸试剂，同时溶于水中，搅拌均匀，备用。
[0085]
3.指标测定
[0086]
3.1感官评分
[0087]
同单因素实验。
[0088]
3.2失重率
[0089]
同单因素实验。
[0090]
3.3 h2o2含量
[0091]
同单因素实验。
[0092]
3.4 ·o2-产生速率
[0093]
同单因素实验。
[0094]
3.5细胞壁降解酶活性测定
[0095]
果胶甲酯酶(pme)、多聚半乳糖醛酸酶(pg)、纤维素酶(cx)和β-葡萄糖苷酶(β-glu)活性测定参考曹建康《果蔬采后生理生化实验指导》的方法。以葡萄糖的量为横坐标(x)，a540 nm值为纵坐标(y)，得标准曲线y＝0.6335x-0.0068(r2＝0.9992)。
[0096]
pg酶活性单位定义为每1g鲜重每1h释放1mg半乳糖醛酸所需酶量为一个酶活力单位(u/g fw)。pme酶活性单位定义为每1g鲜重每1h释放1mg半乳糖醛酸所需酶量为一个酶活
力单位(u/g fw)。cx酶活性单位定义为每1g鲜重每1h释放1mg还原糖所需酶量为一个酶活力单位(u/g fw)。β-glu酶活性单位定义为每1g鲜重每1h释放1mg还原糖所需酶量为一个酶活力单位(u/g fw)。
[0097]
3.6其他生理指标测定
[0098]
丙二醛(mda)含量、超氧化物歧化酶(sod)活性、过氧化氢酶(cat)活性、多酚氧化酶(ppo)活性和过氧化物酶(pod)活性参考检测试剂盒说明书测定。
[0099]
3.7党参炔苷、紫丁香苷和苍术内酯ⅲ成分含量测定
[0100]
3.7.1供试品溶液制备
[0101]
取鲜川党参粉末4g，精密称定，置具塞锥形瓶中，加入甲醇50ml，超声提取45min，放冷，过滤，水浴浓缩至干，随后用甲醇复溶至2ml，摇匀，0.45μm滤膜过滤，即得待测样品储备液。按色谱条件进样分别测定苍术内酯ⅲ和紫丁香苷。精密吸取待测样品储备液200μl，加入甲醇稀释定容至1ml，摇匀，0.45μm滤膜过滤即为待测样品，按色谱条件进样测定党参炔苷。
[0102]
3.7.2标准曲线的绘制
[0103]
党参炔苷标准曲线：以党参炔苷作为对照品，配制成浓度为1.042mg/ml的党参炔苷储备液。随后用甲醇将其稀释为32.56、65.13、130.25、260.50、521.00、1042.00μg/ml系列梯度的党参炔苷对照品溶液。色谱条件：体积比乙腈：水＝26：74，流速1.0ml
·
min-1
，检测波长267nm，柱温30℃，进量样10μl，以对照品浓度为横坐标(x)，峰面积为纵坐标(y)绘制回归方程为y＝8.5547x+65.207(r2＝0.9993)。
[0104]
紫丁香苷标准曲线：以紫丁香苷作为对照品，配制成浓度为1.044mg/ml的紫丁香苷储备液。随后用甲醇将其稀释为6.53、13.05、26.10、52.20、104.40μg/ml系列梯度的紫丁香苷对照品溶液。色谱条件为：流动相为乙腈(a)-体积百分比为0.2％的乙酸水溶液(b)，梯度洗脱，洗脱程序为：0～10min，体积百分比10％(a)；10～20min，体积百分比15％(a)；20～30min，体积百分比10％(a)，流速1.0ml
·
min-1
，检测波长220nm，柱温30℃，进量样20μl，以对照品浓度为横坐标(x)，峰面积为纵坐标(y)绘制回归方程为y＝90.613x+75.282(r2＝1)。
[0105]
苍术内脂ⅲ标准曲线：以苍术内脂ⅲ作为对照品，配制成浓度为1.238mg/ml的苍术内脂ⅲ储备液。随后用甲醇将其稀释为0.31、1.24、6.19、30.95、309.50、619.00、1238.00μg/ml系列梯度的苍术内脂ⅲ对照品溶液。色谱条件为体积比乙腈：水＝71：29，流速1.0ml
·
min-1
，检测波长220nm，柱温30℃，进量样20μl，以对照品浓度为横坐标(x)，峰面积为纵坐标(y)绘制回归方程为y＝43.536x+18.169(r2＝0.9999)。
[0106]
3.8总黄酮、总酚含量和dpph自由基清除能力测定
[0107]
3.8.1供试品溶液制备
[0108]
精密称取鲜川党参冻干粉2g，置于150ml具塞锥形瓶中，以25ml 70％乙醇为溶剂超声提取2次，每次30min，滤液抽滤至100ml容量瓶中，定容至刻度，摇匀，以微孔滤膜滤过，得续滤液即为供试品溶液。
[0109]
3.8.2标准曲线的绘制
[0110]
总黄酮标准曲线：精密称取105℃干燥至恒重的芦丁标准品2mg，适量无水乙醇溶解，无水乙醇定容至10ml，摇匀，得到浓度为0.2000g/l的芦丁标准品储备液，4℃储存备用。
精密量取芦丁对照品溶液0.4，0.8，1.2，1.6，2.0，2.4ml分别置于10ml量瓶中，各加水至2.4ml，加重量百分比5％亚硝酸钠溶液0.4ml，摇匀，放置6min，加重量百分比10％的硝酸铝0.4ml，摇匀，再放置6min，加重量百分比4％氢氧化钠溶液4ml，再加水至刻度，摇匀，放置15min，制得芦丁浓度依次为0.008，0.016，0.024，0.032，0.040，0.048g/l的对照品溶液。以a505 nm值为纵坐标(y)，浓度为横坐标(x)，得标准曲线为y＝9.6571x-0.0164，(r2＝0.9991)。
[0111]
总酚标准曲线：精确称取没食子酸标准品1mg，用水溶解并定容至10ml，摇匀，取1ml用蒸馏水稀释8倍，制成0.0125g/l的对照品标准溶液。精确吸取标准品溶液0.8，1.6，2.4，3.2，4.0，4.8ml分别置于10ml量瓶中，各加蒸馏水至2.0ml，混匀，加福氏试剂1ml，3min后，加重量百分比10％ na2co3溶液2ml，用水稀释至10ml，30℃水浴加热30min后，取出，摇匀，制得没食子酸浓度依次为0.0010，0.0020，0.0030，0.004，0.005，0.006g/l的对照品溶液。以a765 nm值为纵坐标(y)，浓度为横坐标(x)，得标准曲线为y＝217.31x+0.0761，(r2＝0.9991)。
[0112]
3.8.3样品测定
[0113]
总黄酮含量测定：精密量取上述供试品溶液2ml，按标准曲线项下操作，测定吸光度，根据标准曲线计算样品中总黄酮含量。
[0114]
总酚含量测定：精密量取上述供试品溶液1.5ml，按标准曲线项下操作，测定吸光度，根据标准曲线计算样品中总酚含量。
[0115]
dpph自由基清除率测定：取dpph 4mg，置于100ml量瓶中，无水乙醇定容至刻度，得0.1mmol/l贮备液，于4℃下放置，备用。移取供试品溶液100μl及贮备液2ml，置于同一试管中，摇匀，暗室中反应30min，在517nm波长下测定吸光度值as。移取贮备液2ml与无水乙醇100μl，置于同一试管中，摇匀，测定混合溶液的吸光度ab。移取无水乙醇2ml与供试品溶液100μl，置于同一试管中，测定混合溶液的吸光度ac，计算清除率，公式如(3)：
[0116][0117]
3.9数据分析
[0118]
同单因素实验。
[0119]
4.结果分析
[0120]
4.1 ahp-critic混合加权法确定各指标权重
[0121]
根据box-behnken实验设计原理，运用design expert 11软件以温度、乳酸链球菌素浓度、ε-聚赖氨酸浓度为实验因素，进行三因素三水平的响应面实验设计，得到17个处理组合，将新鲜川党参做对应保鲜处理贮藏后，于贮藏期第80d取样，对其上述19个指标进行测定。测定结果如表5-表7所示。
[0122]
表5不同保鲜处理对新鲜川党参感官评分、失重率、有效成分和抗氧化活性的影响
[0123][0124]
表6不同保鲜处理对新鲜川党参氧化衰老和褐变生理指标的影响
[0125][0126]
表7不同保鲜处理对新鲜川党参软化生理指标的影响
[0127][0128]
采用ahp-critic混合加权法确定上述19个指标权重，混合加权法的综合权重计算公式如(4)：
[0129][0130]
根据spss 22.0软件处理数据，按照公式计算得19项指标综合权重见表8。
[0131]
表8权重分析结果
[0132][0133]
分别采用ahp，critic及ahp-critic混合加权法计算得到的权重系数对处理后的实验数据进行综合评分比较。critic与ahp，critic与ahp-critic混合加权法以及ahp与ahp-critic混合加权法的相关系数分别为0.926，0.928，0.998，三者相关性极显著(p《0.01)，说明3种方法的评分结果具有一致性。
[0134]
从权重系数分析，critic与ahp的相关系数为-0.038，相关性不显著(p＝0.878》0.05)，说明二者所反映信息不具有叠加性。
[0135]
即ahp-critic混合加权法从主、客观两方面考虑，所体现的信息更为全面，较单一的方法更加科学、合理。
[0136]
4.2回归模型的建立及方差分析
[0137]
得到17组处理的综合评分(见上表4)后，使用design-expert 11软件进行回归拟合。得到自变量贮藏温度(a)、乳酸链球菌素浓度(b)和ε-聚赖氨酸浓度(c)与因变量综合评分(y)的一个二次多项拟合方程。
[0138]
y＝60.47-9.79*a-2.99*b-3.75*c+2.49*ab-0.2668*ac+3.56*bc-20.50*a
2-9.14*b
2-11.56*c2。
[0139]
其方差分析结果见表9。
[0140]
表9响应面方差分析结果
[0141][0142]
注：p《0.01为极显著，p《0.05为显著：r2＝0.9572，r
2adj
＝0.9022，cv＝12.26％。
[0143]
从表9的数据结果可知，模型回归方程显著，失拟项不显著，说明回归方程的拟合程度良好，具有统计学意义。决定系数r2为0.9572，说明测量值与预测值较接近。校正系数r
2adj
为0.9022，说明三个因素对新鲜川党参的保鲜效果有90.22％的影响，表明实验具有较高的准确性。变异系数cv为12.26％，低于15％，表明实验的稳定性良好。
[0144]
根据p值的大小可知，各因素对新鲜川党参保质期得影响如下：a＞c＞b，且二次项a2、b2和c2对综合评分的影响极显著。
[0145]
4.3两因素交互作用响应面分析
[0146]
3个交互项影响的响应曲面图和等高线图见图4-9，表明各实验因素水平选择合理，其中温度与两种保鲜剂的交互作用对新鲜川党参贮藏末期综合评分的影响较强，而两种保鲜剂之间的交互作用对综合评分的影响次之，与p值大小结果一致。
[0147]
4.4最优条件的验证
[0148]
通过使用design-expert 11软件得到川党参采后贮藏保鲜的最优方法为：混合保鲜剂中含有0.05％的乳酸链球菌素和0.05％的ε-聚赖氨酸，贮藏温度为2℃。在此条件下进行三次验证实验，在贮藏第80天对上述19个指标进行测定，结果如表10，并根据表8中ahp-critic混合权重计算得到综合评分，分别为66.8810、63.5256和60.7902，平均值为63.7323与模型预测值62.4208比较接近，说明该方程的拟合度良好，得到的最优保鲜方法可靠性较高，可以用于新鲜川党参的工业化保鲜贮藏。
[0149]
表10验证实验结果
[0150][0151]
实施例2
[0152]
一种川党参采后贮藏保鲜的方法，包括以下步骤：
[0153]
(1)将预冷后的新鲜川党参，浸入混合保鲜剂中2min，料液比为6：5，其中，所述混合保鲜剂中乳酸链球菌素浓度为0.05％，ε-聚赖氨酸浓度为0.05％；
[0154]
(2)将川党参沥干，称重后放入pa/pe微孔保鲜袋中，将袋内空气挤出，密封后在2℃下贮藏。
[0155]
实施例3
[0156]
最优保鲜条件下(即采用实施例2的方式进行保鲜)，新鲜川党参贮藏末期挥发性化合物的测定。
[0157]
1.材料
[0158]
新鲜川党参样品(s0)；最优保鲜条件下贮藏第40d川党参样品(lpn40)；最优保鲜条件下贮藏第80d川党参样品(lpn80)；室温贮藏第3d川党参样品(rt3)、室温贮藏第6d川党参样品(rt6)。
[0159]
2.方法
[0160]
2.1仪器
[0161]
flavour风味分析仪(气相-离子迁移谱)，德国gas公司。
[0162]
2.2样品处理
[0163]
样品取1g置于20ml顶空瓶中，60℃孵育15分钟后进样。
[0164]
2.3 gc-ims条件
[0165]
自动顶空进样器：进样体积500μl，孵育时间15min，孵育温度60℃，分析时间为20min。色谱柱：mxt-wax(30m
×
0.53mm
×
1μm)，柱温：60℃；载气/漂流气：高纯氮气(99.999％)；漂移器流速：150ml/min；载气流速：2ml/min(0～2min)、2～10ml/min(2～10min)、10～100ml/min(10min～20min)；离子迁移管温度：45℃；进样针温度：85℃。
[0166]
3.结果分析
[0167]
5种不同储存期川党参的挥发性物质指纹图谱如图10所示，共检测到102个挥发性有机物，其中9种酯、23种醛、16种醇、9种酮、1种酸、1种噻吩、1种呋喃和42种未知化合物。
[0168]
在定量挥发物中，醛类和醇类含量最大。鲜川党参的主要挥发物为正己醛、(e)-2-己烯醛等，其中正己醛是其特殊香气的主要成分。从结果可以看出，经贮藏保鲜，正己醛的含量逐渐下降，而实施例2所述保鲜方法可在一定程度上维持良好的党参香气品质。
[0169]
图10为不同储存期川党参的挥发性物质gallery plot图(指纹图谱)。
[0170]
与gallery plot图的结论一致，由图11可知pca分析均可将5种样品区分开。其中lpn40、lpn80与s0较接近，整体挥发性成分相似。进一步表明，实施例2所述保鲜方法可在贮藏过程中较好地保留新鲜川党参挥发性风味物质。
[0171]
图11为不同储存期川党参的挥发性物质pca图。
[0172]
实施例4
[0173]
一种川党参采后贮藏保鲜方法，与实施例2相比，混合保鲜剂中所述乳酸链球菌素浓度为0.06％，ε-聚赖氨酸浓度为0.06％，pa/pe微孔保鲜袋包装后在4℃下贮藏。
[0174]
实施例5
[0175]
一种川党参采后贮藏保鲜方法，与实施例2相比，混合保鲜剂中所述乳酸链球菌素浓度为0.02％，ε-聚赖氨酸浓度为0.06％，pa/pe微孔保鲜袋包装后在4℃下贮藏。
[0176]
实施例6
[0177]
一种川党参采后贮藏保鲜方法，与实施例2相比，混合保鲜剂中所述乳酸链球菌素浓度为0.02％，ε-聚赖氨酸浓度为0.05％，pa/pe微孔保鲜袋包装后在2℃下贮藏。
[0178]
实施例7
[0179]
一种川党参采后贮藏保鲜方法，与实施例2相比，混合保鲜剂中所述乳酸链球菌素浓度为0.08％，ε-聚赖氨酸浓度为0.06％，pa/pe微孔保鲜袋包装后在0℃下贮藏。
[0180]
实施例8
[0181]
一种川党参采后贮藏保鲜方法，与实施例2相比，保鲜剂中所述乳酸链球菌素浓度为0.08％，pa/pe微孔保鲜袋包装后在2℃下贮藏。
[0182]
实施例9
[0183]
一种川党参采后贮藏保鲜方法，与实施例2相比，保鲜剂中所述乳酸链球菌素浓度为0.04％，pa/pe微孔保鲜袋包装后在-4℃下贮藏。
[0184]
实施例10
[0185]
一种川党参采后贮藏保鲜方法，与实施例2相比，保鲜剂中所述ε-聚赖氨酸浓度为0.06％，pa/pe微孔保鲜袋包装后在0℃下贮藏。
[0186]
实施例11
[0187]
一种川党参采后贮藏保鲜方法，与实施例2相比，保鲜剂中所述ε-聚赖氨酸浓度为
0.04％，pa/pe微孔保鲜袋包装后在12℃下贮藏。
[0188]
最后应说明的是：以上所述仅为本发明的优选实施例而已，并不用于限制本发明，尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，对于本领域的技术人员来说，其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。