弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒的制作方法

文档序号:5924432阅读:187来源:国知局
专利名称:弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒的制作方法
技术领域
弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒技术领域[0001]本实用新型涉及一种试剂盒,尤其是涉及一种弓形虫IgM抗体检测免疫印迹试剂品.ο背景技术[0002]弓形虫病(Toxoplasmosis)是刚地弓形虫(Toxoplasmagondii)引起的一种严重危害人类健康的人兽共患寄生虫病,其病原体弓形虫可寄生在人及多种动物的有核细胞内,人群及动物普遍易感。该病广泛分布于世界各地,据统计全球约有10亿人被弓形虫感染([1]奚琳琳,李威.弓形虫致病机理,毒力及基因型研究进展[J].中国病原生物学杂志,2009,4(11) :859-861)。弓形虫病在我国分布很广泛,全国各省、市、自治区均有弓形虫感染的报道,我国正常人群平均感染率在4% 9%左右([2]刘敏,陈晓光.中国人群弓形虫病的流行特征分析[J].寄生虫与医学昆虫学报,2010,17(3) :131-134),特殊人群如肿瘤患者、精神病患者、先天缺陷婴幼儿、免疫抑制、免疫缺陷患者感染率更高。所幸的是极大多数免疫功能正常的成人或儿童被弓形虫感染后常无症状或仅有轻微症状,且多能自愈并获永久免疫力。但先天感染的胎儿、儿童以及免疫缺陷者被感染后,则预后极为严重。是造成艾滋病患者死亡的一个重要并发病。人类免疫缺陷病毒(HIV)感染者约有20% 80% 合并弓形虫感染,更重要的是它也是造成人类先天畸形、缺陷、智力低下、死胎、早产的重要病原体之一。[0003]现有的弓形虫病的诊断方法包括直接从脏器、血液、脑脊液等组织分离弓形虫进行病原学诊断,需要几天甚至几周时间,费时费力,在实际应用中价值不大。临床上常规检测主要是应用各种血清学方法,检测其特异IgG和IgM([3]周彬,张珏,王柯,等.弓形虫 IgG和IgM抗体双标记时间分辨荧光免疫分析的建立及其初步临床应用[J].中华检验医学杂志,2010,33 (010) =957-959.),血清学方法可以诊断先天性、急性和慢性弓形虫病,但由于大多数免疫缺陷的人或动物其抗弓形虫的IgG滴度不会上升或不会出现高的IgM滴度,所以不能有效地用血清学方法对患有免疫缺陷的人或动物诊断弓形虫病。另外,在抗原消失相当长时间后血清抗体滴度才会逐步下降,所以也不能应用于治疗效果评价。目前检测IgG抗体存在较高的假阳性,而IgM抗体检测普遍灵敏度差等问题([4]韩靖云,刘倩,郭健.弓形虫感染实验室诊断的技术进展[J].检验医学,2009,M (5) :393-395.)。因此,对疾病的早期诊断帮助不大,急需建立一种具有高度敏感性,且价廉、快速、操作简单、不需特殊设备,更适合于临床的早期诊断方法。[0004]弓形虫病的诊断与流行病学调查主要依赖于血清学试验,正常人体感染弓形虫多为隐性感染,当机体免疫力下降时,虫体大量繁殖,侵入除红细胞外的各组织细胞内寄生,造成各种组织的广泛炎症,从而出现临床症状。人类感染弓形虫后能诱导产生特异性抗体。感染早期IgM抗体增高,IgM在感染4个月后逐渐消失,在感染1个月后出现高浓度 IgG 抗体([5]KASPER D C, PRUSA A R, HAYDE Μ, et al. Evaluation of the vitros eciq immunodiagnostic system for detection of anti-toxoplasma immunoglobulin g3and immunoglobulin m antibodies for confirmatory testing for acute toxoplasma gondii infection in pregnant women[J]. Journal of clinical microbiology,2009, 47(1) :164-168.)。因此,弓形虫IgG抗体是弓形虫病诊断和流行病学调查的一项重要指标。[0005]早期的血清学方法使用弓形虫循环抗原。研究和诊断用的弓形虫循环抗原是以弓形虫感染小鼠腹腔获得,这种方法花费大、获得的抗原量少且不纯(常混有宿主蛋白), 因此假阳性也时有发生。随着分子生物学技术的普及及弓形虫抗原的相继克隆,将重组抗原应用于弓形虫实验已经越来越多。目前研究比较多的弓形虫的表面抗原(SAG1(P30)、 SAG2(P22)、SAG3(P43)、SAG4(P18))、虫体棒状体抗原(R0P1、R0P2)、致密颗粒蛋白(GRA1、 GRA7)等([6]熊美华,王秀珍,刘露霞,等.弓形虫速殖子抗原的提取及蛋白分析[J].中国寄生虫病防治杂志,2001,14(3) :237-238.)。采用重组DNA技术制备的重组抗原可以克服完整弓形虫抗原的缺点,能快速、经济地制备无限量特异重组弓形虫抗原。[0006]现有的弓形虫抗体检测方法包括ELISA、WeStern-bl0t等,其特异性均较高。采用 Western-blot方法制成的试剂盒,一般常规实验室均可完成,不需要特殊设备,判读也简单明了。现市售的Western-blot试剂均为进口试剂,价格昂贵。面对严峻的防制形式,不但需要特异准确的检测手段,还需要一种更经济实用的试剂来筛查,以便为临床和疾病防控提供对策。发明内容[0007]本实用新型的目的是提供一种弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒。[0008]本实用新型设有载体板、硝酸纤维膜、弓形虫IgM抗体检测线和对照线;所述弓形虫IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgM抗体检测线处包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体;辣根过氧化物酶标记抗人μ链抗体。[0009]所述弓形虫重组抗原为SAGl (Ρ30)、SAG2 (Ρ22)、R0P2、GRA7重组抗原。[0010]所述载体板可采用PVC板。[0011]以下给出本实用新型的制备方法[0012]1)制备弓形虫重组抗原[0013]采用基因克隆技术,PCR扩增编码弓形虫抗原的DNA,并插入大肠杆菌中使其表达,得弓形虫重组抗原;所述弓形虫重组抗原为SAG1(P30)、SAG2(P22)、R0P2、GRA7等。[0014]2)硝酸纤维素膜的点样[0015]在硝酸纤维素膜IgM检测线上包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体, 晾干;所述弓形虫重组抗原为SAGl (P30)、SAG2 (P22)、R0P2、GRA7等;所述弓形虫重组抗原和人IgM抗体的浓度可为1 %ig/mL ;点样量可为1 μ L/cm。[0016]3)制备抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体[0017]以人IgM特异性片段μ链为抗原免疫Balb/c小鼠,通过杂交瘤技术,筛选获得稳定分泌抗人IgM单克隆抗体的杂交瘤细胞株;采用ELISA的方法鉴定McAb效价在1 107 以上。[0018]4)抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体的辣根过氧化物酶(HRP)标记[0019]采用过碘酸钠法进行辣根过氧化物酶(HRP)标记;所述辣根过氧化物酶的底物由0. 03% (W/V)的过氧化氢和0.07% (W/V)的二氨基联苯胺组成。[0020]5)制备免疫印迹试剂盒[0021]将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,弓形虫IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上,在弓形虫IgM抗体检测线处包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被包被人IgM 抗体,用切条机切成条状,与酶标记的抗人μ链单克隆抗体及其底物共同组装成弓形虫 IgM抗体免疫印迹试剂盒;所述弓形虫重组抗原为SAGl (Ρ30)、SAG2 (Ρ22)、R0P2、GRA7等。[0022]本实用新型提供了一种采用免疫印迹技术建立弓形虫IgM抗体检测试剂条,可用于全血、血清、血浆及脑脊液等标本中弓形虫IgM抗体的检测。该检测方法所需的标本量极小,不需要特殊仪器,肉眼直接判读结果,且检测简便快速,特异性强,灵敏度高,准确可靠, 成本低,应用广泛。


[0023]图1为本实用新型实施例的结构组成示意图。[0024]图2为实验结果模式示意图。在图2中,H为使用前的示意图,G为无效试验(产品质量问题),F为阴性结果,A E为弓形虫IgM阳性结果;2为弓形虫SAGl (P30)_IgM抗体检测线,3为弓形虫SAG2 (P22) -IgM抗体检测线,4为弓形虫R0P2_IgM抗体检测线,5为弓形虫GRA7-IgM抗体检测线,6为对照线。
具体实施方式
[0025]以下实施例将结合附图对本实用新型作进一步的说明。[0026]参见图1,本实用新型实施例设有载体板1、弓形虫IgM抗体检测线2 5,对照线 6和硝酸纤维膜(NC膜)7。[0027]硝酸纤维膜7粘贴在载体板1上表面,弓形虫IgM抗体检测线2 5和对照线6依次设在硝酸纤维膜7上;在弓形虫IgM抗体检测线处分别包被弓形虫重组抗原SAGl (P30)、 SAG2 (P22)、R0P2和GRA7,在对照线6处包被人IgM抗体。[0028]所述载体板采用PVC板。[0029]以下给出本实用新型的制备方法[0030]1)制备 SAGl (P30)、SAG2 (P22)、R0P2 和 GRA7 弓形虫重组抗原[0031]采用基因克隆技术,PCR扩增编码弓形虫螺旋体抗原的DNA,并插入大肠杆菌中使其表达,得弓形虫重组抗原SAGl (P30)、SAG2 (P22)、R0P2和GRA7。[0032]2)硝酸纤维素膜的点样[0033]在硝酸纤维素膜IgM检测线上包被SAGl (P30)、SAG2 (P22)、R0P2和GRA7弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体,晾干。[0034]3)制备抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体[0035]以人IgM特异性片段μ链为抗原免疫Balb/c小鼠,通过杂交瘤技术,筛选获得稳定分泌抗人IgM单克隆抗体的杂交瘤细胞株。采用ELISA的方法鉴定McAb效价在1 107 以上。[0036]4)抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体的辣根过氧化物酶(HRP)标记[0037]采用过碘酸钠法进行辣根过氧化物酶(HRP)标记。[0038]5)制备免疫印迹试剂盒[0039]将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,弓形虫IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgM抗体检测线处包被弓形虫重组抗原SAGl (P30)、SAG2 (P22)、R0P2 和GRA7,在对照线处包被人IgM抗体,用切条机切成条状,和酶标记的抗人μ链单克隆抗体及其底物共同组装成弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒。[0040]以下给出采用本实用新型检测患者的临床标本[0041]1)标本采用0. Olmol/LPBS缓冲液进行1 50稀释。[0042]2)封闭采用5%脱脂奶粉(0. 01mol/L PBST缓冲液配制)作为封闭液,于室温 (18 25°C )在摇摆摇床上温育30min。[0043]3)血清温育取出所需的膜条,将其放入温育槽内,并编号。在温育槽中分别加入 1. 5ml已稀释样本。于室温(18 25°C )在摇摆摇床上温育30min。[0044]4)清洗吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1. 5ml 0. 01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3 次,每次5min。[0045]5)加酶结合物在温育槽中加入1. 5ml已稀释的酶结合物(采用辣根过氧化物酶标记的抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体为检测抗体),于室温(18 25°C)在摇摆摇床上温育30min。[0046]6)清洗吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1. 5ml 0. 01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3 次,每次5min。[0047]7)底物温育在温育槽中分别加入1. 5ml底物液(DAB),于室温(18 25V )在摇摆摇床上温育IOmin。[0048]8)终止吸去槽内液体,用蒸馏水清洗膜条3次,每次lmin。[0049]结果判断将检测膜条放置在结果判定模板中,风干后判断结果。任何蛋白靶标出现的特异性条带,均可判断为阳性,可辅助诊断弓形虫病(见图2)。[0050]以下给出本实用新型的性能检定[0051]1)外观检查试剂盒无破损,包被反应膜平整、干净无污染斑点、无裂缝,胶带无开胶,无切斜现象。[0052]2)阳性标本符合率用弓形虫IgM阳性的不同滴度的阳性参比血清各50份采用弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒检定,计算阳性符合率。阳性参比血清的确定采用 ELISA(进口试剂)法确定的临床标本。[0053]3)阴性标本符合率用50份阴性参比血清检定,计算阴性符合率。阴性参比血清的确定采用ELISA(进口试剂)法确定的临床标本。[0054]4)批内差异同一批次弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,用特征性血清检测,要求阳性血清检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性血清检测的结果阴性。[0055]5)批间差异不同批次弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,用特征性血清检测,要求阳性血清检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性血清检测的结果阴性。[0056]6)干扰试验检测结果不受标本溶血(n = 50)、脂血(n = 50)和黄疸(n = 50) 的干扰。[0057]7)交叉反应采用本弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,进行系统性红斑狼疮(n = 30)、类风湿病(n = 30)、免疫性肝炎(n = 30)等自身免疫系统疾病的检测,未发现交叉反应。[0058]8)稳定性检测应用Arrhenius法则,将弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒放置 370C 20天后检测,以上各项指标无显著变化,确保成品在室温干燥条件下保存,有效期为 18个月。[0059]以下给出具体实施例。[0060]实施例1[0061]将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,弓形虫IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgM抗体检测线处包被弓形虫重组抗原SAGl (P30)、SAG2 (P22)、R0P2 和GRA7,在对照线处包被人IgM抗体,用切条机切成条状,和酶标记的抗人μ链单克隆抗体及其底物共同组装成弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒。[0062]1)标本采用0. Olmol/LPBS缓冲液进行1 50稀释。[0063]2)封闭采用5%脱脂奶粉(0. 01mol/L PBST缓冲液配制)作为封闭液,于室温 (18 25°C )在摇摆摇床上温育30min。[0064]3)血清温育取出所需的膜条,将其放入温育槽内,并编号。在温育槽中分别加入 1. 5ml已稀释样本。于室温(18 25°C )在摇摆摇床上温育30min。[0065]4)清洗吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1. 5ml 0. 01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3 次,每次5min。[0066]5)加酶结合物在温育槽中加入1. 5ml已稀释的酶结合物(采用辣根过氧化物酶标记的抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体为检测抗体),于室温(18 25°C)在摇摆摇床上温育30min。[0067]6)清洗吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1. 5ml 0. 01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3 次,每次5min。[0068]7)底物温育在温育槽中分别加入1. 5ml底物液(DAB),于室温(18 25V )在摇摆摇床上温育IOmin。[0069]8)终止吸去槽内液体,用蒸馏水清洗膜条3次,每次lmin。[0070]结果判断将检测膜条放置在结果判定模板中,风干后判断结果。任何蛋白靶标出现的特异性条带,均可判断为阳性,可辅助诊断弓形虫病(见图2)。[0071]实施例2[0072]与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由SAG2 (P22)、R0P2和GRA7弓形虫重组抗原组成,不含有SAGl (P30)弓形虫重组抗原。结果判断与实施例1相同。[0073]实施例3[0074]与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由SAGl (P30)、R0P2和GRA7弓形虫重组抗原组成,不含有SAG2(P22)弓形虫重组抗原。结果判断与实施例1相同。[0075]实施例4[0076]与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由SAG1(P30)、SAG2(P22)和 GRA7重组抗原组成,不含有R0P2重组抗原。结果判断与实施例1相同。[0077]实施例5[0078]与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由SAG1(P30)、SAG2(P22)和 R0P2弓形虫重组抗原组成,不含有GRA7弓形虫重组抗原。结果判断与实施例1相同。[0079]实施例6[0080]与实施例1相似,其区别在于待检标本为脑脊液标本,结果判断与实施例1相同。[0081]实施例7[0082]性能验证试验按实施例1方案制备弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,再进行性能验证。[0083]1)外观检查试剂盒无破损,包被反应膜平整、干净无污染斑点、无裂缝,胶带无开胶,无切斜现象。[0084]2)阳性标本符合率用弓形虫IgM阳性的不同滴度的阳性参比标本各50份采用弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒检定,计算阳性符合率。阳性参比标本的确定采用 ELISA(进品试剂)法确定的临床标本。[0085]3)阴性标本符合率用50份阴性参比标本检定,计算阴性符合率。阴性参比标本的确定采用ELISA(进品试剂)法确定的临床标本。[0086]4)批内差异同一批次弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,用特征性标本检测,要求阳性标本检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性标本检测的结果阴性。[0087]5)批间差异不同批次弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,用特征性标本检测,要求阳性标本检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性标本检测的结果阴性。[0088]6)交叉反应采用本弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,进行系统性红斑狼疮(n = 30)、类风湿病(n = 30)、免疫性肝炎(n = 30)等自身免疫系统疾病的检测,未发现交叉反应。[0089]7)稳定性检测应用Arrhenius法则,将弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒放置 370C 20天后检测,以上各项指标无显著变化,确保成品在室温干燥条件下保存,有效期为 18个月。
权利要求1.弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,其特征在于设有载体板、硝酸纤维膜、弓形虫IgM 抗体检测线、对照线,弓形虫IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上。
2.如权利要求1所述的弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,其特征在于所述载体板采用 PVC 板。
专利摘要弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒,涉及一种试剂盒。设有载体板、硝酸纤维膜、弓形虫IgM抗体检测线和对照线;所述弓形虫IgM抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgM抗体检测线处包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgM抗体;辣根过氧化物酶标记抗人μ链抗体。制备弓形虫重组抗原;硝酸纤维素膜的点样;制备抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体;抗人IgM特异性片段μ链单克隆抗体的辣根过氧化物酶标记;制备免疫印迹试剂盒。检测时,所需的标本量极小,不需要特殊仪器,肉眼直接判读结果,且检测简便快速,特异性强,灵敏度高,准确可靠,成本低,应用广泛。
文档编号G01N33/577GK202256346SQ20112035118
公开日2012年5月30日 申请日期2011年9月19日 优先权日2011年9月19日
发明者吴统健, 张长弓, 曹凤玲, 章家新, 郭永炼, 陈桂美 申请人:厦门市仙岳医院
网友询问留言 已有0条留言
  • 还没有人留言评论。精彩留言会获得点赞!
1