一种果胶裂解酶突变体ΔPel419及其编码基因、制备方法和应用

一种果胶裂解酶突变体
δ
pel419及其编码基因、制备方法和应用
技术领域
1.本发明属于分子生物学的技术领域，更具体地，涉及一种果胶裂解酶突变体δpel419及其编码基因、制备方法和应用。


背景技术：

2.果胶酶是一类重要的工业用酶，目前已被广泛应用于造纸行业、食品加工、环境保护和纺织行业等。
3.根据底物及作用方式，果胶酶可分为原果胶酶(protopectinase)、聚半乳糖醛酸酶(polygalacturonase)、果胶裂解酶(pectate lyase)和果胶酯酶(pectin esterase)等。依据酶解反应的最适ph，分为酸性果胶酶和碱性果胶酶；大多数酸性果胶酶被应用于食品加工，碱性果胶酶应用于纺织行业的棉麻加工，碱性果胶酶在纺织加工中主要用于棉纱线生物精炼和麻类生物脱胶。
4.与传统的化学法相比，生物酶法应用于麻类脱胶具有节能、减排和降耗等优势，备受人们青睐；然而，目前市面上能直接应用于工业化生产的碱性果胶裂解酶不足，究其原因，还是酶活力不高和耐热性能差。因此，对现有碱性果胶裂解酶基因进行高效表达和利用分子生物学手段对现有酶种的耐热性能进行分子改造，是获得优良工业用果胶酶的有效方法。
5.对工业酶进行分子改造的方法主要有基于非理性设计的定向进化和基于理性设计的定点突变等。定向进化通过随机突变引入氨基酸突变位点(区域)，需结合高通量筛选获得热稳定性提高的酶；定点突变则是指通过pcr等手段定点改变目的dna特定位点，包括碱基的添加、删除、点突变等，其具有突变率高、重复性好等优点，已被广泛用于酶性能的改良。
6.随着分子生物学技术的发展，根据果胶裂解酶已知或预测的结构信息及催化机理，解析结构与功能之间的关系，推测出影响果胶裂解酶催化活性和稳定性的关键氨基酸位点，通过定点突变是获得优良果胶裂解酶的有效途径。
7.截至目前，尚未见到点突变改造果胶裂解酶的有关报道。


技术实现要素：

8.有鉴于此，本发明提供了一种果胶裂解酶突变体δpel419及其编码基因、制备方法和应用。
9.为实现上述目的，本发明的技术方案如下：
10.本发明提供了一种果胶裂解酶突变体δpel419，其刚性区域第52 位的氨基酸由大分子量且有支链的缬氨酸突变为小分子量丙氨酸。
11.具体地，在上述技术方案中，通过将位于第51
‑
59位的刚性区域(α
‑ꢀ
螺旋)中的第52位的氨基酸进行点突变，具体为在genbank数据库中公布的pel419基因序列(genbank登
录号：jx964997)的基础上，对其编码的氨基酸进行取代，所述氨基酸取代点为第52位缬氨酸。
12.进一步地，在上述技术方案中，所述果胶裂解酶突变体δpel419 的氨基酸序列如seq id no.1所示。
13.本发明还提供了编码所述果胶裂解酶突变体的基因δpel419。
14.进一步地，在上述技术方案中，所述基因δpel419的核苷酸序列如seq id no.2所示。
15.本发明还提供了含有所述基因δpel419的载体。
16.本发明还提供了含有所述基因δpel419或所述载体的宿主细胞。
17.本发明还提供了含有所述基因δpel419或所述载体的工程菌。
18.本发明又一方面还提供了所述基因δpel419及其所编码的酶在降解棉麻胶质、造纸原料胶质和工业废水中果胶中的应用。
19.本发明再一方面还提供了生产所述果胶裂解酶突变体δpel419的方法，包括：
20.将seq id no.2所示的核苷酸序列以能表达该酶的质粒为表达载体，以能表达该酶的菌株为表达宿主，实现seq id no.1所示的突变体基因的高效表达。
21.详细地，在上述技术方案中，将seq id no.2所示的核苷酸序列以pet28a或能表达该酶的质粒为表达载体，以大肠杆菌(escherichiacoli)bl21(de3)或能表达该酶的菌株为表达宿主，实现突变体基因 pel419
v52a
的高效表达。
22.具体地，在上述技术方案中，所述果胶裂解酶基因pel419来自一种麻类脱胶高效菌种dickeya dadantii dce
‑
01(保藏编号：cgmcc 5522，专利号：zl201110410078.7)；所用的pet28a表达单元的启动子为常用的t7启动子，在t7启动子的作用下，突变体酶可以直接在宿主细胞e.coli bl21(de3)中，完成胞内的可溶性表达。
23.本发明与现有技术相比，具有以下优点：
24.本发明提供的突变体酶在碱性条件下，酶活力和耐热性能有明显的提高，解决了野生型果胶裂解酶在碱性条件下催化活性低和热稳定性不足的问题，为利用该酶在棉麻加工、制浆造纸、工业废水处理等行业中的应用创造了良好条件。
25.本发明通过比较野生酶pel419和突变酶pel419在碱性条件下对聚半乳糖醛酸钠的降解能力，结果表明：在ph为9.0的条件下，突变体酶pel419
v52a
的比酶活为14911.1u/mg，为野生型pel419的1.5倍；在 50℃条件下保温2h，突变体酶pel419
v52a
的剩余酶活力为1689.8u/mg，为野生型pel419的4.4倍，即突变体酶在碱性条件下具有耐热和高酶活力的特性，预示着其在需高温碱性条件下的工业化生产中具有重要的应用前景。
附图说明
26.图1为本发明实施例中突变果胶裂解酶工程菌株的构建流程图；
27.图2为本发明实施例中重组质粒pet28a(+)
‑
pel419的构建图谱；
28.图3为本发明实施例中定点突变的原理示意图；
29.图4为本发明实施例中野生型和突变型酶诱导表达的sds
‑
page 图谱；
30.图5为本发明实施例中野生型和突变酶的稳定温度比较图。
具体实施方式
31.为了使本发明的目的、技术方案及优点更加清楚明白，以下结合实施例，对本发明进行进一步详细说明。
32.应当理解，此处所描述的具体实施例仅仅用以解释本发明，并不用于限定本发明。
33.实施例中，如无特别说明，所用手段均为本领域常规的手段。
34.本文中所用的术语“包含”、“包括”或其任何其它变形，意在覆盖非排它性的包括。例如，包含所列要素的组合物、步骤、方法、制品或装置不必仅限于那些要素，而是可以包括未明确列出的其它要素或此种组合物、步骤、方法、制品或装置所固有的要素。
35.此外，下面所描述的本发明各个实施方式中所涉及到的技术特征只要彼此之间未构成冲突就可以相互组合。
36.材料和试剂：
37.表达载体pet28a、原核克隆感受态e.coli top10与原核表达感受态e.coli bl21(de3)均购自novagen公司；
38.超强高保真pcr试剂盒ultra hifidelity pcr kit、离心柱型细菌基因组抽提试剂盒、快速定点突变试剂盒、dnamarker iii、2
×
taq pcr mix试剂、普通琼脂糖凝胶nda回收试剂盒、质粒小提试剂盒、iptg、卡那霉素(kan)均购自tiangen生物公司；
39.聚半乳糖醛酸钠盐、胰蛋白胨、酵母提取物和琼脂粉购自sigma公司；
40.引物合成和核酸测序由擎科生物科技有限公司完成；
41.其余的化学试剂都为分析纯级的商业化产品，购自国药集团。
42.如图1所示为本发明实施例中突变果胶裂解酶工程菌株的构建流程图。
43.实施例一：重组质粒的构建
44.将d.dadantii dce
‑
01培养至对数生长期，取1.5ml菌液在12000 rpm下离心1min，收集菌体沉淀；然后按照试剂盒说明书提取基因组 dna。
45.根据果胶裂解酶基因pel419和载体pet28a的mcs区段依次选取酶切位点nde i、xho i用生物信息学软件snapgene设计如下引物：
46.pcr反应体系为：基因组dna，1μl；primer f(10μm)，0.75μl； primer r(10μm)，0.75μl；2
×
ultrahifi mix(with dye)12.5μl；用 ddh2o补足到25μl；混匀后进行pcr反应。
47.参数设置为：
48.(1)94℃预变性2min；(2)98℃变性10s；(3)60℃复性30s；(4) 68℃延伸15s；重复步骤(2)
‑
(4)，35个循环；(5)68℃保温5min。
49.用相应的限制性内切酶分别对纯化后pcr产物和pet28a(+)载体进行双酶切，切胶回收pet28a(+)线性载体和目标基因，用t4 dna连接酶在16℃条件下过夜连接载体和目标基因；连接产物转化至原核克隆感受态e.coli top10，将转化菌液均匀涂布到lb筛选平板(kan 50 ug/ml)，37℃培养过夜；挑取转化子液体培养，提取质粒，通过酶切和pcr验证获得重组质粒pet28a
‑
pel419(图2)，再将重组质粒转到e. coli bl21(de3)，获得pet28a
‑
pel419/bl21工程菌。
50.实施例二：定点突变
51.定点突变原理：点突变质粒的构建采用dpn i法(图3)。
52.根据待突变的氨基酸位点来设计pcr点突变引物如下：
[0053][0054]
其中，下划线部分代表突变体基因编码的第52位丙氨酸所对应的密码子。
[0055]
利用快速定点突变试剂盒以pet28a
‑
pel419重组质粒为模板，进行全质粒pcr引入突变位点。
[0056]
pcr反应体系为：primer f
v52a
(10μm)1μl，primer r
v52a
(10μm) 1μl，5
×
fastalteration buffer 5μl，质粒dna 1μl，fast alteration dnapolymerase 0.5μl，用ddh2o补足到25μl。
[0057]
参数设置为：
[0058]
(1)95℃预变性2min；(2)94℃变性20s；(3)60℃复性10s；(4) 68℃延伸2.5min；重复步骤(2)
‑
(4)，18个循环；(5)68℃保温5min，产物4℃保存。
[0059]
将0.5μl限制性内切酶dpn i加入至突变好的25μlpcr产物中，充分混匀后，置于37℃条件下消化1h；取5μldpn i消化产物转进dh5α，将转化菌液均匀涂布到lb筛选平板(kan 50ug/m[)，37℃培养过夜，得到相关突变株的转化子，提取质粒，经过ecor i单酶切和突变基因 pcr扩增、测序，得到正确突变株，将构建成功的重组质粒转入e.colibl21(de3)，得到基因工程突变株pet28a
‑
pel419
v52a
/bl21。
[0060]
实施例三：野生酶和突变酶的诱导表达及sds
‑
page分析
[0061]
将基因工程菌pet28a
‑
pel419/bl21和pet28a
‑
pel419
v52a
/bl21的单菌落接种于含有60mg/lkan的lb液体培养基中，37℃、220r/min培养至od
600
至0.6，加入0.5mmol/l iptg，28℃、120r/min诱导表达12
‑
15h。
[0062]
取1ml诱导成熟的发酵菌液于1.5ml离心管中，10000r/min离心 5min，弃上清液，加入500 μl的生理盐水漩涡震荡，离心，洗涤两次。用40μl灭菌ddh2o悬浮菌体沉淀，加入10μl的5
×
蛋白上样缓冲液，煮沸5min，自然冷却，
‑
20℃保存备用(注：上样前用沸水浴3min)。
[0063]
对制备好的样品通过不连续的sds
‑
page(5％浓缩胶和12％分离胶)进行分析(如图4所示)，以未导入目的基因的pet28a/bl21菌株做相同处理作为空白对照，结果发现野生型果胶裂解酶工程菌株pet28a
ꢀ‑
pel419/bl21及突变体工程菌株pet28a
‑
pel419
v52a
/bl21均能成功表达出特异蛋白质谱带。
[0064]
实施例四：野生酶和突变酶的酶液制备
[0065]
(1)取诱导成熟的发酵液，3000r/min，4℃离心10min，收集菌体；
[0066]
(2)每1ml细菌蛋白抽提试剂中加入1μl dnase i、2μl溶菌酶和10μl蛋白酶抑制剂混合液，涡旋震荡混匀；
[0067]
(3)按照每克菌体沉淀加入20 ml细菌蛋白抽提试剂的比例，向菌体沉淀中加入抽提液，用移液枪上下吹打直至菌体完全重悬；
[0068]
(4)重悬后，室温孵育10
‑
15min；
[0069]
(5)15000r/min离心5min；
[0070]
(6)转移上清至新的离心管中(上清液即为胞内可溶性蛋白)，进行蛋白定量及酶活力测定。
[0071]
实施例五：野生酶和突变酶体外的催化能力比较
[0072]
为了比较野生酶和突变酶在碱性条件下的生物催化能力，在相同条件下进行酶活力测定。
[0073]
酶活力测定方法：用0.05mol/l甘氨酸
‑
氢氧化钠缓冲液(ph 9.0) 配置5mg/ml的聚半乳糖醛酸钠溶液。取1ml底物预热至50℃，添加10 μl适当稀释的酶液，50℃准确反应10min，立即加入2ml dns。沸水浴中显色5min，冰水浴迅速冷却。以煮沸灭活的相同酶液，做相同反应为阴性对照，测定样品的od
520
。
[0074]
果胶裂解酶活力定义为：底物每分针释放出1μmol不饱和半乳糖醛酸的还原糖所需的酶量为1个酶活力单位，以u表示。
[0075]
结果发现，在ph9.0条件下，突变体pel419
v52a
的比酶活为14911.1 u/mg，为野生型pel419的1.5倍，其催化聚半乳糖醛酸钠降解能力大幅度提高。
[0076]
实施例六：野生酶和突变酶的耐热性能比较
[0077]
将粗酶液置于在50℃条件下保温2h，测定剩余酶活力(如图5所示)，用来表征酶的热稳定性。结果发现在50℃条件下保温2h，突变体 pel419
v52a
的剩余酶活力为1689.8u/mg，为野生型pel419的4.4倍；说明 v52位点的突变使该果胶裂解酶的热稳定性提高。
[0078]
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。
[0079]
应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。