龋齿的替补疗法的制作方法

专利名称：：龋齿的替补疗法的制作方法
技术领域：
：本发明通过国家牙科研究所，公共卫生署基金第DEO4529号，至少部分受到联邦政府的基金资助。政府对本发明享有一定的权力。
背景技术：
：发明领域本发明涉及龋齿预防的方法与组合物。相关领域说明某种细菌在宿主中形成菌落的能力由许多因素决定，例如细菌的代谢需要，以及该菌与已先存在的细菌菌群的相互作用。细菌间的相互作用通常可分为“正性的”或“负性的”。在正性相互作用中，一种“效应物”细菌菌株改变微环境而有利于第二种，“靶”有机体形成菌落。在负性相互作用中，效应物菌株改变微环境从而减弱或完全阻止靶细菌形成菌落。在宿主中竞争形成菌落的细菌间的负性相互作用通常被称为细菌的干扰。利用细菌间的干扰作用，以一种非致病性效应物菌株替代致病菌株的治疗方案称为替补疗法。成功的替补疗法需要这样的效应物菌株1)非致病性，2)改变微环境从而阻止病原体的定居或过度生长，3)在易感宿主中持续定居防止靶病原体的再感染，并攻击性地取代易感组织中为宿主固有菌群一部分的病原体。众所周知龋齿由口腔中生长的细菌所引起。人类中引起龋齿的主要病原菌为变异链球菌。变异链球菌与产生龋齿有关的典型特征包括产生乳酸的能力及其在牙釉质上聚积的能力(即形成牙斑)(Gibbons等，1969年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)98卷341-346页；Makinen等，1972年，《国际牙科杂志》(Int.Dent.J)22卷362-386页和Jordan，1965年，《纽约科学院年报》(Ann.N.Y.Acad.Sci.)131卷，905-912页)。应用替补疗法原理，需要分离一种非龋齿致病性效应变异链球菌菌株，如某种乳酸合成缺陷的变异链球菌株。龋齿替补疗法的应用进展近来已有综述(Hillman等，1986年，见《口腔研究中的新生物技术》(NewBiotechnologiesinOralResearch)H.M.Myers，编，S.Karger.Basel，Switzerland出版，1-17页)。生产一种适用于龋齿替补疗法的乳酸缺陷型变异链球菌菌株，遇到了相当大的困难。乳酸合成缺陷对变异链球菌是致死性的。Abhyanakar等(1985年，《牙科研究杂志》(J.Dent.Res.)64卷，1267-1271页)利用一种含有已存在(自发的)影响丙酮酸代谢的突变的非典型变异链球菌株，通过化学诱变，获得了一种乳酸脱氢酶(IDH)-缺陷的变异链球菌突变株。然而，该菌株中化学诱导和自发产生的突变仍不典型。而且，化学诱导的非典型突变能恢复成野生型，从而具有致病性，产生龋齿现象。后来在其它变异链球菌株中产生LDH-缺陷型的尝试也失败了(Hillman等，1994年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)62卷，60-64页；Chen等，1994年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)176卷，1542-1545页)。很清楚，本领域需要一种稳定，乳酸缺陷型，非龋齿致病性的变异链球菌菌株，适用于防止和/或治疗龋齿的替补疗法。发明概述本发明基于以下发现通过在与乳酸合成路径有关的基因中导入突变可获得乳酸缺陷型变异链球菌株，并通过在该菌株中导入一个重组醇脱氢酶(adh)基因以避免该突变的致死性。重组的adh防止该细菌中代谢产物(如丙酮酸)的堆积，从而避免乳酸缺陷的致死性。该策略可用来生产适合龋齿替补疗法的变异链球菌株。总的来说，本发明以在龋齿易感宿主中预防和/或治疗龋齿的方法和组合物为特征。本发明的一个特色为一种重组变异链球菌株，该菌株的特征在于乳酸产生缺陷(如由于乳酸脱氢酶活性的丧失)，和替代的重组醇脱氢酶(ADH)的产生。“乳酸产生缺陷”或“乳酸缺陷”指重组变异链球菌株相对于野生型变异链球菌产生乳酸的量大为降低。优选“乳酸缺陷型”重组变异链球菌产生的乳酸几乎检测不到。本发明的特色还在于生产本发明中重组菌株的方法。优选的重组变异链球菌菌株具有以下特征1)乳酸产生缺陷；2)重组醇脱氢酶的产生；和3)产生对细菌素敏感性变异链球菌株具有抗菌活性的细菌素；和4)可任选为营养缺陷型(例如D-丙氨酸营养缺陷型)。另外优选的重组变异链球菌菌株为乳酸产生缺陷型，能产生重组醇脱氢酶，并为营养缺陷型(例如为D-丙氨酸营养缺陷型)。本发明的另一特色在于一种药物组合物，包括重组乳酸缺陷、重组ADH-产生的变异链球菌及药用载体。本发明的特色还在于一种在龋齿易感宿主中降低龋齿发病率和严重性的方法，该方法为给龋齿易感宿主口服能有效替代宿主口腔中致龋齿变异链球菌剂量的重组变异链球菌株，该重组菌株具有1)重组的醇脱氢酶基因和2)乳酸产生缺陷。本发明的另一特色在于维持宿主口腔内D-丙氨酸营养缺陷型细菌(如，D-丙氨酸营养缺陷型变异链球菌)的组合物，含有能够维持D-丙氨酸营养缺陷型细菌生长的D-丙氨酸。本发明的一个优点为重组变异链球菌1)为乳酸缺陷型，从而不会引起龋齿，和2)能有效地替代宿主口腔中能引起龋齿的变异链球菌菌株。本发明的另一个优点为，重组的变异链球菌菌株为D-丙氨酸营养缺陷型，该菌株的定居可通过给予D-丙氨酸得到控制。本发明的其它特点和优点可以从下述的优选实施方案和权利要求中显示。附图简述图1示运动发酵单胞菌醇脱氢酶II的氨基酸序列(SEQIDNO1)和DNA序列(SEQIDNO2)。图2示葡萄糖对变异链球菌菌株CH4ts和NG8(对照)的生长，存活，及胞内丙酮酸浓度的影响。符号MG8加葡萄糖，——□——；NG8不加葡萄糖，——○——；CH4ts加葡萄糖，——○——；CH4ts不加葡萄糖，—△—。图3示葡萄糖浓度和温度对10％稀释率的变异链球菌菌株CH4ts连续培养的影响。图A符号——□——，光密度；——○——，葡萄糖浓度；图B符号—○—，pH；——□——，乳酸浓度；——△——，理论洗出；——○——，乙醇浓度；—□—，三羟基丁酮浓度。图4示葡萄糖浓度和温度对0.6％稀释率的变异链球菌菌株CH4ts连续培养的影响。符号——□——，光密度；——○——，葡萄糖；—○—，理论洗出。发明详述龋齿由通常生活在口腔中的变异链球菌产生的乳酸及其聚积引起。但是，由于变异链球菌中乳酸产生途径的突变对细菌是致死的，因此将乳酸缺陷型变异链球菌导入口腔，取代产生乳酸的变异链球菌是不可能的。本发明基于以下发现能存活的乳酸缺陷型变异链球菌菌株可通过导入编码重组醇脱氢酶(ADH)的核酸转化菌株产生，同时在乳酸合成途径中引入突变，而获得重组产生ADH的乳酸缺陷型菌株。重组的ADH阻止了细菌代谢产物的堆积，从而消除了乳酸缺陷的致死性。该策略可用来生产适合龋齿替补疗法的重组变异链球菌菌株。本发明中重组变异链球菌菌株“重组变异链球菌菌株”是利用多种重组核酸技术(即涉及DNA或RNA人工操作的技术)中的任何一种，产生的变异链球菌非天然产生菌株。总的来说，本发明中重组变异链球菌菌株至少有以下特征1)乳酸产生缺陷，和2)重组醇脱氢酶(ADH)的产生。优选的重组变异链球菌菌株还具有以下特征，即能产生对细菌素敏感性变异链球菌菌株具有抗菌活性的细菌素。这里所指的“细菌素”，是变异链球菌菌株JH1000产生的特异性细菌素或细菌素样毒素(Hillman等，1984年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)44卷，141-144页)。变异链球菌JH1000产生的细菌素表观分子量低于1000Da，并对细菌素敏感性变异链球菌菌株具有抗菌活性。细菌素的产生为变异链球菌与通常存在于口腔内，不产生细菌素的变异链球菌菌株提供了选择优势。本发明重组变异链球菌株产生的细菌素，可以消除固有的细菌素敏感性变异链球菌株，从而干扰细菌素敏感性菌株的定居，促进重组变异链球菌株在口腔中的生长。出于能够控制本发明中重组变异链球菌株在口腔中生长的愿望，优选的重组变异链球菌株对通常不存在于哺乳动物宿主口腔中的有机物质应该为营养缺陷型，再优选的为D-氨基酸营养缺陷型，更加优选的为D-丙氨酸营养缺陷型。营养缺陷型菌株的生长可通过调节该菌株营养缺陷的有机物的量而得到控制。因此，如果需要除去宿主中的重组变异链球菌，只要停止供应该菌株营养缺陷的特异有机物，就可终止细菌的生长。因此，本发明的重组变异链球菌菌株具有以下特征1)乳酸缺陷，和2)产生重组的ADH，进一步的特征为3)产生细菌素，和/或4)对某特异有机物营养缺陷，优选D-氨基酸营养缺陷，更优选D-丙氨酸营养缺陷。现将详细阐述本发明的每一种重组变异链球菌菌株的生产。用于生产本发明重组变异链球菌株的亲本变异链球菌株用于生产本发明重组变异链球菌株的变异链球菌株可为任何一株变异链球菌。用于生产本发明重组变异链球菌株的优选变异链球菌株对通常生活在口腔中的野生型变异链球菌株，应具有选择优势。选择优势可通过能促进该菌株在口腔中生存的诸多特性中的任何一种(如抗菌化合物的产生，相对代谢需求，相对生长率、代谢物清除剂的产生)，和取代生活在口腔中的固有菌株而获得。并且，本发明重组变异链球菌株的定居基本上不破坏其它非变异链球菌株(如与产生龋齿无关的正常菌群)的定居。例如，用产生高水平细菌素的变异链球菌JH1000的变异株感染人志愿者，结果该菌株取代了口腔中固有致龋齿变异链球菌株(推测部分是因为JH1000菌株产生的细菌素)而没有影响口腔中其它固有革兰氏阳性菌(Hillman等，1987年，《牙科研究杂志》(J.Dent.Res.)66卷，1092-1094页)。优选的变异链球菌株产生变异链球菌JH1000的细菌素。更优选的重组变异链球菌菌株来自相对于变异链球菌JH1000能产生更多细菌素的变异链球菌JH1000变异株。“变异株”是经过遗传修饰的细菌，相对于来源的亲本菌株显示表型的改变。表型改变可以是诸多遗传损伤中任意一种的结果，如改变位于1)与结构基因操纵相连的启动子(如导致基因转录的增强)；和/或2)编码特异产物的结构基因(如产物活性增强)。遗传损伤是野生型核酸序列的改变，其结果是导致细菌表型的改变。例如，变异链球菌JH1000的“细菌素变异株”是相对于变异链球菌JH1000亲本菌株具有增强的细菌素活性的细菌。优选变异链球菌JH1000变异株的细菌素活性相对于其亲本变异链球菌有所提高，优选提高约10倍，再优选约1.5-5倍，最优选约2-4倍，通常较亲本变异链球菌JH1000菌株提高约3倍。这些变异株细菌素活性增强的原因可以是相对于亲本菌株细菌素的产量增加，和/或产生的细菌素相对于野生型变异链球菌细菌素具有增强的抗菌活性。“变异株”可通过本领域众所周知的多种方法产生，如诱变(即将细菌暴露于诱变剂)，筛选自发突变体，或用重组技术进行遗传操作。诱变可通过将细菌暴露在紫外灯下，或任何化学诱变剂下，按本领域熟知的方法完成(例如甲基磺酸乙酯(EMS)，亚硝酸，羟胺，核苷酸类似物(如5-溴尿嘧啶，2-氨基嘌呤)，或交联剂(如吖啶))。产生变异菌株的方法是本领域众所周知的(参见，如Sambrook等，1989年《分子克隆实验室手册》(MolecularClonmgALaboratoryManual)第二版，冷泉港实验室出版，冷泉港，纽约)。“自发突变”为天然发生的突变，即没有人为的直接遗传操作，或暴露于诱变剂。自发突变体的筛选可通过培养菌株，并通过，如，变异菌株产生或过量产生的某种特异因子，如细菌素，来筛选所需的变异株。筛选自发突变株的方法在本领域是众所周知的(参见，如Sambrook等，上文)。用重组技术产生变异株的方法也为本领域熟知(参见，如Sambrook等，1989年，上文)。例如，细菌素活性增强的变异链球菌JH1000变异株可通过编码细菌素DNA的多拷贝表达，和/或能提高转录水平的细菌素启动子的突变而产生。醇脱氢酶基因由于乳酸合成缺陷对变异链球菌是致死性的(Hillman等，1994年，《感染与免疫》(Intect.Immun.)62卷，60-64页；Hillman等，1994年《细菌学杂志》(J.Bacteriol)176卷，1542-1545页)，重组乳酸缺陷型变异链球菌株的缺陷必须通过重组醇脱氢酶(ADH)的产生来弥补。重组ADH的产生防止了代谢物，如丙酮酸，的堆积，否则将引起乳酸缺陷型变异链球菌的死亡。“重组ADH的产生”指重组的变异链球菌株表达具有功能的ADH酶，该酶利用重组DNA技术引入变异链球菌中(即用编码ADH酶的DNA转化变异链球菌)。“转化”指新的DNA(即相对细胞为外源性DNA)进入细胞后诱导的永久性(即稳定的)遗传改变。编码ADH的DNA可从任何有机体中获得，优选的是从细菌中获得，再优选的是运动发酵单胞菌或鼠链球菌，最优选的是运动发酵单胞菌。编码ADH的DNA也可从变异链球菌中获得，因此，导入的编码ADH的DNA与变异链球菌中固有的adh基因结合，在变异链球菌的基因组中形成多拷贝的编码ADH的DNA。或者，重组的ADH可通过在变异链球菌adh基因的调控机制中引入一突变而产生(例如在adh启动子上引入突变从而提高adh基因的转录)。优选的重组ADH是运动发酵单胞菌的醇脱氢酶II，该酶已被克隆与测序(GenbankAccessionNo.M15394；Conway等，1987年《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)169卷，2591-2597页，在此引入作为参考)。运动发酵单胞菌醇脱氢酶II的氨基酸序列(SEQIDNO1)和DNA序列(SEQIDNO2)见图1所示。鉴定、克隆、稳定转化及表达编码感兴趣DNA(如ADH)的DNA片段的方法已常规化，并为本领域熟知(参见，例如Sambrook等，1989年《分子克隆实验室手册》(MolecularCloningALaboratoryManual)第二版，冷泉港实验室出版，冷泉港，纽约)。例如，分离编码ADH的DNA可通过从基因组DNA，或已有的该基因克隆中对该序列进行PCR扩增而完成。重组ADH的表达可通过将adh结构基因与一在变异链球菌中有利于表达的启动子(如spaP或天然ldh启动子)操纵连接而完成。功能性ADH的产生可通过，如用本领域熟知的传统的ADH活性法(例如NAD依赖的乙醇氧化法)进行(Neal等，1986年，《欧洲生物化学杂志》(Eur，J.Biochem.)154卷，119-124页，在此引入作为参考)。乳酸缺陷型变异链球菌的产生“乳酸缺陷”或“乳酸产生缺陷”指变异链球菌株产生的乳酸量较野生型变异链球菌显著降低。优选的“乳酸缺陷型”重组变异链球菌产生的乳酸量几乎检测不到。本发明重组变异链球菌的乳酸缺陷是乳酸合成途径缺陷的结果。“缺陷”是编码基因的DNA改变，从而阻碍了功能性基因产物的表达。“缺陷”包括导致基因转录和/或翻译的抑制或显著降低的改变。“缺陷”也包括结构基因的改变，从而导致转录和翻译的基因产物无功能性，或相对于野生型基因产物其功能显著降低。“乳酸合成途径的缺陷”是阻止或显著降低乳酸产量的遗传缺陷。乳酸合成途径缺陷可包括，例如，促进乳酸合成的酶的遗传损伤，和/或与编码乳酸合成所必需酶的结构基因操纵相连的启动子的损伤。优选的乳酸合成途径缺陷是因为编码乳酸脱氢酶的基因(ldh)的缺陷(例如ldh结构基因的缺陷，和/或与ldh结构基因操纵连接的启动子的缺陷)。具有LDH缺陷的变异链球菌株称作LDH-菌株。乳酸合成途径缺陷可通过诱变(即将细菌暴露于诱变剂下)，自发突变株的筛选，或应用重组技术进行遗传操作而引入。如上所述，以上每种技术均为本领域熟知(参见，例如Sambrook等，上文)。优选的乳酸合成途径缺陷可应用重组技术引入，如将缺陷型ldh结构基因导入细菌，随后发生位点特异性重组，野生型ldh被缺陷型ldh取代。变异链球菌ldh基因已被克隆，其核苷酸序列也已确定(GenBankaccessionNo.M72545)，重组的ldh基因已在大肠杆菌中表达(Duncan等，1991年《感染与免疫》(Infect.Immun.)59卷，3930-3934页；Hillmam等，1990年，《(感染与免疫》(Infect.Immun.)58卷，1290-1295页，在此引入作为参考)。营养缺陷型重组变异链球菌株的产生在某些情况下需除去宿主口腔中生活的重组变异链球菌，感染的重组变异链球菌优选为营养缺陷型。“营养缺陷型”细菌是指为了生长，除了碳源外，还需某种特异有机物质的细菌。例如，“D-丙氨酸营养缺陷型细菌”是指没有D-丙氨酸就不能生长的细菌。尽管营养缺陷型细菌在所需的有机物质缺乏时常能短时期存在(即存活但不生长)，但其维持需定期供应该有机物质。例如，D-丙氨酸营养缺陷型细菌需定期供应D-丙氨酸才能生长并维持在小生境如口腔中定居。由于哺乳动物通常不能产生D-氨基酸，而且D-丙氨酸也不能由正常菌群中的有机体分泌，因而D-丙氨酸营养缺陷型细菌不能从宿主口腔的正常环境中获得D-丙氨酸。因此，本发明治疗方法中营养缺陷型细菌的应用提供了这样的优点，即口腔中重组变异链球菌的生长可通过停止供应特异有机营养物，如D-丙氨酸而被阻断。细菌的营养缺陷可通过多种本领域熟知的技术产生，例如化学诱变，自发突变体的筛选，和/或重组技术(例如转座子诱变，用缺陷的或无功能的基因重组置换)(参见，例如Sambrook等，上文)。优选的营养缺陷型变异链球菌株可通过自发突变体的筛选，或重组方法(例如在D-氨基酸合成途径中引入缺陷)获得。优选的D-丙氨酸营养缺陷型变异链球菌株可通过在编码丙氨酸消旋酶的基因中引入缺陷而产生，该酶可将L-丙氨酸转换为D-丙氨酸。几种不同细菌中编码丙氨酸消旋酶的基因已被克隆(嗜热脂肪芽孢杆菌，Tanizavua等，1988年，《生物化学》(Biochem)27卷，1311-16页；枯草芽孢杆菌，Ferrari等，Subtilis，1985年《生物技术》(Biotechnol.)(NY)3卷，1003-7页；大肠杆菌，Lobocka等，1994年《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)176卷，1500-10页；鼠伤寒沙门氏菌，Galakatos等，1986年《生物化学》(Biochem)23卷，3255-60页；和鼠伤寒沙门氏菌，Wasserman等，1984年《生物化学》23卷，5182-7页)。含本发明中重组变异链球菌的药物组合物“药物组合物”是适于给龋齿易感患者口腔用药的本发明中重组变异链球菌株的组合物。通常说，本发明中的药物组合物包括重组变异链球菌株和适于药用的载体。“适于药用的载体”指能将重组变异链球菌株导入至宿主口腔中的媒介物，该媒介物与细菌细胞和宿主细胞的生存相容。适用于本发明中活的重组变异链球菌菌株给药的适于药用的载体对本领域的技术人员来说是熟知的。适于药用的载体的筛选有赖于许多因素，包括用于给药的变异链球菌株，以及用于导入重组变异链球菌的制剂。适用于本发明重组变异链球菌导入的药用载体包括，但不限于，盐水缓冲液(如磷酸缓冲盐水)，适于药用的培养基(如Luria肉汤，脑心浸液肉汤(BHI))，或其它可保持细菌生存能力的溶液。另外，这样的药用载体可以为水溶液或非水溶液，悬浮液，和乳浊液。许多适于存活或冻干菌口腔用药的药用载体在本领域是众所周知的(参见，例如，《雷明顿氏药物科学》(Remington＇sPharmaceuticalSciences)第18版，1990年，MackPublishingCo.，EastonPA，在此引入作为参考；及药物组合物LACTINEXTM，一种用于存活乳酸杆菌口腔用药的商品制剂)。本发明的重组变异链球菌株可被配制成任何适于口腔用药的组合物。例如，重组变异链球菌株可用重组变异链球菌培养物配制成亲液胶或细胞膏，或者直接将重组变异链球菌培养物进行口腔用药。重组变异链球菌也可以漱口水、牙膏、牙线、咀嚼胶或可咀嚼药片的形式给药。药物组合物还应包括维持组合物中细菌存活的营养物。药物组合物尚可包括能提高组合物的适口性和/或使患者更易接受，而不降低组合物效果的调味剂、着色剂、芳香剂、或其它化合物。制备口腔用药制剂的方法在本领域是众所周知的(参见，例如，《雷明顿氏药物科学》(Remington＇sPharmaceuticalSciences)第18版，上文，在此引入作为参考)。维持本发明中营养缺陷型重组变异链球菌生存的组合物口腔中重组营养缺陷型变异链球菌株必须定期供应其营养缺陷的有机物才能维持其定居。长时间缺乏该有机物，营养缺陷型菌株将停止生长并不能在口腔中持久定居。例如，在D-丙氨酸缺乏时，D-丙氨酸营养缺陷型菌株将因细胞壁的削弱而溶菌。本发明治疗方法中应用营养缺陷型变异链球菌株，为在发生任何不希望的副作用时消除该菌株提供了一个“自动保险”机制。然而，由于本发明重组变异链球菌株与口腔中正常生长的固有变异链球菌株相似，因此产生不希望的副作用的可能性很小。本发明中营养缺陷型重组变异链球菌在口腔中定居的维持可通过营养缺陷维持量的该菌株营养缺陷的有机物的口腔给药来实现。“细菌营养缺陷维持量”指足以维持营养缺陷型细菌在口腔中生存的有机物的量。例如，若重组变异链球菌为D-丙氨酸营养缺陷，“D-丙氨酸细菌营养缺陷维持量”为足以维持D-丙氨酸营养缺陷型菌株在宿主口腔中生存的D-丙氨酸的量。通常，单剂量D-丙氨酸细菌营养缺陷维持量的D-丙氨酸含约1-100mg，优选约5-75mg，更优选约10-50mg，最优选约20-25mg的D-丙氨酸。D-丙氨酸在溶液形式的药物组合物中的浓度范围约为0.01-167mg/ml(后者为D-丙氨酸在25℃水中的饱和溶液)，优选约0.1-50mg/ml，更优选约1-25mg/ml。D-丙氨酸在药物组合物中的浓度可根据所用的载体以及D-丙氨酸在该特异载体中的饱和度而有所变化。维持营养缺陷型重组变异链球菌在口腔中生存所必需的有机物可用多种方式配制。例如，若重组变异链球菌为D-丙氨酸营养缺陷型，维持D-丙氨酸营养缺陷型菌株的组合物可配制成漱口水，咀嚼胶，牙线，牙膏，可咀嚼药片，或任何其它适于对宿主口腔用药的形式。除有机物(例如D-丙氨酸)外，组合物中还可含有可提高组合物的适口性和/或使患者更易接受而不影响组合物中有机物作用的调味剂、着色剂、芳香剂或其它化合物。为本发明重组变异链球菌株口腔用药以及该菌株在口腔中的维持而配制的药物组合物必须不影响口腔以及口腔中生长的任何有用正常菌群的内在特征。适于口腔用药的制剂的制备方法在本领域是众所周知的(参见，例如，《雷明顿氏药物科学》(Remington′sPharmaceuticalSciences)第18版，Gennaro编，1990年，MackPublishingCo.，Easton，PA，在此引入作为参考)。给药本发明重组变异链球菌可用于任何龋齿易感宿主，优选变异链球菌可在其口腔中生长的宿主，再优选哺乳动物宿主(如人，犬，马，猫科动物，羊等)，更优选的宿主为人。重组变异链球菌株可给任何年龄的宿主用药，如儿童时期，青春期，或成年时期。本发明重组变异链球菌株可以多种方式进行口腔用药。例如，重组变异链球菌菌株可以悬浮液，可咀嚼药片，药丸，胶囊，持续释放的制剂(例如含重组变异链球菌株的口腔植入物)或亲液粉的形式进行给药。重组变异链球菌株也可通过将亲液胶(lyophil)，培养物，或细胞膏直接用于患者牙齿而进行给药。只要治疗组合物是用于口腔，任何给药方式都是可以的。优选重组变异链球菌可通过直接将细菌细胞悬液用于患者的牙齿而给药，例如通过刷牙和牙线。通常，给予患者的重组变异链球菌的量是足以取代宿主口腔中致龋齿变异链球菌株的量。“足以取代宿主口腔中致龋齿变异链球菌株的量”是指足以使重组变异链球菌株在口腔中生长，并消除口腔中产生乳酸并致龋齿的固有变异链球菌株(例如通过细菌间对营养的竞争和/或通过重组变异链球菌株产生的细菌素)的量。用于本发明中药物组合物的术语“单位剂量”指适用于受体单位剂量的物理法划分单位，每单位含经计算与所需稀释剂，即载体或赋形剂，可共同产生预期疗效的预先确定量的活性物质(如活的重组变异链球菌)。根据不同患者的不同情况，如身高，体重，年龄，病情(如产生乳酸并致龋齿的固有变异链球菌的粘着性和/或数目)和对治疗的反应(如宿主口腔对细菌生长的敏感性)，具体的剂量可有较宽的变动范围。确定适宜的用药方式与剂量的方法通常由现职牙医或其他临床医生根据实际情况确定。这样的确定方式对本领域的普通技术人员来说是常规的(参见，例如，《雷明顿氏药物科学》(Remington′sPharmaceuticalSciences)第18版，Gennaro编，MackPublishingCompany，Easton，PA，1990)。通常，给予患者的重组变异链球菌数量约为102-1015个菌体，优选约为103-1014个菌体，更优选约为105-1012个菌体，通常约1011个菌体。合适的给药剂量可通过足以使链球菌属的细菌在动物模型口腔中生长的量来推算，例如鼠链球菌在鼠口腔中的生长。合适的剂量也可通过产细菌素菌株变异链球菌JH1000及其表达不同水平细菌素活性的变异株在人口腔中生长的合适剂量来估算(Hillman等，1987年，《牙科研究杂志》(J.Dent.Res.)66卷，1092-1094页，在此引入作为参考)。可多剂量应用重组变异链球菌株以达到在口腔中生长并取代宿主固有致龋齿变异链球菌株的目的。通常，本发明的重组变异链球菌株仅需给予患者一次。若重组变异链球菌株为营养缺陷型，该菌株的生长必须通过给予含合适有机物的组合物来维持。例如，若重组变异链球菌株为D-丙氨酸营养缺陷型，必须给予D-丙氨酸使该菌株在口腔中持续定居。D-丙氨酸，或其它合适的有机物，通常一星期至少给药一次，优选一天至少一次，更优选一天至少二次，并能作为患者常规牙齿护理的一部分给药，例如，作为牙膏，牙线或漱口水的成份。重组变异链球菌株在宿主口腔中成功定居可通过培养患者口腔中的细菌来证实，重组菌株的鉴定，可通过例如重组ADH的产生，细菌素的产生，ELISA，在选择性pH指示物培养基中的生长或其它本领域熟知的细菌鉴定方法来进行。下面的实施例旨在对本发明进行详细说明而非对本发明加以限制。尽管它们在可能用到的方法中是典型的，但对本领域的普通技术人员来说也可采用他们熟知的其它方法。实施例实施例1材料与方法菌株，质粒，与生长条件产生变异链球菌菌株CH4ts(Chen等，1994年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)176卷，1542-1545页)和分离变异链球菌菌株NG8(Lee等，1989年，《感染与免疫》(Imfect.Immun.)57卷，33063313页)的方法在此之前已有描述。用于克隆的大肠杆菌菌株DH5α可容易得到。含克隆的运动发酵单胞菌丙酮酸脱羧酶(PDC)基因的质粒pLO1276(Conway等，1987年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)169卷，949-954页)，含克隆的运动发酵单胞菌醇脱氢酶II(adh)基因的质粒pLO1286(Conway等，1987年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)169卷，2591-2597页)，含克隆的变异链球菌spaP基因的以pCR2为基础的质粒pCR3-8(Crowley等，1995年，《(牙科研究杂志》(J.Dent.Res.)74卷摘要No.1511)、以及含来自变异链球菌的四环素抗性基因的质粒pVA981(Tobian等，1984年，《细菌学杂志》(J.Bactoriol.)160卷，556-563页)的构建在此之前均已有描述。上面引用的每篇参考文献在此引入作为上述质粒的构建，以及列举菌株的产生或分离的相应描述的参考。CH4ts的分批和连续培养物在添加了0.5％胰蛋白胨和1％葡萄糖的Carlsson合成培养基(Carlsson等，1970年，《龋齿研究》(CariesRes.)4卷，297-304页)中生长。用于ADH活性试验的细菌在添加1％葡萄糖的Todd-Hewitt肉汤中生长。在适宜的情况下还应用了氨苄青霉素(50μg/ml)，四环素(10μg/ml)，和红霉素(5μg/ml)。培养物试验分批和连续培养的样品在指定时间移出，并确定其pH及550nm处的光吸收。4℃离心移去细胞，得到的无细胞液用酶学方法检测葡萄糖、乙醇、和乳酸(Sigma化学公司，St.Louis，MO)，并用气-液色谱法(Hillman等，1987年，《感染与免疫》(Infect，Immun.)55卷，1399-1402页)分析3-羟基丁酮。用磷酸缓冲盐水(PBS)离心洗涤细胞团一次，并用化学法(Friedmam等，1957年，见S.P.Colowick与N.O.Kaplan编《酶学方法》(MethodsinEnzymology)AcademicPress，Inc.NewYork，第414-418页)测定胞内丙酮酸浓度。图中所列数据为两次实验结果的平均值。醇脱氢酶活性试验200ml大肠杆菌和变异链球菌株过夜培养物的菌体于4℃离心收集并用100mMKPO4缓冲液(pH8.5)洗涤两次。细胞用重悬于1ml缓冲液并通过弗氏细胞压碎器以15,000psi压力破碎。4℃离心30分钟除去菌体碎片。无菌体抽提液保存在冰上并按Neale等的方法(Neale等，1986年，《欧洲生物化学杂志》(Eur.J.Biochem.)154卷，119-124页)进行NAD依赖的乙醇氧化试验。乳酸脱氢酶活性试验LDH活性试验按前述方法(Hillman等，1990年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)58卷，1290-1259页)进行。概括地说，LDH活性试验为用分光光度计在340nm处检测果糖-1，6-二磷酸(FDP)和丙酸酸依赖的NAPH的氧化。反应混合物包括100μmol磷酸钾，pH6.2，0.2μmolNADH，10μmol丙酮酸钠，和1-5μl待测样品，终体积为1ml。测量活性的本底水平1分钟后，加入20μmolFDP启动反应。实施例2用于在变异链球菌中表达的运动发酵单胞菌adh结构基因的克隆质粒pADH含有与变异链球菌spaP基因调控序列融合的运动发酵单胞菌adh开放阅读框。pADH可如下构建，首先用SacI和DraIII消化质粒pCR3-8，然后用绿豆核酸酶处理消化后的DNA以除去绝大部分spaP基因，只保留其启动子、核糖体结合位点、和开放阅读框5′端的52个碱基。线性质粒pCR3-8质粒的4.2kb片段用琼脂糖凝胶电泳回收。用正向(5′CTTCTTCAACTTTTTATATTCCTTTCG(SEQIDNO3))和反向(5′CGGAGGCATTGTTTG(SEQIDNO4))合成引物以聚合酶链反应(PCR)由质粒pLO1286中扩增除了转录起始密码子(ATG)和另外一个(G)碱基之外的运动发酵单胞菌adh基因完整的开放阅读框。用琼脂糖凝胶电泳回收扩增片段，并用绿豆核酸酶和多核苷酸激酶处理，最后连入pCR3-8片段与spaP形成可转译的融合基因。所得质粒pADH用于转化大肠杆菌DH5α菌株。DH5α的转化体在含氨苄青霉素的LB培养基上筛选。用限制性内切酶分析确定pADH插入序列的正确大小与方向。在克隆到变异链球菌中之前，将含有来自变异链球菌的四环素抗性基因的质粒pVA981的3.5kbHincII片段(Tobian等，1984年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)160卷，556-563页)插入pADH的ScaI位点，将pADH转变为pADH-tet。pADH-tet构建物用于转化DH5α，在含四环素的Luria肉汤培养基(LB)上筛选出的转化体用于试验对氨苄青霉素的敏感性。最后按Perry和Kuramitsu的方法(Perry等，1981年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)32卷，1295-1297页)用pADH-tet转化变异链球菌。实施例3葡萄糖浓度对分批培养的CH4ts和NG8生长的影响CH4ts(ldhts)及其亲本菌株变异链球菌NG8的过夜分批培养物，在30℃下生长。CH4ts含一乳酸脱氢酶(LDH)温度敏感突变。CH4ts的LDH在30℃时如同野生型，但培养温度升至42℃时，热不稳定的LDH将失活。因此该菌株可用于实验检测LDH在变异链球菌LDH突变体的致死性中的作用。洗涤后的细胞用含和不含葡萄糖的新鲜配制的培养基1∶1000稀释，并在42℃水浴中培养。在图2(图A)所示的时间，通过将样品涂布于脑心浸液(BH1)平板并将平板30℃培养以计数活菌。结果表明，葡萄糖缺乏时(虚线)，CH4ts(空心三角)和NG8(空心圆)的表现相同3小时后停止生长，随后细胞逐渐死亡(半衰期＝23.5小时)。但是，当葡萄糖存在时(实线)，与其亲本(空心方框)不同，CH4ts(空心圆)在3小时内停止生长并加速了细菌的死亡(半衰期＝12.1小时)。这个差异在时间上与丙酮酸在突变体菌体内高浓度的聚积相关(图2B)。实施例4葡萄糖和温度对连续培养的CH4ts和NG8的生长及终产物终度的影响CH4ts在恒化反应罐中30℃生长至饱和。在培养温度升至42℃之前，提供每小时0.1稀释率的培养基流入液，维持72小时。在3小时内，细胞密度开始以与理论洗出率相同的速率下降，表明细胞生长停止(图3)。这与反应罐中观察到的葡萄糖浓度的升高相关。当连续培养实验用每小时0.006的稀释率重复时，当温度升至42℃时，可获得CH4ts的稳定生长(图4)。紧跟着温度的改变，与预期的洗出率一致，乳酸浓度降低。乳酸产生的终止伴随着乙醇和3-羟基丁酮产生的开始，导致连续培养物pH的逐渐升高。在整个实验期间，葡萄糖浓度仍检测不到。这些数据表明在限制葡萄糖条件下，连续培养的CH4ts于42℃可获得稳定生长。在限制葡萄糖条件下，CH4ts的表现如同化学诱导的鼠链球菌LDH缺陷突变株，以提高乙醇和3-羟丁酮的产量来代替乳酸的产生(Hillman等，1987年，《感染与免疫》(Infect.Immun)55卷，1399-1042页)。这些结果与发酵和酶学研究的结果相符，表明变异链球菌具有可调节的丙酮酸代谢替代途径。在合适的培养条件下，除乳酸外，野生型变异链球菌还产生大量的甲酸、乙酸、乙醇和3-羟基丁酮(Yamada等，1975年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)124卷，55-61页；Hillman等，1987年，《感染与免疫》(InfectImmun.)55卷，1399-1402页)。但是，这些替代途径显然不足以弥补LDH活性的缺乏。实施例5ADH的产生消除了变异链球菌LDH致死性用含有与变异链球菌spaP调控序列融合的运动发酵单胞菌adh开放阅读框的pADH转化的大肠杆菌株DH5α可表达克隆的ADH活性(特异活性为6.95μmol/min/mg蛋白)。这个结果与以前发表的结果一致，即spaP启动子和核糖体结合位点(rbs)在大肠杆菌中是有活性的(Lee等，1988年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)56卷，2114-2119页)。其ADH活性水平约为用pLO1286转化的DH5α中的ADH活性水平(特异活力为41.8μmol/min/mg蛋白)的17％，pLO1286具有原始克隆的adh基因和来自运动发酵单胞菌的调控序列。来自pVA981(pADH-tet)的四环素抗性基因的插入对pCR2骨架上氨苄青霉素抗性基因的打断并不影响ADH活性水平。一微克的pADH-tet用于转化CH4ts。坎贝尔型重组将spaP∷adh融合基因引入CH4ts的染色体。插入位点尚未鉴定，但可能在spaP或内源性adh基因的同源区。在42℃，含四环素的培养基中生长以选择转化的CH4ts。从长出的几百个克隆中，一称作CH4ts∷adh的纯化分离株，与其野生型祖亲本NG8(ADH特异活性，＜1.0μmol/min/mg蛋白)相比，具有明显更高的ADH活性(特异活性，60.43μmol/min/mg蛋白)。在添加2％葡萄糖的Todd-Hewitt肉汤中，CH4ts∷adh与NG8在42℃生长48小时。CH4ts∷adh的无菌体培养液比NG8的无菌体培养液(pH4.0，乙醇含量＜1mM)具有更高的pH(4.7)和乙醇含量(21.60mM)。用更高(5，10或20％)浓度的葡萄糖可得到相同的结果。在添加了0.5％胰蛋白胨和1％不同碳源的合成培养基中，对CH4ts∷adh和NG8在42℃的生长作了比较(表1)。表1.野生型和补充ADH的LDH缺陷型变异链球菌的生长特性</tables>上述结果为两次独立实验的平均值。除乳酸和乙醇外的其它发酵终产物未测定。当葡萄糖，乳糖或蔗糖作为碳源时(CH4ts∷adhNG8)的生长速率与产量相当。当半乳糖，山梨糖醇，甘露糖醇作为碳源时，CH4ts∷adh比NG8具有短得多的倍增时间和更高的产量。生长在任何碳源中的CH4ts∷adh的培养液中均检测不到乳酸，而其乙醇含量比NG8培养液中高得多。这些数据表明，在相同的生长条件下，重组变异链球菌株CH4ts∷adh比NG8野生型对照菌株表现出高得多的ADH活性水平。而且，CH4ts转化体可在非允许温度条件下生长，表明克隆的ADH活性消除了LDH缺陷引起的代谢障碍。这些数据进一步表明，当葡萄糖，乳糖或蔗糖作为唯一碳源且生产产量也相当时，CH4ts∷adh与NG8的生长速率与生长产量相似。但是，在需氧条件下，NG8在甘露糖醇和山梨糖醇中生长差，而CH4ts∷adh却生长良好。这个结果表明克隆的ADH活性提供了足够量的乙醇作为多元醇代谢中产生的大量电子的吸收库。NG8在半乳糖中生长也较差。还不清楚为什么在这种碳源中CH4ts∷adh比NG8生长要好，这种碳源通过变异链球菌中塔格糖6-磷酸途径代谢(Hamilton等，1979年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)140卷，1102-1104页)，特别是因为它们在乳糖中的生长情况是相当的。实施例6丙酮酸脱羧酶的产生并不消除变异链球菌LDH-致死性与实施例2-5所述相似的研究用于确定LDH缺陷是否能被丙酮酸脱羧酶的产生所弥补。来自运动发酵单胞菌的丙酮酸脱羧酶(pdc)基因(Conway等，1987年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)169卷，949-954页)与spaP融合，并通过如运动发酵单胞菌adh基因所述的自杀载体导入CH4ts中。四环素抗性、表达PDC的转化体分离后在上述的非允许温度42℃下进行生长试验。表达克隆的PDC活性的LDH-变异链球菌在非允许温度下不能生长。这些结果表明变异链球菌中LDH-缺陷的致死性不能被PDC的产生消除。而且，这些数据还表明ADH浓度在LDH缺陷型变异链球菌的丙酮酸代谢中并未饱和。实施例7JH1000和产生更高水平细菌素活性的JH1000变异株的分离变异链球菌株JH1000的分离已有描述(Hillman等，1984年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)44卷，141-144页)。概括地说，JH1000从在含杆菌肽的轻唾液琼脂上的115种被测物中获得的变异链球菌新分离株中得到鉴定。在延迟拮抗试验中JH1000抑制所有其它变异链球菌株和多种实验室菌株的生长。有证据表明(Hillman等，1984年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)44卷，141-144页)JH1000产生一种小的(小于1000Da)，稳定的抗生素样，细菌素样化合物，该化合物现已鉴定。该化合物被称作变异链球菌细菌素。微生物学和血清学试验证明JH1000是变异链球菌菌种中的一个代表。细菌素敏感性变异菌株，无论是天然产生的，还是化学诱变的，对细菌素的杀伤性有抗性的菌株还未被鉴定。这个结果表明，与大多数抗生素不同，遭受抗性野生型(致病)菌株超感染的风险极小。按本领域熟知的方法(Hillman，1978年，《感染与免疫》(InfectImmun.)21卷，206-212页)，用甲基磺酰乙酯(EMS)对JH1000菌株进行化学诱变。JH1005为EMS诱导的JH1000变异株的一个例子。通过将待测菌株在肉汤培养基中生长8小时或更长时间，可鉴定出产生高水平细菌素的变异株。离心培养物除去菌体，取20μl培养上清在微滴定板的孔中系列稀释，将含有靶菌株(通常为鼠链球菌BHT-2，StrR)和lmg/ml链霉素的100μl顶层琼脂加到每个孔中。孵育过夜后，测定阻止指示菌株生长的最低稀释度。用这种覆盖物方法，JH1000的EMS诱变(JH1005)和自发(JH1140)变异株被发现，它们可产生提高了约3倍的细菌素样活性水平。JH1000以及JH1000变异株，能产生乳酸，因而不适宜于替补疗法以预防和/或治疗龋齿。实施例8人口腔中变异链球菌JH1000变异株的生长细菌素活性提高的JH1000变异株在啮齿类动物和人口腔中的生长已有描述(Hillman等，1987年，《牙科研究杂志》(J.Dent.Res.)66卷，1092-1094页)。概括地说，用含有标准牙齿预防的感染法将JH1000或JH1000变异株用于人志愿者牙齿，随后用含约1011JH1000或JH1000变异株的细菌悬液刷牙或用牙线洗牙。细菌素活性水平与细菌在口腔中的生长能力紧密相关。用JH1005菌株感染一年以后，口腔中固有的变异链球菌逐渐被JH1005所代替。另外，在三个被试者中，有两个变异链球菌总数明显降低。实施例9用转座子诱变变异链球菌株产生变异链球菌的重组突变株质粒pTV1-OK是在变异链球菌和大肠杆菌中能条件复制的乳酸乳球菌质粒pWV01的repA(ts)衍生物(Leenhouts等，1991年，《质粒》(Plasmid)，26卷，55-66页)。它在质粒骨架上带有在大肠杆菌和变异链球菌中均能表达的卡那霉素抗性基因，并含有一为变异链球菌提供红霉素抗性的转座子Tn917。将pTV1-OK质粒转入变异链球菌JH1005菌株，在含卡那霉素的BHI琼脂中于28℃筛选转化细菌。用1mgpTV1-OKDNA转化JH1005，可产生四种卡那霉素抗性转化体，与早期实验的转化频率一致(Hillman等，1994年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)62卷，60-64页)。如Camilli等所述(1990年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)172卷，3738-3744页)，通过升温(45℃)产生宿主染色体DNA中Tn917插入的独立库。概括地说，在允许温度(28℃)并存在卡那霉素条件下生长的饱和培养物以1/50或1/100传代培养。温度升至45℃并过夜培养后，在含选择浓度红霉素的BHI琼脂上涂布样品以分离在宿主染色体上插入有Tn917的插入体。发现在总共109个克隆形成单位中有105保留了对这种抗生素的抗性。百分之九十随机挑选的红霉素抗性克隆通过复制斑显示出对卡那霉素敏感。这个发现说明90％的红霉素抗性克隆是pTV1-OK的丢失与Tn917转座入JH1005染色体的共同结果。用Southern杂交分析随机选出的红霉素抗性突变株，结果表明Tn917转座是随机的并导致单一染色体插入。Southern杂交分析也表明10％的红霉素抗性/卡那霉素抗性克隆是在JH1005染色体上带有完整的pTV1-OK质粒的复制子融合的结果。卡那霉素敏感克隆的独立库用于检测细菌素产生，对1％甘氨酸的敏感性，酸敏感性，以及依赖甘露糖醇厌氧生长的不可能性或在D-丙氨酸供应缺乏时生长的不可能性。每类突变体的分离频率范围约1-2×10-3。对两种细菌素缺乏突变株的Southern杂交分析表明至少存在两个不连锁的与细菌素产生有关的基因和至少三个与酸敏感有关的不连锁的基因座。通过自然转化，将从JH1005分离得到的Tn917诱导的酸敏感等位基因转入NG8后，转座子(编码红霉素抗性)与突变体表型以高频率共遗传。这种连锁表明Tn917引起的损伤与突变体表型有关。在天然可转化的菌株NG8中，在温度升高后以相似的转座频率和质粒丢失率也可获得Tn917突变体库。应用标记获救技术已在大肠杆菌中克隆了一个与细菌素产生有关的基因。突变体的染色体DNA用EcoRI完全消化(EcoRI不能在Tn917内酶切)并连入pUC19多克隆序列的EcoRI位点中。将文库转化MC1061并筛选氨苄青霉素抗性，将能生长的克隆影印至含红霉素的培养基中。两个能生长的克隆含有在点杂交分析中与Tn917探针反应的质粒DNA。近来，应用Tn917的红霉素近端和红霉素远端以外的引物对这些质粒进行了测序。这是一个利用Tn917在变异链球菌和口腔链球菌中成功的诱变。以前应用如pTV1或pLTV3构建物的失败(Youngman，1987年，见Hardy编，《质粒一项实用方法》(PlasmidsApracticalapproack)，IRLPress，Oxford79-103页；Camilli等，1990年，《细菌学杂志》(J.Bacteriol.)172卷，3738-3744页)是因为质粒骨架不能在变异链球菌中复制。利用乳球菌复制子pWV01Ts的复制功能，发现pTV1-OK在变异链球菌允许温度下能稳定维持，从而为非允许温度下Tn917转座的发生提供了足够的机会。因此，上述方法可用于生产营养缺陷型变异链球菌株，以及具有期望表型的其它变异链球菌衍生菌株，以用于本发明。实施例10LDH-，ADH+，产生细菌素的变异链球菌株的构建JH1000的ldh基因已被克隆和测序(Hillman等，1990年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)58卷，1290-1295页；Duncan等，1991年，《感染与免疫》(Infect.Immun.)59卷，3930-3934页)。概括地说，用pBR322作为载体，将JH1000ldh基因克隆到大肠杆菌MC1061菌株中。一个含ldh基因的克隆，p10-5，通过与寡核苷酸探针的杂交得到鉴定，该探针根据从JH1000中纯化的LDH蛋白的氨基末端序列推导得出(Hillman等，1990年，《感染与免疫)》(Infect.Immun.)58卷，1290-1295页)。这个结果通过p10-5/MC1061转化体无菌体粗提液中的JH1000LDH活性得到证实。克隆的ldh的核苷酸序列业已确定，其调控信号及开放阅读框也已推断出。JH1000ldh基因的序列可与从GenBank中获得，登录号M72545(描述LDHSM)。克隆的ldh基因可用限制性内切酶Hpal消化p10-5构建物而灭活。这导致从ldh开放阅读框中除去了510个碱基，从而永久地灭活了该基因。用琼脂糖凝胶电泳回收消化物中合适大小的DNA片段，用绿豆核酸酶处理以产生平头末端，与牛小肠磷酸酶反应去磷酸。用PCR扩增运动发酵单胞菌adh基因完整的开放阅读框(除了以鸟苷酸残基取代的头三个碱基和在开放阅读框末端加上的一个可翻译和转录的密码子)。凝胶纯化后，这个片段用绿豆核酸酶处理产生平头末端，与多核苷酸激酶反应磷酸化。这个产物与上述的p10-5产物连接并转化入大肠杆菌DH5α，用氨苄青霉素抗性筛选。纯化克隆的透化细胞随后按上述方法检测ADH活性。纯化ADH阳性克隆的质粒并用限制性图谱检测以证实其遗传结构。通过去除pBR322骨架上的氨苄青霉素抗性基因，并用来自pVA981的四环素抗性基因取代，以进一步修饰一个这样的遗传结构。用这一质粒结构转化JH1140，转化体在含有四环素的培养基中筛选。纯化长出的异源二倍体转化体，在Todd-Hewitt肉汤中生长过夜，以合适的稀释度涂布于葡萄糖四氮唑培养基上。在烛罐中孵育3天后，长出的红色克隆，表明了LDH的缺失(或表明酸产量降低)，分离纯化红色克隆，作为假定的LDH缺陷突变体。通过测定2天的陈旧肉汤培养物的乳酸和乙醇产量，并通过Southern杂交分析以及通过上述的分光光度法测定无菌体抽提物的LDH活性来证实该转化体的表型与基因型。这些菌株的乳酸产量应该检测不到，而在含1％或更多葡萄糖的肉汤中，培养基中的乙醇含量应约为25mM。这些转化体中的LDH活性应当检测不到。通过在有氧和无氧环境下，检测亲本与转化体在不同碳源中的生长情况进一步鉴定转化体菌株的特性。在增代时间和细胞产量方面，转化体应与亲本菌株生长得一样好或者更好。为了精确评估不同生长条件下的发酵终产物，亲本和转化体菌株也在恒化培养条件下生长。在所有培养条件下转化体菌株产生的乳酸应检测不到，仅在需氧培养时，产生大量3-羟基丁酮。用常规和/或无菌大鼠，在龋齿大鼠模型中检测了转化体的致龋齿能力。转化体应不产生龋齿，而亲本菌株应使龋齿的发病率增高并使龋齿更严重。转化体和亲本菌株的蚀斑产量和细菌素产量也进行了测定。因为转化体菌株至少在最小程度上满足了上述要求(即乳酸产生缺陷，并不致龋齿)，该转化体是适用于预防和治疗龋齿的重组变异链球菌株。下面的菌株在1995年6月7日或之前，已保藏于美国典型培养物保藏中心，1301ParklawnDrive，Rockville，MD，USA(ATCC)保藏物ATCC登录号JH1000登录号55677JH1140登录号55676该保藏根据《国际承认用于专利程序的微生物保存布达佩斯条约》的条款和细则进行。这确保活培养物自保藏之日起维持30年。根据布达佩斯条约，该细菌可由ATCC取得，并且申请人保证以下条件一经满足，即可向公众永久和无限制地提供该培养物的后代，所述条件为相关的美国专利获得授权或任何相关的美国或外国专利申请向公众公开，申请人并且保证可向美国专利与商标局长根据35U.S.C§122和局长条令(包括37CFR§1.14，细节参考886OG638)指定的人提供该培养物的后代。本申请的受让人已同意如果保存的培养物在适宜条件下培养而死亡或丢失或破坏，接到通知后将尽快用同种培养物的活标本替换该培养物。可获得本保存菌株不能被理解为允许在与任何政府的主管部门依其专利法授予的权力相抵触的情况下使用本发明。序列表(1)一般信息(i)申请者UniversityofFloridaResearchFoundation，Inc.(ii)发明题目龋齿的替补疗法(iii)序列数4(iv)联系地址(A)联系人Fish&amp;Richardson(B)街道4225ExecutiveSquare，Suite1400(C)城市LaJolla(D)州California(E)国家美国(F)邮编92037(v)计算机可读形式(A)媒体类型软盘(B)计算机IBMPC兼容机(C)操作系统PC-DOS/MS-DOS(D)软件PatentInRelease#1.0，版本#1.25(vi)当前申请资料(A)申请号(B)申请日1996年6月7日(C)分类(Viii)律师/代理人资料(A)姓名Wetherell，JohnR.(B)注册号31，678(C)参考/文献号07397/002WO1(ix)电讯资料(A)电话(619)678-5070(B)电传(619)678-5099(2)SEQIDNO1资料(i)序列特征(A)长度1747碱基对(B)类型核酸(C)链型双链(D)拓扑学线性(ii)分子类型DNA(ix)特征(A)名称/关键词CDS(B)位置432..1747(xi)序列表述SEQIDNO1AAAGGCAAAATCGGTAACCACATCTCAATTATTAAACAATACTTCATAATAAAAAGACAA60CTTTTTCATAATTTGCATAAGTCTTGATGTAAAAAATACATATTTAGAAAGAACAAGCAG120CCTTGCTCATCACCGCTGTCGCGAGTAGAAAAATCTCGGCTTTCAGAAAAAGAGGCCGCT180TCGTTAAACAGACTATAAATGTGCTGGAATAAAGCGAACCCCTTGATCTGATAAAACTGA240TAGACATATTGCTTTTGCGCTGCCCGATTGCTGAAAATGCGTAAAAGGTGATTTTACTCG300TTTTCAGGAAAAACTTTGAGAAAACGTCTCGAAAACGGGATTAAAACGCAAAACAATAG360AAAGCGATTTCGCGAAAATGGTTGTTTTCGGGTTGTTGCTTTAAACTAGTATGTAGGGTG420AGGTTATAGCTATGGCTTCTTCAACTTTTTATATTCCTTTCGTCAACGAA470MetAlaSerSerThrPheTyrIleProPheValAsnGlu1510ATGGGCGAAGGTTCGCTTGAAAAAGCAATCAAGGATCTTAACGGCAGC518MetGlyGluGlySerLeuGluLysAlaIleLysAspLeuAsnGlySer152025GGCTTTAAAAATGCGCTGATCGTTTCTGATGCTTTCATGAACAAATCC566GlyPheLysAsnAlaLeuIleValSerAspAlaPheMetAsnLysSer30354045GGTGTTGTGAAGCAGGTTGCTGACCTGTTGAAAGCACAGGGTATTAAT614GlyValValLysGlnValAlaAspLeuLeuLysAlaGlnGlyIleAsn505560TCTGCTGTTTATGATGGCGTTATGCCGAACCCGACTGTTACCGCAGTT662SerAlaValTyrAspGlyValMetProAsnProThrValThrAlaVal657075CTGGAAGGCCTTAAGATCCTGAAGGATAACAATTCAGACTTCGTCATC710LeuGluGlyLeuLysIleLeuLysAspAsnAsnSerAspPheValIle808590TCCCTCGGTGGTGGTTCTCCCCATGACTGCGCCAAAGCCATCGCTCTG758SerLeuGlyGlyGlySerProHisAspCysAlaLysAlaIleAlaLeu95100105GTCGCAACCAATGGTGGTGAAGTCAAAGACTACGAAGGTATCGACAAA806ValAlaThrAsnGlyGlyGluValLysAspTyrGluGlyIleAspLys110115120125TCTAAGAAACCTGCCCTGCCTTTGATGTCAATCAACACGACGGCTGGT854SerLysLysProAlaLeuProLeuMetSerIleAsnThrThrAlaGly130135140ACGGCTTCTGAAATGACGCGTTTCTGCATCATCACTGATGAAGTCCGT902ThrAlaSerGluMetThrArgPheCysIleIleThrAspGluValArg145150155CACGTTAAGATGGCCATTGTTGACCGTCACGTTACCCCGATGGTTTCC950HisValLysMetAlaIleValAspArgHisValThrProMetValSer160165170GTCAACGATCCTCTGTTGATGGTTGGTATGCCAAAAGGCCTGACCGCC998ValAsnAspProLeuLeuMetValGlyMetProLysGlyLeuThrAla175180185GCCACCGGTATGGATGCTCTGACCCACGCATTTGAAGCTTATTCTTCA1046AlaThrGlyMetAspAlaLeuThrHisAlaPheGluAlaTyrSerSer190195200205ACGGCAGCTACTCCGATCACCGATGCTTGCGCCTTGAAGGCTGCGTCC1094ThrAlaAlaThrProIleThrAspAlaCysAlaLeuLysAlaAlaSer210215220ATGATCGCTAAGAATCTGAAGACCGCTTGCGACAACGGTAAGGATATG1142MetIleAlaLysAsnLeuLysThrAlaCysAspAsnGlyLysAspMet225230235CCAGCTCGTGAAGCTATGGCTTATGCCCAATTCCTCGCTGGTATGGCC1190ProAlaArgGluAlaMetAlaTyrAlaGlnPheLeuAlaGlyMetAla240245250TTCAACAACGCTTCGCTTGGTTATGTCCATGCTATGGCTCACCAGTTG1238PheAsnAsnAlaSerLeuGlyTyrValHisAlaMetAlaHisGlnLeu255260265GGCGGCTACTACAACCTGCCGCATGGTGTCTGCAACGCTGTTCTGCTT1286GlyGlyTyrTyrAsnLeuProHisGlyValCysAsnAlaValLeuLeu270275280285CCGCATGTTCTGGCTTATAACGCCTCTGTCGTTGCTGGTCGTCTGAAA1334ProHisValLeuAlaTyrAsnAlaSerValValAlaGlyArgLeuLys290295300GACGTTGGTGTTGCTATGGGTCTCGATATCGCCAATCTCGGTGATAAA1382AspValGlyValAlaMetGlyLeuAspIleAlaAsnLeuGlyAspLys305310315GAAGGCGCAGAAGCCACCATTCAGGCTGTTCGCGATCTGGCTGCTTCC1430GluGlyAlaGluAlaThrIleGlnAlaValArgAspLeuAlaAlaSer320325330ATTGGTATTCCAGCAAATCTGACCGAGCTGGGTGCTAAGAAAGAAGAT1478IleGlyIleProAlaAsnLeuThrGluLeuGlyAlaLysLysGluAsp335340345GTGCCGCTTCTTGCTGACCACGCTCTGAAAGATGCTTGTGCTCTGACC1526ValProLeuLeuAlaAspHisAlaLeuLysAspAlaCysAlaLeuThr350355360365AACCCGCGTCAGGGTGATCAGAAAGAAGTTGAAGAACTCTTCCTGAGC1574AsnProArqGlnGlyAspGlnLysGluValGluGluLeuPheLeuSer370375380GCTTTCTAATTTCAAAACAGGAAAACGGTTTTCCGTCCTGTCTTGATT1622AlaPheTTCAAGCAAACAATGCCTCCGATTTCTAATCGGAGGCATTTGTTTTTG1670TTTATTGCAAAAACAAAAAATATTGTTACAAATTTTTACAGGCTATTA1718AGCCTACCGTCATAAATAATTTGCCATTT1747(2)SEQIDNO2资料(i)序列特征(A)长度438氨基酸(B)类型氨基酸(D)拓扑学线性(ii)分子类型蛋白质(xi)序列表述SEQIDNO2MetAlaSerSerThrPheTyrIleProPheValAsnGluMetGlyGlu151015GiySerLeuGluLysAlaIleLysAspLeuAsnGlySerGlyPheLys202530AsnAlaLeuIleValSerAspAlaPheMetAsnLysSerGlyValVal354045LysGlnValAlaAspLeuLeuLysAlaGlnGlyIleAsnSerAlaVal505560TyrAspGlyValMetProAsnProThrValThrAlaValLeuGluGly65707580LeuLysIleLeuLysAspAsnAsnSerAspPheValIleSerLeuGly859095GlyGlySerProHisAspCysAlaLysAlaIleAlaLeuValAlaThr100105110AsnGlyGlyGluValLysAspTyrGluGlyIleAspLysSerLysLys115120125ProAlaLeuProLeuMetSerIleAsnThrThrAlaGlyThrAlaSer130135140GluMetThrArgPheCysIleIleThrAspGluValArgHisValLys145150155160MetAlaIleValAspArgHisValThrProMetValSerValAsnAsp165170175ProLeuLeuMetValGlyMetProLysGlyLeuThrAlaAlaThrGly180185190MetAspAlaLeuThrHisAlaPheGluAlaTyrSerSerThrAlaAla195200205ThrProIleThrAspAlaCysAlaLeuLysAlaAlaSerMetIleAla210215220LysAsnLeuLysThrAlaCysAspAsnGlyLysAspMetProAlaArg225230235240GluAlaMetAlaTyrAlaGlnPheLeuAlaGlyMetAlaPheAsnAsn245250255AlaSerLeuGlyTyrValHisAlaMetAlaHisGlnLeuGlyGlyTyr260265270TyrAsnLeuProHisGlyValCysAsnAlaValLeuLeuProHisVal275280285LeuAlaTyrAsnAlaSerValValAlaGlyArgLeuLysAspValGly290295300ValAlaMetGlyLeuAspIleAlaAsnLeuGlyAspLysGluGlyAla305310315320GluAlaThrIleGlnAlaValArgAspLeuAlaAlaSerIleGlyIle325330335ProAlaAsnLeuThrGluLeuGlyAlaLysLysGluAspValProLeu340345350LeuAlaAspHisAlaLeuLysAspAlaCysAlaLeuThrAsnProArg355360365GlnGlyAspGlnLysGluValGluGluLeuPheLeuSerAlaPhe(2)SEQIDNO3资料(i)序列特征(A)长度27碱基对(B)类型核酸(C)链型单链(D)拓扑学线性(ii)分子类型DNA(xi)序列表述SEQIDNO3CTTCTTCAACTTTTTATATTCCTTTCG27(2)SEQIDNO4资料(i)序列特征(A)长度15碱基对(B)类型核酸(C)链型单链(D)拓扑学线性(ii)分子类型DNA(xi)序列表述SEQIDNO4CGGAGGCATTGTTTG15本发明前面的描述是为了举例说明和解释。它应被理解为在不背离本发明的精神与范围的条件下可进行许多修改。因此，下面的权利要求应被视为包括所有这样的修改。权利要求1.一种重组变异链球菌株，其特征在于a)乳酸产生缺陷和b)产生重组醇脱氢酶。2.权利要求1的菌株，其中乳酸产生缺陷是因为乳酸脱氢酶基因的缺陷。3.权利要求1的菌株，其中重组醇脱氢酶基因是运动发酵单胞菌的醇脱氢酶基因。4.权利要求3的菌株，其中运动发酵单胞菌醇脱氢酶基因编码醇脱氢酶II。5.权利要求1的菌株，其中重组醇脱氢酶基因为鼠链球菌醇脱氢酶基因。6.权利要求1的菌株，其中该菌株进一步的特征为产生细菌素。7.权利要求6的菌株，其中细菌素分子量低于1000道尔顿，并对细菌素敏感性变异链球菌株具有抗菌活性。8.权利要求1的菌株，其中该菌株为D-丙氨酸营养缺陷型。9.权利要求8的菌株，其中该菌株在丙氨酸消旋酶基因上有缺陷。10.权利要求1的菌株，其中该菌株由JH1000或其变异株衍生而来。11.一种重组变异链球菌株，其特征在于1)乳酸产生缺陷；2)产生重组醇脱氢酶；和3)产生对细菌素敏感性变异链球菌株有抗菌活性的细菌素。12.权利要求11的菌株，其中该菌株为变异链球菌株JH1000或其变异株。13.权利要求12的菌株，其中该菌株为相对于变异链球菌株JH1000可产生升高水平的细菌素的变异链球菌JH1000的变异株。14.权利要求13的菌株，其中该变异链球菌JH1000变异株为变异链球菌JH1140或其变异株。15.权利要求11的菌株，其中该菌株为D-丙氨酸营养缺陷型。16.权利要求15的菌株，其中该菌株在丙氨酸消旋酶上有缺陷。17.ATCC登录号为55677的变异链球菌株JH1000。18.ATCC登录号为55676的变异链球菌株JH1140。19.一种产生重组变异链球菌株的方法，该菌株的特征在于乳酸产生缺陷和产生重组的醇脱氢酶，该方法包括以下步骤用编码醇脱氢酶的基因转化变异链球菌株，以及在乳酸合成途径中引入突变。20.权利要求19的方法，其中乳酸合成途径中的突变为乳酸脱氢酶基因上的缺陷。21.权利要求19的方法，其中醇脱氢酶为运动发酵单胞菌的醇脱氢酶。22.权利要求19的方法，其中变异链球菌株产生对细菌素敏感性变异链球菌株有抗菌活性的细菌素。23.权利要求22的方法，其中该变异链球菌株为JH1000或其变异株。24.权利要求23的方法，其中变异链球菌株JH1000变异株为变异链球菌株JH1140。25.权利要求19的方法，其中该菌株为D-丙氨酸营养缺陷型。26.权利要求25的方法，其中该菌株在丙氨酸消旋酶上含有缺陷。27.一种降低龋齿易感宿主的龋齿发病率和严重性的方法，包括经口腔给予龋齿易感宿主能有效替换宿主口腔中致龋齿变异链球菌株量的重组变异链球菌株，该菌株具有1)重组醇脱氢酶基因和2)乳酸产生缺陷。28.权利要求27的方法，其中重组变异链球菌株产生对细菌素敏感性变异链球菌株有抗菌活性的细菌素。29.权利要求27的方法，其中乳酸产生缺陷是因为乳酸脱氢酶基因上有缺陷。30.权利要求27的方法，其中重组醇脱氢酶基因为运动发酵单胞菌醇脱氢酶基因。31.权利要求30的方法，其中运动发酵单胞菌醇脱氢酶基因编码醇脱氢酶II。32.权利要求27的方法，其中重组变异链球菌株为D-丙氨酸营养缺陷型。33.权利要求32的方法，其中重组变异链球菌株在丙氨酸消旋酶基因上有缺陷。34.权利要求27的方法，其中重组变异链球菌株包含在漱口水、牙膏、咀嚼胶、牙线、可咀嚼药片、亲液胶或培养基中。35.权利要求32的方法，其中该方法还包括向宿主口腔给予能有效维持该重组变异链球菌菌株在宿主口腔中生长的量的D-丙氨酸。36.权利要求35的方法，其中D-丙氨酸包含在漱口水、牙膏、牙线、咀嚼胶或可咀嚼药片中。37.一种用于降低龋齿发病率及严重性的药物组合物，包括重组变异链球菌株，该菌株具有1)重组醇脱氢酶基因和2)乳酸产生缺陷，和药用载体。38.权利要求37的组合物，其中该重组变异链球菌产生对细菌素敏感性变异链球菌株有抗菌活性的细菌素。39.权利要求37的组合物，其中乳酸产生缺陷是因为乳酸脱氢酶基因上有缺陷。40.权利要求37的组合物，其中重组醇脱氢酶基因是运动发酵单胞菌的醇脱氢酶基因。41.权利要求37的组合物，其中该重组变异链球菌株为D-丙氨酸营养缺陷型。42.权利要求41的组合物，其中该重组变异链球菌菌株在丙氨酸消旋酶基因上有缺陷。43.权利要求41的组合物，其中该组合物中还含有D-丙氨酸。44.权利要求37的组合物，其中该组合物中还含有调味剂。45.权利要求37的组合物，其配制成漱口水、牙膏、咀嚼胶、牙线、可咀嚼药片、亲液胶或培养基。46.一种用以维持宿主口腔中D-丙氨酸营养缺陷型细菌生长的含有可维持D-丙氨酸营养缺陷型细菌生长量的丙氨酸的组合物。47.权利要求46的组合物，其中该D-丙氨酸营养缺陷型细菌为D-丙氨酸营养缺陷型变异链球菌。48.权利要求46的组合物，其中维持D-丙氨酸营养缺陷型细菌生长的量约为0.01-167mg/ml。49.权利要求46的组合物，其中该组合物还含有调味剂。50.权利要求46的组合物，其配制成漱口水、牙膏、咀嚼胶、牙线或可咀嚼药片。全文摘要本发明描述了以乳酸产生缺陷和重组醇脱氢酶(ADH)产生为特点的重组变异链球菌。这些重组变异链球菌适用于预防、治疗龋齿的方法。文档编号A61K8/99GK1192234SQ96195927公开日1998年9月2日申请日期1996年6月7日优先权日1995年6月7日发明者J·D·希尔曼申请人:佛罗里达大学研究基金会有限公司