一种经过修饰的基因芯片探针、其制备方法及使用该基因芯片探针的微阵列芯片与流程

本发明涉及生物
技术领域：
，尤其涉及一种经过修饰的基因芯片探针、其制备方法及使用该基因芯片探针的微阵列芯片、检测方法。
背景技术：
：在基因芯片检测技术中，不同探针排列于固相载体上形成探针微阵列，利用双链dna分子在一定条件下可以实现变性-复性的特点，微阵列上的特异性探针与待测dna分子特异性结合，通过后续的显色及检测过程对发生结合的探针进行识别。基因芯片检测通量高，在多种基因联合检测方面具有优势，可以一次检测几种直至上百种不同基因。但这类检测技术一般需要昂贵的基因芯片以及专业的芯片配套设备，且因为价格昂贵，所以一直适用于对真核细胞的基因组dna进行检测，主要用于肿瘤检测、遗传变异检测、优生优育检测等方面。芯片微阵列上的特异性探针包括寡核苷酸探针，寡核苷酸探针是根据数据库中特定基因序列的保守序列部分设计并由人工合成的。通常要在寡核苷酸的5'末端进行修饰，以使其与芯片上的修饰基团进行化学反应，从而实现在固相载体表面固定探针分子。但是，探针分子在与固相载体固定后，探针分子在与dna特异性结合时由于存在空间位阻效应，仍需要进一步提高探针与dna结合的能力，尤其是针对长链dna的结合。同时，现有芯片大部分为科研用途，仅适用于对少量芯片或者芯片样品进行操作，难以满足批量芯片生产或者芯片应用。公开于该
背景技术：
部分的信息仅仅旨在增加对本发明的总体背景的理解，而不应当被视为承认或以任何形式暗示该信息构成已为本领域一般技术人员所公知的现有技术。技术实现要素：发明目的本发明的目的在于提供一种经过修饰的基因芯片探针、其制备方法及使用该基因芯片探针的微阵列芯片、检测方法。本发明经过修饰的基因芯片探针通过cn和polydt共同修饰的方式，有效减少了探针与pcr产物在特异性结合时的空间位阻效应。并且本发明中通过对各种原材料以及对众多工艺过程进行优化，建立了一整套采用普通玻片为起始材料，制备成低密度基因芯片，并建立了芯片杂交，显色以及结果识别的完整方法。解决方案为实现本发明目的，本发明实施例提供了一种经过修饰的基因芯片探针，其按照5’-3’的方向包括以下结构：5’修饰基团-cn-(dt)m-寡核苷酸链3’，其中：所述寡核苷酸链表示基因芯片探针的核苷酸序列本体，(dt)m表示m个dt，cn表示具有n个碳原子的直链烷基，所述5’修饰基团能与芯片固相载体本体表面修饰的基团发生化学反应形成共价键连接，8≤m≤15，5≤n≤15。在另一种可能的实现方式中，m＝10，n＝12。在另一种可能的实现方式中，所述基因芯片探针适用于短链pcr产物和长链pcr产物，优选为500-2000bp的长链pcr产物。在另一种可能的实现方式中，芯片固相载体本体表面的修饰为醛基化修饰，基因芯片探针上的修饰基团为氨基。本发明实施例还提供了一种使用上述基因芯片探针的微阵列芯片，其包括：经过修饰的芯片固相载体；和，上述经过修饰的基因芯片探针，所述基因芯片探针以阵列的方式分布并通过共价键连接于经过修饰的芯片固相载体的修饰基团上在另一种可能的实现方式中，所述芯片固相载体本体为普通二氧化硅载玻片。在另一种可能的实现方式中，微阵列芯片上每个检测探针占用3个相邻点样位点。本发明实施例还提供了一种使用上述基因芯片探针的微阵列芯片的制备方法，其包括以下步骤：1、修饰芯片固相载体本体使其能与上述基因芯片探针的修饰基团发生化学反应形成共价键连接；2、合成上述经过修饰的基因芯片探针；3、配制检测探针点样液并将检测探针点样液涡旋震荡混匀后，于芯片点样仪上以阵列的方式向经过修饰的芯片固相载体进行点样。在另一种可能的实现方式中，所述芯片固相载体本体为普通二氧化硅载玻片。在另一种可能的实现方式中，所述检测探针点样液含0.1-1％(g/v)聚乙烯醇(pva)、0.1-10mm上述经过修饰的基因芯片探针、其余为pbs缓冲液。在另一种可能的实现方式中，芯片固相载体本体的修饰为醛基化修饰，基因芯片探针上的修饰基团为氨基。在另一种可能的实现方式中，微阵列芯片上每个检测探针占用3个相邻点样位点。在另一种可能的实现方式中，在修饰芯片固相载体本体前，包括对芯片固相载体本体进行清洗和/或酸碱处理的步骤，在进行清洗和/或酸碱处理时使用了载玻片夹具，所述载玻片夹具包括：第一载玻片固定托座，其上下表面之间开设有螺纹通孔，并且其上下表面之间开设有载玻片固定通口；第二载玻片固定托座，其上表面开设有与载玻片固定通口位置相对应的载玻片固定槽；和，连接杆，所述连接杆的一端固定连接于第二载玻片固定托座的上表面使连接杆与第二载玻片固定托座相垂直，所述连接杆外表面设置有与螺纹通孔的螺纹相匹配的螺纹，连接杆的另一端穿过螺纹通孔将第一、第二载玻片固定托座固定连接；所述载玻片夹具的材质为耐酸、耐碱的材质。在另一种可能的实现方式中，还包括在芯片固相载体本体上点样阳性质控探针和阴性质控样品的步骤。本发明实施例还提供了一种使用上述微阵列芯片的检测方法，其包括以下步骤：1、带有生物素标记的pcr引物制备；2、带有生物素标记的pcr产物制备；3、带有生物素标记的pcr产物与上述微阵列芯片进行杂交；4、对微阵列芯片上的杂交产物进行显色；5、对显色结果进行检测；所述生物素标记的pcr引物与基因芯片探针中的寡核酸链的碱基互补。在另一种可能的实现方式中，pcr引物包括：适用于粪肠球菌的pcr引物或适用于白色念珠菌的pcr引物。在另一种可能的实现方式中，上述检测方法中，所述显色反应为碱性磷酸酶催化的斑点法显色反应。有益效果(1)相比于单独采用cn或polydt对探针进行修饰的方式，本发明实施例经过修饰的基因芯片探针通过采用cn和polydt共同修饰的方式，有效减少了探针与pcr产物在特异性结合时的空间位阻效应，2种修饰方式的结合起到了协同作用。(2)本发明实施例经过修饰的基因芯片探针既适用于短链pcr产物，也适用于长链pcr产物。当然，由于长链pcr产物与探针进行特异性结合时存在更大的空间位阻，采用一般的修饰方式时，探针与长链pcr产物的结合不理想，而本发明实施例经过cn和polydt共同修饰的基因芯片探针则十分适用于长链pcr产物，这样检测人员就可以实现对同一pcr产物的更多位点进行检测，即只进行一次pcr获得长链pcr产物，就可以对多个位点进行检测；而无需进行多次pcr获得多个短链pcr产物，才能对多个位点进行检测。(3)本发明实施例经过修饰的基因芯片探针中的修饰基团氨基与芯片固相载体本体上的醛基形成共价键，反应简单容易，可以使探针更紧密的与玻片表面结合，并且为探针的结合以及后续的杂交反应提供了较大的空间，适合于分子量较大的长链pcr产物的检测。(4)本发明实施例微阵列芯片的制备方法中采用1％pva作为芯片点样液，从而在玻片表面形成了网状结构，从而增大了探针和待测dna的杂交空间。(5)本发明实施例微阵列芯片的制备方法中采用普通的载玻片以及常规化学试剂为材料，经过加工，所制备的芯片成本远低于市售价格，并且片间性能差异较小。(6)本发明实施例微阵列芯片的制备方法中，可以实现同时对多个玻片进行表面处理，因为本发明实施例中提出了一种对载玻片进行批量浸泡处理的载玻片浸泡用夹具，本夹具采用2个载玻片固定托座固定载玻片两端而不是一端的方法，有利于克服多个载玻片不稳定的问题，解决了多个载玻片固定的问题。(7)本发明通过对各种原材料以及对众多工艺过程进行筛选比较，并进行了优化，最终建立了一整套采用普通玻片为起始材料，通过一系列技术处理，制备成针对多基因位点的低密度基因芯片，并建立了芯片杂交，显色以及结果识别的完整方法及工艺。本发明的优点在于可以对芯片的点样以及检测过程进行有效质量控制。本方法设计合成并设计了芯片阳性质控系统，从而对芯片点样过程，以及芯片检测过程进行质量控制。并确定了芯片阳性质控系统的点样探针的工作模式。本发明的优点在于检测结果稳定，芯片以及检测设备成本较低。本方法使用生物素-亲和素-碱性磷酸酶-tcib/nbt的显色系统，该系统显色信号稳定，信号值不会发生衰减降低，芯片检测结果可反复重现，不需要使用成本较高的荧光法的芯片检测设备，而仅需要可识别可见光普通芯片阅读仪即可识别，实验室使用成本更低。附图说明一个或多个实施例通过与之对应的附图中的图片进行示例性说明，这些示例性说明并不构成对实施例的限定。在这里专用的词“示例性”意为“用作例子、实施例或说明性”。这里作为“示例性”所说明的任何实施例不必解释为优于或好于其它实施例。图1是本发明实施例1-3的试验流程图。图2是本发明实施例1中载玻片夹具的结构示意图。图3是本发明实施例1中阳性质控系统形成的杂交体的示意图。图4是本发明实施例1中pcr引物及探针所需满足的相对位置结构示意图。图5是本发明实施例1中探针检测结果为阳性的示意图。图6是本发明实施例1中另一探针检测结果为阳性的示意图。具体实施方式为使本发明实施例的目的、技术方案和优点更加清楚，下面将对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整地描述，显然，所描述的实施例是本发明一部分实施例，而不是全部的实施例。基于本发明中的实施例，本领域普通技术人员在没有作出创造性劳动前提下所获得的所有其他实施例，都属于本发明保护的范围。另外，为了更好的说明本发明，在下文的具体实施方式中给出了众多的具体细节。本领域技术人员应当理解，没有某些具体细节，本发明同样可以实施。在一些实施例中，对于本领域技术人员熟知的原料、元件、方法、手段等未作详细描述，以便于凸显本发明的主旨。除非另有其它明确表示，否则在整个说明书和权利要求书中，术语“包括”或其变换如“包含”或“包括有”等等将被理解为包括所陈述的元件或组成部分，而并未排除其它元件或其它组成部分。基因芯片：以同时检测多个基因片段为目的的固相检测技术，一般将大量探针分子固定于支持物上(硅片，玻片，尼龙膜等)，并形成探针的分子点阵，探针与带荧光标记或者带生物素标记的dna分子进行杂交后再进行显色反应，通过检测每个探针分子杂交后的显色信号强度进而获取样本中包含的基因片段信息。载玻片：一种广泛使用的以二氧化硅为成分的玻璃制品。载玻片表面修饰：载玻片表面一般为sio2分子，本身没有生物活性。使用一系列实验室化学试剂处理，可以使载玻片表面携带特定化学反应基团，如羧基(-cooh)、氨基(-nh3)、醛基(-cho)等，这些修饰后的化学反应基团，可以参与后续的与探针的分子结合中。载玻片表面的醛基化修饰：通过使用一系列化学试剂对载玻片表面进行处理，在载玻片表面形成醛基基团，醛基基团并不一定必须直接与载玻片连接，中间可以有其他接枝，只要其远离载玻片的末端为醛基即可。醛基基团可以与探针上的氨基进行化学反应，形成共价键，从而实现在载玻片表面捕获固定探针分子的作用。微阵列：在核酸杂交的基础上发展起来的一项技术，通过在固相介质(玻片，硅片，尼龙膜等)表面将大量的已知基因探针，按照一定排列固定在载玻片表面，通过检测相应位置的杂交探针，实现基因信息的快速检测。dna探针：为长度在几十到上百碱基的单链或双链dna，在适当的ph值、温度和离子强度下，dna探针通过分子的变性、复性以及碱基互补配对，能与待测样本中的互补单链dna或rna以氢键结合，形成双链复合体。将未配对结合的物质洗去后，可用显色检测系统检测杂交反应结果。pcr：其是指聚合酶链反应，一种基因组dna的快速扩增富集技术，通过使用一对特异性的寡核苷酸片段，扩增反应用酶及体系，可以将一个dna分子快速放大，从而满足后续的基因组dna的检测需要。杂交：根据碱基互补配对原理，在一定条件下，固定在芯片表面的寡核苷酸dna探针与杂交液中的pcr产物链的序列进行特异性碱基配对结合。空间位阻：生物大分子的相互作用均需要一定的反应空间，当分子较大，以及反应空间较小时，生物分子的相互作用即受到抑制，表现为反应速率降低，反应时间延长，反应产物降低。碱性磷酸酶催化的斑点法显色反应：本发明中，碱性磷酸酶-链霉亲和素与带有生物素的pcr产物结合，进行显色反应。实施例11.醛基化修饰微阵列芯片载体的制备在本实施例中使用市售的常规二氧化硅载玻片作为微阵列芯片的芯片固相载体本体，其为普通的显微镜镜检用载玻片。该载玻片经过：清洗，酸碱处理，表面硅烷化处理，醛基化处理，清洗，形成表面带有醛基基团的微阵列芯片载体。具体制备过程如下：将普通载玻片(76mm×25mm×1.2mm)用去离子水清洗3遍晾干，去除吸附在载玻片表面的水溶性杂质。将载玻片浸入铬酸洗液浸泡过夜，取出后用去离子水冲洗干净，晾干，进一步去除载玻片表面的有机物等杂质。将载玻片浸入10mnaoh中浸泡过夜，取出后用去离子水冲洗干净，晾干。将载玻片浸入含有5％3-氨丙基三乙氧基硅烷(apes，硅烷化剂)的乙醇溶液中60分钟，取出后用去离子水冲洗干净，晾干。将载玻片浸入含有5％戊二醛的pbs溶液(ph7.4)中60分钟，取出用pbs溶液清洗并晾干。将制备的载玻片于2-8℃真空避光保存，即为醛基化修饰的微阵列芯片。载玻片浸泡时，应避免载玻片相互黏连，可以将载玻片放置于专用的载玻片夹具中，载玻片的夹具应耐酸，耐碱。在本发明实施例的上述步骤中，使用的是特氟龙材料制备的专用载玻片夹具。如图2所示，本发明实施例使用的载玻片夹具包括：第一载玻片固定托座1，其上下表面之间开设有螺纹通孔11，并且其上下表面之间开设有载玻片固定通口12；第二载玻片固定托座2，其上表面开设有与载玻片固定通口12位置相对应的载玻片固定槽21；和，连接杆3，所述连接杆3的一端固定连接于第二载玻片固定托座2的上表面使连接杆3与第二载玻片固定托座2相垂直，所述连接杆3外表面设置有与螺纹通孔11的螺纹相匹配的螺纹，连接杆3的另一端穿过螺纹通孔11将第一、第二载玻片固定托座固定连接；所述载玻片夹具的材质为耐酸、耐碱的材质。在本发明实施例的载玻片夹具中，第一载玻片固定托座1通过转动可以在连接杆3上下旋动以调节第一、第二载玻片固定托座的间距，从而使多组玻片能够被稳固的固定；并且还能调节载玻片固定通孔的相对位置。通过设计第一、第二载玻片固定托座的大小以及载玻片固定通口的数量，可以一次对大量的载玻片进行批量浸泡。在上述实施例中，可选地，所述耐酸、耐碱的材质为特氟龙材质。在本发明实施例的载玻片夹具中，选用的特氟龙材质为耐酸、耐碱材质中最常被使用到的材质。在上述实施例中，可选地，第二载玻片固定托座2的下表面设置有支撑部4。在本发明实施例的载玻片夹具中，支撑部的设置4使得第二载玻片固定托座2与桌面保持一定距离，防止载玻片被桌面上的物品污染。2.氨基化修饰长链探针的设计与合成本发明实施例中所使用的探针修饰方式具有更好的杂交效果，探针采用5'氨基-c12-dt(n＝10)–探针寡核苷酸链-3’的方式进行修饰，修饰的氨基通过一个具有10个dttp(三磷酸胸腺嘧啶脱氧核苷酸)的长链和12个碳原子的长链与探针核苷酸序列本体进行桥联，从而形成一个长链探针，以消除杂交时存在的空间位阻效应。长链探针由于具有较长的臂能与载玻片表面固定连接，对于克服长链pcr产物的杂交以及酶促显色时产生的空间位阻有一定的优势，信号值明显提高。基因芯片探针中的寡核酸链部分，要求与待杂交的带有生物素标记的pcr产物链碱基互补，长度一般为15-30核苷酸左右，退火温度为40-60℃之间，且应该属于基因序列的保守区域，合成的探针应为page纯或者hplc纯。探针的合成可以按照上述设计，委托探针合成公司根据现有技术进行合成。在上述实施例中，将氨基修饰的基因芯片探针设计为正链dna或者负链dna均可以实现基因芯片的检测功能。3.微阵列芯片的制备以反向杂交为例说明微阵列芯片的制备：配制检测探针点样液并将检测探针点样液涡旋震荡混匀后，于芯片点样仪上以阵列的方式向经过修饰的芯片固相载体进行点样，所述检测探针点样液含0.5％(g/v)聚乙烯醇(pva)、5mm上述经过修饰的基因芯片探针、其余为pbs缓冲液。点样结束后，将载玻片放置于饱和kci溶液中，室温密封过夜固定，使检测探针与载玻片充分结合，可以将固定后的载玻片真空封口，能于2-8℃避光保存6-12个月。每个芯片上除了上述待检的探针点样位置，还应分别设置阳性质控探针点样位置和阴性质控样品点样位置，形成一个低密度芯片的微阵列，以表1中的示例进行解释说明。芯片的一个微阵列杂交区域为(5-8)×(5-8)mm2，其中待检探针每个探针占用3个位点，即相当于设置3个平行。表1以20种不同来源的dna探针为例说明微阵列芯片的探针点样布局：1列2列3列4列5列6列7列8列9列10列1行ppp111222n2行ppp333444n3行ppp555666n4行ppp777888n5行ppp999101010n6行ppp111111121212n7行ppp131313141414n8行ppp151515161616n9行ppp171717181818n10行ppp191919202020n其中：p为芯片阳性质控探针；n为阴性质控探针；1-20分别为20种不同来源的dna探针。芯片的微阵列杂交区域，并不局限于(5-8)×(5-8)mm2，以及对探针布局的阵列并不局限于10行×10列的布局，而是可以根据所检测的基因数量或者目标物数量的具体需要而设计。4.芯片的阳性质控系统和阴性质控：阳性质控系统由芯片阳性质控的点样探针以及生物素修饰的dna模板组成，其中dna模板的寡核苷酸链序列应与探针的寡核苷酸链序列为碱基互补配对，且探针的寡核苷酸链序列与待检测的基因不发生非特异性结合，例如人临床样本检验用的芯片，可以使用来自植物基因组的保守序列或者使用随机设计的寡核苷酸序列。本发明实施例中选用的细菌、真菌通用的阳性质控的点样探针序列和dna模板的序列如下：其中，阳性质控的点样探针为：5’nh3-ttttttttttccacatcaggttatgccttgc，其中，阳性质控对应的dna模板序列为：5’biotin-gcaaggcataacctgatgtgg，dna模板采用生物素修饰，寡核苷酸序列与探针碱基序列互补。阳性质控的点样探针序列和dna模板序列都要经过修饰，但由于本发明实施例中选用的阳性质控的点样探针序列和dna模板的结合能力强，信号值强，因此无需像检测待测样品的探针那样进行修饰，桥联部分相对短也可以，具体修饰的方式为：5'氨基-dt(n＝10)-探针寡核苷酸链-3’，通过5’氨基基团使探针与芯片表面的醛基基团结合。阳性质控的dna模板结构为：5'生物素-寡核苷酸链。在芯片杂交反应时，则形成载玻片-寡核苷酸双链-生物素的杂交体，可以进行后续显色反应。阳性质控系统形成的杂交体的示意图如图3所示。本方法所述的芯片的阳性质控系统的结构及组成，不仅仅适用于酶促显色的生物芯片，同样适用于采用荧光信号检测技术的生物芯片。本方法所述的阴性质控品，为采用不含探针的无核酸酶水，或者0.1％bsa，配制成点样缓冲液。5.带有生物素标记的pcr引物以及pcr产物制备pcr引物的生物素标记：在所检测基因的一条pcr引物的5'末端，采用生物素标记，对其基本要求为所述生物素标记的pcr引物的核苷酸序列与氨基修饰的检测探针的核苷酸序列必须互补，以使探针能与带有生物素标记的pcr产物结合，如图4所示，图4是pcr引物及探针的相对位置示意图，并不规定实际距离的远近。该类引物的合成及标记可以由大多数合成公司完成，要求为page或者hplc纯化。将生物素标记的pcr引物与配对的另一侧pcr引物配制成常规pcr反应体系，pcr扩增条件为：预变性，95℃，5分钟；pcr循环，变性95℃30秒，退火50-60℃30秒，延伸72℃10-120秒，共30-35个循环；pcr循环结束后，延伸72℃5分钟。推荐的pcr扩增条件为：预变性95℃5分钟；pcr循环：变性95℃10秒，退火55℃15-30秒，延伸72℃10-120秒，共30-35个循环；pcr循环结束后，延伸72℃5分钟。除采用常规pcr反应体系外，采用不对称pcr扩增，即将含生物素标记的pcr引物与配对的另一侧pcr引物的含量比为10：1，或者梯度pcr扩增，也可以取得同样的检测效果。6.pcr产物与微阵列芯片的杂交反应取出芯片后，室温平衡5-10分钟，去除载玻片表面残留的水汽后进行芯片的杂交。芯片的杂交过程可使用商品化的玻片专用的杂交围栏作为杂交池进行杂交反应，也可以使用商品化的全自动化的芯片杂交仪进行，也可以使用常规实验室设备(载玻片离心机，恒温振荡器)进行杂交操作。以下提供了芯片杂交反应需要涉及的试剂与反应条件：将100微升预杂交液(含有50mm乙醇胺的tbst缓冲液)滴加到载玻片的微阵列杂交区域，浸泡10分钟；芯片杂交：将100微升步骤5所得pcr产物与杂交液(含有25％甲酰胺的2-5×ssc缓冲液)充分混合，混合液滴加于芯片表面的杂交区域上，55℃杂交60分钟，杂交时间长短取决于pcr产物的长度，pcr产物的片段越长，需要的时间越长。芯片清洗：使用80-500微升磷酸缓冲液对对芯片杂交区域进行清洗2-3次以对芯片表面进行清洗。7.碱性磷酸酶催化的斑点法显色反应在芯片的杂交反应区域，加入80-200μl碱性磷酸酶标记的链霉亲和素(1：1000体积稀释)，37℃孵育15分钟，再加入200微升磷酸缓冲液清洗1-3次去除未结合的酶。加入100μl含0.03％bcip/0.015％nbt，2％dmf的显色液，37℃孵育5-30分钟，酶与显色液反应，在结合位置形成一种不溶于水的深紫色沉淀物。碱性磷酸酶-链霉亲和素与带有生物素的pcr产物结合，进行显色反应。加入200μl磷酸缓冲液清洗1-2次，终止显色反应。本方法所述的pcr产物与芯片的杂交及显色反应，并非唯一的杂交及显色方式，采用其他的杂交及显色系统如使用不同的化学试剂以及对用量进行优化，均可实现基因芯片的检测目的。8.检测结果的识别方法使用具有识别紫色斑点的全自动或者半自动化的芯片阅读装置，即可对反应结果进行判读。本方法所述的检测结果的识别方法，并不指定特定厂家的检测设备，具有一定的实验室常规设备如保温设备，混匀设备，放大镜，相机等即可实施。使用全自动化的设备可以更高效的完成芯片结果的判断。以根据表1设计的微阵列芯片为例，通过芯片阅读装置识别3列阳性质控点的位置，并以之为参考，判断其他测量的位点的探针的杂交情况。另外，该示例并不特定限定阳性质控探针的位置，根据实验以及所检测的目标物的数量将探针及质控系统排列至合适的位置，即可对检测结果进行识别。根据表1的微阵列芯片设计，每个探针均设置3次重复，当每个探针至少有2个以上位置均为阳性时，则判断该探针检测结果阳性。使用按照表1的微阵列芯片设计获得的微阵列芯片进行检测，检测结果如图5所示，该检测结果代表第17条探针位置的检测结果阳性。同理，使用按照表1的微阵列芯片设计获得的微阵列芯片进行检测，检测结果如图6所示，该检测结果代表第1，4，5，8，9，12，13，16，17，20探针位置的反应结果为阳性，其中最后一列(第10列)为阴性和阳性质控品间隔设置。实施例2采用粪肠球菌特异性探针的细菌芯片在醛基化的二氧化硅载玻片上，采用8×12微阵列形式按照实施例1中的方法制备细菌芯片，将粪肠球菌探针、芯片阳性质控探针、细菌通用探针，革兰氏染色阳性探针，革兰氏染色阴性探针点样于对应的微阵列位置上。1列2列3列4列5列6列7列8列9列10列11列12列a行p1p1p1⑴⑴⑴⑵⑵⑵⑶⑶⑶b行p1p1p1⑷⑷⑷⑸⑸⑸⑹⑹⑹c行p1p1p1⑺⑺⑺⑻⑻⑻⑼⑼⑼d行p1p1p1⑽⑽⑽⑾⑾⑾⑿⑿⑿e行p1p1p1⒀⒀⒀⒁⒁⒁⒂⒂⒂f行p1p1p1⒃⒃⒃⒄⒄⒄⒅⒅⒅g行p1p1p1p2p2p2g+g+g+g-g-g-h行p1p1p1nnnnnnnnn其中不同编号对应的项目：芯片位点编号对应项目分类结果(1)鲍曼不动杆菌位点革兰氏阴性阳性/阴性p1阳性质控位点——阳性p2细菌通用位点——阳性/阴性g+革兰氏阳性菌位点革兰氏阳性阳性/阴性g-革兰氏阴性菌位点革兰氏阴性阳性/阴性n阴性质控位点——阴性粪肠球菌探针分别采用两种形式，i为常规的5’氨基-dt(n＝10)-寡核苷酸链探针，ii为本发明设计的5’氨基-c12-dt(n＝10)-寡核苷酸链探针，具体为粪肠球菌特异性探针i:5-nh3-dt(n＝10)-tcgttagtacatgaacgtcccctg。粪肠球菌特异性探针ii：5-nh3-c12-dt(n＝10)-tcgttagtacatgaacgtcccctg。分别将两种不同的粪肠球菌探针点样及固定，加入经生物素标记的粪肠球菌16s长链pcr扩增产物(1500bp，该产物pcr扩增时使用的是普通上游引物agagtttgatcctggctcag和生物素标记的下游引物本体ggytaccttgttacgactt，在常规pcr体系中进行)进行芯片杂交，按照实施例1中的方式进行碱性磷酸酶促反应显色后，将芯片水平放入芯片识读仪(型号：bd-2.0，厂家：上海百傲科技股份有限公司)芯片槽内，条码一面朝上，运行芯片扫描程序，对芯片各位点的结果进行扫描，对2种探针产生信号值进行测试比较。在芯片阳性质控探针、阴性质控探针、细菌通用探针、革兰氏染色阳性探针、革兰氏染色阴性探针的结果均相符的情况下，采用5’氨基-dt(n＝10)-寡核苷酸链探针(i)的粪肠球菌芯片检测结果中，三个点样位点的粪肠球菌特异性探针信号值分别为126、112、116，采用5’氨基-c12-dt(n＝10)-寡核苷酸链探针(ii)的粪肠球菌芯片检测结果中，三个点样位点的粪肠球菌特异性探针的信号值分别为186，187，191。其中采用常规的dt(n＝10)修饰的粪肠球杆菌特异性探针(i)位点的信号值要显著低于采用c12-dt(n＝10)修饰的粪肠球杆菌特异性探针(ii)。因此本发明所采用的探针修饰方法对于长链pcr产物的芯片杂交信号要优于常规的探针修饰方式。实施例3采用白色念珠菌探针的真菌芯片在醛基化的二氧化硅载玻片上，采用4×9微阵列形式按照实施例1中的方法制备真菌芯片，将白色念珠菌探针、芯片阳性内控探针、真菌通用探针，点样于对应的微阵列位置上。123456789ap1p1p1①①①②②②bp1p1p1③③③④④④cp1p1p1⑤⑤⑤⑥⑥⑥dp1p1p1nnnp2p2p2其中不同编号对应的项目：白色念珠菌探针分别采用3种形式，i为常规的5’氨基-dt(n＝10)-寡核苷酸链探针，ii为5’氨基-c12-寡核苷酸链探针，iii为本发明设计的5’氨基-c12-dt(n＝10)修饰的白色念珠菌特异性探针。具体为白色念珠菌特异性探针：i：5-nh3-dt(n＝10)-gcatgctgctctctcggg；ii：5-nh3-c12-gcatgctgctctctcggg；iii：5-nh3-c12-dt(n＝10)-gcatgctgctctctcggg。分别将三种不同的探针点样及固定，加入经生物素标记的白色念珠菌长片段pcr扩增产物(1500bp，该产物pcr扩增时使用的是普通上游引物atcaataagfggaggaaag和生物素标记的下游引物本体ctctggcttcaccctattc，在常规pcr体系中进行)进行芯片杂交，按照实施例1中的方式进行碱性磷酸酶促反应显色后，将芯片水平放入芯片识读仪(型号：bd-2.0，厂家：上海百傲科技股份有限公司)芯片槽内，条码一面朝上，运行芯片扫描程序，对芯片各位点的结果进行扫描，对2种探针产生信号值进行测试比较。在芯片阳性内控探针、阴性质控探针、真菌通用探针的结果均相符的情况下，采用5’氨基-dt(n＝10)-寡核苷酸链探针(i)的白色念珠菌芯片检测结果，其中白色念珠菌特异性探针的信号值分别为87，85，72。采用5’氨基-c12-寡核苷酸链探针(ii)的白色念珠菌芯片检测结果，其中白色念珠菌特异性探针的信号值分别为49，54，51。采用5’氨基-c12-dt(n＝10)-寡核苷酸链探针(iii)的白色念珠菌芯片检测结果，其中白色念珠菌特异性探针的信号值分别为180，175，189，信号值比探针i和ii的检测结果高1-2倍。因此本发明所采用的探针修饰方法对于长链pcr产物的芯片杂交信号要优于常规的探针修饰方式。最后应说明的是：以上实施例仅用以说明本发明的技术方案，而非对其限制；尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，本领域的普通技术人员应当理解：其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等同替换；而这些修改或者替换，并不使相应技术方案的本质脱离本发明各实施例技术方案的精神和范围。当前第1页12