本发明属于分子生物学领域,涉及一种沟叶结缕草全长cDNA文库构建的方法。
背景技术:
cDNA文库是以某种生物在特定时期、特定组织或特定处理下所表达的全部mRNA为模板,经反转录形成的混合cDNA与适当的载体进行连接或重组后,转化受体菌获得包括所有mRNA信息的cDNA克隆集合;近些年,cDNA文库成为基因挖掘或分子生物学研究的重要基础,如通过cDNA文库获取大量的EST序列,采用cDNA表达文库筛选获得优异的抗逆基因,利用cDNA酵母双杂文库筛选获得互作蛋白。
沟叶结缕草(Zoysia matrella)属禾本科(Gramineae)画眉草亚科(Chloridoideae)结缕草属植物,是优异的多年生暖季型草坪草,在世界范围内广泛应用,具有较高的经济价值和生态效应;同时,沟叶结缕草为盐生植物,是盐碱地宝贵的生物基因资源,其盐胁迫下cDNA文库构建的研究未见报道。
技术实现要素:
本发明提供了一种沟叶结缕草全长cDNA文库的构建方法,本发明的技术问题可通过如下技术方案解决:
1.采用Trizol 法提取总RNA,通过mRNA纯化试剂盒获得高质量mRNA;
2.将步骤1的mRNA反转录成cDNA,RNA消化,纯化获得高质量第一链cDNA;
3.采用cap-antibody磁珠富集步骤2中带5’帽子结构的第一链cDNA;
4.给步骤3中的cDNA加上5’接头后纯化,合成cDNA第二链,形成双链cDNA;
5.对步骤4中的双链cDNA进行分级分离及收集,获得高纯度的双链cDNA;
6.步骤5获得的双链cDNA与文库载体pDONR/Zeocin进行BP重组,电转大肠杆菌DH10B,即完成沟叶结缕草全长未剪切cDNA文库的构建。
有益效果:
1.本发明提供的沟叶结缕草全长cDNA表达文库,可直接用于测序、功能基因组学研究,用于优异基因的规模化筛选;
2.本发明提供的文库构建的方法,可为其他植物文库构建提供参考。
附图说明
图1 为具体实施方式1中提取的沟叶结缕草植株(包括根茎叶)的总RNA(a)及mRNA纯化(b)检测的电泳图及浓度检测图;
图2 为具体实施方式7中的文库浓度检测及PCR检测,a:取电转化菌液10µL按照1:100稀释取50µL涂布平板后,长出的克隆;b:随机挑选32个克隆,PCR检测其插入片段大小。
具体实施方式
1. RNA提取与mRNA纯化。
采用水培法进行盐处理,取300 mM NaCl的Hoagland 营养液处理10 d后的沟叶结缕草植株,采用Trizol RNA试剂盒(Invitrogen)提取根、茎、叶的总RNA,采用1%凝胶电泳检测RNA条带清晰,Thermo nanodrop 核酸分析仪定量结果表明(图1a),RNA浓度为884.6ng/µL,A260/A280为1.93,总体积600µL,RNA总量达到520µg。采用Dynabeads® mRNA Purification Kit(Invitrogen)分离纯化mRNA,检测结果表明(图1b),mRNA在1-5kb呈现弥散条带,mRNA浓度达到12.8 ng/µL,A260/A280为2.17,总体积400µL,mRNA总量达到5.12µg。这些结果均达到文库构建的要求。
2. 第一链cDNA合成及RNA消化。
取实施方式1中得到的mRNA,经乙醇沉淀,溶于22.5 µL DEPC水中,按下表在0.2ml RNase free tube中配置引物反应体系:
70℃处理7min,然后在15min内缓慢降至45℃;按下表依次加入:
混匀后并运行以下程序:45℃ 20min,50℃ 20min,55℃ 20min。然后经乙醇沉淀,溶于179µL DEPC水中。按下列体系进行RNA消化处理:
37℃孵育30min;然后经酚抽提和乙醇沉淀,最后用300µL TEN buffer重悬cDNA沉淀,获得高质量cDNA第一链。
3. 富集带5’帽子结构的一链cDNA。
① 取充分混匀的cap-antibody(Invitrogen)磁珠300µl,于磁架上静置2min、去上清,用300µL的TEN buffer(10 mM Tris-HCl,pH 7.5;0.1 mM EDTA;25 mM NaCl)重悬洗涤2次,去上清后,加入300µL的TEN buffer和20µg的酵母tRNA重悬磁珠,置于室温孵育10min。
② 重悬①的磁珠,加入实施方式2中获得的300µL高质量cDNA第一链,室温孵育60min,每隔20min混匀一次;然后于磁架上静置2min、去上清;用300µl的TEN buffer重悬洗涤2次,去上清后,加入300µL的TENG buffer(10 mM Tris-HCl,pH 7.5;0.1 mM EDTA;25 mM NaCl;1 mM GDP)重悬cap-antibody磁珠并转入新的1.5ml离心管中,静置,去上清。
③ 加入100µL的50 mM NaOH重悬②的磁珠,于37℃孵育10min,静置、取上清置于新的离心管中,即为洗脱的cDNA;然后加入100µL的1M Tris-Hcl(pH7.0)中和cDNA中的NaOH。重复两次,最后收集的洗脱液管中溶液总体积为400µL。
④ 采用DNA柱纯化试剂盒,纯化400µL洗脱液,用22µL的DEPC水过柱洗涤获得全长筛选富集的cDNA第一链溶液。
4. 加5’接头及双链cDNA合成。
加入以下产物置于PCR仪上,95℃ 10分钟,立即从PCR仪上取出,置于室温,放置30分钟,合成attB1 adapter接头;
将具体实施方式3中获得的22µL的cDNA第一链溶液中依次加入以下试剂
用枪混匀后置于16℃孵育24小时,然后采用DNA柱纯化试剂盒纯化,用80µL的DEPC水过柱洗涤获得带接头的cDNA第一链溶液;
按照以下体系合成cDNA第二链,形成双链cDNA溶液
68℃ 20 min,72℃ 20 min,置于冰上待用。
5. cDNA分级分离及收集。
向具体实施方式3中获得的100µl的双链cDNA中加入50µL的TEN buffer,混匀后加入分级柱(Invitrogen)中,收集全部滤过液到1号收集管;然后向分级柱中加入250µL的TEN buffer,收集全部滤过液到2号收集管;向分级柱中加入50µL的TEN buffer,收集全部滤过液到3号收集管;向分级柱中加入100µL的TEN buffer,收集全部滤过液到4号收集管;向分级柱中加入100µL的TEN buffer,收集全部滤过液到5号收集管;取2号收集管的产物,经乙醇沉淀,用14µL溶解cDNA双链,用于下一步反应。
6.BP重组及电转化。
按下表加入各成分:
混匀后置于25℃,20小时。然后加入2µL的ProreinaseK,37℃,15min;75℃,10min。再经乙醇沉淀,用8µL的TE Buffer溶解cDNA;将纯化的2uL重组产物和50µL电转感受态细胞DH10B混合加入预冷电转杯,冰上置45min;于TX ECM 630电转化仪上电击转化,其条件设置为:
电击后迅速向电转杯中加入SOC培养基1mL,将电转物取入到新的15mL离心管,置于37℃,225-250rpm摇床培养1小时;培养结束后,此即为全长未剪切cDNA文库菌液。
7.文库质量检测。
取菌液10µL按照1:100稀释取50µL涂布平板用于库容量鉴定、插入片段大小评价及测序检测;经检测(图2a),转化平板的菌液浓度为:CFU/ml= 500/50µL ×100 × 1000µL=1×106cfu/mL,共电转3次,共获得3mL菌液,总克隆数CFU达到3×106 个;
随机挑选32个克隆进行PCR扩增检测,其检测体系为:
其PCR扩增条件为:
其检测结果如图2b,重组率达到100%,平均插入片段大小为1.59kb。另外,也通过测序,BLASTX分析表明,16个克隆序列(SEQ ID NO. 6-21)中均包括了预测的起始密码子序列,全长率达到100%。
综上所述,本发明成功构建了高质量的沟叶结缕草全长cDNA文库,不仅为开展沟叶结缕草功能基因组学研究奠定了新思路,同时也为其它植物文库构建提供了新方法。
<110> 江苏省中国科学院植物研究所
<120> 一种沟叶结缕草全长cDNA文库构建的方法
<160> 21
<210> 1
<211> 53
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 第一链cDNA合成引物序列Biotin-attB2-Oligo(dT) Primer
<400> 1
ggcggccgca caactttgta caagaaagtt gggttttttt tttttttttt ttt 53
<210> 2
<211> 32
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 5’接头合成引物attB1-adapter-F
<400> 2
tcgtcgggga caactttgta caaaaaagtt gg 32
<210> 3
<211> 27
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 5’接头合成引物attB1-adapter-R
<400> 3
cccctgttga aacatgtttt ttcaacc 27
<210> 4
<211> 36
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 文库质量检测的PCR反应引物pDONR222F
<400> 4
tcccagtcac gacgttgtaa aacgacggcc agtctt 36
<210> 5
<211> 40
<212> DNA
<213> 人工序列
<220>
<221> 文库质量检测的PCR反应引物pDONR222R
<400> 5
agagctgcca ggaaacagct atgaccatgt aatacgactc 40
<210> 6
<211> 96
<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
<400> 6
1 tgaaaggagacgagtcgagagaagcggcggcggcagcgacccgatccgccaccgccaccg
61 ccggcgacgataccctgctaacaagagaagatggca
<210> 7
<211> 96
<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
<400> 7
1 caccaccgcaaatctcctcgtcgcattcgcagaggtgccgccgattcgaccagggatggc
61 g
<210> 8
<211> 294
<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
<220>
<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
<400> 8
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<210> 9
<211> 128
<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
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<210> 10
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<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
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61 ggc
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<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
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<210> 12
<211> 19
<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
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1 gcggcacatcggaatgcat
<210> 13
<211> 167
<212> DNA
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
<400> 13
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<211> 71
<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
<400> 14
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61 ggttcatgtcc
<210> 15
<211> 54
<212> DNA
<213> 沟叶结缕草(Zoysia matrella)
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
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<210> 16
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<212> DNA
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<210> 17
<211> 320
<212> DNA
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
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<210> 18
<211> 111
<212> DNA
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
<400> 18
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<210> 20
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61 ggcg
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<223> 沟叶结缕草文库基因ATG上游启动子序列
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