脆弱拟杆菌及其两性离子荚膜多糖在制备用于治疗呼吸系统肿瘤药物中的应用的制作方法

脆弱拟杆菌及其两性离子荚膜多糖在制备用于治疗呼吸系统肿瘤药物中的应用
1.本发明在实施过程中所使用的微生物菌种已于2015年4月2日在中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(cgmcc)(北京市朝阳区北辰西路1号院3号)保藏。分类命名：脆弱拟杆菌zy-312(bacteroides fragilis zy-312)，保藏编号cgmcc no.10685。脆弱拟杆菌zy-312由本发明申请单位自行分离获得，并且已经在授权专利保护(专利号201510459408.x)，按照专利审查指南的规定，公众能够从商业渠道买到或已经授权，不用保藏，即不用提供保藏证明。
技术领域
2.本发明涉及生物医药领域，具体涉及一种脆弱拟杆菌和/或其两性离子荚膜多糖在制备治疗呼系统肿瘤药物中的应用。


背景技术：

3.呼吸系统肿瘤是指任何特征为在呼吸系统中解剖学定位为恶性细胞的疾病，包括肺癌、鼻咽癌、喉癌等。其中，肺癌作为呼吸系统肿瘤的代表，2020年全球肺癌死亡180 万例，远超其他癌症类型，位居癌症死亡人数第一。从病理和治疗角度，肺癌大致可以分为非小细胞肺癌(non small celllung cancer，nsclc)和小细胞肺癌(small celllungcancer，sclc)两大类，其中非小细胞肺癌约占80％～85％，其余为小细胞肺癌。依据世界卫生组织(who)2015年发布的肺癌组织学分型标准，肺癌主要组织类型为鳞状细胞癌和腺癌，约占全部原发性肺癌的80％左右。其他少见类型原发性肺癌包括：腺鳞癌，大细胞癌、神经内分泌癌(类癌、不典型类癌和小细胞癌)等。其中sclc由于其独特的生物学行为，各个诊疗指南中建议分为局限期与广泛期。
4.大量的流行病学研究表明，肺癌发生的主要危险因素包括：吸烟和被动吸烟、室内燃料和烹调油烟所致污染、室内氡暴露、室外空气污染、和遗传因素都有关系。吸烟是目前公认的肺癌最重要的危险因素。同时，由于我国工业化发展导致空气污染日益加重，空气中细颗粒物(pm2.5)增加肺癌死亡风险。肺癌患者中也存在家族聚集现象。这些说明遗传因素可能在对环境致癌物易感的人群和(或)个体中起重要作用。
5.鼻咽癌是头颈部最常见的恶性肿瘤，是由鼻咽腔表面或鼻咽隐窝的上皮发生的恶性肿瘤。鼻咽癌相对于其他癌症来说并不算常见，根据iarc的调查，在2020年约有12.9 万鼻咽癌新发病例，在所有癌症中占比0.7％。鼻咽癌组织学分型采用who分类(2017 版)标准，分为角化型鳞状细胞癌、非角化型鳞状细胞癌、基底细胞样鳞状细胞癌和其他类型鼻咽癌。鼻咽癌的发生一般来说与多种因素的综合作用有关，其中比较明确的有：遗传因素、eb病毒感染、环境因素(如芳香烃、亚硝胺及镍等)。
6.目前针对呼吸系统肿瘤的治疗方法包括手术、放疗、化疗、分子靶向治疗和免疫治疗等。
7.在nsclc的治疗中，解剖性肺切除术辅以含铂双药方案是早中期肺癌的主要治疗
手段，也是目前临床治愈肺癌的重要方法。大多数非小细胞肺癌在治疗时已经局部晚期或远处转移，不能手术切除，使用放疗、化疗联合疗法，化疗方案包括依托泊苷+顺铂 (ep)或卡铂(ec)、培美曲塞+顺铂或卡铂、紫杉醇或多西紫杉醇+铂类。由于sclc 恶性程度高、易转移，但对化疗、放疗较敏感，主要采用化疗、放疗和预防性脑放疗结合的综合治疗。由于缺乏临床症状和有效的筛查程序，大多数肺癌被诊断已为晚期，进行切除术后nsclc局部复发的可能性依然较高。新兴的靶向治疗和免疫疗法主要用于转移、复发肿瘤。在nsclc的治疗中，晚期nsclc的一线药物治疗中如患者egfr 基因突变，可选择表皮生长因子受体酪氨酸激酶抑制剂，包括吉非替尼、厄罗替尼等。驱动基因阴性的晚期nsclc患者可选择刚刚获批上市的pd-1抑制剂纳武利尤单抗 (nivolumab)。广泛期sclc的一线治疗加入了免疫治疗如阿替利珠单抗+ec方案，细胞程式死亡-配体1(pd-l1)单抗度伐利尤单抗联用等方案。
8.目前鼻咽癌公认和有效的根治性治疗手段为放射治疗，放疗与铂类药物化疗相结合是治疗局部晚期鼻咽癌的关键。随着调强放疗等在鼻咽癌治疗中广泛应用，鼻咽癌的局部控制率和总生存率得到显著提高，但远端转移是鼻咽癌治疗中最主要的失败模式。鼻咽癌可通过血行转移至全身多处器官，常见的转移部位有骨、肺和肝。一般占初治患者的10％左右，初治时未发现转移的患者中，治疗后15％左右仍会发生远处转移。对于复发或转移性鼻咽癌的治疗多选用化疗、免疫治疗、靶向治疗等。若鼻咽癌组织egfr和 vegfr阳性，可用egfr单克隆抗体(西妥昔单抗或尼妥珠单抗)、vegfr单克隆抗体(贝伐单抗)、酪氨酸激酶抑制剂(阿帕替尼、安罗替尼等)及重组人血管内皮抑制素等靶向治疗。免疫疗法也发挥重要作用，如卡瑞利珠单抗+gp(吉西他滨+顺铂)，以及在挽救治疗方案中的特瑞普利单抗。
9.靶向治疗和免疫疗法作为新兴的热门治疗方法，在转移、复发呼吸系统肿瘤的治疗中起到重要作用，但其不良反应却不容忽视，可发生在皮肤、神经内分泌、胃肠道、肝、肺、心脏、肾脏等各个系统，还可能存在免疫性肠炎、肺炎、肝炎和心肌炎等严重不良反应。所以进一步提高联合治疗效果和减少毒性是免疫治疗与靶向治疗比较有突破前景的研究方向。
10.2017年nature杂志发表的重要文献提出“肠-肺轴微生态调控”，证实肠道菌群与肿瘤密切相关，然而现有技术还没有用于治疗呼吸系统肿瘤的微生态产品。
11.脆弱拟杆菌(bacteroides fragilis，b.fragilis)为革兰氏染色阴性、杆状、两端钝圆而浓染、有荚膜、无芽胞、无动力的专性厌氧细菌，分为产肠毒素型(etbf)和非产肠毒素型(ntbf)，是人及动物肠道正常菌群的一部分，主要存在于结肠中，呼吸道、胃肠道及泌尿生殖道粘膜也可定植生长。研究发现非产肠毒型脆弱拟杆菌(ntbf)具有重要的益生作用。能够调控t细胞扩张和产生阻碍致病性th17细胞发育的细胞因子 il-10，具有抗炎作用，被认为是具有潜力的新一代益生菌。已有多项研究表明ntbf 能够分泌抑炎细胞因子il-10，促进th1/th2细胞的平衡，能够抵抗肠道炎症，对葡聚糖硫酸钠dss诱导的结肠炎具有治疗作用。脆弱拟杆菌与宿主的关系在很大程度上取决于其高度复杂和动态的荚膜结构，b.fragilis两性离子荚膜多糖(capsularpolysaccharide，cps)是首个公认的调节宿主免疫系统的发育，逆转无菌动物的形态、细胞和功能缺陷的共生因子。开发脆弱拟杆菌或其提取物两性离子荚膜多糖用于治疗呼吸系统肿瘤药物的应用方向具有前景且是必要的。


技术实现要素：

12.为克服现有技术中所存在的上述缺陷，本发明的目的是提供一种脆弱拟杆菌及其
两性离子荚膜多糖在治疗呼吸系统肿瘤中的应用。本发明通过大量实验证明，脆弱拟杆菌特别是保藏编号为cgmcc no.10685的脆弱拟杆菌zy-312及其两性离子荚膜多糖，特别是荚膜多糖psa，可通过增加抗肿瘤因子il-12、ifn-γ的水平，抑制肿瘤促进因子 il-1β的表达。促进肿瘤中浸润的cd8+cd45+t细胞比例有上调，调节肿瘤组织微环境。能有效抑制小鼠体内肺部移植肿瘤的生长，降低原位肿瘤的重量，抑制肿瘤转移，可有效地防治呼吸系统肿瘤。
13.为了实现上述目的，本发明采用如下技术方案：
14.第一方面，提供一种脆弱拟杆菌和/或其两性离子荚膜多糖在制备预防和/或治疗呼吸系统肿瘤的产品中的应用，所述脆弱拟杆菌为保藏编号为cgmcc no.10685的脆弱拟杆菌zy-312。
15.在其中一些实施例中，所述脆弱拟杆菌是活菌、形态结构完整的灭活菌或形态结构不完整的灭活菌中的一种或多种。
16.在其中一些实施例中，所述脆弱拟杆菌是脆弱拟杆菌活菌体，经过灭活、基因重组、改造或修饰、减毒、化学处理、物理处理或灭活的脆弱拟杆菌，脆弱拟杆菌裂解物，脆弱拟杆菌液体培养上清液中的一种或多种。
17.在其中一些实施例中，所述呼吸系统肿瘤包括头颈部鳞癌、非小细胞肺癌、小细胞肺癌。
18.在其中一些实施例中，所述头颈部鳞癌包括鼻咽癌、喉癌。
19.在其中一些实施例中，所述两性离子荚膜多糖含有荚膜多糖a。其中，所述荚膜多糖a的结构如下所示：
[0020][0021]
根据本发明，所述荚膜多糖a的重均分子量为80-90kd，其中分子量分布于 70kd-100kd的部分占总量的70-80％。
[0022]
在其中一些实施例中，其中，所述荚膜多糖a的含量超过95wt％。
[0023]
在其中一些实施例中，所述两性离子荚膜多糖的制备方法包括以下步骤：
[0024]
(1)将发酵培养后的脆弱拟杆菌菌液离心收集沉淀物，即得脆弱拟杆菌菌泥；取菌泥，加入菌泥质量3～10倍的纯化水使菌体重悬，用酸溶液调节其ph至2.0～4.5， 50～120
℃提取0.5～3.0h，冷却至室温，常温离心，取上清，得到粗糖溶液；
[0025]
(2)粗糖溶液经超滤膜超滤浓缩、除小分子杂质，至电导率稳定，收集回流液；
[0026]
(3)回流液中加入等体积40mmol/l tris-hcl转盐；离子交换柱层析，梯度洗脱，分段收集，sec-hplc跟踪监测，合并206nm吸收峰为单一、对称峰的组分，超滤膜超滤，加入纯化水反复超滤，至电导率稳定，收集回流液，冻干，得到脆弱拟杆菌两性离子荚膜多糖。
[0027]
在其中一些实施例中，步骤(1)中所述离心为11000～13000g离心8～12min。
[0028]
在其中一些实施例中，步骤(1)中所述酸溶液可以是有机酸、无机酸和酸性缓冲液中的一种或多种。其中，无机酸可以是盐酸、硫酸、磷酸等；有机酸可以是乙酸、柠檬酸等。
[0029]
在其中一些实施例中，步骤(2)中所述超滤膜可以为100、50、30、10、5、3kd 或者任意两个分子量值之间的范围。
[0030]
在其中一些实施例中，步骤(3)中所述离子交换柱优选为deae sepharose fast flow 的16mm
×
200mm，层析时的流速15～25ml/min，ph5.0～9.0含0.2mol/l nacl 20mmol/ltris-hcl梯度洗脱25个柱体积，分段收集，100ml/瓶(组分)；所述超滤膜为10kd。
[0031]
在其中一些实施例中，所述产品为食品或药品。
[0032]
在其中一些实施例中，所述药品为脆弱拟杆菌或其两性离子荚膜多糖单独应用、或脆弱拟杆菌和其两性离子荚膜多糖联合应用、或脆弱拟杆菌或其两性离子荚膜多糖分别与其他药物联用、或脆弱拟杆菌和其两性离子荚膜多糖一起与其他药物联用。
[0033]
在其中一些实施例中，所述药品的剂型包括丸剂、片剂、颗粒剂、胶囊、口服液或管饲制剂。所述药品包括人用药或动物用药。
[0034]
在其中一些实施例中，所述食品包括奶粉、干酪、凝乳、酸奶酪、冰激凌或发酵谷类食品。所述食品还可以是动物食品，比如饲料等。
[0035]
第二方面，提供一种治疗呼吸系统肿瘤的组合物，其中，所述组合物含有药学有效剂量的保藏编号为cgmcc no.10685的脆弱拟杆菌和/或其两性离子荚膜多糖。
[0036]
在其中一些实施例中，所述脆弱拟杆菌的药学有效剂量为10
6-10
10
cfu。
[0037]
在其中一些实施例中，所述两性离子荚膜多糖的药学有效剂量为1-30mg/kg。
[0038]
在其中一些实施例中，所述脆弱拟杆菌是活菌、形态结构完整的灭活菌、形态结构不完整的灭活菌中的一种或多种。
[0039]
在其中一些实施例中，所述脆弱拟杆菌是脆弱拟杆菌活菌体，经过灭活、基因重组、改造或修饰、减毒、化学处理、物理处理或灭活的脆弱拟杆菌，脆弱拟杆菌裂解物，脆弱拟杆菌液体培养上清液中的一种或多种。
[0040]
在其中一些实施例中，所述两性离子荚膜多糖含有荚膜多糖a。
[0041]
在其中一些实施例中，所述两性离子荚膜多糖取自所述脆弱拟杆菌zy-312。
[0042]
在其中一些实施例中，所述荚膜多糖a的结构如下所示：
[0043][0044]
根据本发明，所述荚膜多糖a的重均分子量为80-90kd，其中分子量分布于 70kd-100kd的部分占总量的70-80％。
[0045]
在其中一些实施例中，其中，所述荚膜多糖a的含量超过95wt％。
[0046]
在其中一些实施例中，所述两性离子荚膜多糖的制备方法包括以下步骤：
[0047]
(1)将发酵培养后的脆弱拟杆菌菌液离心收集沉淀物，即得脆弱拟杆菌菌泥；取菌泥，加入菌泥质量3～10倍的纯化水使菌体重悬，用酸溶液调节其ph至2.0～4.5， 50～120℃提取0.5～3.0h，冷却至室温，常温离心，取上清，得到粗糖溶液；
[0048]
(2)粗糖溶液经超滤膜超滤浓缩、除小分子杂质，至电导率稳定，收集回流液；
[0049]
(3)回流液中加入等体积40mmol/l tris-hcl转盐；离子交换柱层析，梯度洗脱，分段收集，sec-hplc跟踪监测，合并206nm吸收峰为单一、对称峰的组分，超滤膜超滤，加入纯化水反复超滤，至电导率稳定，收集回流液，冻干，得到脆弱拟杆菌两性离子荚膜多糖。
[0050]
在其中一些实施例中，步骤(1)中所述离心为11000～13000g离心8～12min。
[0051]
在其中一些实施例中，步骤(1)中所述酸溶液可以是有机酸、无机酸和酸性缓冲液中的一种或多种。其中，无机酸可以是盐酸、硫酸、磷酸等；有机酸可以是乙酸、柠檬酸等。
[0052]
在其中一些实施例中，步骤(2)中所述超滤膜可以为100、50、30、10、5、3kd 或者任意两个分子量值之间的范围。
[0053]
在其中一些实施例中，步骤(3)中所述离子交换柱优选为deae sepharose fast flow 的16mm
×
200mm，层析时的流速15～25ml/min，ph5.0～9.0含0.2mol/l nacl 20mmol/ltris-hcl梯度洗脱25个柱体积，分段收集，100ml/瓶(组分)；所述超滤膜为10kd。
[0054]
在其中一些实施例中，所述组合物为益生菌组合物、保健品组合物或药物组合物。
[0055]
本发明的用于防治呼吸系统肿瘤的益生菌组合物，其中，所述益生菌组合物含有保藏编号为cgmcc no.10685的脆弱拟杆菌zy-312和/或提取自所述脆弱拟杆菌zy-312 的两性离子荚膜多糖。该益生菌组合物还可包括来自酵母菌属(saccharomyces spp.)、乳酸杆菌属(lactobacillus spp.)及人肠道正常菌群的益生菌或微生物中的一种或多种。所述酵母菌属的益生菌可包括布拉氏酵母(saccharomyces boulardii)和/或酿酒酵母 (saccharomyces cerevisiae)。
atcc；所有细胞培养材料及胰酶购自gibco；所有实验动物购自浙江维通利华实验动物技术有限公司；或者可以通过已知方法制备。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件如sambrook等人，分子克隆：实验室手册(newyork:coldspringharborlaboratorypress,1989)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。
[0068]
除非另外定义或由背景清楚指示，否则在本公开中的全部技术与科学术语具有如本公开所属领域的普通技术人员通常理解的相同含义。
[0069]
实施例1：脆弱拟杆菌的发酵培养
[0070]
将脆弱拟杆菌zy-312菌种划线接种于血平皿，厌氧培养48h。观察菌落形态特征、染色特性、大小、球杆状和分布情况等。菌落特征：脆弱拟杆菌zy-312在血平皿上培养48h后，呈现圆形微凸、半透明、白色、表面光滑、不溶血，菌落直径在1-3mm之间，参见图1。
[0071]
显微镜下形态：脆弱拟杆菌zy-312进行革兰氏染色镜检，为革兰阴性细菌，呈现典型的杆状，两端钝圆而浓染，菌体中间不着色部分形如空泡，参见图2。
[0072]
实施例2脆弱拟杆菌活菌液及灭活菌液的制备
[0073]
1)活菌液制备
[0074]
选取实施例1中培养的单个菌落接种于植物源蛋白胨液体培养基中进行发酵培养8小时(温度为37℃)，得脆弱拟杆菌活菌液；所得菌液离心沉淀，转速3000r/min，离心15min，去上清，收集沉淀物，即得脆弱拟杆菌zy-312菌泥。
[0075]
2)灭活菌液的制备
[0076]
取上述菌液，常规热灭活处理，得脆弱拟杆菌zy-312灭活菌液。
[0077]
实施例3：脆弱拟杆菌荚膜多糖的制备
[0078]
采用实施例1制备的菌泥进行实验。
[0079]
(1)取50g菌泥，加入300g纯化水使菌体重悬，用1mol/l盐酸溶液调节其ph至3.5，100℃提取1.5h，冷却至室温，12000g常温离心10min，取上清，得到粗糖溶液；
[0080]
(2)粗糖溶液经10kd超滤膜超滤浓缩、除小分子杂质，至电导率稳定，收集回流液；
[0081]
(3)回流液中加入等体积40mmol/ltris-hcl(ph8.5)转盐；deaesepharosefastflow离子交换柱层析(16mm
×
200mm)，流速20ml/min，20mmol/ltris-hcl(ph8.5，含0.2mol/lnacl)梯度洗脱25个柱体积，分段收集，100ml/瓶(组分)，sec-hplc跟踪监测，合并206nm吸收峰为单一、对称峰的组分，10kd超滤膜超滤，加入纯化水反复超滤，至电导率稳定，收集回流液，冻干，得到脆弱拟杆菌提取物；
[0082]
(4)称量30mg步骤(3)所述的脆弱拟杆菌提取物，溶于0.5mld2o，加入1μl丙酮(1h，2.22；13c，30.89)定标。采用500mhzbruker核磁共振波谱仪分析1h、13c、cosy、hsqc、hmbc谱(参见图3a-e)，确证步骤(3)收集的脆弱拟杆菌提取物为荚膜多糖a，结合脂质含量低于0.02％，蛋白残留低于1％，核酸残留低于0.05％。通过gpc(凝胶渗透色谱)分析，制得的荚膜多糖a重均分子量为80-90kda，mw/mn为1.0-1.2，化学结构参见图4。
[0083]
实施例4：脆弱拟杆菌及其两性离子荚膜多糖在体外通过巨噬细胞促进小鼠肺癌细胞系lewis细胞株凋亡的药效实验
[0084]
1、材料与实验设计(分组)
[0085]
本实施例通过向小鼠巨噬细胞系raw264.7加入低、中、高剂量的脆弱拟杆菌zy-312活菌液，高剂量的zy-312灭活菌及低、中、高剂量的zy-312的psa进行孵育，使用
transwell共培养小室(corning，3412)与lewis细胞共培养在24h收取细胞采用流式细胞仪(beckman coulter)检测肿瘤细胞凋亡情况。以pbs作为对照。上述zy-312 的灭活菌液由实施例2方法制备，psa参照实施例3方法制备，下同。
[0086]
2、培养方法
[0087]
(1)小鼠lewis细胞和raw264.7细胞的复苏和传代
[0088]
小鼠肺癌细胞lewis细胞和raw264.7细胞均生长于含10％fbs的dmem培养基中，加入1％青霉素/链霉素，37℃温度下，5％co2浓度，饱和湿度的培养箱培养。每两天更换一次培养基。
[0089]
a)液氮中取出细胞株，在37℃恒温水浴锅中迅速融化。无菌条件下打开冻存管，转移液体至15ml的离心管中，用dmem完全培养基2-3ml重悬细胞，1000rpm，离心5min。弃上清后，加入dmem完全培养基5ml，将细胞接种于培养瓶，37℃温度下， 5％co2浓度的培养箱培养48h。
[0090]
b)弃去原培养液，加入1ml 0.25％胰蛋白酶，消化5min，加入1ml含10％胎牛血清的dmem培养基终止反应，并移至15ml离心管中，1000rpm离心5分钟；弃上清液，加入适宜的含10％胎牛血清的dmem完全培养基，将细胞分接于培养瓶，37℃温度下，5％co2浓度的培养箱培养24h。
[0091]
(2)脆弱拟杆菌菌液培养
[0092]
a)取脆弱拟杆菌zy-312菌种，加入200μl tsb培养基，复溶，划板，37℃、厌氧培养48h。
[0093]
b)挑取单菌落接入10ml tsb培养基，加入5％(v/v)血清，37℃、厌氧培养12h。
[0094]
c)取1瓶500ml tsb培养基，加入5％(v/v)血清，接入1％(v/v)b)培养后的脆弱拟杆菌，37℃、厌氧培养48h。
[0095]
d)取上述菌液，常规热灭活处理，得灭活菌液。
[0096]
e)按照实施例3制备zy-312的psa。
[0097]
3、脆弱拟杆菌通过raw264.7巨噬细胞对lewis细胞凋亡的影响
[0098]
(1)将500μl的raw264.7细胞(105)分别接种于6孔transwell板下室中，分别加入10μl 106、108、10
10
cfu/ml的脆弱拟杆菌菌液zy-312、zy-312灭活菌液 (10
10
cell/ml)及0.02、0.2、2mg/ml zy-312的psa，进行预处理6h，随后分别加入接种lewis细胞的上室。设置仅加入等量raw264.7细胞的孔作为阴性对照，加入等量肿瘤细胞和顺铂(ddp)(15μm)(山东齐鲁制药有限公司)的孔作为阳性对照组，每组复孔3个。于37℃温度，5％co2培养箱培养。
[0099]
(2)使用annexin v凋亡检测试剂盒(诺唯赞，a211-01)在24h收集检测lewis 细胞的凋亡情况：
[0100]
a)用不含edta的胰酶消化细胞，终止消化后收集细胞，1000rpm、4℃离心5min，弃上清。
[0101]
b)洗涤细胞：用预冷的pbs洗涤细胞两次，每次均在1000rpm、4℃离心5min，弃上清。
[0102]
c)细胞重悬：加入100μl的1
×
binding buffer，轻轻吹匀至单细胞悬液。
[0103]
d)细胞染色：加入5μl annexin v-fitc和5μl pi staining solution，轻轻吹匀；避光、室温(20～25℃)孵育10min；加入400μl的1
×
binding buffer，轻轻混匀。染色后样品
在 1h内用流式细胞仪检测。
[0104]
e)细胞凋亡情况：计算annexin v-fitc单阳性(annexin v-fitc﹢/pi﹣)的早期凋亡细胞和annexin v-fitc和pi双阳性(annexin v-fitc﹢/pi﹢)的晚期凋亡细胞比例之和。
[0105]
4、实验结果：
[0106]
表1 lewis细胞凋亡率(％)(均值
±
标准差，n＝3)
[0107][0108]
注：与阳性对照组比较，*表示差异显著p《0.05；**表示差异极显著p《0.01。
[0109]
如表1所示，阴性组(仅加入raw264.7细胞)凋亡率显著低于阳性对照。脆弱拟杆菌zy-312及zy-312灭活菌液和zy-312psa均能够通过raw264.7细胞促进lewis 细胞凋亡。脆弱拟杆菌zy-312组内的差异不显著，无论是活菌、灭活菌还是psa组， lewis细胞凋亡情况与阳性对照组相比均有统计学差异。
[0110]
因此，脆弱拟杆菌zy-312、zy-312灭活菌和zy-312psa均能够通过raw264.7 促进lewis细胞凋亡。
[0111]
实施例5：脆弱拟杆菌及其两性离子荚膜多糖治疗小鼠非小细胞肺癌移植瘤的药效试验
[0112]
将处于对数生长期的小鼠肺癌细胞系lewis细胞调整细胞浓度至2
×
104个/ml的单细胞悬液，无菌条件下用注射器以0.2ml/只的量将lewis细胞接种于spf级c57bl/6 小鼠右腋窝皮下，制备lewis肺癌瘤源小鼠。第11天复种一次，第21天正式实验时，选取生长良好的lewis肺癌组织，无菌条件下，脱颈椎处死，从腋下剥取瘤体组织，剪碎、匀浆、研磨，按肿瘤质量(g)与生理盐水(ml)1：3比例制成浓度为1
ꢀ×
107个/ml的瘤细胞悬液。lewis肺癌瘤源小鼠细胞悬液以每只0.2ml左右接种于小鼠右前肢腋窝皮下进行造模。造模后一周开始给药，zy-312低(106cfu/只)、高 (10
10
cfu/只)剂量组、zy-312灭活菌(10
10
cell/只)、zy-312psa低(10mg/kg)和 zy-213psa高(30mg/kg)连续灌胃3周；ddp(顺铂，山东齐鲁制药有限公司)组每周腹腔注射1次，连续注射5周。当实验结束或荷瘤鼠出现明显的消瘦、弓背、精神萎靡等衰竭体征时，脱颈椎处死，取移植肿瘤测定其重量并计算抑瘤率，取新鲜瘤体组织检测肿瘤微环境情况，取血清至于-80℃冰箱中冻存，用于检测细胞因子等。
[0113]
一、lewis细胞培养
[0114]
lewis细胞培养于含10％胎牛血清的dmem培养基中，培养温度为37℃，气体环境为5％co2，湿度为饱和湿度；根据细胞生长的速度及培养液的颜色变化更换培养液，用0.25％的胰蛋白酶消化传代。根据细胞生长情况，将对数生长期的细胞制备成单细胞悬液，将细胞浓度调整至2
×
104个/ml。
[0115]
二、lewis肺癌瘤源小鼠的制备
[0116]
取6～8周龄，体质量约(20
±
2)g，spf级c57bl/6小鼠10只，将处于对数生长期的小鼠肺癌细胞系lewis细胞调整细胞浓度至2
×
104个/ml的单细胞悬液，无菌条件下用注射器以0.2ml/只的量将lewis细胞接种于小鼠右腋窝皮下，当皮下移植瘤长至直径约1cm左右时剥取移植瘤。
[0117]
三、肺癌移植瘤模型的建立
[0118]
选取生长良好的lewis肺癌组织，无菌条件下，脱颈椎处死，从腋下剥取瘤体组织，剪碎、匀浆、研磨，按肿瘤质量(g)与生理盐水(ml)1：3比例制成浓度为1
ꢀ×
106个/ml的瘤细胞悬液。在无菌条件下，将上述制备的细胞悬液，以每只0.2ml左右接种于小鼠右前肢腋窝皮下。
[0119]
四、分组及给药
[0120]
移植瘤模型建立1周后，将70只小鼠随机分为7组，每组10只：生理盐水组、ddp 组、zy-312低(106cfu/只)、高(10
10
cfu/只)剂量组、zy-312灭活菌组(10
10
cell/ 只)、zy-312psa低(10mg/kg)和zy-213psa高(30mg/kg)。
[0121]
生理盐水组：0.2ml/只，每天1次，连续灌胃3周；
[0122]
ddp组：按照0.3ml/次、3mg/kg的量进行腹腔注射，每周1次，连续注射3周；
[0123]
zy-312低、高剂量组和灭活菌组及zy-312psa低、高组：按照0.2ml/只，每天1 次，连续灌胃3周。
[0124]
四、检测指标及方法
[0125]
(1)肿瘤重量及抑瘤率
[0126]
给药过程中如有小鼠出现明显的消瘦、弓背、精神萎靡等衰竭体征，及给药结束后，脱颈椎处死，取移植肿瘤测其重量并计算抑瘤率，抑瘤率计算公式：抑瘤率(％)＝(生理盐水组平均瘤重-给药组平均瘤重)/生理盐水组平均瘤重
×
100；
[0127]
(2)肿瘤内t细胞亚群
[0128]
收集新鲜采集的肿瘤样本剪碎成小块，将剪碎的组织转移至装有消化酶混合液的c 管中。组织消化、匀浆完成后，经70μm筛网过滤得到单细胞沉淀，对所得细胞进行计数，之后抽取1
×
106个活细胞进行抗体染色。使用流式细胞仪检测cd45+(biolegend， 103151)、cd3+cd8+cd45+(cd3抗体:bd，563024；cd8抗体：bd，563786)表达情况。
[0129]
五、试验结果
[0130]
(1)肿瘤重量及抑瘤率
[0131]
表2基于分组给药后第21天肿瘤重量计算得出的抑瘤药效
[0132]
[0133][0134]
注：
[0135]
a.平均值
±
sd。
[0136]
b.抑瘤率(％)＝(生理盐水组平均瘤重-给药组平均瘤重)/生理盐水组平均瘤重
×ꢀ
100％。
[0137]
c.两组间p值按照unpaired t-test(two-tailed)方法计算。
[0138]
由表2可知，与生理盐水组相比，各给药组的肿瘤重量均有所降低，ddp组具有显著性差异；脆弱拟杆菌及其荚膜多糖a各组与ddp组不具有显著性差异。说明在非小细胞肺癌移植瘤的小鼠模型中，脆弱拟杆菌zy-312及其两性离子荚膜多糖能够有效抑制肿瘤生长，这种抑制效果与ddp相似。
[0139]
(2)肿瘤组织微环境t细胞亚群
[0140]
表3各组小鼠肿瘤微环境t细胞亚群(mean
±
sd)
[0141][0142]
注：与生理盐水组相比，*表示差异显著p《0.05；**表示差异极显著p《0.01。
[0143]
cd8+t细胞在肿瘤免疫中发挥重要作用，是直接杀伤肿瘤细胞的效应细胞。
[0144]
由表3可知，与生理盐水组相比，ddp组小鼠cd8+cd45+t细胞水平下降；脆弱拟杆菌zy-312低、高剂量、psa低、高剂量组及灭活菌液组小鼠肿瘤中浸润的cd8+ cd45+t细胞水平均显著上升。这表明实验动物经灌胃给予脆弱拟杆菌zy-312及其两性离子荚膜多糖后肿瘤内淋巴细胞的浸润有所增加。
[0145]
综上所述，脆弱拟杆菌zy-312及其两性离子荚膜多糖能够调节小鼠肿瘤免疫微环境，有效治疗小鼠非小细胞肺癌移植瘤。
[0146]
实施例6：脆弱拟杆菌及其两性离子荚膜多糖治疗小细胞肺癌移植瘤的药效试验
[0147]
1、试验设计及流程
[0148]
培养人小细胞肺癌细胞系nci-h526，将处于对数生长期的nci-h526细胞调整细胞浓度至2
×
107个/ml的单细胞悬液。无菌条件下，matrigel与pbs按照1:1配比稀释并放于冰上待注射。nci-h526细胞与matrigel胶(bd，356234)稀释液1：1比例制成浓度为1
×
107个/ml的瘤细胞悬液。细胞悬液以每只0.2ml左右接种于4-5周龄，体重(22
±
2)g的的裸鼠。裸鼠右前肢腋窝皮下进行造模。造模后一周开始给药，zy-312 低(106cfu/只)、高(10
10
cfu/只)剂量组、zy-312灭活菌(10
10
cell/只)、zy-312psa 低(10mg/kg)和zy-213psa高(30mg/kg)连
续灌胃3周；ddp(顺铂，山东齐鲁制药有限公司)组每周腹腔注射1次，连续注射3周。当实验结束或荷瘤鼠出现明显的消瘦、弓背、精神萎靡等衰竭体征时，脱颈椎处死，取移植肿瘤测定其重量并计算抑瘤率，随后至于-80℃冰箱中冻存，用于检测细胞因子等。
[0149]
检测指标：
[0150]
(1)肿瘤重量和抑瘤率
[0151]
抑瘤率％＝100％
×
(生理盐水组肿瘤平均重量-给药组肿瘤平均重量)/生理盐水组肿瘤平均重量。
[0152]
(2)细胞因子
[0153]
采用elisa检测肺癌移植瘤小鼠模型肿瘤中il-12(r&d systems，m1270，下同)、 ifn-γ(r&d systems，mif00，下同)和il-1β(r&d systems，mlb00c，下同)等细胞因子的水平。
[0154]
2、试验结果
[0155]
(1)肿瘤重量和抑瘤率
[0156]
表4基于分组给药后第21天肿瘤重量计算得出的抑瘤药效
[0157][0158]
注：
[0159]
a.平均值
±
sd。
[0160]
b.抑瘤率％＝100
×
(生理盐水组肿瘤平均重量-给药组肿瘤平均重量)/生理盐水组肿瘤平均重量。
[0161]
c.两组间p值按照unpaired t-test(two-tailed)方法计算。
[0162]
由表4可知，与生理盐水组相比，各给药组肿瘤重量均有所下降，ddp组与脆弱拟杆菌及其psa各组不具有显著性差异。说明在小细胞肺癌移植瘤的小鼠模型中，脆弱拟杆菌zy-312及其psa能够有效抑制肿瘤生长。
[0163]
(2)细胞因子
[0164]
表5各组小鼠肿瘤细胞因子水平(mean
±
sd)
[0165][0166]
注：与生理盐水组相比，*表示差异显著p《0.05；**表示差异极显著p《0.01。
[0167]
il-12来自活化的淋巴细胞，能够诱导ctl和nk细胞的细胞毒活性并促进其分泌 ifn-γ、tnf-α等抗肿瘤细胞因子；il-1β及其受体已被证明可以促进移植小鼠和人类的多种肿瘤生长和转移。
[0168]
由上表可知，与生理盐水组相比，各给药组il-12水平均显著上升，zy-312活菌、灭活菌及psa各组水平高于ddp组。
[0169]
与生理盐水组相比，各给药组ifn-γ水平均有所上升；zy-312活菌、灭活菌液及 psa各组具有显著性，psa组内具有不明显的剂量依赖性。
[0170]
与生理盐水组相比，各给药组il-1β水平均显著下降；zy-312低、高剂量、灭活菌液及psa高剂量组具有极显著差异，psa低剂量组水平低于高剂量组。这说明脆弱拟杆菌及其psa上调了抗肿瘤因子il-12、ifn-γ的水平，抑制肿瘤促进因子il-1β的表达。
[0171]
综上所述，脆弱拟杆菌zy-312及其psa能够调节肿瘤相关免疫因子水平，有效治疗小鼠小细胞肺癌移植瘤。
[0172]
实施例7：脆弱拟杆菌及其两性离子荚膜多糖治疗鼻咽癌移植和转移瘤的药效试验
[0173]
1、试验设计及流程
[0174]
使用含胎牛血清的rpmi-1640培养基培养人鼻咽癌细胞系5-8f，无菌条件下，将处于对数生长期的5-8f细胞调整细胞浓度至2
×
106个/ml的单细胞悬液，细胞悬液以每只0.2ml左右接种于5-7周龄，体重20-24g的雌性裸鼠。裸鼠接种肿瘤后一周，采用裸鼠尾静脉直接注射2
×
106个/ml的5-8f单细胞悬液0.2ml的方法给予干预。皮下接种肿瘤后一周开始给药，zy-312低(106cfu/只)、高(10
10
cfu/只)剂量组、zy-312 灭活菌(10
10
cell/只)、zy-312psa低(10mg/kg)和zy-213psa高(30mg/kg)连续灌胃3周；ddp组(顺铂，山东齐鲁制药有限公司)组每周腹腔注射1次，连续注射3 周。当实验结束或荷瘤鼠出现明显的消瘦、弓背、精神萎靡等衰竭体征时，脱颈椎处死，取移植肿瘤测定其重量并计算抑瘤率，取肝脏及肺组织，观察转移灶，瘤体组织置于
ꢀ‑
80℃冰箱中冻存，用于检测细胞因子等。
[0175]
检测指标：
[0176]
(1)移植瘤重量及抑瘤率
[0177]
抑瘤率％＝100％
×
(生理盐水组肿瘤平均重量-给药组肿瘤平均重量)/生理盐水组肿瘤平均重量。
[0178]
(2)转移灶大小与数量
[0179]
将肺及肝组织取出后先放置bouin氏液(冰醋酸5ml+40％甲醛25ml+饱和苦味酸
75ml)中固定，待两天后观察肺部转移灶，已显示为白色，而肝组织未见明显转移灶。在解剖显微镜下观察肺组织转移化的大小，并同时记录数目(按大小分级),对各组裸鼠肺转移结节的数目进行统计学分析。按照ⅰ级转移灶为直径小于0.15mm，ⅱ级转移灶为直径0.15～1mm，ⅲ级转移灶为直径1～2mm，ⅳ级转移灶为直径大于2mm。总转移灶数＝ⅰ级转移灶数+ⅱ级转移化数*2+ⅲ级转移灶数*3+ⅳ级转移化数*4。
[0180]
(3)细胞因子
[0181]
采用elisa检测肺癌移植瘤小鼠模型血清中il-12、ifn-γ和il-1β等细胞因子的水平。
[0182]
2.实验结果
[0183]
(1)移植瘤重量及抑瘤率
[0184]
表6基于分组给药后第21天肿瘤重量计算得出的抑瘤药效
[0185][0186][0187]
注：
[0188]
a.平均值
±
sd。
[0189]
b.抑瘤率％＝100％
×
(生理盐水组肿瘤平均重量-给药组肿瘤平均重量)/生理盐水组肿瘤平均重量。
[0190]
c.两组间p值按照unpaired t-test(two-tailed)方法计算。
[0191]
由表6可知，与生理盐水组相比，各给药组的肿瘤重量均有所下降；脆弱拟杆菌 zy-312活菌、灭活菌及psa各组与ddp组无明显差异。说明在鼻咽癌移植瘤的小鼠模型中，脆弱拟杆菌zy-312及其psa能够抑制肿瘤生长，这种抑制效果与ddp类似。
[0192]
(2)转移灶大小与数量
[0193]
表7各组小鼠总转移灶数(mean
±
sd)
[0194]
[0195]
注：与生理盐水组相比，*表示差异显著p《0.05；**表示差异极显著p《0.01。
[0196]
由表7可知，与生理盐水组相比，各给药组的肿瘤转移灶数量均有所下降；ddp 组、脆弱拟杆菌zy-312高剂量组、灭活菌组及psa高剂量组具有显著性差异。说明在小鼠鼻咽癌转移模型中，脆弱拟杆菌zy-312及其psa能够有效抑制肿瘤转移。
[0197]
(3)细胞因子
[0198]
表8各组小鼠血清细胞因子(mean
±
sd)
[0199][0200][0201]
注：与生理盐水组相比，*表示差异显著p《0.05；**表示差异极显著p《0.01。
[0202]
由上表可知，与生理盐水组相比，各给药组il-12水平均显著上升；脆弱拟杆菌活菌、灭活菌及psa高剂量组水平高于ddp组，psa低剂量组水平与ddp组相似。
[0203]
与生理盐水组相比，各给药组的ifn-γ的水平均有所上升；zy-312活菌组、灭活菌液组及psa各组与生理盐水组具有显著性差异，psa组内，具有不明显的剂量依赖性。
[0204]
与生理盐水组相比，各给药组il-1β水平均显著下降，脆弱拟杆菌zy-312低、高剂量、灭活菌液及psa高剂量组与生理盐水组具有极显著差异，psa低剂量组水平低于ddp组。说明脆弱拟杆菌zy-312及其荚膜多糖上调了抗肿瘤因子il-12和ifn-γ的水平，抑制肿瘤促进因子il-1β的表达。
[0205]
综上所述，脆弱拟杆菌zy-312及两性离子荚膜多糖能够调节肿瘤相关免疫因子水平，有效治疗小鼠鼻咽癌移植瘤和转移瘤。
[0206]
当然，本发明还可有其它多种实施例，在不背离本发明精神及其实质的情况下，熟悉本领域的技术人员当可根据本发明作出各种相应的改变和变形，但这些相应的改变和变形都应属于本发明所附的权利要求的保护范围。