1.用于皮肤修复的干细胞活性因子面膜贴敷料，其是通过将水性的面膜液浸渍于医药可接受的无纺布上，再进行冷冻干燥制得的；进一步地，所述面膜液中包含细胞因子以及海藻糖和普鲁兰多糖。
2.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其中：
所述面膜液包含如下组分：低级醇2-10重量份，精氨酸/赖氨酸多肽1-5重量份，细胞因子液2-40重量份，海藻糖1-8重量份，海藻酸钠0.1-1.5重量份，peg-75牛油树脂甘油酯类1-8重量份，玫瑰花水1-10重量份，普鲁兰多糖0.1-2重量份，透明质酸钠0.1-1.5重量份，水适量至100重量份；
或者，所述面膜液包含如下组分：低级醇3-7重量份，精氨酸/赖氨酸多肽2-4重量份，细胞因子液10-30重量份，海藻糖2-5重量份，海藻酸钠0.25-1重量份，peg-75牛油树脂甘油酯类1-5重量份，玫瑰花水1-5重量份，普鲁兰多糖0.25-1重量份，透明质酸钠0.25-1重量份，水适量至100重量份；
或者，所述面膜液包含如下组分：低级醇4-6重量份，精氨酸/赖氨酸多肽2-3重量份，细胞因子液10-20重量份，海藻糖3-5重量份，海藻酸钠0.5-1重量份，peg-75牛油树脂甘油酯类1-3重量份，玫瑰花水1-3重量份，普鲁兰多糖0.5-1重量份，透明质酸钠0.5-1重量份，水适量至100重量份；
或者，所述面膜液包含如下组分：低级醇5重量份，精氨酸/赖氨酸多肽2.5重量份，细胞因子液15重量份，海藻糖4重量份，海藻酸钠0.75重量份，peg-75牛油树脂甘油酯类2重量份，玫瑰花水2重量份，普鲁兰多糖0.75重量份，透明质酸钠0.75重量份，水适量至100重量份。
3.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其中所述低级醇选自甘油、丙二醇、丁二醇；优选的，所述低级醇选自甘油、丙二醇。
4.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其是通过包括如下步骤的方法制备得到的：
(a)将透明质酸钠、海藻酸钠和低级醇混合均匀，加入约为透明质酸钠10倍重量的70～80℃热水，搅拌使溶解，降温至30～35℃；
(b)向上一步骤所得液体中添加海藻糖、玫瑰花水、精氨酸/赖氨酸多肽、peg-75牛油树脂甘油酯类、细胞因子液、普鲁兰多糖，搅拌使溶解，得面膜液；
(c)使面膜液浸润于无纺布上，再将浸润面膜液的无纺布置冷冻干燥机中，进行冷冻干燥以除去水分(例如，至水分含量小于8％，优选小于5％)；
(d)使冷冻干燥的面膜折叠，并密封包装(例如包装于密封袋、密封玻璃瓶、密封塑料瓶中)，即得。
5.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其中步骤(3)使面膜液浸润于无纺布上时，每500平方厘米面积的无纺布上浸润所述面膜液2～20g，例如是2～15g，例如是3～10g。
6.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其中步骤(c)照如下程序进行冷冻干燥：(i)预冷冻：在-30℃至-40℃下将面膜冷冻，维持3～5小时；(ii)主干燥：预抽真空至18pa，搁板升温至-15℃至-20℃保持10～20小时；(iii)主干燥：继续升温至-2℃至4℃保持2～4小时进一步干燥；(iv)解析干燥：缓慢升温至30℃至35℃，再保持2～5小时使水分达到要求。
7.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其中所述细胞因子液中包含20～200pg/ml的egf，例如包含30～150pg/ml的egf，例如包含40～100pg/ml的egf。
8.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其中所述细胞因子液中还任选的包含fgf、vegf、il-6之一或者多种；或者，所述面膜液中还包含丝氨酸和氯化钠。
9.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其中所述细胞因子液是从脐带源间充质干细胞制备获得的。
10.根据权利要求1的干细胞活性因子面膜贴敷料，其中所述细胞因子液是照包括如下步骤的方法制备得到的：
(1)脐带源间充质干细胞获取：取健康足月剖宫产孕妇脐带，通过分离华通氏胶(wharton'sjelly)法，使用华通氏胶悬浮法制备；将华通氏胶放于t75培养瓶，加入适量间充质干细胞(msc)无血清培养基，置于37℃，5％的co2培养箱内培养，培养7天以后出现细胞集落；约10-13天细胞达到饱和，可进行传代；细胞呈长梭形，是典型的成纤维细胞样形态；
(2)细胞扩增：当细胞融合度达70-80％时，用生理盐水轻轻冲洗培养瓶细胞1-2次，添加3-5ml消化液，室温放置1-2分钟，镜下观察细胞接近球形，轻轻拍打瓶壁，中止消化，转移至离心管混匀，取样计数，按照8000个细胞/cm2进行传代，2-3天细胞密度达70-80％时，反复以上操作，以获得足够量的msc，一般采用p3-p5代细胞制备；
(3)细胞鉴定检测：细胞活率达90％以上时，流式检测标志物合格；
(4)干细胞活性因子的制备：
4i)细胞培养至最旺盛时，收集上清至离心管，0.22μm滤膜过滤上清除菌；
4ii)用生理盐水清洗2-3次培养瓶，弃去，然后采用细胞饥饿法加入10ml生理盐水/t225培养瓶继续培养12-24小时，待细胞变圆，吹打混匀后移至离心管，采用超声破碎仪破碎细胞后离心1400rpm，离心5min，收集的上清，经0.22μm滤膜过滤除菌；
4iii)将步骤4i)和4ii)的上清混合，采用截留分子量为10kd的纯化超滤系统浓缩，即得干细胞活性因子浓缩液。