山茶皂苷A(CamelliosideA)的应用的制作方法

文档序号:12023879阅读:698来源:国知局
山茶皂苷A(Camellioside A)的应用的制作方法与工艺

本发明涉及一种山茶皂苷a(camelliosidea)的应用,属功效性化妆品技术领域。



背景技术:

皮肤内黑色素含量直接决定肤色深浅,黑色素由黑素细胞合成与分泌。受遗传、紫外线等因素的影响,可导致黑色素代谢异常,黑素细胞分泌的黑色素增加,造成局部皮肤变黑,引起黄褐斑、雀斑、老年斑和炎症后色素沉着等。

黑素细胞中的酪氨酸在酪氨酸酶、多巴色素互变酶、二羟基吲哚酸氧化酶等酶和蛋白作用下经多巴、多巴醌、多巴色素、二羟基吲哚等中间体逐步转化成为黑色素。酪氨酸酶(tyr)及酪氨酸酶相关蛋白1(trp-1)影响黑素细胞合成黑素的关键酶。抑制酪氨酸酶活性,降低酪氨酸酶相关蛋白1的表达均能减少黑色素的合成。

紫外线辐射是皮肤物理性损伤的主要因素,尤其是中波紫外线(uvb),可导致皮肤炎症、色素沉着、老化、皮肤癌。uvb主要作用于表皮角质形成细胞,增加其活性氧族(ros)的产生,引起一系列氧化性损伤,导致sod)含量下降,非酶自由基清除剂耗竭,过氧化最终产物丙二醛(mda)大量积累,而损伤的皮肤抗氧化防御体系会导致更多ros的产生,以正反馈形式加剧皮肤组织和细胞的损伤。超氧化物歧化酶对机体的氧化和抗氧化平衡起到了非常重要的作用,能清除超氧阴离子,保护细胞免受损伤,sod的活力高低间接反映了机体清除氧自由基的能力;mda的量常反应机体脂质过氧化的程度,mda的高低间接反映了细胞受自由基攻击的严重程度。

山茶(camelliajaponica)属于山茶科(theaceae)山茶属(camellia)植物,其分布于云南、四川、台湾、山东、江西等省区。灌木或小乔木,高9米,嫩枝无毛。除了作为著名的观赏植物外,还有一定的药用价值。其性偏凉,味辛、苦,无毒;具有散瘀消肿,止血凉血之功效;可用于治疗血崩,吐血等出血症,及烫伤和跌打损伤等症。目前未见有抑制黑素细胞酪氨酸酶活性、降低trp-1表达及对紫外线照射细胞的抗氧化作用的公开报道。



技术实现要素:

本发明的目的在于提供一种山茶皂苷a(camelliosidea)的应用。

本发明是这样实现的:

1、制备山茶植物活性化合物

本发明的山茶植物活性化合物为山茶皂苷a(camelliosidea),经由如下步骤得到:

a.选用山茶(camelliajaponical.),将5kg干燥的山茶枝叶粉碎,分别用75%乙醇热回流提取3次,时间依次分别为:3h、2h、2h,合并提取液,减压回收乙醇,得到粗提物。粗提物溶解于水中,经d-101大孔树脂柱层析,分别用水、80%乙醇和95%乙醇洗脱。回收溶剂得到80%乙醇洗脱部分和95%乙醇洗脱部分。

b.将80%乙醇洗脱部分用乙醇溶解后,用400g硅胶(80-100目)拌样,2kg硅胶(200-300目)湿法装柱,用氯仿-甲醇-水梯度洗脱(20:1:0→10:1:0→8:2:0.2→7:3:0.5→1:1:0.5),tlc检测后合并后得到三部分(fr.1-3)。经过薄层层析tlc检测,发现fr.3富含三萜皂苷类成分,因此主要对fr.3(90g)进行分离纯化。用mcigelchp20p树脂柱对fr.3脱色,乙醇-水梯度洗脱(30%→40%→50%→60%→70%→100),皂苷集中在50-70%洗脱部位;再通过硅胶柱层析进行湿法装柱上样,用氯仿-甲醇-水梯度洗脱(8:2:0.2→7:3:0.5→1:1:0.5),得到山茶皂苷a(camelliosidea)粗品。粗品溶解于乙醇-水(2:1)中,得到结晶,再次重结晶后,过滤结晶,得到98%的山茶皂苷a(得率:0.06%)。

2、黑素细胞酪氨酸酶抑制率的测定

取对数生长期的小鼠黑素瘤b16细胞,消化,计数,将细胞接种于96孔板,接种密度为104个/孔,过夜后弃去培养液,分别加入100μl/孔的药液,阴性对照组为含溶剂dmso的培养液,空白对照组为无细胞含相应溶剂dmso的培养液,分别在37℃、5%co2细胞培养箱中培养72小时后,弃上清液,pbs洗涤2次,每孔加入50μl含1%tritonx-100的pbs,低速震荡30min,放置于-80℃冰箱中1h,取出后37℃水浴40min,黑素细胞完全裂解。每孔加入100μl浓度为0.1%l-dopa(pbs液配制)溶液,继续置于37℃孵育2h,用酶标仪测定在490nm处的吸光度。每组6孔,重复3次。

酪氨酸酶抑制率=1-[(药物组平均吸光值-空白组平均吸光值)/(阴性对照组平均吸光值-空白组平均吸光值)]×100%

3、酪氨酸酶相关蛋白(trp-1)表达的检测

取对数生长期的小鼠黑素瘤b16细胞,接种于培养瓶中,密度为5000个/cm2,过夜培养后弃去培养液,分别加入药液培养72h。消化离心,用pbs液洗涤3次,加入60ul/瓶细胞裂解液(含1%pmsf、1%磷酸酶抑制剂),震荡30min,使细胞充分裂解。匀浆离心,根据bca法测定蛋白质浓度。根据测定的蛋白浓度,计算蛋白上样量上样,进行sds-聚丙烯酰氨凝胶电泳,120v,电泳90min后将蛋白质转移到pvdf膜上,2.5a,13min。取膜,封闭液室温封闭2h,分别加入(1:200)多克隆兔抗鼠酪氨酸酶相关蛋白1(trp-1)抗体和(1:2000)内参gapdh,4℃过夜。洗膜后,加入(1:5000)辣根过氧化物酶标记的羊抗兔igg,室温轻摇1h。充分洗膜后,做化学发光(ecl),显影,采用凝胶成像分析软件分析,记录每条蛋白电泳带的灰度值,进行分析。计算所测目标蛋白/gapdh比值,得到目标蛋白的相对含量。

4、黑素细胞中黑素合成的检测

取对数生长期的小鼠黑素瘤b16细胞接种于24孔板,过夜培养,弃去培养液,分别加入1ml/孔的药液,阴性对照组为含溶剂dmso的培养液,空白对照组为无细胞含相应溶剂dmso的培养液,分别在37℃、5%co2细胞培养箱中培养72小时后,弃上清,pbs洗涤2次,加入含1mnaoh溶液120ul/孔,80℃,水浴2h。将溶解液体吹匀转移至96孔板中(100ul/孔),用酶标仪测定在405nm处的吸光度。每组3孔,重复3次。

黑素合成抑制率=1-[(药物组平均吸光值-空白组平均吸光值)/(阴性对照组平均吸光值-空白组平均吸光值)]×100%

5、细胞中的抗氧化能力评价

对数生长期的角质形成细胞hacat,以浓度为2×105个/ml,接种于6孔培养板,每孔2ml,分组加药处理12h,撤去药液后加入pbs,以60mj/cm2的剂量照射uvb,24h后收集各组细胞,用4℃pbs洗2遍,反复冻融破碎细胞,将各管细胞悬液置于液氮中4s后,37℃水浴5min,按此操作反复冻融细胞4次,以充分破坏细胞并使其释放出细胞成分,4000r/min离心10min,收集上清液严格参照试剂盒说明分别测细胞内sod和mda水平。并用bca法测定各组细胞内的蛋白浓度。

本发明的山茶皂苷a(camelliosidea)在制备护肤美白剂及抗氧化剂中的应用。

本发明的有益效果在于:山茶植物活性化合物是生态化合物,成本低,具有抑制黑素合成和提高对uvb照射细胞的抗氧化能力,能够在制备护肤美白剂及抗氧化剂中的应用。

附图说明

图1为westernblot检测酪氨酸酶相关蛋白(trp-1)的表达。

图2显示与空白对照组相比,uvb照射的模型组中sod的活力。

图3显示与uvb模型组相比,加入山茶皂苷a的紫外照射组细胞中sod的活力。

具体实施方式:

下面结合附图,对本发明实施例来进一步说明本发明的实质内容。

实施例一:用常规方法制备山茶皂苷a(camelliosidea)

将5kg干燥的山茶枝叶粉碎,分别用75%乙醇热回流提取3次(3h,2h,2h),合并提取液,减压回收乙醇,得到粗提物。粗提物溶解于水中,经d-101大孔树脂柱层析,分别用水、80%乙醇和95%乙醇洗脱。回收溶剂得到水洗脱部分、80%乙醇洗脱部分和95%乙醇洗脱部分。

80%乙醇洗脱部分,用乙醇溶解后,400g硅胶(80-100目)拌样,2kg硅胶(200-300目)湿法装柱,用氯仿-甲醇-水梯度洗脱(20:1:0→10:1:0→8:2:0.2→7:3:0.5→1:1:0.5),tlc检测后合并后得到三部分(fr.1-3)。经过薄层层析tlc检测,发现fr.3富含三萜皂苷类成分,因此主要对fr.3(90g)进行分离纯化。用mcigelchp20p树脂柱对fr.3脱色,乙醇-水梯度洗脱(30%→40%→50%→60%→70%→100),皂苷集中在50-70%洗脱部位;再通过硅胶柱层析进行湿法装柱上样,用氯仿-甲醇-水梯度洗脱(8:2:0.2→7:3:0.5→1:1:0.5),得到山茶皂苷a(camelliosidea)粗品。粗品溶解于乙醇-水(2:1)中,得到结晶,再次重结晶后,过滤结晶,得到纯的山茶皂苷a(得率:0.06%)。

试验中,1h-nmr和13c-nmr的1d、2dnmr谱在avanceiii600mhz超导核磁共振仪上测定(tms为内标,化学位移δ用ppm表示,耦合常数j用hz表示);ms在xevotq-s超高压液相色谱三重四极杆串联质谱联用仪上测定;红外光谱(ir)在brukertensor-27红外光谱仪上测定(kbr压片);柱层析用硅胶g(200-300目)或硅胶h(10-40μ)及薄层层析均为青岛海洋华工工厂产品。反相材料分离材料(rp-8及rp-18)和反相薄层板为merck公司产品。分析和半制备用agilent1260型高效液相色谱仪,半制备色谱柱为agilent公司的zorbax-sb-c18column(5μm;25×9.4mm)。薄层层析通过5%硫酸-乙醇溶液加热观察其斑点。

山茶植物活性化合物山茶皂苷a(camelliosidea)的化学结构式为:

山茶皂苷a(camelliosidea):无色方晶;c53h84o24;ir(kbr)νmax3423,2944,1712,1625,1077cm-1;positiveesi-msm/z1127[m+na]+1h-nmr(c5d5n,600mhz):δh3.27(1h,dd,j=13.4,4.5hz,h-3),5.46(1h,brs,h-12),1.25(3h,s,me-23),1.12(3h,s,me-24),0.83(3h,s,me-25),1.22(3h,s,me-26),1.34(3h,s,me-27),0.91(3h,s,me-29),1.00(3h,s,me-30),4.94(1h,d,j=7.0hz,h-1'),5.84(1h,d,j=8.1hz,h-1”),5.79(1h,d,j=7.9hz,h-1”'),5.19(1h,,d,j=7.9hz,h-1””);13cnmrdate(c5d5n,150mhz)见表1。结构解析表明该化合物为山茶皂苷a(camelliosidea)。

山茶皂苷a(camelliosidea)的碳谱数据(c5d5n,150mhz)

实施例二:活性成分山茶皂苷a抑制黑素细胞酪氨酸酶活性的能力

取对数生长期的小鼠黑素瘤b16细胞,消化,计数,将细胞接种于96孔板,接种密度为104个/孔,过夜后弃去培养液,分别加入100μl/孔15μg/ml山茶皂苷a药液,阳性对照组为相同浓度的熊果苷溶液,阴性对照组为含溶剂dmso的培养液,空白对照组为无细胞含相应溶剂dmso的培养液,分别在37℃、5%co2细胞培养箱中培养72小时后,弃上清液,pbs洗涤2次,每孔加入50μl含1%tritonx-100的pbs,低速震荡30min,放置于-80℃冰箱中1h,取出后37℃水浴40min,黑素细胞完全裂解。每孔加入100μl浓度为0.1%l-dopa(pbs液配制)溶液,继续置于37℃孵育2h,用酶标仪测定在490nm处的吸光度。每组6孔,重复3次。

酪氨酸酶抑制率=1-[(药物组平均吸光值-空白组平均吸光值)/(阴性对照组平均吸光值-空白组平均吸光值)]×100%

表1提取物对b16细胞内酪氨酸酶活性的抑制率(n=3,%)

注:*:与阴性对照组相比,p<0.05。

结果如表1所示:与阴性对照组相比,提取物山茶皂苷a及阳性对照物熊果苷在15ug/ml时可显著抑制b16细胞的酪氨酸酶活性,差异有统计学意义(p<0.05);且山茶皂苷a的抑制率6.97%±3.15高于阳性对照熊果苷组4.96%±1.57。

本发明具有强的酪氨酸酶活性抑制作用。

实施例三:活性成分山茶皂苷a能降低酪氨酸酶相关蛋白(trp-1)的表达取对数生长期的小鼠黑素瘤b16细胞,接种于培养瓶中,密度为5000个/cm2,过夜培养后弃去培养液,分别加入15ug/ml山茶皂苷a、15ug/ml熊果苷或细胞培养基培养72h。消化离心,pbs液洗涤3次,加入60ul/瓶细胞裂解液(含1%pmsf、1%磷酸酶抑制剂),震荡30min,使细胞充分裂解。匀浆离心,根据bca法测定蛋白质浓度。根据测定的蛋白浓度,计算蛋白上样量上样,进行sds-聚丙烯酰氨凝胶电泳,120v,电泳90min后将蛋白质转移到pvdf膜上,2.5a,13min。取膜,封闭液室温封闭2h,分别加入(1:200)多克隆兔抗鼠酪氨酸酶相关蛋白1(trp-1)抗体和(1:2000)内参gapdh,4℃过夜。洗膜后,加入(1:5000)辣根过氧化物酶标记的羊抗兔igg,室温轻摇1h。充分洗膜后,做化学发光(ecl),显影,采用凝胶成像分析软件分析,记录每条蛋白电泳带的灰度值,进行分析。计算所测目标蛋白/gapdh比值,得到目标蛋白的相对含量。

结果如图1所示,与对照组(100%)相比,15ug/ml的山茶皂苷a处理组的酪氨酸相关蛋白1相对表达量降低至16.2%,显著低于同等浓度熊果苷处理组(52.3%)的表达,表明山茶皂苷a能够显著降低trp-1蛋白的表达。

本发明具有强的酪氨酸酶相关蛋白表达抑制作用。

实施例四:活性成分山茶皂苷a对黑素合成的抑制能力

取对数生长期的小鼠黑素瘤b16细胞接种于24孔板,过夜培养,弃去培养液,分别加入1ml/孔的含15ug/ml的山茶皂苷a药液,阳性对照组为相同浓度的熊果苷溶液,阴性对照组为含溶剂dmso的培养液,空白对照组为无细胞含相应溶剂dmso的培养液,分别在37℃、5%co2细胞培养箱中培养72小时后,弃上清,pbs洗涤2次,加入含1mnaoh溶液120ul/孔,80℃,水浴2h。将溶解液体吹匀转移至96孔板中(100ul/孔),用酶标仪测定在405nm处的吸光度。每组3孔,重复3次。

黑素合成抑制率=1-[(药物组平均吸光值-空白组平均吸光值)/(阴性对照组平均吸光值-空白组平均吸光值)]×100%

表2提取物对b16细胞黑素合成的抑制率(n=3,)

注:*:与阴性对照组相比,p<0.05;#:与阳性对照组相比,p<0.05。

结果发现:与阴性对照组相比,提取物山茶皂苷a及阳性对照物熊果苷可显著抑制b16细胞的黑素合成,差异有统计学意义(p<0.05);并且,山茶皂苷a的抑制率显著高于阳性对照熊果苷组,差异有统计学意义(p<0.05),见表2。

本发明具有强的黑素合成抑制能力。

实施例五:活性化合物茶皂苷a对uvb照射细胞的抗氧化能力

实验设置为空白对照组、uvb模型组、uvb+山茶皂苷a组。uvb+山茶皂苷a组角质形成细胞hacat于紫外线照射前12h加入15ug/ml山茶皂苷a,空白对照组和uvb模型组只加入相同量的dmem培养基。各组于紫外线照射前吸取培养基,再加入pbs覆盖。以uvb(波长280-320nm)照射,照射剂量为60mj/cm2。空白对照组用锡箔纸遮住,辐照结束后弃去pbs液,再分别加入dmem培养基,继续培养。

对数生长期的hacat细胞,以细胞浓度为2×105个/ml,接种于6孔培养板,每孔2ml,分组与处理如上所述。uvb照射24h后收集各组细胞,用4℃pbs洗2遍,反复冻融破碎细胞,将各管细胞悬液置于液氮中4s后,37℃水浴5min,按此操作反复冻融细胞4次,以充分破坏细胞并使其释放出细胞成分,4000r/min离心10min,收集上清液严格参照试剂盒说明分别测细胞内sod和mda水平。并用bca法测定各组细胞内的蛋白浓度。

图2结果显示:与空白对照组相比,uvb照射的模型组中sod活力显著降低(p<0.01),mda活力显著升高(p<0.01),表明uvb辐射对hacat造成明显损伤,uvb组造模成功。

图3结果显示:与uvb模型组相比,加入山茶皂苷a的紫外照射组细胞中sod活力明显提高(p<0.05),差异具有统计学意义;而反应细胞受损程度的mda含量在加入山茶皂苷后却降低(p<0.01)。

本发明具有抗氧化能力,能够减轻细胞受损程度。

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