专利名称：游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒及其制备方法
技术领域：
本发明涉及生物免疫检测领域，尤其是涉及一种将酶促化学发光技术与磁分离技 术相结合的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，本发明还涉及该试剂盒的制备方法。
背景技术：
人体甲状腺可以分泌有生理活性的甲状腺素(T4)和三碘甲状腺原氨酸(T3)及无 生理活性的反T3等。血浆中的T4来自甲状腺，而80-90%的T3和反T3是T4在外周组织 经脱去一个碘原子而生成的。血液中的T3和T4，以结合和游离两种形式存在。绝大部分的 甲状腺激素(T499.97%，Τ399.7%)可逆性的结合于血浆蛋白上，游离的甲状腺激素在血 中含量甚微，与蛋白结合的激素和微量游离激素处于动态平衡中，而正是这些微量的游离 激素才能进入靶组织细胞，与细胞中受体结合，发挥其生物学作用，它还在垂体部分反馈性 地调节促甲状腺激素(TSH)的分泌。结合型的甲状腺激素是没有生物学作用的，它对稳定 血中游离激素含量起着贮存与缓冲作用。Τ3分子量为651，大约25%由甲状腺直接产生，75%由Τ4在外周组织，主要在肝、 肾中经脱碘酶的作用形成，其每日周转率约为75%，甲状腺外循环总量约40 μ g，循环 血中T3的生物半寿期，即T1/2仅1天，在外周血液中，99. 6%与甲状腺结合球蛋白(TBG)及 白蛋白结合，一般不和甲状腺结合前白蛋(TBPA)结合，但当TBG浓度低时可与TBPA结合。 但血浆中的T3和蛋白质的结合能力相对于T4较弱，与TBG的亲和常数仅为T4的1/10。T3是目前已知生物活性最强的甲状腺激素，其生物活性为T4的3 5倍。外周组 织中约有80%的T4经脱碘酶的作用而生成T3。因此，有人提出T3是真正的甲状腺激素，而 T4可能是一种前激素。临床上一般将未与TBG等传输蛋白结合的T3称为游离T3，即FT3， 只有游离的T3具有代谢活性，而结合的则没有生理活性。大量的实验资料表明，测定血清T3是判断甲状腺功能亢进首选指标之一，特别是 T3毒血症患者的血清T4浓度正常，而T3却明显升高。因此，测定血清T3是临床诊断甲状 腺功能的一项重要指标。一般来讲，甲亢病人血清T3值会明显升高。在多数甲亢病例中，血 清T3的升高和血清T4升高相平行；而T3毒症，亦称T3性甲亢中，血清T4值在正常范围， 而仅T3升高。临床上常见到某些病人在发展成典型的甲状腺毒症前，先经过一个血清T3 水平升高阶段，说明测定血清T3对于诊断甲亢较测定血清T4更有意义。此外在甲亢病人 进行放射性碘或药物治疗过程中，血清T4降至正常，而血清T3仍高于正常，直至临床甲状 腺功能恢复正常，血清T3方降至正常水平；故测定血清T3又可作为判断疗效的可靠指标。因为T3在血液中的浓度变化快于T4且更明显，所以血液T3水平的测定也可用于 应答兴奋和抑制试验中以评价甲状腺机能。一般认为，在甲状腺强兴奋条件下，T3水平是 代表甲状腺功能的一项很好的指标。但某些疾病如肝硬变，蛋白质及热量营养不良时，血清T3可能降低；但只要甲状 腺功能正常，血清T4则在正常范围。所以，作为评定甲状腺功能低下的指标，测定血清T3 不如T4可靠。
近年来人们发现测定血清中游离甲状腺激素具有更重要的意义。虽然游离T3即 FT3在外周血中含量很低，仅占总T3的0. 3 %，但它可以通过细胞膜进入细胞与受体结合发 挥生理效应，因此它是甲状腺激素发生生理效应的真正活性部分，能比较确切地反映甲状 腺的功能状态及其它对人体机能的影响。一般甲亢病人血清FT3值明显升高。在多数甲亢病例中，血清FT3的升高和血清 FT4升高相平行。而T3毒症，亦称T3性甲亢中，血清FT4值在正常范围，而仅FT3升高。临 床上常见到某些病人在发展成典型的甲状腺毒症前，先经过一个血清FT3水平升高阶段， 进而说明测定血清FT3对于诊断甲亢较测定血清FT4更有意义。此外，在甲亢病人进行放 射性碘或药物治疗过程中，血清FT4降至正常，而血清FT3仍高于正常，直至临床甲状腺功 能恢复正常，血清FT3方降至正常水平。故测定血清FT3又可以作为判断疗效的可靠指标。从检测原理上来讲，目前临床上常用的检测游离三碘甲状腺原氨酸的方法主要是 竞争法。从检测技术上来讲，过去以放免为代表的早期FT3、FT4测定试剂盒受方法学的限 制，其灵敏度和抗干扰能力严重不足，存在很大的弊端，已基本上退出市场，目前应用较多 的为酶联免疫技术和化学发光技术。化学发光技术兴起于上个世纪80年代，是继酶联免疫 技术和放免技术之后发展起来的新兴技术，由于其高灵敏度、高特异性，同时方法简便、快 速，标记结合物稳定，无放射性同位素损伤和污染等特点，在近些年得到了飞速发展。免疫磁微粒技术是近几年的新兴技术，它是利用高分子合成一定粒度大小的磁性 固相微粒做载体，载体表面修饰有一定数量的化学功能团，通过化学偶联等方法包被上具 有特异性亲和力的免疫活性物质(抗原或抗体)，具有分离速度快、效率高、可重复性好、反 应均相等诸多优点。
发明内容
本发明的目的在于提供一种采用竞争法的反应原理，将酶促化学发光技术与磁分 离技术相结合，检测结果准确、使用简便快捷的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，本 发明还提供该试剂盒的制备方法。为实现上述目的，本发明可采取下述技术方案本发明所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，它包括包被有二碘甲状腺 原氨酸_明胶的磁微粒混悬液、游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品、辣根过氧化物酶标记 的游离三碘甲状腺原氨酸抗体、发光底物A液、发光底物B液及PBS缓冲液。所述包被有二碘甲状腺原氨酸-明胶的磁微粒混悬液中的磁微粒粒径为 0. 8-1. 5um，表面含有浓度为20-30ueq/g的羧基活性基团。所述游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品采用去激素血清为基质，加入三碘甲状腺 原氨酸纯品配制而成。所述辣根过氧化物酶标记的游离三碘甲状腺原氨酸抗体采用碳二亚胺标记法。所述发光底物A液由0.2M Tris-Hcl (三(羟甲基)氨基甲烷-盐酸缓冲液)、 0. 15mM Luminol (鲁米诺)、0. 59mM羟基香豆素、0. 35mM没食子酸组成。所述发光底物B液由0. 2M乙酸-乙酸盐缓冲液、0.85mM氨基酸氧化酶、0.8% tween 20 (表面活性剂)、0. 5mM DTPA (二乙烯三胺五乙酸)、0. 12mM维生素C组成。
所述浓缩洗液为加有稳定剂和表面活性剂的磷酸盐缓冲液(PBS缓冲液)。本发明所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒的制备方法，它包括下述步 骤第一步，包被有二碘甲状腺原氨酸_明胶的磁微粒混悬液的制备根据使用量取适量的羧基磁微粒，用过量的EDC (1- (3- 二甲氨基丙基)_3_乙基碳 二亚胺)和NHS (N-羟基琥珀酰亚胺)在酸性条件下(PH4. 5-PH5. 5)进行活化，活化时间 为30min，然后加磁场，静置，使磁微粒与液体分开，弃去上清，用PH为7. 6的0. OlM的磷酸 盐缓冲液(PBS缓冲液)洗去多余的活化剂；加入二碘甲状腺原氨酸一明胶，使其浓度为
0.2ul/mg磁微粒，在弱碱性条件下(PH7. 4-PH8. 4)震荡反应Ih ；反应结束后加磁场，静置使 磁微粒与液体分开，弃去上清，用含有1 %牛血清白蛋白的0. OlM的磷酸盐缓冲液(PBS缓冲 液)进行封闭；并用封闭液保存磁微粒，得到磁微粒浓度为0. 5mg/ml的混悬液；将该磁微 粒混悬液置于2-8度保存备用；第二步，游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品的制备用含有0.05%-0. 的NaN3(防腐剂)和0. 15%-0. 25%的PC300 (防腐剂)的去 激素血清将三碘甲状腺原氨酸纯品配制成标示浓度为0pmOl/l、2pmOl/l、5pmOl/l、10pmOl/
1、25pmol/l、50pmol/l的一系列校准品；第三步，辣根过氧化物酶标记的游离三碘甲状腺原氨酸抗体的制备采用碳二亚胺标记法先用活化剂(1-(3-二甲氨基丙基)-3-乙基碳二亚胺)EDC 将辣根过氧化物酶上的氨基活化，然后加入鼠抗游离三碘甲状腺原氨酸单克隆抗体，使抗 体上的羧基与活化过的氨基缩合为酰胺化合物，透析后既得三碘甲状腺原氨酸酶标抗体； 在标记好的溶液中，等比加入甘油-20度保存备用；第四步，发光底物A液的配制发光底物A 液由 0.2M Tris-Hcl.O. 15mM Luminol (鲁米诺)、0. 59mM羟基香豆素、 0. 35mM没食子酸配制而成。第五步，发光底物B液的配制发光底物B液由0. 2M乙酸-乙酸盐缓冲液、0. 85mM氨基酸氧化酶、0. 8% tween20、 0. 5mM DTPA、0. 12mM维生素C配制而成。第六步，PBS缓冲液的配制取NaH2P04 · 2H20,4. 06g ；Na2HP04 · 12H20,62. 32g ；NaCl, 175. 6g ；Tween20, 2-10ml ；蒸馏水，1000ml配制后得到20倍浓缩洗液。本发明的优点在于采用化学发光技术与免疫磁微粒技术相结合，以免疫磁微粒为 反应载体，由于磁微粒具有大的比表面积，因此大大增加了抗原的有效包被量，在节约原材 料的同时也显著提高了检测的灵敏度和检测速度。同时本发明采用了标记抗体包被抗原类 似物的方法，而该类似物与所测激素具有同等的免疫源性，因此能与该激素的抗体进行特 异性结合，但与甲状腺结合蛋白(THBP)的结合能力却大为降低，在很大程度上减小了结合 蛋白对测量系统的影响。
图1是本试剂盒的标准曲线线形图。
图2是本试剂盒与同类试剂盒临床对照图。
具体实施例方式本发明所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，包括包被有三碘甲状腺 原氨酸结构类似物(二碘甲状腺原氨酸，T2)-明胶的磁微粒混悬液，所述磁微粒粒径为 0. 8-1. 5um，表面含有浓度为20-30ueq/g的羧基活性基团；采用激素血清为基质，加入三碘 甲状腺原氨酸纯品配制而成的游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品；辣根过氧化物酶标记的 游离三碘甲状腺原氨酸抗体，采用碳二亚胺标记法；由0. 2M Tris-HcUO. 15mM Luminol, 0. 59mM羟基香豆素、0. 35mM没食子酸组成的发光底物A液；由0. 2M乙酸-乙酸盐缓冲液、 0. 85mM氨基酸氧化酶、0. 8% tween20、0. 5mM DTPA、0. 12mM维生素C组成的发光底物B液以 及添加有稳定剂和表面活性剂的PBS浓缩液。本发明游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒的制备方法，包括下述步骤第一步，包被有二碘甲状腺原氨酸_明胶的磁微粒混悬液的制备 根据使用量取适量的羧基磁微粒，用过量的EDC (1- (3- 二甲氨基丙基)-3-乙基碳 二亚胺)和NHS (N-羟基琥珀酰亚胺)在酸性条件下(PH4. 5-PH5. 5)进行活化，活化缓冲液 为0. 05M-0. IM的MES (2- (N-吗啉代)乙磺酸)缓冲液，活化时间为30min,然后加磁场，静 置5min使磁微粒与液体分开，弃去上清，用PH为7. 6的0. OlM的PBS缓冲液洗两遍以洗去 多余的活化剂；加入二碘甲状腺原氨酸_明胶，使其浓度为0. 2ul/mg磁微粒，在PBS缓冲液 中(PH7. 4-PH8. 4)震荡反应Ih ；反应结束后加磁场，静置5min使磁微粒与液体分开，弃去 上清，用含有牛血清白蛋白(BSA)的0. OlM的PBS缓冲液进行封闭，反复封闭5次，每 次IOmin ；封闭结束后，加入封闭液保存磁微粒，使磁微粒的最终浓度为0. 5mg/ml ；将该磁 微粒混悬液置于2-8度保存备用；第二步，游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品的制备用含有NaN3 (0. 05% -0. 1% )和 PC300 (0. 15% -0. 25% )的去激素血清依据临 床样本将三碘甲状腺原氨酸纯品配制成标示浓度为Opmol/1、2pmol/l、5pmol/l、lOpmol/1、 25pmol/l,50pmol/l的一系列校准品，瓶盖颜色依次为白、黄、绿、蓝、紫、黑；第三步，辣根过氧化物酶标记的游离三碘甲状腺原氨酸抗体的制备采用碳二亚胺标记法即先用活化剂EDC将辣根过氧化物酶上的氨基活化，然后 加入鼠抗游离三碘甲状腺原氨酸单克隆抗体，使抗体上的羧基与活化过的氨基缩合为酰胺 化合物，透析后既得三碘甲状腺原氨酸酶标抗体；在标记好的溶液中，等比加入甘油-20度 保存备用；将标记好的酶标抗体按照1 20000—1 50000的比例加入到含有 BSA(0. 5% -2% )和 PC300(0. 15% -0. 25% )的 PH 7. 4Tris-NaCl 缓冲液中，混合均勻，即 得到该试剂盒的酶结合物。第四步，发光底物A液的配制发光底物A 液由 0. 2M Tris-Hcl.O. 15mM Luminol、0. 59mM 羟基香豆素、0. 35mM 没 食子酸配制而成。第五步，发光底物B液的配制发光底物B液由0. 2M乙酸-乙酸盐缓冲液、0. 85mM氨基酸氧化酶、0. 8% tween20、0. 5mM DTPA、0. 12mM维生素C配制而成。第六步，PBS缓冲液的配制取NaH2P04 · 2H20,4. 06g ；Na2HP04 · 12H20,62. 32g ；NaCl, 175. 6g ；Tween20, 2-10ml ；蒸馏水，1000ml配制后得到20倍浓缩洗液。本发明所述试剂盒的使用操作程序如下1、样本采集采用正确医用技术收集血清(严重溶血或脂血的样本不能用于测定)，收集后的 样本在室温放置不可超过8小时；如果不在8小时内检测需将样本放置于2 8°C的冰箱 中；若需72小时以上保存或运输，则应冻存于-20°C以下，避免反复冻融。使用前恢复到室 温，轻轻摇动混勻；2、试验前准备①取1瓶浓缩洗液按标签上标识的稀释比例要求稀释备用；②将恒温箱或水浴锅温度调至37°C，待温度稳定后使用；③将磁微粒混悬液充分混勻至无肉眼可见沉淀。3、实验方法①取出一定量的反应容器，编号，根据实验要求加入50 μ 1校准品(或质控品/0 校准品/样本)；②摇勻磁微粒混悬液，每孔分别加入20 μ 1 ；③每孔分别加入酶标记物100 μ 1 ；④将反应容器内溶液混合均勻，37°C温育15分钟；⑤使用磁分离及洗涤设备，将反应容器中磁微粒用洗液洗涤5次；⑥将洗涤后的反应容器充分振荡使磁微粒散开；⑦每孔加入发光底物A和发光底物B各50 μ 1，振荡混勻后避光室温反应5分钟；⑧化学发光检测仪检测发光强度采用四参数拟合方式，以校准品浓度值为X轴，以校准品发光强度值为Y轴，建立 定标曲线。根据待测样本的发光强度值回算相应的浓度值。按照方法学鉴定，本试剂盒可达到如下指标标准曲线线性R大于0.999 (如图1所示)最低检出限0.2pmol/l精密性分析内变异、分析间变异及批间变异均小于10% (见表1)表1 精密性数据表a)分析内和分析间变异数据表
权利要求
一种游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，其特征在于它包括包被有二碘甲状腺原氨酸 明胶的磁微粒混悬液、游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品、辣根过氧化物酶标记的游离三碘甲状腺原氨酸抗体、发光底物A液、发光底物B液及磷酸盐缓冲液。
2.根据权利要求1所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，其特征在于所述 包被有二碘甲状腺原氨酸一明胶的磁微粒混悬液中的磁微粒粒径为0. 8-1. 5um，表面含有 浓度为20-30ueq/g的羧基活性基团。
3.根据权利要求1所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，其特征在于所述 游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品采用激素血清为基质，加入三碘甲状腺原氨酸纯品配制 而成。
4.根据权利要求1所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，其特征在于所述 辣根过氧化物酶标记的游离三碘甲状腺原氨酸抗体采用碳二亚胺标记法。
5.根据权利要求1所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，其特征在于所述 发光底物A液由0. 2M Tris-Hcl.O. 15mM Luminol、0. 59mM羟基香豆素、0. 35mM没食子酸组 成。
6.根据权利要求1所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，其特征在于所述 发光底物B液由0. 2M乙酸-乙酸盐缓冲液、0. 85mM氨基酸氧化酶、0. 8% tween 20、0. 5mM DTPA、0. 12mM维生素C组成。
7.根据权利要求1所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，其特征在于所述 浓缩洗液为加有稳定剂和表面活性剂的磷酸盐缓冲液。
8.根据权利要求1所述的游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒的制备方法，其特征 在于它包括下述步骤第一步，包被有二碘甲状腺原氨酸一明胶的磁微粒混悬液的制备根据使用量取适量的羧基磁微粒，用过量的EDC和NHS在酸性条件下进行活化，活化时 间为30min，然后加磁场，静置，使磁微粒与液体分开，弃去上清，用PH为7. 6的0. OlM的磷 酸盐缓冲液洗去多余的活化剂；加入二碘甲状腺原氨酸一明胶，使其浓度为0. 2ul/mg磁 微粒，在弱碱性条件下震荡反应Ih ；反应结束后加磁场，静置使磁微粒与液体分开，弃去上 清，用含有牛血清白蛋白的0. OlM的磷酸盐缓冲液进行封闭；并用封闭液保存磁微粒， 得到磁微粒浓度为0. 5mg/ml的混悬液；将该磁微粒混悬液置于2_8度保存备用；第二步，游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品的制备用含有0. 05% -0. 的NaN3和0. 15% -0. 25%的PC300的去激素血清将三碘甲状腺 原氨酸纯品配制成标示浓度为 0pmol/l、2pmol/l、5pmol/l、10pmol/l、25pmol/l、50pmol/l 的一系列校准品；第三步，辣根过氧化物酶标记的游离三碘甲状腺原氨酸抗体的制备采用碳二亚胺标记法先用活化剂EDC将辣根过氧化物酶上的氨基活化，然后加入鼠 抗游离三碘甲状腺原氨酸单克隆抗体，使抗体上的羧基与活化过的氨基缩合为酰胺化合 物，透析后既得三碘甲状腺原氨酸酶标抗体；在标记好的溶液中，等比加入甘油-20度保存 备用；第四步，发光底物A液的配制发光底物A液由0. 2M Tris-Hcl.O. 15mM Luminol、0. 59mM羟基香豆素、0. 35mM没食子酸配制而成。第五步，发光底物B液的配制发光底物B液由0. 2M乙酸-乙酸盐缓冲液、0. 85mM氨基酸氧化酶、0. 8% tween20, 0. 5mM DTPA、0. 12mM维生素C配制而成。 第六步，浓缩洗液的配制取 NaH2P04 .2H20，4. 06g ；Na2HP04 12H20，62. 32g ；NaCl, 175. 6g ；Tween20, 2-10ml ；蒸 馏水，1000ml配制后得到20倍浓缩洗液。
全文摘要
本发明公开了一种游离三碘甲状腺原氨酸定量检测试剂盒，包括包被有二碘甲状腺原氨酸-明胶的磁微粒混悬液、游离三碘甲状腺原氨酸系列校准品、辣根过氧化物酶标记的游离三碘甲状腺原氨酸抗体、发光底物A液、发光底物B液及PBS缓冲液。本发明还公开了该试剂盒的制备方法。本发明的优点在于采用化学发光技术与免疫磁微粒技术相结合，以免疫磁微粒为反应载体，增加了抗原的有效包被量，在节约原材料的同时也显著提高了检测的灵敏度和检测速度。采用了标记抗体包被抗原类似物的方法，因此能与该激素的抗体进行特异性结合，但与甲状腺结合蛋白的结合能力却大为降低，在很大程度上减小了结合蛋白对测量系统的影响。
文档编号G01N33/577GK101949942SQ20101024301
公开日2011年1月19日 申请日期2010年8月3日 优先权日2010年8月3日
发明者付光宇, 刘保鑫, 吴学炜, 渠海, 苗拥军, 陈晓玲, 项立红, 马建军, 高晓丹 申请人:郑州安图绿科生物工程有限公司