专利名称：生物材料的化学清洗的制作方法
技术领域：
本发明属于组织工程领域。本发明涉及胶原组织，该胶原组织已进行过处理，除去非胶原成分如细胞、细胞碎片和其它细胞外基质成分，如通常见于天然组织中的蛋白聚糖和葡糖胺聚糖。用碱、螯合剂、酸和盐处理组织，从胶原组织基质中除去非胶原成分，而同时控制膨胀量和溶解度，使所得的胶原基质保留其结构组织、完整性和可生物改造性能。此方法不需要使用损害性地影响胶原基质的细胞相容性、强度和可生物改造性的洗涤剂和酶。该胶原组织基质用于植入、修补，或用在哺乳动物宿主中。
背景技术：
简述组织工程领域将工程方法与生命科学的原理结合，以了解正常和病理哺乳动物组织间中结构和功能的关系。组织工程的目标是开发和最终应用生物替代物来恢复、保持或改善组织功能。(Skalak，R.和Fox，C.F.，“组织工程”，Alan R.Liss Inc.N.Y.(1988))。
胶原是体内的主要结构蛋白，其构成总的体内蛋白的大约三分之一。它包括皮肤、腱、骨和牙中的大部分有机物质，且作为纤维状包含物出现在许多其它身体结构物中。胶原的一部分性能是其高拉张强度；其离子交换能力，这点部分是由于电解质、代谢物和药物的结合；其低的抗原性，这点是由于通过螺旋结构遮盖蛋白抗原的决定体，和其低的伸长性、半渗透性和溶解性。再者，胶原是细胞粘合的天然物质。这些性能以及其它的性能使胶原适合作为可植入生物替代物和可生物改造假体的组织工程和生产的材料。
由于胶原是这些生物替代物中占大多数的成分，因此需要一种方法来获得质量稳定的充分量的胶原。目前需要一种改进的方法来除去非胶原成分如细胞、细胞碎片和其它细胞外基质成分，如通常见于天然组织中的蛋白聚糖和葡糖胺聚糖，以产生基本上纯的天然胶原基质。一般认为，这些非胶原结构物中有一些是抗原，当植入宿主中时，将诱发慢性炎症反应。现有技术有许多清洗这些胶原组织的方法，然而，这些方法导致胶原成(composition)带有不同的特性。所用的方法应当是可保持适用于组织工程中的胶原和胶原组织的生物和物理性能的一种方法。
在处理胶原组织，产生基本上是胶原基质的现有技术中，常规地使用洗涤剂和表面活性剂，将细胞和脂质体从组织中萃取出来。洗涤剂，如十二烷基硫酸钠(SDS)，是两亲分子，其中疏水区结合到蛋白上，并相信增加了此蛋白的负电荷。当植入时，由于电荷的增加导致由于有更多的水被此分子的亲水区结合而产生的组织膨胀和破坏氢键结合而产生的胶原的热稳定性降低。膨胀一则使胶原分子的结构打开，使之对细胞酶如胶原酶敏感，二则使胶原基质不稳定，造成构建(construction)弱化。(Courtman等，生物医学材料研究杂志，28655-666，1994)。再者，人们认为，SDS残留物仍结合在胶原上，并阻止细胞迁移入植入物中。(Wilson，G.J等，Ann Thorac Surg，60S353-8，1995；Bodnar E等，“Damage of aortic valvetissue caused by the surfactant sodium dodecyl sulfate，”Thorac cardixvascSurg，3482-85，1986)。由于用在化学清洗方法中的洗涤剂可以不良地结合上并改变在处理的组织中的胶原的可生物改造性，因此本发明者开发出一种不需要洗涤剂的方法。
用酶如胰蛋白酶、胃蛋白酶和胶原酶化学清洗组织是本领域中已知的，但它的应用将导致天然胶原分子改性，并将不利地影响构建的结构完整性。胶原组织的酶处理在现有技术中已知用来除去和/或修饰与细胞外基质有关的蛋白。蛋白酶如胃蛋白酶、胰蛋白酶、分散酶或嗜热菌蛋白酶在除去胶原端肽中使用，产生非端肽胶原。胶原端肽是胶原分子的非三螺旋部分，被某些研究者认为是弱抗原性的，而另一些研究人员则认为其与胶原的强机械性能有关。胶原组织的有限消化将除去端肽，而不将组织的胶原基质解离，而长时间的消化将解离胶原原纤维成非端肽胶原单体。现有技术中同样已知，使用酶(它分别通过使用RNA酶和DNA酶来消化内源RNA和DNA)修饰和除去基质中的核酸。由于用酶处理可以影响胶原的结构完整性，本发明的方法包括它们的使用。
从外植哺乳动物组织获得胶原组织和组织结构物的方法，和由此组织构建假体的工艺，已广泛用于外科修复或组织和器官的更换中。将此组织一般性地处理，除去有潜在细胞毒性作用的细胞成分和非胶原成分，留下天然组织基质。也进行过对进一步处理的研究，所述处理如交联、消毒或形成形状。处理胶原组织，从组织化的组织基质中除去组织成分的现有方法采用洗涤剂、酶或促进基质的无控制的膨胀。Jaffe等的WO 95/28183公开了降低或防止生物假体心脏瓣膜供给矿质后植入方法。此公开的方法提供由控制自溶的非细胞制成的生物材料。自溶是在预选的pH下，使用至少一种缓冲溶液控制进行的，使存在于组织中的自溶酶降解细胞结构成分。Stone的USP 5,007,934，以及Li等的USP 5,263,984均公开了化学清洗韧带组织的多步骤方法。该方法利用洗涤剂除去与细胞膜或胶原组织有关联的类脂。Janzen等的USP 5,523,291公开了一种粉碎的可注射植入物组合物，用于从项韧带得到的软组织增加。此韧带用氢氧化钠强碱性溶液，接着是盐酸溶液，之后是碳酸氢钠进行了一系列浸泡处理。Eckmayer等的USP 5,028,695公开了胶原膜的生产工艺，其中胶原组织是用强碱，随后用强酸处理一段时间来重复处理，之后再用无机盐处理来收缩该膜，之后用溶剂来干燥之。
发明概述本发明公开了可生物改造的胶原组织基质和化学清洗天然组织产生此组织基质的方法。
本发明克服了获得基本上是胶原的可生物改造的组织基质的困难。本发明提供可以用作假体用具或用在修复、增加或替代损害和有病的组织与器官的材料的组织基质。
本发明的化学清洗方法使生物材料如天然组织和组织结构物基本上无细胞和基本上无非胶原成分，而同时保持胶原组织基质的结构完整性。由于在化学清洗过程中不用洗涤剂，因此不存在通常会结合于组织基质的洗涤剂残留物。由于不使用酶，胶原端肽仍留在胶原分子上。该方法包含将正常的细胞天然组织在碱性pH下与螯合物剂接触，将此组织在酸性pH下与盐溶液接触，并将此组织在生理pH下与盐溶液接触，最后淋洗所得的化学清洗后的组织基质。
本发明涉及化学清洗后的由天然的正常细胞组织得到的组织基质。清洗的组织基质是基本上是完好无损地归还的胶原，它基本上无糖蛋白、糖胺聚糖、蛋白聚糖、类脂、非胶原蛋白和核酸如DNA和RNA。重要的是，由于没有对胶原可生物改造性有不利影响的结合着的洗涤剂残留物，从而保留了组织基质的可生物改造性。再者，由于在清洗过程中胶原未经受用酶处理或修饰，胶原分子的端肽区完好无损，因此胶原是端肽胶原。
胶原材料通常保持组织得到时的总体形状，但它可能叠层和结合在一起，形成多层片、管或复杂的成形假体。本发明的结合的胶原层是结构上稳定、柔韧、半透和可缝合的。当此基质材料植入哺乳动物宿主时，经受生物降解，并伴随着足够的活细胞替代或新组织形成，这样原植入的材料最终被改造并由宿主产生的组织和细胞替代。
因此，本发明的目的是提供一种清洗天然组织，产生不表现出与许多现有技术方法有关的许多缺点的组织基质。本发明方法不用洗涤剂或酶而有效地除去天然组织的非胶原成分，产生包含基本上是胶原的组织基质。
另一目的是提供一种可生物改造的组织基质材料，它将允许和利于在植入位点上的组织内生长和/或器官再生。由此材料制成的假体，当移植到受体宿主或患者中时，同时进行可控制的生物改造和充分的活细胞替代，这样，原植入假体被患者的活细胞改造，形成再生的器官或组织。
本发明的再一目的是提供一种在自移植、异体移植和异种移植适应征(indication)中使用新颖的多目的可生物改造基质材料的方法。
另一目的是提供可以使用常规外科技术植入的新颖的组织基质材料。
发明详述本发明提供一种处理用于移植的天然胶原组织的方法。本处理方法设计来产生一种可植入、可移植的胶原生物组织材料—一种包含胶原的细胞外基质，它作为可以由宿主在体内或通过体外的培养物中的活细胞改造的框架(scaffold)。
本发明还涉及一种由处理的天然胶原组织形成的组织工程假体，当植入哺乳动物宿主时，它可以作为功能修补、增加或替代身体部分或组织结构，和经受宿主细胞改造之同时出现的控制的生物降解。该组织材料可以用作假体，用于自移植、异体移植和异种移植适应征。本发明的假体，在其种种实施方案中，具有双重性能首先，它用作身体部分替代品，第二，在仍作为身体部分替代品的同时，作为用于宿主细胞向内生长的改造模板。虽然假体将通过各种用具和构建物的结构进行说明，但本发明并不仅限于这些。应当理解，在其材料、形状和厚度方面进行的用具设计是根据结构物的最终适应征来选择的。
本发明的化学清洗方法使生物材料，如天然组织和组织结构物，基本上无细胞和基本上无非胶原成分，而同时保持了胶原组织基质的结构完整性。弹性蛋白有时少量存在于天然组织中，并不被化学清洗方法除去。弹性蛋白的存在在某些应用中是需要的。如本文中所用的，术语“基本上无细胞”是指比天然态的生物材料少至少95％的天然细胞和细胞结构物。“细胞和细胞结构物”是指细胞(活或不活)、细胞存留物、细胞膜和膜结构物。使用主语“基本上无非胶原成分”是指糖蛋白、糖胺聚糖、蛋白聚糖、类脂、非胶原蛋白和核酸如DNA和RNA占在所得的组织基质干重的不到5％。由于在本化学清洗过程中不使用洗涤剂，因此不存在通常会结合到组织基质上的洗涤剂残留物。由于不使用酶，因而胶原端肽保留在胶原分子上。再者，当使用灭菌设备、溶液和无菌技术处理时，本化学清洗方法可使生物材料无菌和无内毒素。
术语“结构完整性”是指化学清洗的胶原组织基质承受拉张、压缩和支撑的能力。即使在化学处理期间会出现一定的膨胀，但由于化学处理步骤中的膨胀被最小化，因此生物材料的结构完整性仍得到保留。不进行控制或过度的膨胀一方面打开了胶原分子的结构，使之对细胞酶如胶原蛋白酶敏感，另一方面又使胶原不稳定，造成构造弱化。当膨胀影响胶原分子的分子内结构时，其通过破坏胶原分子间的天然交联，在分子内水平上影响材料的总体结构。胶原分子的结构和胶原分子间的交联一起为材料提供结构完整性。
保持大多数其天然结构完整性的组织基质材料是有用的，例如，当用作假体用具或用作构建多层或复杂用具时。如果材料用于执行负载承受功能如体壁支持物、血管用具或牙科用具，则材料的完整性是很重要的。涉及结构完整性时，术语“可缝合”是指材料的机械性能包括在将假体缝合至天然组织时(一种被称作吻合术的方法)，允许针和缝合材料穿过假体材料的缝合保持。在缝合时，这些假体不会因缝合所带来的张力而撕裂，且当缝合打结时，它们也不会被撕裂。假体材料的可缝合性，即，假体缝合时的抗撕裂能力，与假体材料的固有机械强度、移植物的厚度、施加于缝合物的张力和拉紧节的速率有关。
本发明中所定义的生物材料包括但不限于来源于人、牛、猪、狗、羊、猫和马的采集的哺乳动物组织及其结构物。组织结构物如真皮、动脉、静脉、心包、心脏瓣膜、硬脑脊膜、腱、肠和筋膜是优选的组织结构，其可以通过本发明方法清洗，产生基本上无细胞和基本上无非胶原成分的组织基质。
哺乳动物组织的优选来源是从小肠，最优选是从猪小肠得的被膜粘膜下层(tunica submucosa)。在天然的小肠中，被膜粘膜下层是器官的连接组织层，且包括淋巴和血管细胞。获得被膜粘膜下层的方法公开在WO96/31157中，该文被本文引用。为获得猪被膜粘膜下层(也被称为“粘膜下层”)，将猪小肠收集，并机械剥离，优选使用肠清洗机械(Bitterling，诺丁汉，英国)。肠清洗机械通过机械作用和水洗涤作用，强行除去脂肪、肌肉和粘膜层。机械作用可以描述为一系列的滚辊(roller)，当无损的肠在其间移动时，滚辊压紧并将接续的层剥离被膜粘膜下层。由于小肠的被膜粘膜下层比周围的组织相对而言要更坚硬，因此来自粘膜下层的较软的成分从被膜粘膜下层除去。机械清洗的结果是，将来自被膜粘膜下层管腔(ablumen)的肠系膜组织、被膜绒膜和被膜肌肉以及来自被膜粘膜下层腔的被膜粘膜层从被膜粘膜下层除去，这样只留下肠的被膜粘膜下层。被膜粘膜下层的化学清洗的组织基质也称作“肠胶原层”或“ICL”。值得说明的是，在一些动物来源中，如食肉动物和杂食动物中，小肠包括致密层，这一层大部分通过此机械清洗步骤除去。
机械剥离小肠不同层的其它方法是本领域已知的，如Badylak的USP4,902,508中描述的，该文被本文引用。此专利公开的方法包括柔和地磨擦肠组织，除去管腔层(包括被膜绒膜和被膜肌肉)和至少由被膜粘膜的腔部分组成的内层。余下的层是被膜粘膜下层及由粘膜肌层和(如果最初存在于所采集的哺乳动物组织中的)致密层组成的附着基础层。用任一种方法获得的肠材料均可以通过许多方法，包括缝合、订合、粘合组合物、化学结合和热结合，植入或预形成人体壁或血管用具中。
与某些操作参数有关的术语如量、时间和温度是针对全文和实施例定义的，这些术语可以有所变化，而不偏离本发明的精神与范围。在本文中，“有效量”是指获得所需效果而需要的组合物的体积与浓度。优选组织进行化学清洗的有效量是溶液与组织之比为100∶1v/v，但是体积的多或少可以由普通技术人员通过考虑意欲清洗的组织的形状、外形体积、厚度、密度和细胞构成性来确定。当考虑到意欲清洗的组织的细胞构成性、基质密度和厚度时，本领域普通技术人员会清楚有效的化学步骤所需的时间。较大、较厚或较密的材料需要较长的时间以使溶液渗透入组织并在其中平衡。环境温度和用于本发明的溶液温度优选是常温，大约为25℃，但可以在高于所用溶液的冰点温度以上至低于意欲处理的组织材料的变性温度之间。大约47℃至大约45℃间的温度足以进行有效的化学处理。搅拌是指机械震动或机械混合，用来改善化学成分向组织中的渗透作用，并减少有效地化学处理所需的时间。术语“缓冲溶液”是指一种含水溶液，其含有至少一种可保持溶液的氢离子浓度或pH的试剂。
在优选的方法中，采集的组织可能需要手工清洗，如通过粗解剖，和/或机械清洗多余的组织如脂肪和肌肉。在加工或进行最有效地化学处理期间，为了操作的可处理性，对于一些组织可能会需要手工清洗。
组织先通过将组织与有效量的螯合剂，优选是碱接触，以可控制地限制组织基质的膨胀。螯合剂通过降低二价阳离子浓度，提高将细胞、细胞碎片和基础膜结构物从基质中除去的作用。碱处理将糖蛋白和糖胺聚糖与胶原组织解离，并皂化类脂。本领域已知的可以使用的螯合剂包括，但不限于，乙二胺四乙酸(EDTA)和亚乙基双(氧乙烯次氮基)四乙酸(ethylenebis(oxyethylenitrilo)tetraacetic acid，EGTA)。EDTA是优选的螯合剂，且可以通过加入氢氧化钠(NaOH)、氢氧化钙(Ca(OH)2)、碳酸钠或过氧化钠而变得更碱性。EDTA或EGTA浓度优选介于大约1至大约200mM间；更优选介于大约50至大约150mM间；最优选在大约100mM左右。NaOH浓度优选介于大约0.001至大约1M间；更优选介于大约0.01至大约0.10M间；最优选在大约0.01M左右。其它碱或碱性试剂可以由本领域普通技术人员确定，使螯合溶液的pH在有效碱性pH范围内。碱性螯合溶液的最终pH应优选介于大约8至大约12之间，但更优选介于大约11.1至大约11.8之间。在最优选的实施方案中，组织与100mM EDTA/10mMNaOH的水溶液接触。组织优选是通过浸入碱性螯合剂中来接触的，而更有效的处理是通过将组织与溶液一起搅拌一段对处理步骤而言有效的时间来获得。
之后组织与有效量的酸性溶液，优选含有盐的溶液接触。酸处理同样起除去糖蛋白和糖胺聚糖以及除去非胶原蛋白和核酸如DNA和RNA的作用。盐处理在酸处理期间控制胶原组织基质的膨胀，并涉及将一些糖蛋白和蛋白聚糖从胶原基质中除去。本领域已知可以使用的酸溶液包括但不限于盐酸(HCl)、乙酸(CH3COOH)和硫酸(H2SO4)。优选的酸是盐酸，其浓度优选介于大约0.5至大约2M，更优选介于大约0.75至大约1.25M；最优选在大约1M左右。酸/盐溶液的最终pH优选介于大约0至大约1，更优选介于大约0至0.75，且最优选介于大约0.1至大约0.5之间。盐酸和其它强酸对于破坏核酸分子而言是最有效的，弱酸却不那么有效。可以使用的盐优选是无机盐，包括但不限于氯化物盐如氯化钠(NaCl)、氯化钙(CaCl2)和氯化钾(KCl)，而其它有效的盐可以由本领域技术人员确定。优选的氯化物盐的使用浓度优选介于大约0.1至大约2M；更优选介于大约0.75至大约1.25M；最优选在1M左右。优选用于此方法的氯化物盐是氯化钠(NaCl)。在最优选的实施方案中，组织与1M HCl/1M NaCl的水溶液接触。组织优选浸入酸/盐溶液中，通过将组织与溶液一起搅拌一段对处理步骤而言有效的时间来获得有效的处理。
之后将组织与有效量的盐溶液，优选与缓冲到大约生理pH的溶液接触。缓冲的盐溶液中和该材料，同时降低膨胀。可以使用的盐优选是无机盐且包括但不限于氯化物盐如氯化钠(NaCl)、氯化钙(CaCl2)和氯化钾(KCl)；和含氮盐如硫酸铵(NH3SO4)，其它有效的盐可以由本领域技术人员确定。优选的氯化物盐的使用浓度优选介于大约0.1至大约2M之间；更优选介于大约0.75至大约1.25M之间；最优选在大约1M左右。优选的用在本方法中的氯化物盐是氯化钠(NaCl)。缓冲剂是本领域已知的且包括但不限于磷酸盐和硼酸盐溶液，其它的缓冲剂可由本领域普通技术人员针对本方法确定。一种优选的缓冲盐溶液的方法是优选加入磷酸盐缓冲的盐水(PBS)，其中对于盐溶液来说，磷酸盐浓度是大约0.001至大约0.02M且盐浓度是大约0.07至大约大约0.3M。此溶液的pH优选介于大约5至大约9，更优选介于大约7至大约8，最优选介于大约7.4至大约7.6之间。在最优选的实施方案中，组织与pH介于大约7.0至大约7.6的1M氯化钠(NaCl)/10mM磷酸盐缓冲的盐水(PBS)接触。该组织优选通过浸入在缓冲的盐水溶液中接触，通过将组织与溶液一起搅拌一段对处理步骤而言有效的时间来获得有效的处理。
在化学清洗处理后，优选通过将组织与有效量的淋洗剂接触，淋洗至无化学清洗剂。可以使用的试剂如水、等渗盐溶液和生理pH缓冲的溶液，其与组织接触一段足以除去清洗剂的时间。优选的淋洗溶液是生理pH缓冲盐水如磷酸盐缓冲的盐水(PBS)。淋洗带有化学清洗剂的组织的其它方式可以由本领域技术人员确定。将组织与碱性螯合剂接触和将组织与含有盐的酸溶液接触的清洗步骤可以任一种顺序实施，获得基本上相同的清洗效果。然而，不可将溶液组合而只进行一步处理。
本发明的优选组成(composition)是由天然正常细胞组织得到的化学清洗过的组织基质。清洗过的组织基质基本上是大约93％干重的无细胞端肽胶原与低于大约5％干重的糖蛋白、糖胺聚糖、蛋白聚糖、类脂、非胶原蛋白和核酸如DNA和RNA。重要的是，由于组织中没有对胶原可生物改造性有不利影响的结合着的洗涤剂残留物，因此组织基质的可生物改造性得到保留。此外，由于在清洗过程中，组织未经酶处理，因此胶原分子的端肽区保留下来。
组织基质是从真皮、动脉、静脉、心包、心脏瓣膜、硬脑脊膜、腱、肠和筋膜得到的。最优选的组成是由小肠得到的化学清洗过的肠胶原层。适合的小肠来源是哺乳动物有机体如人、牛、猪、羊、狗、山羊和马，其中猪小肠是优选的来源。在一优选的实施方案中，胶原层包括得自猪小肠的被膜粘膜下层。另一实施方案中，胶原层包括小肠的被膜粘膜下层和基底层。基底层由层粘膜肌层和致密层(如果它存在于天然组织中)组成。
最优选的本发明组成是肠胶原层，用本发明化学清洗方法清洗过，它基本上是胶原，主要是I型胶原，与少于大约5％干重的糖蛋白、糖胺聚糖、蛋白聚糖、类脂、非胶原蛋白和核酸如DNA和RNA。胶原层中没有对胶原的可生物改造性有不利影响的结合着的洗涤剂残留物。胶原层基本上没有细胞和细胞碎片，包括内源核酸如DNA和RNA和类脂。再者，当使用灭菌设备、溶液和无菌技术处理时，肠胶原层是无菌且无内毒素的。
一旦胶原组织基质提供了基本上无细胞和基本上无非胶原外细胞基质成分，则可将其用于生产植入或移植的假体。胶原层可以通过使用任一种本领域已知的技术来缝合或结合在一起。用于结合所述层的方法可以采用粘合剂如凝血酶、纤维蛋白或合成材料如氰基异丁烯酸酯或化学交联剂。其它方法可以采用由激光、光或微波产生的热。也可以采用对流炉或加热液体浴。
胶原层的热焊接是将本发明的胶原层结合在一起的优选方法。胶原的热焊接方法描述于WO 95/22301、WO 96/31157和USP 5,571,216，本发明引入这些技术作为参考。ICL(肠胶原层)先是被沿纵向切开，平放在固体平板上。之后将一或多个连续的层一一加上，优选改成垂直方向。第二个固体平板放置在层的上方，并将二个板紧紧夹在一起。之后将完成的装置，夹着的板和胶原层，在足以进行胶原层结合的条件下加热一段时间。施加的热量应当足够的高，以使胶原结合，但不应高到造成胶原不可逆的变性。加热和结合的时间将取决于所用的胶原材料层类型、材料的水分和厚度和所施加的热。加热的典型范围是大约50℃至大约75℃，更典型的是60℃至65℃，且最典型的是62℃。时间的典型范围是大约7分钟至大约24小时，典型的是大约一小时。加热程度和加热的时间长短易于通过变化热和时间参数，用常规实验确定。结合步骤可以在常规烘箱中完成，但也可以采用其它的装置和加热器具，它们包括但不限于水浴、激光能或电热传导进行。紧接着加热和结合之后，将胶原层用空气或水浴在20℃至1℃间的室温范围内用空气或水浴冷却。需要用快速冷却，术语称作骤冷，结束加热作用，并产生胶原层间的有效结合。为完成此步骤，胶原层可以典型的在水浴中冷却，所用的温度优选是大约1℃至大约10℃，最优选的是4℃。虽然低于1℃的冷却温度也可使用，但需要小心，不使胶原层冷冻，冷冻会造成结构损害。此外，高于10℃的温度可以在骤冷中使用，但如果骤冷温度太高，则冷却速率太慢，胶原层相互间的固定不充分。
在优选的实施方案中，胶原材料被交联。交联赋予形成的假体构建物增加的强度和结构完整性，同时在此构建物植入患体时，通过细胞调节胶原的可生物改造性。胶原交联剂包括戊二醛、甲醛、碳化二亚胺、六亚甲基二异氰酸酯、二亚氨酸酯(bisimidate)、乙二醛、己二酰氯、二醛淀粉、和某些聚环氧化合物如乙二醇二缩水甘油醚、聚醇聚缩水甘油醚和二羧酸二缩水甘油酯。也可以使用脱氢热、UV照射和/或糖介导法。胶原也可以在室温下老化而自然交联。然而，交联剂不限于这些，也可以采用其它本领域技术人员已知的交联剂和方法。应当选择交联剂，以产生能被宿主细胞改造的生物相容材料。优选的交联剂是1-乙基-3-(3-二甲基氨基丙基)碳化二亚胺盐酸盐(EDC)。含有EDC和水的交联溶液也可以含有丙酮。用EDC交联业已描述于国际专利申请公开WO 95/22301和WO 96/31157中。
在一些实施方案中，额外的胶原层可以在交联前或后，加到结合的胶原层的外或内表面上。在管状构建物中，如在血管构建物中，可以将致密原纤维胶原加到腔表面，产生平滑流动表面，用于其最终应用，如在国际专利申请公开WO 95/22301中描述的那样，该文被本文引用作为参考。此平滑胶原层同样促进宿主细胞连接，如在新内膜形成时，它有利于构建物的向内生长和生物改造。如在国际专利申请公开WO 95/22301中描述的，平滑胶原层可以由酸提取的原纤维或非原纤维胶原制成，它主要是I型胶原，但也可以包括其它类型的胶原。所用的胶原可以由任一种哺乳动物源，典型的是牛、猪或羊皮肤或腱得到。胶原优选用酸提取处理，得到高纯度的原纤维分散体或凝胶。胶原可以是由胶原源使用弱酸，如乙酸、柠檬酸或甲酸酸提取而得。一旦提取入溶液，胶原可以使用氯化钠进行盐沉淀，然后回收，使用标准的技术如离心或过滤。由牛腱中酸提取的胶原的详情描述于例如USP 5106949中，该文被本文引用作为参考。
肝素可以通过各种已熟知的技术施加到假体上。例如，肝素可以用下列三种方式加入假体。其一，可以通过将假体浸蘸苯甲烃铵肝素(benzalkonium heparin，BA-Hep)溶液，之后风干之，将BA-Hep溶液施加到假体上。此步骤用离子结合的BA-Hep配合物处理胶原。其二，EDC可以用来活化肝素，之后将肝素共价结合至胶原纤维上。其三，可以用EDC来活化胶原，之后共价结合鱼精蛋白至胶原上，之后离子结合肝素至鱼精蛋白上。许多本领域已知的其它涂敷、结合和连接步骤同样也可以使用。
组织基质材料的处理也可以用药剂如生长因子或药物与肝素一起或替代肝素来完成。例如，药剂可以包括例如，促进血管形成和上皮形成的生长因子，如由生长因子衍生的巨噬细胞(MDFG)，由生长因子衍生的血小板(PDGF)，由生长因子衍生的血管内皮细胞(VEGF)；抗任何来自外科植入潜在感染的抗生素；或当假体用作神经再生的导管时引入内部胶原层的神经生长因子。构建物中还可以包括与药剂一起的或用于替代药剂的基质成分如蛋白聚糖或糖蛋白或糖胺聚糖。
由此形成的胶原假体可以用中性pH的稀过乙酸溶液灭菌。将胶原灭菌的方法描述于USP 5,460,962中，该文被本文引用作为参考。在优选的方法中，胶原用中性pH的稀过乙酸溶液消毒。过乙酸的浓度优选是大约0.01至0.3v/v％水溶液，中和后的pH介于大约pH6至8之间。另一种选择是，用咖玛照射灭菌，典型的是用2.5Mrad的强度，或也可以使用气体等离子体灭菌。也可以使用本领域已知的其它方法来将胶原灭菌。
提供下列实施例旨在对本发明的实施作更好的阐述，不应被理解为以任何方式限制本发明的范围。本领域技术人员知道，对于在此描述的方法可以有各种修改，但并不偏离本发明的精神与范围。
实施例实施例1机械剥离的猪小肠的化学清洗采集猪小肠，并机械剥离，使用Bitterling肠清洗机(英国诺丁汉)，该清洗机械使用机械作用和水洗涤作用，强制性地从被膜粘膜下层除去脂肪、肌肉和粘膜层。机械作用可以描述为一系列的滚辊，当无损的肠在滚辊间通过时，滚辊压制并从被膜粘膜下层剥离接续的层。由于小肠的被膜粘膜下层比周围的组织相对而言要更硬和挺，因此来自粘膜下层的较软的成分被滚辊从被膜粘膜下层压出。机械清洗的结果是只留下肠的被膜粘膜下层。余下步骤是在无菌和在室温下进行的。化学溶液均在室温下使用。之后将肠纵向切下腔，之后切成15cm的段。将材料称重，并以大约100∶1v/v的溶液与肠材料的比放置于容器中。
A.向每一装有肠的容器中加入大约1L的0.22mm(微米)过滤纸(filter)灭菌的100mM乙二胺四乙酸四钠盐(EDTA)/10mM氢氧化钠(NaOH)溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约18小时。震荡之后，将EDTA/NaOH溶液从每一容器中除去。
B.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的1M盐酸(HCl)/1M氯化钠(NaCl)溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约6至8小时。震荡之后，将HCl/NaCl溶液从每一容器中除去。
C.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的1M氯化钠(NaCl)/10mM磷酸盐缓冲的盐水(PBS)。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约18小时。震荡之后，将NaCl/PBS溶液从每一容器中除去。
D.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的10mM PBS。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约2小时。震荡之后，将磷酸盐缓冲的盐水从每一容器中除去。
E.最后，向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的水。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约一小时。震荡之后，将水从每一容器中除去。
将处理后的样品切割、固定，用于组织分析。在对照和处理的组织的横断和纵断样品上进行Hemotoxylin与eosin(H & E)和Masson三色染色。处理的组织样品表现为无细胞和细胞碎片，而对照样品表现正常并如所预期的有非常多的细胞。
实施例2猪心脏瓣膜的化学清洗从1磅小猪获得猪心，并用搁在冰上的生理pH盐水装运。4小时内，使用解剖刀和镊子将心脏瓣膜从心脏中取出。进行一些进一步的粗解剖，从心瓣周围除去多余的组织。一只瓣膜作为对照，切下样品块并固定，用于各种组织分析，另一瓣膜经受化学清洗过程。余下的步骤在无菌条件和在室温下进行。化学溶液均在室温下使用。
将心瓣(valve)置于100mM EDTA/10mM NaOH的1L溶液中大约18小时，同时在震荡器平台上搅拌。之后将此心瓣置入1L的1M HCl/1M NaCl中并搅拌8小时。接着将此心瓣置入1L的1M HCl/10mM磷酸盐缓冲的盐水(PBS)中并搅拌约18小时。之后过搅拌，边将心瓣用PBS淋洗大约2-4小时，最后用无菌水淋洗大约1小时。将处理的样品块切开并固定，用于各种组织分析。
在对照和处理的心瓣的横断和纵断样品上进行Hemotoxylin与eosin(H & E)和Masson三色染色。处理的心瓣样品表现为无细胞和细胞碎片，而对照样品表现正常并如所预期的有非常多的细胞。
实施例3猪动脉、心包和筋膜的化学清洗从450磅的大母猪中获得股动脉、整个心包和筋膜的片断。这些组织用搁在冰上的生理pH盐水装运。将这些进一步解剖，除去多余的组织。每一组织的样品不经清洗，作为对照样品，并固定，用于各种组织分析，而此组织余下的部分经受化学清洗过程。余下的程序在无菌条件和在室温下进行。化学溶液均在室温下使用。
将组织分别置于100mM EDTA/10mM NaOH的1L溶液中并在震荡器平台上搅拌大约18小时。之后将组织各自分别置入1L的1M HCl/1M NaCl中并搅拌8小时。接下来，将组织分别置入1L的1M HCl/10mM磷酸盐缓冲的盐水(PBS)中并搅拌18小时。之后过搅拌，边将组织分别用PBS淋洗大约2-4小时，最后用灭菌水淋洗大约1小时。将处理的样品块切开并固定，用于各种组织分析。
在对照和处理的心瓣的横断和纵断样品上进行Hemotoxylin与eosin(H & E)和Masson三色染色。处理的组织样品表现为无细胞和细胞碎片，而对照样品表现正常并如所预期的有非常多的细胞。
实施例4不同顺序的化学清洗本方法在无菌条件和在室温下进行。化学溶液均在室温下使用。
机械剥离的猪肠如实施例1中所述切成五个15cm的段。
向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的1M盐酸(HCl)/1M氯化钠(NaCl)溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约8小时。震荡之后，将HCl/NaCl溶液从每一容器中除去。
向每一容器中加入大约1L的0.22mm(微米)过滤纸灭菌的100mM乙二胺四乙酸四钠盐(EDTA)/10mM氢氧化钠(NaOH)溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约18小时。震荡之后，将EDTA/NaOH溶液从每一容器中除去。
向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的1M盐酸(HCl)/10mM磷酸盐缓冲的盐水(PBS)。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约18小时。震荡之后，将NaCl/PBS溶液从每一容器中除去。
向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的10mM PBS。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约1小时。震荡之后，将此磷酸盐缓冲的盐水从每一容器中除去。
最后，向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的水。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约一小时。震荡之后，将水从每一容器中除去。
切下处理的样品块并固定，用于组织分析。在对照和处理的组织的横断和纵断样品上进行Hemotoxylin与eosin(H & E)和Masson三色染色。处理的组织样品表现为无细胞和细胞碎片，而对照样品表现正常并如所预期的有非常多的细胞。
实施例5不同的碱和螯合剂根据实施例1中所描述的方法清洗机械剥离的猪肠粘膜下层。本方法在无菌条件和在室温下进行。化学溶液均在室温下使用。按照实施例1的化学清洗程序，但用其它的类似性质的碱螯合剂来替代其步骤A中的碱螯合剂A.向每一装有肠的容器中加入大约1L的0.22mm(微米)过滤纸灭菌的或者是100mM亚乙基双(氧乙烯次氮基)四乙酸(EGTA)/10mM氢氧化钠(NaOH)溶液；100mM EDTA/10mM氢氧化钙(Ca(OH)2)溶液；或者是100mM EDTA/10mM碳酸钾(K2CO3)溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约18小时。震荡之后，将碱性螯合剂溶液从每一容器中除去。
B.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的1M盐酸(HCl)/1M氯化钠(NaCl)溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上震荡大约6至8小时。震荡之后，将HCl/NaCl溶液从每一容器中除去。
C.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的1M氯化钠(NaCl)/10mM磷酸盐缓冲的盐水(PBS)。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上大约18小时。震荡之后，将NaCl/PBS溶液从每一容器中除去。
D.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的10mM PBS溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上大约1小时。震荡之后，将此磷酸盐缓冲的盐水从每一容器中除去。
E.最后，向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的水。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上大约一小时。震荡之后，将水从每一容器中除去。
将样品固定，用于组织分析。在对照和处理的组织的横断和纵断样品上进行Hemotoxylin与eosin(H & E)和Masson三色染色。处理的组织样品表现为无细胞和细胞碎片，而对照样品表现正常并如所预期的有非常多的细胞。
实施例6不同的酸和盐试剂根据实施例1中所描述的方法清洗机械剥离的猪肠粘膜下层，在步骤B中使用替代的酸试剂或替代的盐试剂进行化学清洗。本方法在无菌条件和在室温下进行。化学溶液均在室温下使用。
A.向每一装有肠的容器中加入大约1L的0.22mm(微米)过滤纸灭菌的100mM乙二胺四乙酸四钠盐(EDTA)/10mM氢氧化钠(NaOH)溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上大约18小时。震荡之后，将EDTA/NaOH溶液从每一容器中除去。
B.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的或者是1M乙酸(CH3COOH)/1M氯化钠(NaCl)溶液；或者是1M H2SO4/1M NaCl溶液。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上大约6至8小时。震荡之后，将溶液从每一容器中除去。
C.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的1M氯化钠(NaCl)/10mM磷酸盐缓冲的盐水(PBS)。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上大约18小时。震荡之后，将NaCl/PBS溶液从每一容器中除去。
D.向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的10mM PBS。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上大约1小时。震荡之后，将此磷酸盐缓冲的盐水从每一容器中除去。
E.最后，向每一容器中加入大约1L的0.22mm滤纸灭菌的水。之后将容器放置于转速为大约200rmp的震荡器台上大约一小时。震荡之后，将水从每一容器中除去。
切下处理后的样品块并固定，用于组织分析。在对照和处理的组织的横断和纵断样品上进行Hemotoxylin与eosin(H & E)和Masson三色染色。处理的组织样品表现为无细胞和细胞碎片，而对照样品表现正常并如所预期的有非常多的细胞。
实施例7用乙酸纤维素凝胶电泳和Alcian蓝分析测定ICL(肠胶原层)的糖胺聚糖(GAG)含量为确定ICL的GAG含量，用化学清洗的ICL的提取液进行乙酸纤维素电泳，随后进行Alcian蓝染色。
将经过概述于实施例1中的化学清洗方式的ICL样品切成0.125cm2的片，并放置入微量离心管中。为消化样品，向每一管中加入100μl木瓜蛋白酶(在0.1M磷酸钠中的0.1mg/ml木瓜蛋白酶、0.1M氯化钠、0.005MEDTA、0.9mg/ml半胱氨酸中，pH5.8)，并将之在60℃下温育大约18小时。平行制备含有已知量GAG(肝素)的标准。之后加入Dowex(0.4g HCl形式)和3ml水。在旋转除去Dowex树脂后，取出1ml并冻干。之后将样品于100μl纯化水中再水合，并离心大约5分钟。
使用Newton等人(1974)的方法，将样品分到乙酸纤维素板(sheet)上。将乙酸纤维素板浸泡于0.1M氯化锂/EDTA缓冲液(pH5.8)中，轻轻渗开。将样品(各5μl)涂在板的阴极端，并在5mA下电泳30分钟。
电泳之后，将板即刻浸入Alcian蓝染色溶液(0.2％Alcian蓝8GX，0.05M氯化镁、0.025M乙酸钠缓冲液(pH5.8)的50％乙烯(ethylene alcohol)醇溶液)并在室温下放置于震荡器平台上大约30分钟。之后将板用至少三次脱色溶液(0.05M氯化镁、0.025M乙酸钠缓冲液(pH5.8)的50％乙烯醇溶液)在震荡器平台上总计脱色大约30分钟。用肝素消化的ICL未观察到GAG染色，并且只可查出低到0.005微克的肝素标准。
这些结果显示，留在化学清洗过的ICL的GAG的总量低于1％(干重)。
实施例8用二氯甲烷提取测定的ICL类脂含量将ICL平放在塑料平板上，并风干2小时。一旦变干，就将ICL切成大约1cm2的小块，其中，将1.100g转移到索格利特套管(soxhlet thimble)中。
向Kontes牌圆底烧瓶24/40中加入90ml二氯甲烷。将索格利特安装在通风橱中，烧瓶底置于热水浴中，并且冰邻却的水流过蒸馏器。
提取四小时，之后将索格利特卸下，将含有溶剂和提取物的圆底烧瓶留在热水浴中，直到二氯甲烷蒸发到只剩5ml。之后将此二氯甲烷转移到11×13玻璃培养试管中，沸腾蒸出余下的溶剂。向试管中加入2ml二氯甲烷，并将试管即刻塞好，并试管置于-20℃冰箱中。
之后测定提取物的重量。将上述玻璃试管置于冰浴中。在微量天平(Spectrum Supermicro)上平衡Ludiag 1.12ml铝质称量皿的重量。向此称量杯皿加入10μl再悬浮的提取物，并将称量皿放置在热板上45秒钟，蒸除溶剂。让称量皿冷却大约190秒，并放置在微量天平上。之后对20μl和30μl提取物体积重复上述过程。
结果表明，类脂的百分率为干的化学清洗过的ICL重量的不到大约0.7％。相反，非化学清洗的ICL含有较高部分的类脂；为干的未用本发明方法清洗过的ICL重量中的至少大约1.5％。
实施例9ICL的氨基酸分析胶原是特征在于其三螺旋区的蛋白，它具有三组重复的氨基酸甘氨酸-X-Y，其中X通常是脯氨酸，而Y经常是羟基脯氨酸。羟基脯氨酸通常用作将胶原定性与定量的氨基酸(Udenfriend，《科学》，1521335-1340，1966)。
为测定完整的ICL氨基酸分析，用机械清洗(不是化学清洗的)猪ICL和化学清洗的ICL进行PICO-TAG HPLC。对二种材料的羟基脯氨酸含量进行测定和比较。
使用CEM AVC80烘箱(CEM Corp.；Matthews，NC)，对来源于每一条件下的重量为大约0.31至大约0.36g的ICL样品块进行进一步干燥。由这些干燥的ICL块上切出重量为大约9.5至大约13.1mg的更小的样品。将样品放入螺旋盖培养试管中，之后将样品在1％苯酚的6M HCl溶液中在110℃水解(每一条件，n＝3)大约16小时。ICL水解物之后用0.1M HCl稀释以标准化材料浓度至1mg/ml。对于标定的玻璃试管(6×55)，20ml水解物和8ml 1.25mmol/ml L-正亮氨酸作为内标。之后将样品冷冻并冰干。通过向试管中加入20ml的2∶2∶1的乙醇∶水∶三乙胺来再干燥，冷冻和冰干。之后将样品在室温下通过加入20ml试剂(7∶1∶1∶1乙醇∶水∶三乙胺∶PITC)衍生20分钟，接着冰冻和冰干。最后将样品悬浮于200mlPICO-TAG样品稀释剂中，并等分成小份入HPLC管。
氨基酸标准物用下列方式制备将0.1ml氨基酸标准物(产品#A-9531，Sigma)加入到1.9ml 0.1M HCl中。使用0.1M HCl以1∶1的比率制成五种系列稀释液。体积为100ml的每种系列稀释液和8ml的1.25mmol/ml L-正亮氨酸一起加入玻璃试管(6×55)中，之后用与ICL样品同样的方式制备。
将样品和标准物上3.9×150mm PICO-TAG氨基酸柱(Part#88131；Waters Corp.；Miford，MA，美国)。分析时，样品注射量为10ml，标准物注射量为20ml，每一处理重复三次。
结果表明，对于化学清洗的ICL材料而言，在材料中的主要胶原氨基酸的含量接近纯化的胶原制剂。使用羟基脯氨酸衡量胶原含量，计算出ICL中的胶原按重量计的百分率为胶原干重的至少93％。相反，非化学清洗的ICL含有高含量的非胶原氨基酸；介于ICL干重大约11至25％的是非胶原材料。
虽然在上文中，为了清楚和理解的目的，采用例解说明和实施例的方式对发明作了一定程度的详细描述，但对于本领域技术人员而言，在本发明权利要求书的范围内可以进行某些变化和修改，这点是不言自明的。
权利要求
1.一种从天然哺乳动物组织中除去非胶原成分以产生基本上是胶原组织基质的无洗涤剂和无酶的方法，包含(a)将组织与有效量的螯合剂的碱性溶液接触；(b)将组织与有效量的含有盐的酸性溶液接触；(c)将组织与有效量的缓冲到大致生理pH的盐溶液接触；和(d)将组织与有效量的淋洗剂接触。
2.权利要求1的方法，其中，步骤(a)的螯合剂选自乙二胺四乙酸(EDTA)和亚乙基双(氧乙烯次氮基)四乙酸(EGTA)。
3.权利要求2的方法，其中，螯合剂的浓度介于大约1至大约200mM之间。
4.权利要求2的方法，其中，螯合剂的浓度介于大约50至大约150mM之间。
5.权利要求1的方法，其中，步骤(a)的碱性试剂选自氢氧化钠、氢氧化钙、碳酸钠或过氧化钠。
6.权利要求5的方法，其中，碱性试剂的浓度介于大约0.001至大约1M之间。
7.权利要求1的方法，其中，步骤(b)的酸性溶液选自盐酸、乙酸和硫酸。
8.权利要求7的方法，其中，酸性溶液的浓度介于大约0.5至2M之间。
9.权利要求7的方法，其中，酸性溶液的浓度介于大约0.95至1.25M之间。
10.权利要求7的方法，其中，酸性溶液的浓度为1M左右。
11.权利要求1的方法，其中，酸-盐溶液的pH介于0至大约1之间。
12.权利要求1的方法，其中，酸-盐溶液的pH介于0至大约0.75之间。
13.权利要求1的方法，其中，酸-盐溶液的pH介于0.1至大约0.5之间。
14.权利要求1的方法，其中，步骤(b)或(c)之一的盐是无机盐。
15.权利要求1的方法，其中，步骤(b)或(c)之一的盐选自氯化钠、氯化钙、氯化钾和硫酸铵。
16.权利要求1的方法，其中，步骤(b)或(c)之一的盐浓度为大约0.1至大约2M。
17.权利要求1的方法，其中，步骤(b)或(c)之一的盐浓度为大约0.75至大约1.25M。
18.权利要求1的方法，其中，步骤(b)或(c)之一的盐浓度为1M左右。
19.权利要求1的方法，其中，所述的组织选自真皮、动脉、静脉、心包、心脏瓣膜、硬脑脊膜、骨、软骨、腱、筋膜和肠。
20.权利要求19的方法，其中，所述的肠组织包括小肠的被膜粘膜下层。
21.权利要求19的方法，其中，所述的组织来源于人、牛、猪、羊、狗、猫或马。
22.权利要求1的方法，其中淋洗剂选自水或生理缓中盐水。
23.权利要求1的方法，其中，步骤(b)的方法是在步骤(a)前进行的。
24.一种从天然哺乳动物组织中除去非胶原成分以产生基本上是胶原组织基质的无洗涤剂和无酶的方法，包含(a)将组织与pH介于大约8至大约12的乙二胺四乙酸的碱性溶液接触；(b)将组织与pH介于大约0至大约1的氯化钠的酸性溶液接触；(c)将组织与pH介于大约5至大约9的氯化钠溶液接触；和(d)淋洗组织。
25.权利要求1至24的任一种方法获得的可生物改造胶原组织基质。
26.一种从天然哺乳动物组织得到的可生物改造的胶原组织基质组成，它基本上没有在所述天然组织中见到的非胶原和非弹性蛋白成分，其无洗涤剂残留物和酶修饰，用于修复或替代损害的或有病的包含胶原和弹性蛋白的身体部分的移植中。
27.一种从小肠的天然被膜粘膜下层得到的无洗涤剂残留物的可生物改造的胶原组织基质组成，其中组织基质包含端肽胶原；弹性蛋白，其中弹性蛋白低于总组成的10％；和非胶原和非弹性蛋白组分，其中所述的组分低于总组成的5％。
全文摘要
本发明涉及胶原组织,该胶原组织已进行过处理,以除去非胶原成分如细胞、细胞碎片和其它细胞外基质成分,如通常见于天然组织中的蛋白聚糖和葡糖胺聚糖。用碱、螯合剂、酸和盐处理组织,从胶原组织基质中除去非胶原成分,而同时控制膨胀量和溶解度,使用所得的胶原基质保留其结构组织、完整性和可生物改造性能。此方法不需要使用损害性地影响胶原基质的细胞相容性、强度和可生物改造性的洗涤剂和酶。该胶原组织基质用于植入、修补,或用在哺乳动物宿主中。
文档编号C12N5/08GK1267201SQ98804844
公开日2000年9月20日 申请日期1998年5月8日 优先权日1997年5月8日
发明者金格尔·A·亚伯拉罕, 小罗伯特·M·卡尔, 保罗·D·肯普, 瑞安·默瑟, 琳达·贝克 申请人:奥加诺吉尼西斯公司