分离培养羊种布鲁氏菌的方法

1.本发明涉及微生物培养技术领域，具体地说，涉及一种分离培养羊种布鲁氏菌的方法。


背景技术：

2.布鲁氏菌(brucella)能够引起全球人畜共患流行病—布鲁氏菌病(以下简称布病)。目前，布鲁氏菌已经被发现有12个种，常见引起人感染的主要是羊种(b.melitensis)、牛种(b.abortus)、猪种(b.suis)和犬种(b.canis)。羊种布鲁氏菌分为1-3生物型，其中羊种3型为我国优势流行株。分离获得布鲁氏菌是布病诊断的金标准。《布鲁氏菌病诊断(ws269-2019)》的附录d中，针对布鲁氏菌的培养，可以选择全自动血培养仪、双相培养瓶和选择性培养基培养，但针对培养获得的疑似菌落，均需在相应等级的生物安全实验室内取出疑似菌落做后续传统生化鉴定和分子生物学鉴定，耗时长，成本高，需要较高的专业技能。


技术实现要素：

3.本发明的目的是提供一种分离培养羊种布鲁氏菌的方法。
4.本发明构思如下：发明人利用牛种、羊种、猪种和犬种布鲁氏菌筛选2000多种小分子药物发现羊种布鲁氏菌对部分小分子药物存在抗性，通过对牛种8个亚型(1、2、3、4、5、6、7、9型)、羊种3个亚型(1、2、3型)、猪种5个亚型(1、2、3、4、5型)和犬种1个亚型的再次试验，确认羊种布鲁氏菌各个生物型均对部分小分子药物存在抗性，且通过肉汤稀释法确定不同种布鲁氏菌最小抑菌的浓度范围。根据以上结果制作羊种布鲁氏菌选择性双相培养瓶和选择性需氧血培养瓶，结合普通培养的结果，可以判断是否为羊种布鲁氏菌感染。
5.为了实现本发明目的，第一方面，本发明提供一种组合物在制备用于分离培养羊种布鲁氏菌的培养基中的应用，所述组合物由红霉素和氨苄青霉素钠组成，各成分在培养基中的含量分别为：红霉素6-15mg/l、氨苄青霉素钠2-7mg/l。
6.第二方面，本发明提供一种选择性双相培养基，由固体培养基和液体培养基两部分组成；
7.其中，所述固体培养基包含酪蛋白胰酶消化物15g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物5g/l、氯化钠5g/l、红霉素6-15mg/l、氨苄青霉素钠2-7mg/l、琼脂15g/l；
8.所述液体培养基包含酪蛋白胰酶消化物15g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物3g/l、氯化钠5g/l、葡萄糖2.5g/l、磷酸氢二钾2.5g/l、红霉素6-15mg/l、氨苄青霉素钠2-7mg/l、聚茴香脑磺酸钠(sps)35mg/l和复合维生素5mg/l。
9.第三方面，本发明提供所述选择性双相培养基的制备方法，包括以下步骤：
10.a、制备固体培养基：称取酪蛋白胰酶消化物15g、大豆木瓜蛋白酶水解物5g、氯化钠5g、琼脂15g，用1l去离子水加热溶解后，分装20-30ml置于双相培养瓶中，121℃高压灭菌15-20min；称取氨苄青霉素钠用双蒸水溶解，过滤除菌后加入冷却至50℃未凝固的培养基
中，终浓度为2-7mg/l；称取红霉素用无水乙醇溶解，过滤除菌后加入冷却至50℃未凝固的培养基中，终浓度为6-15mg/l；混匀后平置至冷却凝固；
11.b、制备液体培养基：称取酪蛋白胰酶消化物15g、大豆木瓜蛋白酶水解物3g、氯化钠5g、磷酸氢二钾2.5g，用1l去离子水溶解后121℃高压灭菌15-20min，得到溶液i；称取氨苄青霉素钠用双蒸水溶解，过滤除菌后加入培养基中，终浓度为2-7mg/l；称取红霉素利用无水乙醇溶解，过滤除菌后加入所述溶液中，使其终浓度为6-15mg/l；称取葡萄糖、聚茴香脑磺酸钠、复合维生素用去离子水溶解，使其浓度分别为250g/l、35g/l、5g/l，过滤除菌后加入所述溶液i中，使其终浓度分别为葡萄糖2.5g/l、聚茴香脑磺酸钠35mg/l和复合维生素5mg/l，每瓶双相培养瓶中分装25-35ml。
12.第四方面，本发明提供所述选择性双相培养基在分离培养羊种布鲁氏菌中的应用(含非疾病诊断目的)。
13.第五方面，本发明提供一种分离培养羊种布鲁氏菌的方法(含非疾病诊断目的)，包括以下步骤：
14.(1)将待测液体样本分成两等份，一份注入选择性双相培养瓶中，另一份注入普通双相培养瓶中，将双相培养瓶放入37℃5-10％ co2培养箱中培养，液相充分浸润固相4-12h后倾斜培养；
15.其中，所述选择性双相培养瓶装有所述选择性双相培养基；
16.所述普通双相培养瓶装有普通双相培养基，所述普通双相培养基不含有本发明所述的组合物；
17.(2)培养1-4周(优选1-2周)后，观察培养结果：
18.a.双相培养瓶中可见液相部分浑浊，固相部分可见单菌落生长；
19.b.若单菌落呈圆形，直径1-2mm，边缘光滑，菌落呈光泽、半透明的浅黄色，此为疑似布鲁氏菌；
20.c.若选择性双相培养瓶及普通双相培养瓶中均有此单菌落生长，则为羊种布鲁氏菌；若选择性双相培养瓶无此单菌落生长而普通双相培养瓶有此单菌落生长，则为羊种、猪种或犬种布鲁氏菌；若选择性双相培养瓶有此单菌落生长而普通双相培养瓶无此单菌落生长，则试验失败，需重复进行验证；若选择性双相培养基及普通培养基均液相部分清澈，固相部分无单菌落/菌苔生长，则样品中未有细菌感染。
21.第六方面，本发明提供一种选择性需氧血培养基，所述选择性需氧血培养基是包含酪蛋白胰酶消化物17g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物3g/l、聚茴香脑磺酸钠35mg/l、盐酸吡哆醇1mg/l、红霉素6-15mg/l、氨苄青霉素钠2-7mg/l、氨基酸复合物5mg/l和复合维生素5mg/l的液体培养基。
22.第七方面，本发明提供所述选择性需氧血培养基的制备方法，所述方法包括：称取酪蛋白胰酶消化物17g、大豆木瓜蛋白酶水解物3g，用1l去离子水溶解后分装于血培养瓶中，121℃高压灭菌15-20min；称取氨基酸复合物、复合维生素、聚茴香脑磺酸钠、盐酸吡哆醇用去离子水溶解，过滤除菌后加入血培养瓶中，使其终浓度分别为5mg/l、5mg/l、35mg/l、1mg/l，称取氨苄青霉素钠用双蒸水溶解，过滤除菌后加入血培养瓶中，终浓度为2-7mg/l；称取红霉素用无水乙醇溶解，过滤除菌后加入血培养瓶中，终浓度为6-15mg/l。
23.第八方面，本发明提供所述选择性需氧血培养基在分离培养羊种布鲁氏菌中的应
用(含非疾病诊断目的)。
24.第九方面，本发明提供一种分离培养羊种布鲁氏菌的方法(含非疾病诊断目的)，包括以下步骤：
25.1)血清学检测布病阳性样品进行需氧血培养瓶分离培养布鲁氏菌：将待测液体样本分成两等份，一份注入选择性需氧血培养瓶中，另一份注入普通需氧血培养瓶中，将血培养瓶放入全自动血培养仪中培养；
26.其中，所述选择性需氧血培养瓶装有所述选择性需氧血培养基；
27.所述普通需氧血培养瓶装有普通需氧血培养基，所述普通需氧血培养基不含有本发明所述的组合物；
28.2)培养1-4周(优选1-2周)后，通过观察生长曲线判断样本中是否存在羊种布鲁氏菌：若选择性血培养瓶及普通血培养瓶中均有菌株生长曲线，则为羊种布鲁氏菌；若选择性血培养瓶无生长曲线而普通血培养瓶有生长曲线，则为牛种、猪种或犬种布鲁氏菌；若选择性血培养瓶及普通血培养瓶均无生长曲线，则样品中培养出细菌；若选择性血培养瓶有生长曲线而普通血培养瓶无生长曲线，则试验失败，需重复进行验证。有生长曲线的需氧血培养瓶建议转移5-10ml液体至双相培养瓶中培养用于获得单菌落。
29.本发明中，所述待测液体样本选自血液、血清、奶样、组织匀浆、气溶胶液体等液体样本中的任意一种，且为血清学检测布病阳性样本。
30.借由上述技术方案，本发明至少具有下列优点及有益效果：
31.本发明通过制作选择性双相培养瓶和选择性需氧血培养瓶，选择性培养疑似布鲁氏菌菌落的羊种布鲁氏菌，操作简单，无需较高的专业技能，通过观察对照培养及选择性培养的菌落有无即可判断是否为羊种布鲁氏菌感染，可应用于布鲁氏菌种型初步鉴定涉及的研究、诊断等，切实为我国布病防控提供技术保障。
附图说明
32.图1为本发明较佳实施例中利用需氧血培养瓶选择性培养羊种布鲁氏菌的生长曲线。a为普通需氧血培养瓶羊种布鲁氏菌生长曲线，培养5d时仪器报告阳性，取出该瓶；b为选择性需氧血培养瓶羊种布鲁氏菌生长曲线；c为普通需氧血培养瓶牛种布鲁氏菌生长曲线，培养5d时仪器报告阳性，取出该瓶；d为选择性需氧血培养瓶牛种布鲁氏菌生长曲线；e为普通需氧血培养瓶猪种布鲁氏菌生长曲线，培养5d时仪器报告阳性，取出该瓶；f为选择性需氧血培养瓶猪种布鲁氏菌生长曲线，g为普通需氧血培养瓶犬种布鲁氏菌生长曲线，h为选择性需氧血培养瓶犬种布鲁氏菌生长曲线。
33.图2为本发明实施例中选择性双相培养瓶混合培养多种布鲁氏菌后单菌落荧光定量扩增曲线。
具体实施方式
34.本发明旨在提供一种快速、简便、有效的方法用于鉴别布鲁氏菌感染样品中的羊种布鲁氏菌感染，用于解决布病临床和防控过程中快速种型鉴定的问题，该方法能够快速、直观地鉴别羊种布鲁氏菌感染。本发明涉及仪器常见，无需经过复杂的鉴定试验，目测即可确定是否为羊种布鲁氏菌感染，此法可应用于临床感染样品鉴别。
35.本发明采用如下技术方案：
36.本发明涉及选择性双相培养瓶和选择性需氧血培养瓶，分别如下：
37.选择性双相培养瓶由固体培养基和液体培养基两部分组成，每瓶中含有20ml固相培养基及25ml液相培养基，其中，固相培养基包含酪蛋白胰酶消化物15g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物5g/l、氯化钠5g/l、红霉素6-15mg/l、氨苄青霉素钠2-7mg/l、琼脂15g/l；液相培养基包含酪蛋白胰酶消化物15g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物3g/l、氯化钠5g/l、葡萄糖2.5g/l、磷酸氢二钾2.5g/l、红霉素6-15mg/l、氨苄青霉素钠2-7mg/l、聚茴香脑磺酸钠(sps)35mg/l、复合维生素5mg/l。
38.选择性需氧血培养瓶每瓶中含有30ml液体培养基，包含酪蛋白胰酶消化物17g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物3g/l、sps 35mg/l、盐酸吡哆醇1mg/l、红霉素6-15mg/l、氨苄青霉素钠2-7mg/l、以及其他复合氨基酸(即氨基酸复合物)5mg/l、和复合维生素5mg/l。
39.本发明用于对照的普通双相培养瓶和普通需氧血培养瓶分别为：普通双相培养瓶由固体培养基和液体培养基两部分组成，每瓶中含有20ml固相培养基及25ml液相培养基，其中，固相培养基包含酪蛋白胰酶消化物15g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物5g/l、氯化钠5g/l、琼脂15g/l；液相培养基包含酪蛋白胰酶消化物15g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物3g/l、氯化钠5g/l、葡萄糖2.5g/l、磷酸氢二钾2.5g/l、聚茴香脑磺酸钠(sps)35mg/l、复合维生素5mg/l。
40.普通需氧血培养瓶每瓶中含有30ml液体培养基，包含酪蛋白胰酶消化物17g/l、大豆木瓜蛋白酶水解物3g/l、sps 35mg/l、盐酸吡哆醇1mg/l，以及其他复合氨基酸(即氨基酸复合物)5mg/l和复合维生素5mg/l。
41.本发明提供一种分离培养羊种布鲁氏菌的方法(涉及选择性双相培养瓶)，包括如下步骤：
42.(1)无菌取10ml全血等待检液体注入选择性双相培养瓶中，同时，无菌取10ml注入普通双相培养瓶中，双相培养瓶放入37℃二氧化碳培养箱中培养(co2含量为5-10％)，液相充分浸润固相4小时后倾斜培养。
43.(2)隔日观察培养瓶的生长情况，同时轻摇培养瓶，使得液相均匀铺满固相表面。
44.(3)结果判定：
45.有细菌感染的情况：
46.双相培养瓶中，培养1-2周内可见液相部分浑浊，固相部分可见单菌落生长。如单菌落呈圆形，直径1-2mm，边缘光滑，菌落呈光泽、半透明的浅黄色，此为疑似布鲁氏菌。若选择性双相培养瓶及普通双相培养瓶中均有此单菌落生长，则为羊种布鲁氏菌；若选择性双相培养瓶无此单菌落生长而普通双相培养瓶有此单菌落生长，则为牛种、猪种或犬种等布鲁氏菌；若选择性双相培养瓶有此单菌落生长而普通双相培养瓶无此单菌落生长，则试验失败，需重复进行验证。
47.无细菌感染的情况：
48.若选择性双相培养基及普通培养基均液相部分清澈，固相部分无单菌落/菌苔生长，则样品中未有细菌感染。
49.本发明提供一种分离培养羊种布鲁氏菌的方法(涉及选择性需氧血培养瓶)，包括如下步骤：
50.(1)无菌取10ml全血等待检液体注入选择性需氧血培养瓶中，同时，无菌取10ml注
入普通需氧血培养瓶中，需氧血培养瓶放入全自动血培养仪中培养。
51.(2)观察全自动血培养仪对应位置的生长曲线。一般培养1-2周，最长观察4周。
52.(3)结果判定：血培养瓶中，通过观察生长曲线判断样品中是否存在羊种布鲁氏菌。若选择性血培养瓶及普通血培养瓶中均有菌株生长曲线，则为羊种布鲁氏菌；若选择性血培养瓶无生长曲线而普通血培养瓶有生长曲线，则为牛种、猪种或犬种等布鲁氏菌；若选择性血培养瓶及普通血培养瓶均无生长曲线，则样品中未培养出细菌；若选择性血培养瓶有生长曲线而普通血培养瓶无生长曲线，则试验失败，需重复进行验证。
53.本发明提供的分离培养羊种布鲁氏菌的方法，其直接目的是鉴别羊种布鲁氏菌感染，而非获取疾病诊断结果。
54.本发明提供一种能够快速、有效、直观地判断是否为羊种布鲁氏菌感染，可应用于布鲁氏菌种型鉴定涉及的研究、诊断等。本发明涉及仪器常见，无需较高的专业技能，通过观察菌落的有无即可判断是否为羊种布鲁氏菌感染，可应用于布鲁氏菌种型鉴定涉及的研究、诊断等，该方法完全可以推广应用，有助于推动布病的诊断和防控。
55.以下实施例用于说明本发明，但不用来限制本发明的范围。若未特别指明，实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段，所用原料均为市售商品。
56.以下实施例所用试验材料及试验仪器如下：
57.1.试验材料
58.羊种1型标准菌株16m、牛种1型标准菌株2308、猪种1型标准菌株1330、犬种标准菌株rm6/66均由中国农业科学院北京畜牧兽医研究所动物生物安全与公共卫生防控团队保存，其复苏、传代及接种均在北京市动物疫病预防控制中心生物安全三级实验室(bsl-3)内完成。
59.制备培养基用的酪蛋白胰酶消化物、大豆木瓜蛋白酶水解物、琼脂购自bd公司；氯化钠、葡萄糖、聚茴香脑磺酸钠(sps)、磷酸氢二钾、盐酸吡哆醇购自国药公司；复合维生素、红霉素、氨苄青霉素钠、复合氨基酸购自索莱宝公司；培养瓶按照仪器所需定制，配置所需双蒸水经高压灭菌。其他生化试剂均为进口分装或国产分析纯；布鲁氏菌牛种、羊种、猪种核酸检测试剂盒(探针法)购自青岛中创汇科公司。
60.2.试验仪器
61.co2培养箱(thermo fisher公司)，全自动血培养仪(梅里埃公司)，细菌比浊仪(梅里埃公司)，荧光定量pcr仪(thermo fisher公司)。
62.实施例1双相培养瓶的制备
63.(1)普通双相培养瓶的制备
64.a.高压灭菌固相培养基。称取酪蛋白胰酶消化物15g、大豆木瓜蛋白酶水解物5g、氯化钠5g、琼脂15g，用1l去离子水加热溶解后，分装20ml置于双相培养瓶中，121℃高压灭菌15-20min，平置至冷却凝固。
65.b.高压灭菌液相培养基。称取酪蛋白胰酶消化物15g、大豆木瓜蛋白酶水解物3g、氯化钠5g、磷酸氢二钾2.5g，用1l去离子水溶解后121℃高压灭菌15-20min；称取葡萄糖、聚茴香脑磺酸钠(sps)、复合维生素用去离子水溶解，使其浓度分别为250g/l、35g/l、5g/l，过滤除菌后加入液体培养基中，使其终浓度分别为葡萄糖2.5g/l、sps 35mg/l和复合维生素5mg/l，每瓶双相培养瓶中分装25ml。
66.(2)选择性双相培养瓶的制备
67.a.高压灭菌固相培养基。称取酪蛋白胰酶消化物15g、大豆木瓜蛋白酶水解物5g、氯化钠5g、琼脂15g，用1l去离子水加热溶解后，分装20ml置于双相培养瓶中，121℃高压灭菌20min；称取氨苄青霉素钠用双蒸水溶解，过滤除菌后加入冷却至50℃左右未凝固的培养基中，终浓度为3mg/l；称取红霉素用无水乙醇溶解，过滤除菌后加入冷却至50℃左右未凝固的培养基中，终浓度为6mg/l；混匀后平置至冷却凝固。
68.b.高压灭菌液相培养基。称取酪蛋白胰酶消化物15g、大豆木瓜蛋白酶水解物3g、氯化钠5g、磷酸氢二钾2.5g，用1l去离子水溶解后121℃高压灭菌15-20min；称取氨苄青霉素钠用双蒸水溶解，过滤除菌后加入培养基中，终浓度为3mg/l；称取红霉素用无水乙醇溶解，过滤除菌后加入培养基中，终浓度为6mg/l；称取葡萄糖、sps、复合维生素用去离子水溶解，使其浓度分别为250g/l、35g/l、5g/l，过滤除菌后加入液体培养基中，使其终浓度分别为葡萄糖2.5g/l、sps 35mg/l和复合维生素5mg/l，每瓶双相培养瓶中分装25ml。
69.实施例2需氧血培养瓶的制备
70.(1)普通需氧血培养瓶制备
71.称取酪蛋白胰酶消化物17g、大豆木瓜蛋白酶水解物3g，利用1l去离子水溶解后每瓶30ml分装121℃高压灭菌15-20min；称取氨基酸复合物、复合维生素、sps、盐酸吡哆醇用去离子水溶解，过滤除菌后加入血培养瓶中，使其终浓度分别为5mg/l、5mg/l、35mg/l、1mg/l。
72.(2)选择性需氧血培养瓶制备
73.称取酪蛋白胰酶消化物17g、大豆木瓜蛋白酶水解物3g，用1l去离子水溶解后每瓶30ml分装121℃高压灭菌15-20min；称取氨基酸复合物、复合维生素、sps、盐酸吡哆醇用去离子水溶解，过滤除菌后加入血培养瓶中，使其终浓度分别为5mg/l、5mg/l、35mg/l、1mg/l，称取氨苄青霉素钠用双蒸水溶解，过滤除菌后加入培养液中，终浓度为3mg/l；称取红霉素用无水乙醇溶解，过滤除菌后加入培养液中，终浓度为6mg/l和20ng/l。
74.实施例3选择性培养羊种布鲁氏菌(涉及选择性双相培养瓶)
75.(1)菌液制备
76.划线培养不同种布鲁氏菌菌株96h后，利用比浊仪调整菌株比浊度为0.5mcf(约为1
×
108cfu/ml)。
77.(2)布鲁氏菌标准菌株培养
78.制备的菌液100倍稀释后取100μl菌液加入普通和选择性双相培养瓶中。双相培养瓶放入37℃二氧化碳培养箱中培养(co2含量为5-10％)，液相充分浸润固相4-12小时后倾斜培养。隔日观察培养瓶的生长情况，同时轻摇培养瓶，使得液相均匀铺满固相表面。一般培养1-2周，最长观察4周。
79.(3)结果判定
80.有细菌感染的情况：
81.双相培养瓶中，培养1-2周内可见液相部分浑浊，固相部分可见单菌落生长。如单菌落呈圆形，直径1-2mm，边缘光滑，菌落呈光泽、半透明的浅黄色，此为疑似布鲁氏菌。若选择性双相培养瓶及普通双相培养瓶中均有此单菌落生长，则为羊种布鲁氏菌；若选择性双相培养瓶无此单菌落生长而普通双相培养瓶有此单菌落生长，则为牛种、猪种或犬种等布
鲁氏菌；若选择性双相培养瓶及普通双相培养瓶均无此单菌落生长，则样品中未培养出细菌；若选择性双相培养瓶有此单菌落生长而普通双相培养瓶无此单菌落生长，则试验失败，需重复进行验证。
82.无细菌感染的情况：若选择性双相培养基及普通培养基均液相部分清澈，固相部分无单菌落/菌苔生长，则样品中未有细菌感染。
83.利用需氧血培养瓶选择性培养羊种布鲁氏菌的生长曲线见图1。
84.实施例4选择性培养羊种布鲁氏菌(涉及选择性需氧血培养瓶)
85.(1)菌液制备
86.划线培养不同种布鲁氏菌菌株96h后，利用比浊仪调整菌株比浊度为0.5mcf(约为1
×
108cfu/ml)。
87.(2)布鲁氏菌标准菌株培养
88.制备的菌液100倍稀释后取100μl菌液加入普通和选择性需氧血培养瓶中。将需氧血培养瓶放入全自动血培养仪中培养。对于血培养瓶而言，观察全自动血培养仪对应位置的生长曲线。一般培养1-2周，最长观察4周。
89.(3)结果判定
90.血培养瓶中，通过观察生长曲线判断样品中是否存在羊种布鲁氏菌。若选择性血培养瓶及普通血培养瓶中均有菌株生长曲线，则为羊种布鲁氏菌；若选择性血培养瓶无生长曲线而普通血培养瓶有生长曲线，则为牛种、猪种或犬种等布鲁氏菌；若选择性血培养瓶及普通血培养瓶均无生长曲线，则样品中未培养出细菌；若选择性血培养瓶有生长曲线而普通血培养瓶无生长曲线，则试验失败，需重复进行验证。有生长曲线的需氧血培养瓶建议转移5-10ml液体至双相培养瓶中培养用于获得单菌落。
91.实施例5选择性双相培养瓶培养布鲁氏菌
92.由于选择性血培养瓶无法观察到单菌落，因此混合培养鉴定以选择性双相培养瓶为例进行。
93.(1)菌液制备
94.划线培养不同种布鲁氏菌菌株96h后，利用比浊仪调整菌株比浊度为0.5mcf(约为1
×
108cfu/ml)。将各个菌株倍比稀释成为100cfu/ml。
95.(2)布鲁氏菌培养
96.不同种布鲁氏菌各取100μl菌液混匀后加入普通和选择性双相培养瓶中。双相培养瓶放入37℃二氧化碳培养箱中培养(co2含量为5-10％)，液相充分浸润固相4h后倾斜培养。隔日观察培养瓶的生长情况，同时轻摇培养瓶，使得液相均匀铺满固相表面。
97.(3)荧光定量检测
98.取固相生长的单菌落加入100μl生理盐水中制成菌悬液，取2μl菌悬液利用荧光定量试剂盒检测，按试剂盒说明配置体系，进行布鲁氏菌种鉴定。
99.(4)结果判定
100.双相培养瓶中，培养5d内可见液相部分浑浊，固相部分可见8个单菌落生长。单菌落呈圆形，直径1-2mm，边缘光滑，菌落呈光泽、半透明的浅黄色。
101.8个单菌落荧光定量检测fam通道均有扩增曲线，按试剂盒说明，均为羊种布鲁氏菌，阳性对照为羊种标准菌株菌落，fam通道也有扩增曲线，其余种通道均无扩增曲线。扩增
曲线见图2，共检测8个待测单菌落及1个羊种标准菌株菌落，扩增曲线为羊种布鲁氏菌曲线，与预期结果一致。
102.虽然，上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述，但在本发明基础上，可以对之做一些修改或改进，这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此，在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进，均属于本发明要求保护的范围。