一种肿瘤抗原特异性TCR序列的筛选方法

文档序号:34705317发布日期:2023-07-07 10:41阅读:37来源:国知局
一种肿瘤抗原特异性TCR序列的筛选方法

本发明涉及生物检测,特别涉及一种肿瘤抗原特异性tcr序列的筛选方法。


背景技术:

1、近年来,阻断针对细胞毒性t淋巴细胞相关抗原-4(ctla-4)、程序性死亡-1(pd-1)和程序性死亡配体-1(pd-l1)的单克隆抗体可以恢复预先存在的抗癌免疫,并在各种类型的实体肿瘤中获得持久的临床反应。这些免疫检查点抑制剂的成功证明了恶性肿瘤患者存在抗癌免疫。另一方面肿瘤浸润t细胞(til)与预后相关性研究指出,cd8毒性til与cd4辅助til都显著提高了癌症的总生存率。这些研究指出了肿瘤的免疫治疗具有巨大的潜在价值。

2、然而,并非所有的肿瘤对检查点阻断治疗都能有好的响应效果,例如乳腺癌。与高免疫原性的癌症(如黑色素瘤和非小细胞肺癌)相比,乳腺癌的肿瘤突变负荷较低及其免疫原性较差。单纯的免疫检查点阻断治疗,并不能获得广泛的疗效。三阴性乳腺癌(tnbc),作为免疫源性最高的乳腺癌亚型,常作为免疫检查点阻断治疗的对象。多个临床研究表明,免疫检查点阻断转移性tnbc的客观缓解率(orr,objective response rate)均介于4.7%-24%,其orr高低取决于pd-l1的表达量、一线或者二线治疗以及淋巴细胞浸润程度。总体而言,其响应率都较低。对于一线治疗及pd-l1阳性的tnbc患者,免疫检查点阻断治疗才显得有效。故乳腺癌患者接受免疫检查点阻断治疗的受众非常局限。

3、免疫检查点阻断治疗从细胞学机制上讲,可扭转毒性cd8+t淋巴细胞耗竭,增强其效应功能,从而达到杀伤肿瘤的作用。但是同时也有研究指出,t细胞的耗竭可通过多个机制达成,单一阻断pd-1仍会激活其他机制,同样导致t细胞的耗竭。从另一方面讲,cd4+调节性t细胞(treg)的功能也有可能被上调。已有研究指出pd-1的阻断可增强treg的功能,从而限制cd8+t细胞的功能,导致肿瘤进展。临床研究中,还有观察到阻断pd-1可导致肿瘤超进展(tumor hyper-progression)的情况,尤其在年龄大于65岁的患者中出现的频率较高。故单纯的免疫检查点阻断,很多情况下可能无法达到很好的治疗效果。

4、近年来,t细胞受体基因修饰t细胞(tcr-t)的治疗方法被广泛关注。而tcr-t在实体瘤中展现了一些特有的优势,其中包括:1)通过mhc的提呈,tcr-t细胞可以识别胞内和细胞表面蛋白,尤其是突变后被mhc提呈的蛋白片段,而car-t细胞只能识别细胞表面蛋白,这使得tcr-t识别肿瘤细胞具有更高的特异性与灵敏度;2)因为它保留了所有tcr信号转导通路的辅助分子,当有少量抗原存在时,tcr-t细胞可完全激活,产生杀伤作用;3)tcr可以识别肿瘤细胞内部分子,而对tcr进行基因编辑可提高对肿瘤细胞的亲和力;4)结合近年来高速发展的高通量单细胞技术,可以实现多靶点识别,降低由于靶点单一而导致的肿瘤复发率;5)若利用患者自体tcr序列,如参与外周循环及淋巴循环的tcr,实施个性化tcr-t治疗,则可以避免对正常细胞的杀伤副作用。

5、目前,人们对肿瘤特异tcr的认识还非常不足。大多数临床tcr-t试验是人类白细胞抗原(hla-)a1和a2限制的,直接针对分化、癌胚或癌种系抗原。总的来说,这些试验已经证明转移性黑色素瘤、结直肠癌和滑膜肉瘤患者有显著的临床反应。这种tcr-t治疗一般先确定肿瘤抗原,或依靠癌细胞种系,或预测肿瘤新抗原,通过亲和力计算及体外试验确定tcr序列,以应对具有相似情况的多个患者。但实际上,患者多样化,肿瘤异质性高,而这种tcr-t并不具有以不变应万变的能力,所以适合该方法治疗的患者并不多。

6、近年来,随着对肿瘤微环境的不断探索,及单细胞多组学的发展,使得个性化定制肿瘤患者的tcr-t治疗成为了可能。其原理是从患者自身寻找肿瘤特异t细胞,人工合成其tcr序列,并插入该患者外周血杀伤性t细胞中,使得外周血t细胞具有杀伤肿瘤的能力,经过体外扩增后回输给患者以杀伤肿瘤。通过批量合成多条序列,还可以达到多靶点杀伤肿瘤的效果。

7、但是,个性化tcr-t的治疗方法还存在一些问题,例如需首先获取肿瘤抗原,再获取肿瘤特异t细胞,技术步骤繁琐易出错,且无法获得表达该tcr的细胞属于何种状态、何种亚群以及表达何种效应因子,其肿瘤反应性也无法得知,故不利于对tcr序列应用于tcr-t的有效性的评估。


技术实现思路

1、本发明目的在于提供一种肿瘤抗原特异性tcr序列的筛选方法,以解决现有技术中所存在的一个或多个技术问题,提供至少一种有益的选择或创造条件。

2、本发明的一方面在于提供了一种肿瘤抗原特异性tcr序列的筛选方法。所述筛选方法包括以下步骤:

3、(1)获取同源的肿瘤组织和转移淋巴结组织;

4、(2)使用肿瘤组织制备单细胞悬液,进行转录组建库、vdj建库及测序,从测序结果中选取克隆频率>0.5%的cd8+t细胞的tcr序列作为第一备选tcr序列集合;

5、(3)使用转移淋巴结组织制备单细胞悬液,进行转录组建库、vdj建库及测序,从测序结果中选取克隆频率>0.5%的cd8+t细胞的tcr序列作为第二备选tcr序列集合;

6、(4)同时满足第一备选tcr序列集合和第二备选tcr序列集合的即为所述肿瘤抗原特异性tcr序列。

7、步骤(2)和(3)可以同时实施,也可以交换实施顺序。

8、基于单细胞测序获得肿瘤特异tcr的方法,由于肿瘤组织中存在非特异扩增的效应cd8+t细胞,很难从细胞转录组特征上区分肿瘤特异与旁观者(bystander)效应t细胞。单单利用肿瘤组织难以筛选出准确的靶向肿瘤的tcr序列,因此本筛选方法同时还以转移淋巴结组织进行测序。同源的肿瘤组织和转移淋巴结组织位点都出现了相同的抗原,才能导致具有相同的t细胞克隆增殖。那么靶向这种抗原的tcr序列,是可以同时靶向转移灶与原发灶的肿瘤细胞,可降低由于肿瘤异质性,尤其是易转移肿瘤细胞与原发灶肿瘤细胞异质性而导致的脱靶效应。

9、在一些实施方式中,所述转移淋巴结组织或肿瘤组织的获取步骤包括:

10、a)组织破碎成组织块;优选地,所述组织经过反复冲洗后剪碎成组织块;优选地,所述组织块的体积为1~2mm3;

11、b)使用组织消化液消化所述组织块;优选地,向组织块加入组织消化液,混匀,摇床消化;优选地,所述摇床消化是35~40℃摇床中消化1~2小时;

12、c)终止消化,将消化处理后的组织液以70μm的筛网过滤至新的离心管中,离心,弃去上清液;

13、d)用平衡盐溶液洗涤,弃上清,加入培养液重悬细胞;优选地,所述洗涤次数至少两次。

14、在一些实施方式中,步骤b)所述组织消化液包括i型胶原酶、dna酶和rpmi1640培养基;优选地,所述组织消化液包括10~50 mg i型胶原酶、10~50 μl浓度为10 mg/ml的dna酶、10~50 mlrpmi1640培养基;优选地,所述组织消化液包括20 mg i型胶原酶、10 μl浓度为10 mg/ml的dna酶、10 ml含l-谷氨酰胺的rpmi1640培养基。

15、在一些实施方式中,步骤c)所述离心的条件为1500~2300 rpm,持续5~10 min;优选地,所述离心的条件为1800 rpm,持续8 min,离心机离心上升速率设置为7,下降速率设置为4,常温。

16、在一些实施方式中,步骤d)所述培养液为添加了抗生素的完全rpmi1640培养基,所述抗生素包括青霉素和/或链霉素。

17、在一些实施方式中,制得的所述单细胞悬液先经过细胞分选磁珠去除死亡细胞。

18、在一些实施方式中,获取第一备选tcr序列集合或第二备选tcr序列集合的步骤包括:

19、a)测序后获得fastq文件,把fastq数据转换成细胞-基因的表达矩阵以及获得细胞对应的tcr序列;

20、b)利用seurat软件的sctransform方法标准化并整合各样本的数据;

21、c)利用seurat软件的细胞聚类方法进行细胞分群;

22、d)筛选克隆频率>0.5%的cd8+t细胞,获得其α链与β链的tcr序列,。

23、所述克隆频率的计算公式为:克隆频率=单一t细胞克隆数量/总t细胞克隆数量。

24、上述肿瘤抗原特异性tcr序列的筛选方法可应用于肿瘤抗原筛选、疫苗制备等场合。

25、本公开的有益效果是:提供了一种肿瘤抗原特异性tcr序列的筛选方法,所述方法针对每例患者,在其肿瘤抗原未知的情况下,筛选出其肿瘤抗原特异性tcr序列,通过人工合成该肿瘤抗原特异性tcr的片段并插入患者外周血杀伤性t细胞中,使得外周血t细胞具有杀伤肿瘤的能力,经过体外扩增后回输给患者以杀伤肿瘤。

当前第1页1 2 
网友询问留言 已有0条留言
  • 还没有人留言评论。精彩留言会获得点赞!
1