一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法与流程

1.本发明涉及食品贮藏技术领域，具体涉及一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法。
技术背景
2.纹党参以根部通体产生环状横纹而得名，其基原是桔梗科党参属植物素花党参(codonopsis pilosula nannf.var.modesta(nannf.)l.t.shen)，主产于甘肃省文县地区。素花党参、党参和川党参同为《中国药典》党参药材，事实上，因基原的不同，党参药材性状存在一定的差异，比如以素花党参为基原的纹党参具有较多的支根，且主根通体具有环纹，而党参和川党参支根较少而直，无支根或少支根。除此之外，党参、纹党参和川党参在药效成分上也具有显著差异。兰州大学党参研究团队建立了活性成分低聚糖的hplc-elsd指纹图谱(见图1)，结果表明低聚果糖的比例在三个品种中不同。《甘肃省统计年鉴(2019年)》数据显示，甘肃党参当年种植面积达84万亩，年产量约6万吨。纹党参作为药食同源的中药材食用时，其干药材因口感以及加工形态的限制，极大的限制了其在食品领域的使用，且有研究表明，随着放置时间的延长，新鲜纹党参中浸出物、多糖和总黄酮含量逐渐下降(见图2)。而新鲜纹党参药材因具有更好的口感、风味独特、营养丰富、保健功能显著、食用和加工方便等特点，而深受人们青睐。但纹党参的最佳采收期非常集中，且采收后的新鲜纹党参各种酶活性较强，含水量高，呼吸强度大，营养成分消耗快，若不及时加工处理，易出现失水、软化、组织褐变、老化以及因细菌或病毒侵染而腐烂等品质衰败问题。采后保鲜贮藏技术难关已成为鲜纹党参在市场上流通的瓶颈。
3.经查阅，有关党参保鲜贮藏的专利技术已有2篇。cn104528178a公开了一种党参的保质气调贮藏方法，该方法是将采收的鲜党参收集，剔除其中残次品，再放入蜂蜜水中浸泡进行预处理，然后进行晾晒，晾晒完成后将党参收集装柜移入气调库，调整气体成分贮藏。该方法对党参和环境均无污染，但保鲜时间较短，也没有相关数据证实采用该方法是否能够保证党参的原有药效成分，无法满足市场需求。cn103300456a提出一种党参速冻保鲜方法，将采收的党参于24小时内清洗，于速冻机中-30℃、30min内制成速冻品后，最后将速冻品用高阻隔复合塑料袋抽空冲气包装。该方法可使鲜党参在低温(-15℃)条件下贮存，但温度过低贮藏会对党参产生冷冻伤害破坏党参的组织结构，导致有效成分和营养成分流失，对党参的口感也会造成影响，解冻后党参组织变软，也会降低其商品价值。并且以上专利注重的是物理性状的保鲜，对于党参在贮藏过程中活性成分、生理变化、气味变化及微生物群落的变化并未进行考察，因此，采用以上保鲜技术是否会对党参药用和食用价值造成影响仍需要进一步研究。
4.气调贮藏在果蔬保鲜中被认为是最有效果的保鲜方法之一，北京君合百安仓储有限责任公司研制的气调剂，含有铁粉、盐、活性炭等成分，可调节环境内气体浓度，营造抑制霉菌生长繁殖的环境，同时能够抑制产品氧化变色，保持水分不散失，一般5g气调剂可用于在20mm*15mm大小的pe/pa复合袋中，已在大宗药材当归、甘草等药材中投入使用，并且仅在干药材中使用，并未有人将其应用于鲜纹党参保鲜中。壳聚糖为天然多糖甲壳素脱除部分
乙酰基的产物，可在产品面形成一层具有半透性的透明薄膜，减弱其呼吸作用，对革兰氏阴性菌和革兰氏阳性菌有一定的抑制作用；纳他霉素为天然、广谱、高效、安全的多烯烃大环内酯类抗真菌剂，能有效抑制大多数霉菌、酵母菌和真菌的生长。通过查阅大量文献可知，壳聚糖保鲜剂在果蔬中保鲜用量一般为1～3％纳他霉素保鲜剂在果蔬中保鲜用量一般为0.03～0.12％。这两种保鲜剂复合处理能够对细菌、真菌和酵母均具有抑制作用，已广泛用于番茄、葡萄、苹果、桑葚、香菇、芦笋、樱桃的防腐保鲜，但是将其应用于纹党参保鲜中是否会具有同样或类似保鲜效果，仍未有人研究。
5.因此，本发明是针对纹党参品种开发一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，首次将气调剂、壳聚糖和纳他霉素进行复合处理，以延长纹党参贮藏时间，且在贮藏期能保持纹党参原有色泽、口感、气味、生理及药用品质，从而解决新鲜纹党参因季节和地域性而无法销售的难题。


技术实现要素：

6.针对上述存在的技术局限性，本发明提出了一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法；采用此种采后纹党参保鲜工艺能够在贮藏期100d保证采后纹党参感官、理化、营养和风味品质不变，并且抑制了腐败微生物的产生，克服了

背景技术：
中提到的不足和缺陷。
7.为实现上述目的，本发明采用了以下技术方案：
8.本发明的发明点是提供了一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，是将新鲜纹党参筛选清洗预冷后，以含有壳聚糖和纳他霉素的复合保鲜液浸泡，之后以气调的方法在-4℃～12℃温度下贮藏。
9.可选地，上述的一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，包括以下步骤：s1.新鲜纹党参的筛选及清洗；s2.将步骤s1得到的清洗后新鲜纹党参置于-1℃～1℃充分预冷24h；s3.将步骤s2预冷后的新鲜纹党参置于复合保鲜液中浸泡，复合保鲜液是由浓度为0.15％-0.25％的壳聚糖和浓度为0.03％-0.07％的纳他霉素复配得到，浸泡时间为1-3min；s4.制备气调保鲜袋；s5.将步骤s3复合保鲜液浸泡后的新鲜纹党参装入步骤s4得到的气调袋并加入气调剂；s6.将步骤s5得到的装有新鲜纹党参的气调袋热封后置于-4℃～12℃温度下进行贮藏。
10.分别于贮藏期内对党参相关生理指标和品质指标进行检测和分析，将数据消除量纲后，通过多指标ahp-critic综合评分法和正交实验分析结果比较不同保鲜工艺获得的党参中各指标测定结果，优化采后党参最佳保鲜工艺，具体流程如图3所示。
11.可选地，上述的一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，所述步骤s1中，是将党参采挖后，筛选外观完好、根条肥壮、无虫蛀霉变、无破损、形态大小相近的新鲜纹党参，洗净，沥干表面水分。
12.可选地，上述的一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，所述步骤s2中，预冷温度为0℃。
13.可选地，上述的一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，所述步骤s3中，复合保鲜液是由浓度为0.20％的壳聚糖和浓度为0.07％的纳他霉素复配得到，浸泡时间为2min。
14.可选地，上述的一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，所述步骤s4中，是取厚度0.1mm、大小为20cm
×
45cm的pa/pe保鲜袋，在左右两侧各打8对孔径为0.1mm的孔，即可得到气调保鲜袋。
15.可选地，上述的一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，所述步骤s5中，是将步骤s3复合保鲜液浸泡后的新鲜纹党参置于步骤s4的气调保鲜袋中，每袋180-220g，再加入3-10g气调剂，将袋内空气排空后，在150℃、101.325kpa的条件下热封2-4s即可得到包装好的党参。
16.可选地，上述的一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，所述步骤s6中，包装好的党参置于4℃温度下进行贮藏。
17.可选地，上述的一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，所述步骤s5中，是将步骤s3复合保鲜液浸泡后的新鲜纹党参置于步骤s4的气调保鲜袋中，每袋200g，再加入5g气调剂，将袋内空气排空后，在150℃、101.325kpa的条件下热封3s即可得到包装好的党参。
18.与现有技术相对比，本发明具有以下优点：本发明提供了一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，首次将气调剂、壳聚糖和纳他霉素保鲜剂复合保鲜应用于中药纹党参的保鲜贮藏中。从感官品质、有效成分、生理品质、气味变化和腐败微生物等方面全方位、多角度考察该技术对纹党参的保鲜效果。采用正交实验设计法和ahp-critic综合评分法获得采后纹党参的最佳保鲜工艺，所使用的保鲜剂用量低于大部分果蔬用量范围，耗资较少。本发明让纹党参贮藏期得以大幅延长，并且可以保证纹党参在贮藏100d内不出现软化、褐变和霉变，保证纹党参的感官、生理、药用和食用品质基本不变。同时，该工艺在贮藏末期还能够较好的维持采后纹党参原有糖类成分、营养成分、气味物质和微生物群落结构，让纹党参在贮藏期间未受到腐败微生物的侵害。该工艺对采后纹党参理化、营养和风味品质有协同增效作用，可以在保证鲜纹党参疗效的前提下最大限度地对纹党参进行保鲜。方法操作简单易行，对纹党参和环境均不会造成污染，具有广阔的应用前景。
附图说明
19.图1为不同品种党参低聚糖的指纹图谱(a和b党参，c和d素花党参，e和f川党参)。
20.图2为新鲜纹党参活性成分随放置时间的变化。
21.图3为纹党参保鲜技术流程图。
22.图4为不同温度、气调剂、壳聚糖和纳他霉素浓度对采后纹党参感官品质的影响。
23.图5为不同温度、气调剂、壳聚糖和纳他霉素浓度对采后纹党参失重率的影响。
24.图6为室温及最佳保鲜工艺处理下贮藏期间纹党参挥发性风味化合物变化的gallery plot指纹图谱。
25.图7为pca分析结果图。
26.图8为不同处理样品在门水平上相对丰度的变化。
27.图9为不同处理样品在属水平上相对丰度的变化。
28.图10微生物pcoa(2d)分析。
29.图11为新鲜样品和最佳保鲜工艺处理贮藏末期纹党参多糖、低聚糖含量变化。
30.图12为新鲜样品及最佳保鲜工艺处理贮藏末期纹党参蛋白质、脂肪和膳食纤维含
量变化。
具体实施方式
31.为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚明了，下面对本发明进行进一步详细说明。但是应该理解，此处所描述仅仅用以解释本发明，并不用于限制本发明的范围。
32.除非另有定义，本文所使用的所有的技术术语和科学术语与属于本发明的技术领域的技术人员通常理解的含义相同，本文中在本发明的说明书中所使用的术语只是为了描述具体的实施例的目的，不是旨在限制本发明。本文中所使用的试剂和仪器均商购可得，所涉及的表征手段均可参阅现有技术中的相关描述，本文中不再赘述。
33.为了进一步了解本发明，下面结合最佳实施例对本发明作进一步的详细说明。实施例1
34.一种鲜纹党参的采后保鲜贮藏方法，包括以下步骤：s1.将党参采挖后，筛选外观完好、根条肥壮、无虫蛀霉变、无破损、形态大小相近的新鲜纹党参，洗净，沥干表面水分；s2.将步骤s1得到的清洗后新鲜纹党参置于-1℃充分预冷24h；s3.将步骤s2预冷后的新鲜纹党参置于复合保鲜液中浸泡，复合保鲜液是由浓度为0.10％的壳聚糖和浓度为0.01％的纳他霉素复配得到，浸泡时间为1min；s4.取厚度0.1mm、大小为20cm
×
45cm的pa/pe保鲜袋，在左右两侧各打8对孔径为0.1mm的孔，即可得到气调保鲜袋；s5.将步骤s3复合保鲜液浸泡后的新鲜纹党参置于步骤s4的气调保鲜袋中，每袋180g，再加入3g气调剂，将袋内空气排空后，在150℃、101.325kpa的条件下热封2s即可得到包装好的党参；s6.包装好的党参置于-12℃温度下进行贮藏。实施例2
35.具体保鲜贮藏过程与实施例1相同，所不同之处在于：
36.步骤s2中，是将清洗后的新鲜纹党参置于1℃充分预冷24h；
37.步骤s3中，复合保鲜液是由浓度为0.30％的壳聚糖和浓度为0.09％的纳他霉素复配得到，浸泡时间为3min；
38.步骤s5中，是将步骤s3复合保鲜液浸泡后的新鲜纹党参置于步骤s4的气调保鲜袋中，每袋220g，再加入15g气调剂，将袋内空气排空后，在150℃、101.325kpa的条件下热封4s即可得到包装好的党参；
39.步骤s6中，包装好的党参置于20℃温度下进行贮藏。实施例3
40.具体保鲜贮藏过程与实施例1相同，所不同之处在于：
41.步骤s2中，是将清洗后的新鲜纹党参置于0℃充分预冷24h；
42.步骤s3中，复合保鲜液是由浓度为0.20％的壳聚糖和浓度为0.05％的纳他霉素复配得到，浸泡时间为2min；
43.步骤s5中，是将步骤s3复合保鲜液浸泡后的新鲜纹党参置于步骤s4的气调保鲜袋中，每袋200g，再加入5g气调剂，将袋内空气排空后，在150℃、101.325kpa的条件下热封3s
即可得到包装好的党参；
44.步骤s6中，包装好的党参置于4℃温度下进行贮藏。实验例1
45.单因素实验：
46.1、材料：
47.(1)试材采自甘肃省陇南市文县中寨镇哈西沟村，为四年生素花党参，样品采收后带土立即运回实验室(运输1-2天)。
48.2、保鲜方法：
49.党参采挖后，筛选外观完好、根条肥壮、无虫蛀霉变、无破损、形态大小相近的新鲜纹党参，洗净，沥干表面水分，在0℃冷库中充分预冷24h。以不做任何处理，pa/pe微孔保鲜袋密封后在25℃恒温恒湿箱下贮藏为对照(ck)。
50.(1)不同温度保鲜实验：将预冷后的鲜纹党参随机分成5组，称重后放入pa/pe微孔保鲜袋中，将袋内空气挤出，密封后分别在20℃、12℃、4℃、-4℃、-12℃条件下贮藏。
51.(2)不同质量气调剂保鲜实验：将预冷后的鲜纹党参随机分成5组，称重后放入pa/pe微孔保鲜袋中，分别加入采用3，5，10，12，15g的气调剂，将袋内空气挤出，密封后在25℃恒温恒湿箱下贮藏。气调剂购自君合百安仓储科技(北京)有限公司，全称为中药材仓储气氛调控剂(通用型)。
52.(3)不同浓度壳聚糖保鲜实验：将预冷后的鲜纹党参随机分成5组，采用0.1％，0.15％，0.2％，0.25％，0.3％的壳聚糖溶液浸泡党参2min，沥干，称重后放入pa/pe微孔保鲜袋中，将袋内空气挤出，密封后在25℃恒温恒湿箱下贮藏。
53.(4)不同浓度纳他霉素保鲜实验：将预冷后的鲜纹党参随机分成5组，采用0.01％，0.03％，0.05％，0.07％，0.09％的纳他霉素溶液浸泡党参2min，沥干，称重后放入pa/pe微孔保鲜袋中，将袋内空气挤出，密封后在25℃恒温恒湿箱下贮藏。
54.3、相关指标测定：
55.贮藏期内分别于第3、6、9、12d内对党参感官评分和失重率进行测定，初步筛选最佳温度、气调剂、壳聚糖和纳他霉素用量。
56.(1)感官评分：
57.贮藏期间按照样品感官品质的变化动态，一定时间从每个处理中随机取18根党参样品，分别从色泽、气味、硬度和口感方面进行统计和分级评价。ⅰ级对应于25～21分，ⅱ级对应于20～16分，ⅲ级对应于15～10分，ⅳ级10分以下，若出现严重霉变腐烂现象，则视为已经失去贮藏价值，感官评分计为0，具体见表1。综合评分＝色泽(分数)+气味(分数)+硬度(分数)+口感(分数)。
58.表1为采后党参感官评分标准。
59.表1
60.(2)失重率
61.称量各袋样品贮藏前后的质量变化来计算样品失重率，计算公式如(i)。
[0062][0063]
式中：m1为贮藏前的质量，g；m2为贮藏后的质量，g。
[0064]
4、实验结果：
[0065]
(1)温度、气调剂、壳聚糖和纳他霉素对采后党参感官品质的影响：
[0066]
将采后党参分别进行保鲜处理后，在贮藏第3、6、9、12d对其感官品质进行评分，结果如图4所示。
[0067]
从图4a中可以看出，在贮藏时间相同的条件下，采后党参的感官评分随着贮藏温度的增加呈现先上升后下降的趋势。以感官评分为指标，最适温度为4℃。
[0068]
从图4b中可以看出，在贮藏时间相同的条件下，采后党参的感官评分随着气调剂质量的增加呈现先上升后下降的趋势。以感官评分为指标，气调剂最适质量为5g。
[0069]
从图4c中可以看出，在贮藏时间相同的条件下，采后党参的感官评分随着壳聚糖保鲜液浓度的增加呈现先上升后下降的趋势。以感官评分为指标，壳聚糖保鲜液最适浓度为0.20％。
[0070]
从图4d中可以看出，在贮藏时间相同的条件下，采后党参的感官评分随着纳他霉素保鲜液浓度的增加呈现先上升后下降的趋势。以感官评分为指标，纳他霉素保鲜液最适浓度为0.07％。
[0071]
(2)温度、气调剂、壳聚糖和纳他霉素对采后党参失重率的影响：
[0072]
将采后党参分别进行保鲜处理后，在贮藏第3、6、9、12d对其失重率进行测定，结果如图5所示。
[0073]
从图5a中可以看出，在贮藏时间相同的条件下，采后党参的失重率随着贮藏温度的增加呈现先下降后上升的趋势。以失重率为指标，最适温度为4℃。
[0074]
从图5b中可以看出，在贮藏时间相同的条件下，采后党参的失重率随着气调剂质量的增加呈现先下降后上升的趋势。以失重率为指标，气调剂最适质量为5g。
[0075]
从图5c中可以看出，在贮藏时间相同的条件下，采后党参的失重率随着壳聚糖保鲜液浓度的增加呈现先下降后上升的趋势。以失重率为指标，壳聚糖保鲜液最适浓度为0.20％。
[0076]
从图5d中可以看出，在贮藏时间相同的条件下，采后党参的失重率随着纳他霉素保鲜液浓度的增加呈现先下降后上升的趋势。以失重率为指标，纳他霉素保鲜液最适浓度
为0.07％。
[0077]
综上，以感官评分和失重率为指标，采后党参最适贮藏温度为4℃，最适气调剂质量为5g，最适壳聚糖浓度为0.20％，最适纳他霉素浓度为0.07％。实验例2
[0078]
正交实验设计和相关指标测定：
[0079]
1、材料：
[0080]
同实验例1。
[0081]
2、保鲜方法：
[0082]
通过单因素试验筛选出最佳温度、气调剂用量、壳聚糖和纳他霉素浓度的基础上，以温度、气调剂、壳聚糖、纳他霉素为实验因素，每个因素各设计3个水平，选择l9(34)正交表安排实验，见表2和表3。在贮藏第0、20、60、100d时对采后党参感官评分、失重率、
·o2-产生速率、h2o2、mda含量、sod、cat、ppo、pod、pme、pg、cx、β-glu活性、党参炔苷、紫丁香苷、苍术内酯ⅲ、总黄酮、总酚含量和dpph自由基清除率共19项指标进行检测，每组重复3次，探讨不同保鲜处理采后党参生理和贮藏品质的变化，揭示党参在贮藏过程中发生软化、褐变和衰老的机制，确定复合保鲜工艺的最佳配比。
[0083]
表2为党参保鲜正交l9(34)设计表。表3为正交l9(34)实验分组表。
[0084]
表2
[0085]
表3表3
[0086]
3、相关指标测定
[0087]
(1)感官评分：
[0088]
同实验例1。
[0089]
(2)失重率：
[0090]
同实验例1。
[0091]
(3)
·o2-产生速率测定：
[0092]
实验步骤参考王鸿飞《果品蔬菜贮藏与加工》的方法。以相当于超氧阴离子的物质的量(μmol)为横坐标(x)，a530 nm值为纵坐标(y)，得标准曲线y＝5.1232x-0.0006(r2＝0.9998)。以每分钟每克鲜重样品产生的超氧阴离子的物质的量作为超氧阴离子产生速率，表示为nmol/(min
·
g)。计算公式如(ii):
[0093][0094]
式中，n为标准曲线查得的溶液中超氧阴离子的物质的量(μmol)；v为样品提取液的体积(ml)；vs为测定时所取样品提取液的体积(ml)；t为样品与羟胺反应的时间(min)；m为样品鲜重(g)。
[0095]
(4)h2o2含量：
[0096]
实验步骤参考曹建康《果蔬采后生理生化实验指导》的方法。以相当于h2o2量(μmol)为横坐标(x)，a415 nm值为纵坐标(y)，得标准曲线y＝0.0775x+0.0003(r2＝0.9991)。以每克鲜重组织中所含h2o2的量作为h2o2含量，表示为μmol/g，计算公式如(iii)：
[0097][0098]
式中，c为标准曲线查的样品中h2o2浓度(μmol)；vt为样品提取液总体积(ml)；v1为测定时所用样品提取液体积(ml)；fw为样品鲜重(g)。
[0099]
(5)细胞壁降解酶活性测定：
[0100]
果胶甲酯酶(pme)、聚半乳糖醛酸酶(pg)、纤维素酶(cx)和β-葡萄糖苷酶(β-glu)活性测定参考曹建康《果蔬采后生理生化实验指导》的方法。以葡萄糖的量为横坐标(x)，a540 nm值为纵坐标(y)，得标准曲线y＝0.6335x-0.0068(r2＝0.9992)。
[0101]
pg酶活性单位定义为每1g鲜重每1h释放1mg半乳糖醛酸所需酶量为一个酶活力单位(u/g fw)。pme酶活性单位定义为每1g鲜重每1h释放1mg半乳糖醛酸所需酶量为一个酶活力单位(u/g fw)。cx酶活性单位定义为每1g鲜重每1h释放1mg还原糖所需酶量为一个酶活力单位(u/g fw)。β-glu酶活性单位定义为每1g鲜重每1h释放1mg还原糖所需酶量为一个酶活力单位(u/g fw)。
[0102]
(6)其他生理指标测定：
[0103]
丙二醛(mda)含量、超氧化物歧化酶(sod)活性、过氧化氢酶(cat)活性、酚氧化酶(ppo)活性和过氧化物酶(pod)活性参考检测试剂盒说明书测定。
[0104]
(7)党参炔苷、紫丁香和苍术内酯ⅲ成分含量测定：
[0105]
1)供试品溶液制备：
[0106]
取鲜纹党参粉末4g，精密称定，置具塞锥形瓶中，加入甲醇50ml，超声提取45min，放冷，过滤，水浴浓缩至干，随后用甲醇复溶至2ml，摇匀，0.45μm滤膜过滤，即得待测样品储备液。按色谱条件进样分别测定苍术内酯ⅲ和紫丁香苷。精密吸取待测样品储备液200μl，加入甲醇稀释定容至1ml，摇匀，0.45μm滤膜过滤即为待测样品，按色谱条件进样测定党参炔苷。
[0107]
2)标准曲线的绘制：
[0108]
党参炔苷标准曲线：以党参炔苷作为对照品，配制成浓度为1.042mg/ml的党参炔苷储备液。随后用甲醇将其稀释为32.56、65.13、130.25、260.50、521.00、1042.00μg/ml系列梯度的党参炔苷对照品溶液。色谱条件：乙腈：水＝26:74，流速1.0ml
·
min-1
，检测波长267nm，柱温30℃，进量样10μl，以对照品浓度为横坐标(x)，峰面积为纵坐标(y)绘制回归方程为y＝8.5547x+65.207(r2＝0.9993)。
[0109]
紫丁香苷标准曲线：以紫丁香苷作为对照品，配制成浓度为1.044mg/ml的紫丁香苷储备液。随后用甲醇将其稀释为6.53、13.05、26.10、52.20、104.40μg/ml系列梯度的紫丁香苷对照品溶液。色谱条件为：流动相为乙腈(a)-0.2％乙酸水溶液(b)，梯度洗脱，洗脱程序为：0～10min，10％(a)；10～20min，15％(a)；20～30min，10％(a)，流速1.0ml
·
min-1
，检测波长220nm，柱温30℃，进量样20μl，以对照品浓度为横坐标(x)，峰面积为纵坐标(y)绘制回归方程为y＝90.613x+75.282(r2＝1)。
[0110]
苍术内脂ⅲ标准曲线：以苍术内脂ⅲ作为对照品，配制成浓度为1.238mg/ml的苍术内脂ⅲ储备液。随后用甲醇将其稀释为0.31、1.24、6.19、30.95、309.50、619.00、1238.00μg/ml系列梯度的苍术内脂ⅲ对照品溶液。色谱条件为乙腈：水＝71:29，流速1.0ml
·
min-1
，检测波长220nm，柱温30℃，进量样20μl，以对照品浓度为横坐标(x)，峰面积为纵坐标(y)绘制回归方程为y＝43.536x+18.169(r2＝0.9999)。
[0111]
(8)总黄酮、总酚含量和dpph自由基清除能力测定：
[0112]
1)供试品溶液制备：
[0113]
精密称取鲜纹党参冻干粉2g，置于150ml具塞锥形瓶中，以25ml 70％乙醇为溶剂超声提取2次，每次30min，滤液抽滤至100ml容量瓶中，定容至刻度，摇匀，以微孔滤膜滤过，得续滤液即为供试品溶液。
[0114]
2)标准曲线的绘制：
[0115]
总黄酮标准曲线：精密称取105℃干燥至恒重的芦丁标准品约2mg，适量无水乙醇溶解，无水乙醇定容至10ml，摇匀，得到浓度为0.2000g/l的芦丁标准品储备液，4℃储存备用。精密量取芦丁对照品溶液0.4，0.8，1.2，1.6，2.0，2.4ml分别置于10ml量瓶中，各加水至2.4ml，加5％亚硝酸钠溶液0.4ml，摇匀，放置6min，加10％的硝酸铝0.4ml，摇匀，再放置6min，加4％氢氧化钠溶液4ml，再加水至刻度，摇匀，放置15min，制得芦丁浓度依次为0.008，0.016，0.024，0.032，0.040，0.048g/l的对照品溶液。以a505 nm值为纵坐标(y)，浓度为横坐标(x)，得标准曲线为y＝9.6571x-0.0164，(r2＝0.9991)。
[0116]
总酚标准曲线：精确称取没食子酸标准品1mg，用水溶解并定容至10ml，摇匀，取1ml用蒸馏水稀释8倍，制成0.0125g/l的对照品标准溶液。精确吸取标准品溶液0.8，1.6，2.4，3.2，4.0，4.8ml分别置于10ml量瓶中，各加蒸馏水至2.0ml，混匀，加福氏试剂1ml，3min后，加10％ na2co3溶液2ml，用水稀释至10ml，30℃水浴加热30min后，取出，摇匀，制得没食子酸浓度依次为0.0010，0.0020，0.0030，0.004，0.005，0.006g/l的对照品溶液。以a765 nm值为纵坐标(y)，浓度为横坐标(x)，得标准曲线为y＝217.31x+0.0761，(r2＝0.9991)。
[0117]
3)样品测定：
[0118]
总黄酮含量测定：精密量取上述供试品溶液2ml，按标准曲线项下操作，测定吸光度，根据标准曲线计算样品中总黄酮含量。
[0119]
总酚含量测定：精密量取上述供试品溶液1.5ml，按标准曲线项下操作，测定吸光度，根据标准曲线计算样品中总酚含量。
[0120]
dpph自由基清除率测定：取dpph 4mg，置于100ml量瓶中，无水乙醇定容至刻度，得0.1mmol/l贮备液，于4℃下放置，备用。移取供试品溶液100μl及贮备液2ml，置于同一试管中，摇匀，暗室中反应30min，在517nm波长下测定吸光度值as。移取贮备液2ml与无水乙醇100μl，置于同一试管中，摇匀，测定混合溶液的吸光度ab。移取无水乙醇2ml与供试品溶液100μl，置于同一试管中，测定混合溶液的吸光度ac，计算清除率，公式如(iv):
[0121][0122]
4、实验结果：
[0123]
采用l9(34)正交表对复合保鲜工艺进行优化，在贮藏第0、20、60、100d对采后党参的感官评分、失重率、
·o2-产生速率、h2o2、mda含量、sod、cat、ppo、pod、pme、pg、cx、β-glu活性、党参炔苷、紫丁香苷、苍术内酯ⅲ、总黄酮、总酚含量和dpph自由基清除率共19项指进行测定。结果如表4所示，与第0d相比，9组不同保鲜处理的采后党参随着贮藏时间的增加，感官评分、党参炔苷、紫丁香苷、苍术内酯ⅲ、总黄酮、总酚含量和dpph自由基清除率逐渐降低，
·o2-产生速率、h2o2、mda含量逐渐升高，sod、cat、ppo、pod、pme、pg、cx、β-glu活性整体呈现先上升后下降的趋势。其中s4、s5、s6组可很大程度上保持采后党参的感官评分，延缓失重率的上升，维持了采后党参较好的感官品质，减少了活性氧和mda含量，提高sod和cat活性，并且抑制了ppo、pod、pg、pme、cx和β-glu的活性，减缓了采后党参炔苷、紫丁香苷、苍术内酯ⅲ、总黄酮、总酚含量、dpph自由基清除率的下降，因此可有效减轻采后党参褐变、软化和衰老的程度，更好的保持采后党参的药用品质和抗氧化能力。
[0124]
不同保鲜处理对采后党参各指标的影响如表4所示。
[0125]
表4
实验例3
[0126]
ahp-critic综合评分法筛选采后党参最佳保鲜工艺：
[0127]
ahp-critic是主观层次分析法与客观赋权法组合赋权的方法，它既可避免主观的随意性又可增加各指标的内在联系，是目前中药领域研究中最常见的主客观集成赋权法。
[0128]
1、ahp法确定权重：
[0129]
本实验选取的指标有19项，分别为感官评分、失重率、
·o2-产生速率、h2o2、mda含量、sod、cat、ppo、pod、pme、pg、cx、β-glu活性、党参炔苷、紫丁香苷、苍术内酯ⅲ、总黄酮、总酚含量和dpph自由基清除率，19项指标的优先顺序为：感官评分＝失重率》
·o2-产生速率＝h2o2含量＝mda含量》sod活性＝cat活性》ppo活性＝pod活性＝pg活性＝pme活性＝cx活性＝β-glu活性》党参炔苷含量＝紫丁香苷含量＝苍术内酯ⅲ含量＝总黄酮含量＝总酚含量＝dpph自由基清除率。根据上述19个指标的优先顺序，采用9分标度法，赋予各项指标相对评分，构建两两(指标)比较的优先判断矩阵，见表5。
[0130]
根据表5的评分结果，通过ahp得到感官评分、失重率、
·o2-产生速率、h2o2、mda含量、sod、cat、ppo、pod、pme、pg、cx、β-glu活性、党参炔苷、紫丁香苷、苍术内酯ⅲ、总黄酮、总酚含量和dpph自由基清除率的权重系数(见表6)。最大特征根λmax＝18.988，cr＝0.000《0.1，表示表中所建立的判断矩阵具有良好的一致性，所得权重系数合理有效。
[0131]
2、critic法确定权重：
[0132]
本研究同时采用critic法确定各指标间的权重。对比强度以标准差δj来体现，冲突性以指标间相关性为基础，以的形式来体现，其中r
ij
为评价指标i和j之间的相关系数。设cj表示第j个指标所包含的信息量，则cj可表示为j＝1，2，3，4，
…
，cj越大则第j个指标所包含的信息量越大，则该指标的相对重要性也就越大，所以第j个指标的客观权重wj应为将表4中19项指标第20、60、100d结果的平均值进行去量纲化，其中，感官评分、sod、cat活性、党参炔苷、紫丁香苷、苍术内酯ⅲ、总黄酮、总酚含量和dpph自由基清除率为正向指标进行正向化处理，失重率、
·o2-产生速率、h2o2、mda含量、ppo、pod、pme、pg、cx、β-glu活性为负向指标进行负向化处理，将得到数据定义为xi，根
据spss 22.0软件处理数据，计算各指标的客观权重(wj)，得到19项指标的权重系数(见表6)。
[0133]
3、ahp-critic混合加权法确定权重：
[0134]
ahp-critic混合加权法的综合权重计算公式如(v)：
[0135][0136]
指标成对比较判断优先矩阵结果如表5所示。
[0137]
按照公式计算得19项指标综合权重见表6。
[0138]
表5
[0139]
表6指标ahp权重值critic权重值ahp-critic混合权重感官评分19.916％5.79％23.80％失重率20.195％3.50％14.59％o2声生速率6.731％4.51％6.26％h2q2含量6.731％3.66％5.08％mda6.731％4.47％6.21％sod4.039％4.39％3.66％cat4.039％3.34％r2.78％ppo-2.886％4.40％2.62％pod2.886％5.19％3.09％pg2.886％4.46％2.66％pme2.886％4.14％2.47％cx2.886％6.37％3.79％β-glu2.886％3.18％1.89％党参炔苷2.524％15.62％8.14％紫丁香苷2.524％4.39％2.29％苍术内酯iii2.524％3.92％2.04％总黄酮2.244％6.33％2.93％
总酚2.244％6.22％2.88％dpph清除率2.244％6.12％2.83％
[0140]
根据3种赋权法所得的综合评分，进行两两问的相关性分析，ahp法和critic法相关性不显著，说明二者所反映信息不具有叠加性，ahp法和混合加权法的相关性显著(p＜0.05)。相比而言，ahp-critic混合加权法从主、客观两方面考虑，所体现的信息更为全面，较单一的方法更加科学、合理。
[0141]
4、综合评分结果：
[0142]
用ahp-critic混合加权法计算得到的权重系数，对实验结果进行综合评分比较，结果见表7，综合得分越高，说明其贮藏品质越好。综合评分计算公式如(vi)：
[0143]
综合评分＝∑(xi
×
wij)
×
100
ꢀꢀ
(vi)。
[0144]
表7为不同保鲜处理综合评分结果。
[0145]
表7
[0146]
5、正交实验结果分析：
[0147]
以党参综合评分为考察指标，正交试验设计优化采后党参最佳保鲜工艺，正交试验结果见表8。
[0148]
表8为正交实验设计结果。
[0149]
表8试验号abcd综合评分s1111139.19s2122238.29s3133336.75s4212384.00s5223190.93s6231269.82s7313223.82s8321328.11s9332139.55k1114.23147.01137.12169.67k2244.75157.33161.84131.93k391.48146.12151.5148.86k138.084945.7156.56k281.5852.4453.9543.98k330.4948.7150.549.62最佳组合2221r51.093.748.2412.58
[0150]
由表8分析可知，极差最大的为a因素，影响采后党参贮藏品质的主次因素为a＞d
＞c＞b，即在一定范围内，温度对采后党参贮藏品质的影响最大，其次是纳他霉素浓度、壳聚糖浓度和气调剂用量。各因素最佳组合为a2b2c2d1，即温度为4℃、气调剂用量为5g，壳聚糖浓度为0.20％，纳他霉素浓度为0.05％。对确定工艺进行3次验证性实验，综合得分平均值为91.97，相对标准偏差为1.84％，结果稳定，高于正交试验中每次试验的测定结果，说明该工艺切实可行。
[0151]
为了进一步确定各因素对采后党参贮藏品质的影响，对表8结果进行方差分析和显著性检验，由于b因素的r值最小，将其作为空白列进行计算，结果见表9。由表9可以看出，贮藏温度对结果的影响显著，壳聚糖浓度和纳他霉素浓度对结果并无显著影响。
[0152]
表9为正交实验结果方差分析。
[0153]
表9因素平方和df均方fp截距22546.024122546.0241742.0620.001
**
a4560.52522280.263176.1890.006
**
c102.753251.3773.970.201d238.2212119.119.2030.098残差25.884212.942
[0154]
注：*p＜0.05**p＜0.01。实验例4
[0155]
最佳保鲜工艺贮藏下党参挥发性化合物的变化：
[0156]
1、材料：
[0157]
新鲜纹党参样品(s0)、最佳保鲜工艺贮藏第60d党参样品(lcnm60)、最佳保鲜工艺贮藏第100d党参样品(lcnm100)、室温贮藏第3d党参样品(rt3)、室温贮藏第6d党参样品(rt6)。
[0158]
2、方法：
[0159]
(1)仪器：flavour风味分析仪(气相-离子迁移谱)，德国gas公司。
[0160]
(2)样品处理：样品取1g置于20ml顶空瓶中，60℃孵育15分钟后进样。
[0161]
(3)gc-ims条件：自动顶空进样器：进样体积500ul，孵育时间15min，孵育温度60℃，分析时间为20min。色谱柱：mxt-wax(30m
×
0.53mm
×
1μm)，柱温：60℃；载气/漂流气：高纯氮气(99.999％)；漂移器流速：150ml/min；载气流速：2ml/min(0～2min)、2～10ml/min(2～10min)、10～100ml/min(10min～20min)；离子迁移管温度：45℃；进样针温度：85℃。
[0162]
3、实验结果：
[0163]
采用gc-ims从采后党参中共鉴定出50种已知挥发性化合物(包括11个醇、21个醛、7个酮、9个酯、1个噻吩、1个醚)和38种未知挥发性化合物。
[0164]
图6显示为室温及最佳保鲜工艺处理下贮藏期间党参挥发性风味化合物变化的gallery plot指纹图谱。
[0165]
其中，1)图中每一行代表一个样品中选取的全部信号峰；2)图中每一列代表同一挥发性有机物在不同样品中的信号峰；3)从图中可以看出每种样品的完整挥发性有机物信息以及样品之间挥发性有机物的差异。
[0166]
指纹图谱为2种不同贮藏方法与新鲜纹党参的挥发性化合物对比，结合后面的pca
图可将其分为2组，s0、lcnm60和lcnm100为一组，rt3和rt6为一组。图中黄色区域物质在s0组中浓度最高，主要已知挥发性化合物有：z-(3)-己烯醇、戊醛、2，3-丁二酮，e-2-辛醛、乙酸丁酯等。图中红色区域物质在s0、lcnm组样品中浓度较一致，且高于rt组样品，主要已知挥发性化合物有：e-2-己烯醛、2-甲基丁醛、1-戊烯-3-酮、己醛、e-2-戊醛、1-戊烯-3-醇、辛醛等。结果表明，在rt贮藏过程中，以上13种挥发性化合物浓度逐渐降低，而lcnm保鲜组可较好的保持新鲜素花党参中13种挥发性化合物的浓度，一定程度上保持新鲜纹党参的特征风味。图中紫色区域物质在rt3、rt6中浓度较高，在s0、lcnm组中浓度较低或几乎没有，主要已知挥发性化合物有：2-丁酮、二甲基硫醚、异丁烯醛、2-甲基丙醛、己酸甲酯、苯甲醛、异戊酸丁酯、1-辛烯-3-醇、(e)-2-庚醛、乙酸甲酯、丁醛、乙醇、庚醛、丙酸乙酯、2，5-二甲基噻吩、乙偶姻、乙酸乙酯和己酸乙酯等。上述物质名称以谱图中英文名称为主，中文名称仅供参考。
[0167]
与gallery plot的结论一致，由图7可知pca分析均可将2种贮藏方式区分开。样品相近则代表差异小，相隔远则代表组分差异明显。结果显示，最佳保鲜工艺(lcnm组)处理后的风味物质与新鲜纹党参更为相近，对维持采后党参风味更佳。实验例5
[0168]
最佳保鲜工艺贮藏下纹党参微生物群落的变化：
[0169]
1、材料：同实验例4。
[0170]
2、方法：
[0171]
新鲜纹党参16s r rna的测序工作由上海欧易生物医学科技有限公司完成。按照dna提取试剂盒(magpure soil dna kf kit)方法法提取样本的基因组dna，采用琼脂糖凝胶电泳(nanodrop，agarose gel)对提取的dna浓度和纯度进行质量检测，使用无菌水将样本dna浓度调整至1ng/μl。以上述基因组dna为模板，使用带barcode的特异性引物和akara公司的takara ex taq高保真酶进行pcr扩增，其中16s v3-v4区(前端引物：343ftacggraggcagcag；后端引物：798r agggtatctaatcct)。回收、纯化，然后洗脱，pcr产物使用电泳检测(于1％琼脂糖凝胶孔中，120v恒压电泳15min)，检测后使用磁珠纯化，纯化后作为二轮pcr模板，并进行二轮pcr扩增，并再次使用电泳检测，检测后使用磁珠纯化，纯化后对pcr产物进行qubit定量。根据pcr产物浓度进行等量混样，并基于illumina miseq测序平台进行高通量测序。
[0172]
3、结果
[0173]
(1)5组样品在门水平上微生物群落的变化见图8，由图8可知，优势菌群在门水平下受贮藏方式的影响的变化规律不同。s0组以变形杆菌门(proteobacteria)、放线杆菌门(actinobacteriota)、拟杆菌门(bacteroidota)、厚壁菌门(firmicutes)、粘球菌门(myxococcota)、酸杆菌门(acidobacteriota)为主，经不同保鲜处理后(rt组、lcnm组)，微生物群落占比发生变化。除粘球菌门(myxococcota)外，不同组之间中优势菌群在门水平上差异并不显著(p《0.05)。在rt组中，厚壁菌门占比先增加后减少，拟杆菌门整体占比增加，放线杆菌门、粘球菌门和酸杆菌门整体占比减少，变形杆菌门占比几乎无明显变化。室温放置下拟杆菌门逐渐成为优势群落。在lcnm组中，放线杆菌门、粘球菌门整体占比减少，拟杆菌门、厚壁菌门整体占比增加，酸杆菌门占比先增加后减少，变形杆菌门占比几乎无明显变化。最佳保鲜条件下拟杆菌门、厚壁菌门、酸杆菌门逐渐成为优势群落。
[0174]
(1)5组样品在门属平上微生物群落的变化见图9，由图9可知，优势菌群在属水平下受贮藏方式的影响的变化规律不同。s0组以假单胞菌属(pseudomonas)、拉恩氏菌属(rahnella1)、根瘤菌属(allorhizobium-neorhizobium-pararhizobium-rhizobium)、拟杆菌属(bacteroides)、北极土地杆菌属(pedobacter)、生丝微菌属(hyphomicrobium)、拟杆菌门(拟杆菌目)(muribaculaceae)、分枝杆菌属(mycobacterium)、鞘脂菌属(sphingobium)、酸杆菌属(acidibacter)、鞘氨醇杆菌属(sphingorhabdus)、慢生根瘤菌属(bradyrhizobium)为主，经不同保鲜处理后(rt组、lcnm组)，微生物群落占比发生变化。除根瘤菌属(allorhizobium-neorhizobium-pararhizobium-rhizobium)、酸杆菌属(acidibacter)、鞘氨醇杆菌属(sphingorhabdus)、慢生根瘤菌属(bradyrhizobium)外，不同组之间中优势菌群在属水平上差异并不显著(p《0.05)。在rt组中，假单胞菌属、拉恩氏菌属、根瘤菌属、拟杆菌属、北极土地杆菌属、生丝微菌属、鞘脂菌属整体占比增加，拟杆菌门(拟杆菌目)、分枝杆菌属、酸杆菌属、鞘氨醇杆菌属、慢生根瘤菌属整体占比减少。室温放置下假单胞菌属、根瘤菌属、鞘氨醇杆菌属逐渐成为优势群落。在lcnm组中，假单胞菌属、拉恩氏菌属、拟杆菌属、拟杆菌门(拟杆菌目)整体占比增加，根瘤菌属、北极土地杆菌属、分枝杆菌属、鞘氨醇杆菌属、酸杆菌属、鞘氨醇杆菌属、慢生根瘤菌属整体占比减少，生丝微菌属整体呈先增加后减少。最佳保鲜条件下假单胞菌属、拉恩氏菌属、拟杆菌属、拟杆菌门(拟杆菌目)逐渐成为优势群落。
[0175]
pcoa分析见图10。为研究不同贮藏方式处理下，样本物种组成结构的相似性，利用加权unifrac距离(加权unifrac distance)来对样本进行主坐标分析(principal codinates analysis，pco a)。第一坐标(pco1)解释了asv水平下细菌群落结构14.68％的变异(p》0.05)；第二坐标(pc2)解释了asv水平下细菌群落结构13.4％的变异，可以看出s0组与lcnm组群落结构相似，说明lcnm可较好的维持纹党参微生物群落结构，抑制了腐败微生物的产生。实验例6
[0176]
贮藏末期党参中多糖和低聚糖含量测定：
[0177]
多糖和低聚糖是党参重要的特征性活性成分，能够增强人体免疫能力，具有抗肿瘤、抗衰老、降血糖、抗辐射、抗缺氧等活性作用，因此可以将其作为党参贮藏末期品质的考察标准。本研究对新鲜纹党参样品和采用最佳保鲜工艺贮藏第100d样品中多糖和低聚糖含量进行测定。
[0178]
1、材料：
[0179]
新鲜纹党参样品(s0)、最佳保鲜工艺下贮藏第100d样品(lcnm)。
[0180]
2、方法：
[0181]
精密称取10g(m0)鲜纹党参冻干粉末(过2号筛)置圆底烧瓶中，加入10倍量体积的95％乙醇，加热回流提取2次，1h/次，合并两次滤液，50℃，60r/min减压浓缩，蒸干，冷冻干燥至恒定质量，得党参乙醇提取物，计算得率。将滤渣晾至无醇味，加入10倍量体积的水，煎煮3次，45min/次，合并三次滤液，浓缩至原体积的1/5(浓缩至0.5g/ml)，向浓缩液中缓慢加入95％乙醇至乙醇终浓度为80％，静置过夜后离心，沉淀为多糖部分，冷冻干燥恒重后备用(m1)。上清液于50℃，60r/min减压浓缩至稠膏状，冷冻干燥恒重得低聚糖部分。党参多糖得率(m)计算公式如(vii)：
[0182][0183]
低聚糖得率算法同上。
[0184]
葡萄糖对照储备液制备：精密称取葡萄糖标品10.00mg，置100ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度。配成浓度为0.10mg
·
ml-1
的葡萄糖对照品储备液，4℃保存备用。
[0185]
葡萄糖标准曲线的配制：精密移取葡萄糖对照品储备液0.00(空白对照)、0.20、0.40、0.60、0.80、1.0、1.20、1.60、2.00ml于10ml具塞试管中，蒸馏水补足至2.00ml，加入5％苯酚溶液1.00ml(5.0g苯酚定容到100ml，避光，现用现配)，摇匀，迅速加入浓硫酸5.00ml，摇匀。在沸水浴中反30min，取出，冷却至室温，照紫外-可见分光光度法(2020版《中国药典》四部通则0401)，在490nm的波长处测定吸光度a。平行测定3次，以浓度为横坐标(x)，以平均吸光度值a为纵坐标(y)，得标准曲线为y＝14.255x-0.0072(r2＝0.999)。
[0186]
多糖、低聚糖含量测定：精密称取粗多糖、低聚糖粉末10mg，加蒸馏水定容至10ml，精密移取粗糖水溶液0.2ml置试管中，加水补足至2.00ml，稀释至标曲内，精密吸取2ml置试管中，后续步骤按“葡萄糖标准曲线配制”项下自“加入5％苯酚溶液1.00ml”起进行以下操作并测定吸光度值，另取2ml蒸馏水，同法操作，作为空白对照。根据标准曲线计算各样品中多糖(m3)、低聚糖含量。计算公式如(viii)：
[0187][0188]
低聚糖含量算法同上。
[0189]
3、实验结果：
[0190]
结果如图11所示，最佳保鲜工艺(lcnm)贮藏第100d，其多糖和低聚糖含量与新鲜纹党参样品无显著性差异(p》0.05)，表明lcnm组在贮藏100d内，可抑制新鲜纹党参中多糖和低聚糖的消耗，较好的维持新鲜纹党参药用品质。
[0191]
图11显示为新鲜样品和最佳保鲜工艺处理贮藏末期党参多糖、低聚糖含量变化。实验例7
[0192]
贮藏末期党参中营养成分含量测定：
[0193]
党参作为药食同源的中药材大品种之一，除了以多糖、低聚糖、党参炔苷、紫丁香苷等为代表的活性成分以外，还包括以蛋白质、脂肪、膳食纤维等为代表的营养成分。本研究对新鲜纹党参样品和采用最佳保鲜工艺贮藏第100d样品的蛋白质、脂肪和膳食纤维的含量进行测定。
[0194]
1、材料：
[0195]
同实验例5。
[0196]
2、方法：
[0197]
蛋白质按照gb5009.5-2016《食品安全国家标准食品中蛋白质的测定》测定；脂肪按照gb5009.6-2016《食品安全国家标准食品中脂肪的测定》测定；膳食纤维按照gb5009.88-2008《食品安全国家标准食品中膳食纤维的测定》测定。
[0198]
3、实验结果：
[0199]
结果如图12所示，最佳保鲜工艺(lcnm)贮藏第100d，其蛋白质、脂肪和膳食纤维含量与新鲜纹党参样品无显著性差异(p》0.05)，表明lcnm组在贮藏100d内，可抑制新鲜纹党参中营养物质的消耗，较好的维持新鲜纹党参食用品质。
实验例8
[0200]
为了验证本发明技术保鲜贮藏方法中所采用的预冷温度、复合保鲜液组成以及贮藏温度的特异性，申请人设计了对比实验，对比实验中除了特别标记的操作步骤外，其它步骤均与实施例3相同，对比实验设计如下表10所示。
[0201]
表10 预冷温度复合保鲜液配比气调贮藏温度实施例30℃0.20％的壳聚糖+0.05％的纳他霉素4℃对比例1-4℃0.20％的壳聚糖+0.05％的纳他霉素4℃对比例24℃0.20％的壳聚糖+0.05％的纳他霉素4℃对比例30℃0.20％的壳聚糖单独4℃对比例40℃0.05％的纳他霉素单独4℃对比例50℃0.50％壳聚糖+0.10％纳他霉素4℃对比例60℃0.05％壳聚糖+0.005％纳他霉素4℃对比例70℃0.20％的壳聚糖+0.05％的纳他霉素-15℃对比例80℃0.20％的壳聚糖+0.05％的纳他霉素25℃
[0202]
依据上述分组的实施例3和对比例1-8分别采用相同方式测定保鲜后贮藏末期的多糖、低聚糖和其它营养成分的数据，具体如下表11所示。
[0203]
表11 多糖(％)低聚糖(％)蛋白质(％)脂肪(％)膳食纤维(％)实施例326.937.534.520.2727.91对比例124.316.914.130.2524.64对比例220.646.213.870.2420.64对比例321.346.533.990.2422.16对比例422.346.724.030.2222.65对比例523.946.664.000.2022.94对比例622.646.313.560.2121.67对比例719.645.353.140.1819.64对比例815.314.683.160.1616.97
[0204]
从表11可以看出，采用本发明实施例3的技术方案，其最终的营养成分要明显优于对比例1-8，也即是说明，本发明技术方案中的预冷+复合保鲜液+气调后贮藏温度的结合，确实带来了更加优异的技术效果。
[0205]
以上所述仅为本发明的较佳实施例而已，并不用以限制本发明，凡在本发明的精神和原则之内所作的任何修改、等同替换或改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。