专利名称：根区微生物群的改良剂的制作方法
技术领域：
本发明涉及一种根区微生物群的改良剂，其含有做为活性组分的脲-甲醛缩合物。
常规上已开发出各种土壤改良剂如含堆肥、脱乙酰壳多糖或它的类似物的材料和含微生物的材料，来改良土壤以提高它对植物生长的效果(日本特许39476/1990，和日本专利申请公开特许82112/1995，127824/1978，253901/1992，181637/1994，107512/1994和165523/1995)。这些土壤改良剂加入到土壤中以阻止植物病害并促进植物生长。
虽然，使用这些土壤改良剂的土壤在抑制植物病源微生物的繁殖时是有用的，但是突出地繁殖一群有用的微生物是困难的。
本发明的目的是提供一种根区微生物群的改良剂。
做为积极的研究结果，本发明者发现特别的水不溶的脲-甲醛缩合物能突出地在根区微生物群中繁殖一群有用的微生物，以此来完成本发明。
即本发明提供一种根区微生物群的改良剂，其含有作为活性组分的由通式I代表的脲-甲醛缩合物X-(NH2-CO-NH-CH2)n-Y(I)其中X是氢原子或-CH2OH，Y是-NHCONH2或-OH，和n是4或更大的整数。
在下文中详细说明了本发明。
根据本发明的根区微生物群的改良剂含有水不溶的和生物可降解的脲-甲醛缩合物做为活性组分。
它的水溶性小于0.01g/100克水或更小。它的微生物降解性指其被微生物转变成氨和/或以硝酸形式的氮的能力。
通过在碱性条件下将脲与甲醛反应给出它的羟甲基衍生物，然后在酸性条件下将其脱水并缩合，接着从得到的缩合物中去除热水可溶解的组分(即式I中n＜4的部分)就能够获得本发明的脲-甲醛缩合物。
适当的甲醛与脲的摩尔比是0.8至1.3。少于0.8的摩尔比是无效的，因为可生成大量的热水可溶解组分，而大于1.3的摩尔比产生较少的热水可溶解组分但给出不易于生物降解的产物。在制备它的羟甲基衍生物时可分批加入脲，以最后达到所说的摩尔比，此反应在20至95℃进行0.5至30小时，在弱碱性pH下反应，优选pH7至8，用如氢氧化钠等碱性物质调节。
反应产物是由做为主成分的二羟甲基脲和做为次要成分的羟甲基脲、三羟甲基脲，和游离的甲醛组成。
脱氢作用/缩合反应在做为硬化剂的酸性物质存在下在PH3至5，温度60至80℃下进行0.5至5小时，做为硬化剂的酸性物质例如有硫酸氢钠，硫酸氢钾，磷酸氢钠，磷酸氢钾，磷酸，硫酸，乙酸，柠檬酸和酒石酸。
通过将得到的缩合物浸在60℃或更高温的热水中可去除热水可溶解组分，优选80℃或更高温的热水，进行0.5至3小时，接着搅拌并离心以使之脱水。终产物是颗粒直径范围在0.5至5mm之间的白色粉末形式的水不可溶性的和生物可降解的缩合物，其水含量约40重量百分比，由通式I代表X-(NH2-CO-NH-CH2)n-Y(I)其中X是氢原子或-CH2OH，Y是-NHCONH2或-OH，和n是4或更大的整数。
根据本发明的，如式I所示的n是4或更大的整数的根区微生物群的改良剂是生物可降解的。在本发明中，热水可溶解组分被从缩合物中去除的。这是因为所述的n是4或小于4的可溶解组分很快地被微生物降解和溶解在水中并在水中流失，不会长时间地突出地在根区微植物群中繁殖一群有用的微生物。
因为以上述方式生产的脲-甲醛缩合物将被根区微生物群中的有用微生物降解，所述的改良剂的施用使得在根区微生物群中的一群有用微生物显著地繁殖。一群有用的微生物的繁殖导致阻止植物病害，并且改良剂本身被微生物渐渐降解以释放能被植物利用的氨和/或硝酸形式的氮。
所用的植物类型是不受特别限制的，并且具体包括在例如草皮、牧场、蔬菜、块根类蔬菜、开花植物、果树、茶树、和移植树中的根区微植物群的改良。
在根区微生物群中有用的微生物包括属于假单胞菌属、土壤杆菌属、芽胞杆菌属的微生物。
所述的改良剂的量通常是每升土壤0.5g至10g，优选2-6g，但即使以超过上述范围的量施用，本发明的改良剂也不会对植物引起任何问题。这可能是由于这样的事实本发明的改良剂是水不可溶的并且当植物生长时由根部细菌群降解并渐渐转化成能被植物利用的氮。改良剂优选大量施用，因为施用的次数可减少。改良剂的被硬化的产品能直接施用到土壤中或以与肥料或别的固体改良剂等的混和物施用。
在下文中，本发明通过参考实施例更详细地描述，但其并不指限定本发明的范围。
制备实施例1，脲-甲醛缩合物的制备脲-37％甲醛水混合物(脲∶甲醛＝1∶2.3摩尔比)用氢氧化钠水溶液调节到pH7.8，混合物在搅拌下在90至95℃下反应1小时。然后，反应混合物用硫酸氢钾调节至pH4，在90至95℃反应3小时。
将脲再加入至得到的最初的脲-甲醛缩合物水溶液中，直到所有脲和甲醛的比率成为1∶1.2，然后混合物在80℃反应1小时。
得到的反应产品转移至捏和机中并搅拌直到其温度达到70至80℃，然后将1.5体积百分比的80％的磷酸加入其中。
在捏和机中混合物保持在80℃并反应3小时，在搅拌下它渐渐地脱水给出水合的硬化的产物。
此水合的硬化的产物浸在80℃热水中并搅拌1小时，然后离心给出终产物(n≥4)。
实施例1根区微生物群改良剂(1)按上述制备实施例1生产的脲-甲醛缩合物作为根区微生物群的改良剂使用(下文称作“本发明改良剂”)。
测定每个菌株的可同化性。
(1)属于假单胞菌属的微生物可同化性实验绿脓杆菌IFO12689，荧光假单胞菌IFO14160和恶臭假单胞菌IFO14164作为实验菌株使用。这些菌侏在普通琼脂斜面培养基中于30℃培养过夜，然后浸泡在无菌生理盐水中作为实验菌液备用。
所用的基本的培养液是用于没有向其中加入硫酸铵(氮源)的假单胞菌属的可同化性实验培养基。(R.Y.Stanier，et al.J.Gen.Microbiol.，43，159(1966))。在基本的培养液消毒后，预先消毒的本发明改良剂，葡萄糖或硫酸铵，以表1所示的比率加入其中，并且无菌条件下吸移至无菌实验试管以制备实验培养液(1)至(4)。
表1 所加入组分量(g)/1000ml基本培养液试验培养液所加组分 (1) (2) (3) (4)本发明改良剂2---葡萄糖 111-硫酸铵 -1-1-没有加入。
每个上述试验菌液用铂圈接种至上述试验培养液中并在30℃培养。在7天培养之后，测定每个培养液中的混浊度。可以判定用混浊度(+)表示在培养液中本发明改良剂可同化为碳源或氮源，而用混浊度(-)表示不能。
在表2中显示结果。
表2 假单胞菌属的荧光微生物的可同化性实验实验菌株实验培养基绿脓杆 荧光假单胞菌恶臭假单胞菌菌 IFO14160IFO14164IFO12689(1)本发明改良剂+葡+ + +萄糖(2)葡萄糖+硫酸铵 + + +(3)葡萄糖 - - -(4)硫酸铵 - - -(2)属于土壤杆菌属的微生物可同化性的实验放射形土壤杆菌IFO13532做为实验菌株使用。菌株在普通琼脂斜面培养基中于30℃培养过夜，然后浸泡在无菌生理盐水中作为实验菌液备用。
所用的基本的培养基按照如上述(1)的制备假单胞菌属可同化试验的培养基的相同方式来制备。本发明改良剂，葡萄糖或硫酸铵，被预先消毒，以表3所示的比率加入其中，并且无菌条件下吸移至无菌实验试管以制备实验培养液(1)至(3)。
表3 所加入组分量(g)/1000ml基本培养液试验培养基所加组分 (1)(2)(3)本发明改良剂 2 - -硫酸铵 - 1 -葡萄糖 1 1 1-没有加入。
上述试验菌液用铂圈接种至上述每个试验培养液中并以上述(1)的相同方式培养。测定其是否存在可同化性。
在表4中显示结果。
表4 放射形土壤杆菌可同化性实验实验培养基 实验结果1本发明改良剂+葡萄糖+(慢)2葡萄糖+硫酸铵 +3葡萄糖 -(3)属于芽胞杆菌属的微生物可同化性的实验枯草杆菌JCM1465做为实验菌株使用。此菌株在普通琼脂斜面培养基中于30℃培养过夜，然后浸泡在无菌生理盐水中做为实验菌液备用。
所用的基本的培养液按照如上述(1)的制备假单胞菌可同化性实验培养基的相同方式来制备。本发明改良剂，葡萄糖或硫酸铵，被预先消毒，以表5所示的比率加入其中，并且无菌条件下吸移至无菌实验试管以制备实验培养液(1)至(3)。
表5 所加入组分量(g)/1000ml基本培养液试验培养基所加组分 (1)(2)(3)本发明改良剂 2 - -硫酸铵 - 1 -葡萄糖 1 1 1-没有加入。
上述试验菌液用铂圈接种至上述每个试验培养液中并以如上述(1)的相同方式培养。测定其可同化性存在与否。
在表6中显示结果。
表6 枯草杆菌的可同化性实验实验培养基 实验结果1本发明改良剂+葡萄糖+2葡萄糖+硫酸铵 +3葡萄糖 -(4)放线菌类可同化性的实验白色链霉菌亚属白色(Strepto myces albus subsp.albus)IFO14626，Nocardiopsis dassbnvillei subsp.dassonv illei IFO 14626，青铜色小单胞菌JCM3031，星形奴卡氏菌JCM3384，和strep toverticillium baldacciiJCM4272作为实验菌株。每个菌株30℃搅拌下于蛋黄一酵母液培养基中培养1星期然后每个培养菌离心。用无菌生理盐水洗涤如此培养的微生物几次，然后浸泡在无菌生理盐水中作为实验菌液备用。
在Williams等的基本培养基消毒之后，本发明改良剂，L-天冬酰胺或硫酸铵，被预先消毒，以表7所示的比率加入其中，然后倒入无菌容器中并固化以制备实验用培养基(1)至(4)。
表7 所加入组分量(g)/1000ml基本培养基试验培养基所加组分 (1)(2)(3)(4)本发明改良剂 1 - - -L-天冬酰胺- 1 - -硫酸铵- - 1 --没有加入。
培养基(1000ml)配比如下Williams等培养基葡萄糖 10gMgSO4·7H2O 0.5gNaCl 0.5gFeSO4·7H2O 0.01gK2HPO41g琼脂 15g蒸馏水 1000ml通过将本发明改良剂放入沸水中15分钟进行消毒，L-天冬酰胺和硫酸铵使用过滤消毒。
每个上述试验菌液用铂圈接种至1到4试验培养基中并在30℃培养。在15天培养之后，测定每个培养基中的细菌生长程度，并且分别用实验培养基2和4做为正负对照评估细菌生长程度。这种评估按照如上(1)的相同方式进行。
在表8中显示结果。
表8 放线菌类可同化性实验氮源(试验培养基号)试验菌株 本发明改良剂 L-天冬酰胺 硫酸铵没有加入(1) (2) (3)(4)白色链霉菌亚属白色IF013014 -+ + -N.dassonvilltisubsp.dasson villei IFO14626-+ + -青铜色小单胞菌JCM3031 -+ - -星形卡奴氏菌JCM3384 -+ + -S.baldaccii JCM4272 -+ - -(5)真菌可同化性的实验土壤中的病源真菌，玫瑰色镰孢(Fusarium roseum)IFO7189，立枯丝核菌IFO30936和立枯丝核菌IFO30981作为实验菌株使用。每个菌株在土豆右旋糖琼脂平板培养基中于25℃培养2星期，然后浸泡在含多乙氧基醚-80的无菌生理盐水中作为实验菌液备用。
所用的实验培养基是酵母碳基琼脂培养基(Difco)(11.7g酵母碳基琼脂培养基(Difco)和在1000ml蒸馏水中的15g琼脂)。
实验培养基被溶解，消毒，于约50℃下冷却。每个实验菌液以相对于培养基的1/20的体积接种至培养基，混和，并倒入3个无菌的容器中固化以制备3个琼脂平板。将少量本发明改良剂加入到其中一个琼脂平板中，少量硫酸铵加入另一个中，最后一个不加入。每个平板于25℃培养。14天培养后，测定实验微生物的生长。上面使用的本发明改良剂在沸水中消毒15分钟并空气干燥。
表9显示结果。
表9 真菌的可同化性实验氮源实验菌株 本发明改良剂 硫酸铵 没有加入玫瑰色镰孢IFO7189 -+-立枯丝核菌IFO30936-+-立枯丝核菌IFO30981-+-(6)从上面结果发现，与硫酸铵类似，本发明改良剂被属于荧光假单胞菌、土壤杆菌属和芽胞杆菌属的有用的微生物所同化。进一步发现，硫酸铵被有害的微生物即土壤中的放线菌和病源真菌所同化，而本发明改良剂不被这样的微生物所同化。因此，本发明改良剂是优良的，因为它适合于有用微生物的选择性繁殖。实施例2 根区微生物群改良剂(2)测定本发明改良剂对微生物群在一块草地(pen cross bent)中的效果。
样品(1)和(2)中的微生物(见下文)在平板上被稀释，在如表10所示的含抗真菌素或抗生素(看表10)的琼脂培养液中于25℃培养7或14天。培养之后，测定每克样品中活的微生物数量。
结果如表10所示。
表10 每克样品中活的微生物数量
比率※样品(1)中微生物数量与样品(2)中微生物数量的比率。
表10中，样品(1)是在1995年六月从一块草地收集的根区土壤，本发明改良剂于1993年三月以200g/m2(10cm深度)加入到那块草地上，样品(2)是于1995年六月从没有加入本发明改良剂的一块草地中收集而来的根区土壤(对照)。
正如从表10所能看到的，属于芽胞杆菌属和荧光假单胞菌属的微生物2年分别繁殖了61-和10倍，而放线菌类，真菌等与对照相比只繁殖了2-和4-倍，表明在根区有用的微生物群被突出地繁殖。
实施例3根区微生物群改良剂(3)以如实施例1的相同方式测定每个菌种的可同化性。
(1)普通土壤微生物可同化性实验巨大芽胞杆菌IFO15308，青紫色杆菌IFO12614，产气肠杆菌IFO13534，野油菜黄单胞菌IFO13551，胡萝卜软欢文氏菌亚种caroto vora IFO14082细菌软腐病菌做为实验菌株使用，并且以如上所描述的假单胞杆菌可同化性实验的相同方式测定它们。
加入到培养基中碳源和氮源如表II所示。
表II 所加的组分数量(g)/1000ml基本培养液试验培养基所加组分 (1)(2)(3)本发明改良剂2 - -硫酸铵 - 1 -葡萄糖 2 2 2-没有加入。
结果如表12所示。
表12 普通的土壤微生物的可同化性实验氮源(实验培养基号)实验菌株 本发明改良剂 硫酸铵没有加入(1) (2)(3)巨大芽胞杆菌IFO15308 - + -青紫色杆菌IFO12614+ + -产气肠杆菌IFO13534+ + -胡萝卜软欢文氏菌亚种 + + -CarotovoraIFO14082野油菜黄单胞菌- + -IFO13551
(2)土壤病源放线菌类可同化性实验已知是马铃薯痂的疮痂病链霉菌IFO13767做为实验菌株使用，并且以如实施例1，(4)所描述的放线菌类可同化性实验的相同方式测定它们。
加入到培养基中的氮源与表7相同。
结果如表13所示。
表13 疮痂病链霉菌IFO13767对作为氮源的本发明改良剂的可同化性实验实验培养基(氮源)实验结果本发明改良剂 -L-天冬酰胺+硫酸铵+没有加入 -(3)土壤病源真菌可同化性实验大丽花轮枝孢IFO9939，尖镰孢IFO31631，桑卷担菌IFO31651，终极腐菌IFO32612，和辣椒疫霉IFO30696作为实验菌株使用，并且以如实施例1，(5)所描述的真菌可同化性实验的相同方式测定它们。
结果如表14所示。
表14 土壤病源真菌可同化性实验氮源实验菌株 本发明改良剂 硫酸铵 没有加入大丽花轮枝孢IFO9939 - +-尖镰孢IFO31631 - +-桑卷担菌IFO31651 - +-终极腐菌IFO32612 - +-辣椒疫霉IFO30696 - +-以上结果表明本发明改良剂可被大部分普通土壤微生物同化，但不被马铃薯痂或普通病源真菌同化。从这些结果和在实施例1中的结果可看出，本发明改良剂不被放线菌类或病源真菌所同化，它作为氮源是优良的材料，依靠有用的微生物能选择性地生长。
实施例4 根区微生物群改良剂(4)测定来自西瓜(种类uji crossbred Shiratori西瓜)的根区微生物群的本发明改良剂的效果。所用的土壤是种苗生长培养土壤，Gen kikun No.1(Coop Chemical)，本改良剂以0％到4％加入其中，西瓜种子种植在含1L土壤的盆中，并在人工条件下培养75天，它们每天在5000勒的光照下于25℃放置12小时，在黑暗中于18℃放置12小时。根据ShuichiIshizawa和Tatsuhiko Suzuki(＂Dojyobiseibutsu No Seitai＂(土壤微生物生态学)，＂Seitaigaku Kouza(生态学课程)24＂，PP.113-115，(1973)，由Kyoritsu Shuppan K.K.出版)所描述的在水中的分馏方法制备非根区土壤，根区土壤，和粘根土壤粒。实验方法，琼脂培养基组合物等与实施例2中是相同的。
结果显示在表15中。每个植株的根的鲜重在对照(0％本发明改良剂)中是13.2g，在4％本发明改良剂中是18.8g，即后者根的生长比前者的高达约1.4倍。
表15-1西瓜种植之后75天根区土壤活的微生物数量(每1g干土壤)B/F本发明改良剂量活生物 本改良剂量体比率微生物 琼脂培养基 0％ 4％0％ 4％需氧微生 含抗真菌剂的1.8×1091.8×1091.0 16.4 11.3物 SCD需氧微生 含抗真菌剂的3.3×1092.2×1090.7 30.0 13.8物 白蛋白芽胞杆菌 含抗真菌剂的1.1×1072.8×1072.5 0.1 0.2属 SCD革兰氏阴 含抗真菌剂的1.8×1082.2×1081.2 1.6 1.4性微生物 CVT革兰氏阴 含抗真菌剂的5.3×1083.5×1080.7 4.8 2.2性微生物 Columbia CNA荧光假单 含抗真菌剂的7.5×1061.9×1072.7 0.07 0.12胞菌 King B*荧光颜料形成的菌落数量放线菌 含抗真菌剂的7.1×1082.4×1080.3 6.5 1.5白蛋白丝状真菌 含氯霉素的PD1.1×1081.6×1081.5
表15-2齿根面活的微生物数量(每1g根)B/F本发明改良剂量 活有机 本改良剂量物比率微生物 琼脂培养基 0％ 4％ 0％ 4％需氧微生 含抗真菌剂的1.7×1082.7×1081.635.4 18.0物 SCD需氧微生 含抗真菌剂的4.8×1088.8×1081.8100.0 58.7物 白蛋白芽胞杆 含抗真菌剂的2.2×1051.5×1066.80.05 0.1菌属 SCD革兰氏阴 含抗真菌剂的3.4×1074.0×1071.27.1 2.7性微生物 CVT革兰氏阴 含抗真菌剂的2.0×1076.6×1073.34.2 4.4性微生物 Columbia CNA荧光假单 含抗真菌剂的1.9×1052.2×10611.6 0.04 0.15胞菌*King B*荧光颜料形成的菌落数量放线菌 含抗真菌剂的4.2×1071.3×1083.08.8 8.7白蛋白丝状真菌 含氯霉素的PD4.8×1061.5×1073.1根的鲜重(g)/植株 13.2g 18.8g
表15表明与对照(0％本改良剂)相比，属于芽胞杆菌属和荧光假单胞菌的微生物分别增加了2.5和2.7倍，而放线菌下降了并且真菌只增加了1.4倍。在粘根土壤粒微生物群中，与对照(0％本改良剂)相比，属于芽胞杆菌属和荧光假单胞菌的微生物分别增加了6.8和11.6倍，而放线菌和真菌分别只增加了3.0和3.1倍。在根区土壤和粘根土壤粒中的有用微生物群的显著繁殖从B/F(各自的原核生物数/真菌数)值看也是明显的。因为根的鲜重依靠加入本发明改良剂而增加了，所以也证明本改良剂有效地促进植物生长。
实施例5 根区微生物群改良剂(5)测定对Shimonita欧洲韭的微生物群的本改良剂的效果。所用的土地是在日本的Tomioka Town，Gunma Prefecture的农民的土地，Shimonita欧洲韭种植在含或不含本发明改良剂80kg/10a的土壤中。实验方法与实施例2和4相同。在实验土地上，观察其生长停止的出现。染病植物的百分数，染病指数，和残枝损失比率如表16所示。
表16生长停止染病植物的染病指数a残枝损失比率百分数对照土地 20％ 50 2％含本改良剂0％0 0％的土地a)染病指数(DI)的计算如DI＝∑(n×SI)/4×N×100其中SI(受冲击剧烈程度指数)，0(健康植株)至4(死植株)的整数；n＝显示相同SI值的植株数；N，观察的植株的总数。
四种Shimonita欧洲韭随意地从每组中挑选出来，立即测定它们的重量。结果显示在表17。此外还测定在非根区土壤和粘根土壤粒中的活的微生物的数量。结果显示在表18中。表17 Shimonita欧洲韭的重量总重量(g) 根鲜重(g) 根鲜重(g)对照 1283.05272.3810.672334.70309.8624.843306.24292.1414.104303.16286.5016.66平均 306.79290.2216.57标准偏差 13.43 5.23100％ 100％ 100％本发明改良剂 1 380.98368.5312.452 321.26308.3312.933 407.64382.2125.434 364.45356.128.33平均 368.58353.8014.79标准偏差 31.37 27.83 6.40本发明改良剂/对照 120％ 122％ 89％
表18-1 Shimonita欧洲韭土地(1996，11，13)非根区土壤 活微生物量(每1g干土壤)B/F本改良剂量 本改良剂量微生物 琼脂培养基 0％ 80kg/10a0％80kg/10a需氧微生 含抗真菌剂的2.0×1081.4×108200538物 SCD需氧微生 含抗真菌剂的3.5×1083.6×1083501385物 白蛋白芽胞杆菌 含抗真菌剂的5.0×1076.5×10650 25属 SCD革兰氏阴 含抗真菌剂的6.7×1073.0×10767 115性微生物 CVT革兰氏阳 含抗真菌剂的1.3×1085.2×10613020性微生物 Columbia CNA荧光假单 含抗真菌剂的2.5×1068.7×1063 33胞菌* King B*荧光颜料形成的菌落数量放线菌 含抗真菌剂的2.7×1071.0×10727 38白蛋白丝状真菌 含氯霉素的PD1.0×1062.6×105
表18-2粘根区土壤粒活微生物量(每1g鲜根)B/F本改良剂量 本改良剂量微生物 琼脂培养基 0％ 80kg/10a 0％ 80kg/10a需氧微生 含抗真菌剂的4.1×1071.3×108111 2281物 SCD需氧微生 含抗真菌剂的1.6×1082.2×108432 3860物 白蛋白芽胞杆菌 含抗真菌剂的3.3×1068.7×1059 15属 SCD革兰氏阳 含抗真菌剂的1.7×1072.1×10746368性微生物 CVT革兰氏阴 含抗真菌剂的1.3×1089.8×107351 1719性微生物 Columbia CNA荧光假单 含抗真菌剂的1.1×1077.6×10630133胞菌* King B*荧光颜料形成的菌落数量放线菌 含抗真菌剂的5.6×1065.3×1061593白蛋白丝状真菌 含氯霉素的PD3.7×1055.7×104
非根区土壤和粘根土壤粒上，加入本改良剂的几种微生物数量比没有加入本改良剂的土地上的低。在非根区土壤中通过加入本发明改良剂，有关土壤中的需氧微生物，荧光假单胞菌微生物，放线菌B/F值相对高，这些微生物对真菌比率也是高的。在粘根土壤粒中有关有需氧微生物，芽胞杆菌属微生物，荧光假单胞菌，和放线菌中的任何一种B/F值都明显高，通过加入本改良剂明显地增加了这些微生物对真菌的比率。在含本发明改良剂的土壤中，在粘根土壤粒中B/F值比在非根区土壤中的B/F值尤其的高(芽胞杆菌属的微生物除外)。
以上结果表明通过加入本发明改良剂，阻止了生长停止的开始，欧洲韭的鲜重增加了20％。而且，本改良剂对微生物群的改良效果在粘根土壤粒中比在非根土壤中的效果更明显。
根据本发明，提供了根区微生物群的改良剂，其能在长时间内突出地繁殖根区微生物群(有用微生物群)。
本发明改良剂能阻止并抑制植物疾病并能同时促进施用的材料的肥料效果以使植物健康地生长。
权利要求
1.根区微生物群的改良剂，其含有作为活性物质的由式I代表的脲-甲醛缩合物X-(NH2-CONH-CH2)n-Y(I)其中X是氢原子或-CH2OH，Y是-NHCONH2或-OH，和n是4或更大的整数。
全文摘要
所描述的是根区微生物群的改良剂，其含有作为活性物质的由式I代表的脲—甲醛缩合物X-(NH
文档编号A01N47/28GK1165800SQ9710496
公开日1997年11月26日 申请日期1997年2月13日 优先权日1996年2月13日
发明者高桥照雄, 桥本好弘 申请人:日东化学工业株式会社