一种糖基转移酶及其应用的制作方法

1.本发明涉及一种糖基转移酶及其在甜菊糖苷的糖基化反应中的应用。


背景技术：

2.甜菊糖苷(steviol glycosides，又称甜菊醇糖苷)是从菊科草本植物甜叶菊叶中提取的天然甜味剂，是多种糖苷的混和物，不同甜菊糖苷在味质上存在较大的差异。甜菊糖苷具有纯天然(来自纯天然植物甜叶菊)、高甜度(蔗糖的250～450倍)、低热量(仅为白糖的1/300)、使用经济(成本仅为蔗糖的三分之一)、稳定性好(耐热、耐酸、耐碱，不易出现分解现象)、安全性高(无毒副作用)等优点，以及抗高血糖、抗高血压、抗炎症、抗肿瘤、抗腹泻等潜在疗效。
3.甜菊糖苷(甜菊糖苷类化合物)的结构式如下：
[0004][0005]
序号化合物r1r21甜菊醇hh2甜菊醇单糖苷hβ-glc3甜菊醇双糖苷hβ-glc-β-glc(2-1)4甜茶苷β-glcβ-glc5甜菊苷(stv)β-glcβ-glc-β-glc(2-1)6莱鲍迪苷a(ra)β-glcβ-glc-β-glc(2-1)-β-glc(3-1)7莱鲍迪苷b(rb)hβ-glc-β-glc(2-1)-β-glc(3-1)8莱鲍迪苷c(rc)β-glcβ-glc-α-rha(2-1)-β-glc(3-1)9莱鲍迪苷d(rd)β-glc-β-glc(2-1)β-glc-β-glc(2-1)-β-glc(3-1)10莱鲍迪苷e(re)β-glc-β-glc(2-1)β-glc-β-glc(2-1)11莱鲍迪苷f(rf)β-glcβ-glc-α-xly(2-1)-β-glc(3-1)12莱鲍迪苷m(rm)β-glc-β-glc(2-1)-β-glc(3-1)β-glc-β-glc(2-1)-β-glc(3-1)13杜可尔苷aβ-glcβ-glc-α-rha(2-1)
[0006]
上述甜菊糖苷类化合物，具有共同的糖苷配基：甜菊醇(steviol)，区别在于c-13和c-19位置连接的糖基的数量和类型，主要包括甜菊苷(stevioside)、莱鲍迪苷a(rebaudioside a，reb a)、莱鲍迪苷b、莱鲍迪苷c、莱鲍迪苷d(rebaudioside d，reb d)、莱鲍迪苷e、杜克苷、甜菊双糖苷等八种糖苷。甜菊的叶子能够累积多达10-20％(基于干重)甜菊糖苷。甜菊叶子中发现的主要糖苷是莱鲍迪苷a(2-10％)、甜菊苷(2-10％)和莱鲍迪苷c(1-2％)。其他糖苷，如莱鲍迪苷b、d、e和f，甜菊双糖苷和甜茶苷，以低得多的水平被发现(大约0-0.2％)。
[0007]
虽然甜菊糖苷是一种高倍甜味剂，但存在后苦涩味这一缺点，严重限制了其在食品、饮料等对口感要求较高的领域中的应用。而引起甜菊糖苷后苦涩味的本质原因是其内在分子结构引起的，甜菊糖苷中的r1和r2基团上连接糖基数量越多口感越好。通常，发现甜菊苷比蔗糖甜110-270倍，莱鲍迪苷a为150至320倍，然而，即使在高度纯化的状态下，甜菊糖苷仍然具有不合需要的味道属性，如苦味、甜的余味、甘草味等。
[0008]
莱鲍迪苷d是其中最有应用潜力的甜菊糖苷，与其它甜菊糖苷相比，其甜度高，约为蔗糖的300-350倍，且甜味纯正，口感也更接近蔗糖，没有苦味和甘草异味，稳定性好，是一种理想的天然高倍甜味剂产品。甜叶菊叶子中莱鲍迪苷d的含量极少(少于5％)，采用提取法生产莱鲍迪苷d需要大量的甜叶菊原料，另外富集莱鲍迪苷d的工艺繁琐，提取后需要多次过柱和脱盐、脱色、重结晶，并在生产过程中产生大量的废水，其生产成本较高，不适合工业化大生产。
[0009]
目前生物酶法合成莱鲍迪苷d的方法需要外加昂贵的udp-葡萄糖为底物之一，通过udp-葡萄糖基转移酶(udp-glucosyltransferase，简称ugt)的作用，并且以甜菊苷或莱鲍迪苷a为底物，催化生成莱鲍迪苷d。但由于udp-葡萄糖极高的售价，几乎完全限制了工业化制备莱鲍迪苷d的可行性，经济性较差、缺乏市场竞争力。
[0010]
莱鲍迪苷m(rebaudioside m，rebm)具有更好的口感特性，但其占叶子干重的含量小于0.1％，导致分离成本高、价格昂贵。生物催化法获得高浓度的莱鲍迪苷m已引起了学者的关注。目前报道，来源甜叶菊的重组酶能催化莱鲍迪苷d生成莱鲍迪苷m，但产量较低。以莱鲍迪苷d为底物，通过微生物产酶催化法可获得莱鲍迪苷m，该方法较传统的提取法，不仅改善了生产流程，并且降低了对环境的污染，提高了目的产物莱鲍迪苷m的产率。但目前以生物酶催化法主要存在以下几个问题：(1)以生物酶催化莱鲍迪苷d生产莱鲍迪苷m的成本较高，并且酶催化产率有待进一步优化；(2)用于催化的糖基转移酶不易与产物分离并回收利用，且易失活；(3)天然植物中莱鲍迪苷a含量很高，而莱鲍迪苷d含量非常低，以低成本由莱鲍迪苷a直接转化为莱鲍迪苷d也是亟待解决的难题。
[0011]
葡萄糖基转移酶是在酶反应中只转移葡萄糖基的酶，该酶的作用机理是催化糖基供体的葡萄糖残基转移到糖基受体分子上，从而调节受体分子的活性。udp-葡萄糖基转移酶是葡萄糖基转移酶中的一种，以udp-葡萄糖作为糖基供体，几乎存在于所有有机体中。
[0012]
udp-葡萄糖是二磷酸尿苷葡糖(uridine diphosphate glucose)的简称，又简称为udp-葡糖或者udpg，是由尿苷二磷酸和葡萄糖组成的维生素，可看作“活性葡萄糖”，广泛分布于植物、动物和微生物的细胞内，在蔗糖、淀粉、糖原及其他寡糖和多糖合成中作葡萄糖基的供体，是最常见的一种糖基供体。
[0013]
如今，随着天然甜味剂甜菊糖的广泛应用，以及生物催化技术的日益发展，udp-葡萄糖基转移酶被越来越多地应用在甜菊糖苷的生物催化制备的领域中来。udp-葡萄糖基转移酶的种类很多，目前甜菊糖苷的生物酶法制备领域中使用的酶多为来源于植物细胞中的野生酶，这种野生酶往往存在酶活低、稳定性差等缺点，从而导致应用于工业化大生产制备甜菊糖苷的成本较高。因此，有必要对udp-葡萄糖基转移酶进行改造，从而获得酶活更高、稳定性更好的改造酶，以便更好地服务于工业化大生产。
no:103、seq id no:104、seq id no:107、seq id no:108。
[0033]
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种重组表达载体，其包含如上所述的核酸。
[0034]
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种转化体，其为包含如上所述的核酸或如上所述的重组表达载体的宿主细胞。
[0035]
所述宿主细胞可为本领域常规，较佳地为埃希氏大肠杆菌(escherichia coli)。
[0036]
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种制备如上所述的糖基转移酶的方法，所述方法包括在适于表达所述糖基转移酶的条件下培养如上所述的转化体。
[0037]
所述转化体表达糖基转移酶后，可采用本领域常规技术手段进行提取，例如可制备粗酶液，粗酶液制备后可进行常规的浓缩、置换，也可将粗酶液进一步经离子交换层析、亲和层析、疏水层析和分子筛层析等纯化步骤中的一种或多种以提纯所述糖基转移酶。在某一较佳实施例中，可采用以下步骤：(1)将含所述糖基转移酶的转化体接种至含抗生素的培养基例如lb培养基中振荡培养，得种子液；(2)将(1)中的种子液转接至含抗生素的培养基例如tb培养基中振荡培养；(3)向(2)中的培养基中加入iptg诱导过夜，离心后收集菌体；(4)洗涤并重悬(3)中收集的菌体，破碎后离心，即得含所述糖基转移酶的粗酶液。
[0038]
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种组合物，其包含如上所述的糖基转移酶。所述组合物例如可以酶制剂的形式存在。
[0039]
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种用于底物的糖基化的方法，所述方法包括提供至少一种底物、如上所述的糖基转移酶，并在使得所述底物被糖基化以产生至少一种糖基化产物的条件下使所述底物与所述糖基转移酶接触；所述底物优选包括至少一种甜菊糖苷例如甜菊苷、莱鲍迪苷a或莱鲍迪苷d等。
[0040]
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种莱鲍迪苷a的制备方法，其特征在于，所述制备方法包括以下步骤：在如上所述的糖基转移酶的存在下，将甜菊苷(stevioside)和糖基供体进行反应(例如在使得甜菊苷被糖基化以产生莱鲍迪苷a的条件下)，即得莱鲍迪苷a。
[0041]
较佳地，所述糖基转移酶以糖基转移酶菌泥的形式存在。
[0042]
较佳地，所述甜菊苷的浓度1-150g/l，优选100g/l。
[0043]
较佳地，所述糖基供体与甜菊苷的摩尔比为1:1～5:1例如2.5:1。
[0044]
较佳地，所述糖基供体为udp-葡萄糖。在某一较佳实施例中，使用的糖基供体优选通过蔗糖和udp在蔗糖合成酶的存在下制得，所述蔗糖的浓度优选为100-300g/l例如200g/l，所述udp的浓度优选为0.05-0.2g/l例如0.1g/l。合酶(例如蔗糖合酶或海藻糖合酶)通常以相反的方向作用，以从核苷二磷酸和葡萄糖供体(例如蔗糖、海藻糖或淀粉)形成核苷二磷酸葡萄糖化合物。本发明中，所述的蔗糖合成酶(又称为蔗糖合酶，sucrose synthase，简称为susy或sus)催化可逆的葡萄糖基转移反应，通过蔗糖合成酶催化蔗糖和udp产生udp-葡萄糖，有效地为udp-糖基转移酶提供了udp-糖供体。在蔗糖合成酶和udp-糖基转移酶构建的反应体系中，产生udp循环，实现udp-葡萄糖的再生，避免直接使用昂贵的udp-葡萄糖，降低了生产成本。
[0045]
较佳地，所述反应的反应溶剂的ph为5-8，优选6。
[0046]
较佳地，所述反应时的转速为500-1000rpm，优选600rpm。
[0047]
较佳地，所述反应的反应体系的温度为20-90℃，优选60℃。
[0048]
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种莱鲍迪苷d或莱鲍迪苷m的制备方法，其包括根据如上所述的制备方法制备莱鲍迪苷a的步骤。
[0049]
在某一较佳实施例中，所述方法包括提供甜菊苷底物、糖基供体和如前所述的糖基转移酶，在使得产生莱鲍迪苷d或莱鲍迪苷m的条件下将甜菊苷底物、糖基供体和如前所述的糖基转移酶反应。
[0050]
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种如上所述的糖基转移酶在制备甜菊糖苷中的用途；所述甜菊糖苷优选为莱鲍迪苷a、莱鲍迪苷d或莱鲍迪苷m。
[0051]
本发明中，所述的甜菊糖苷(steviol glycosides)又可称为甜菊醇糖苷，其结构式和所包含的化合物种类具体可参见本发明的背景技术部分。
[0052]
本发明的积极进步效果在于：
[0053]
本发明的糖基转移酶的酶活高、稳定性好；将其用于制备甜菊糖苷(例如莱鲍迪苷a、莱鲍迪苷d或莱鲍迪苷m)时与糖基转移酶亲本相比，在催化活性方面有了明显的提高，转化率显著提升，从而降低了反应的成本，利于工业化生产。
附图说明
[0054]
图1显示了本发明的实施例中由甜菊苷制备莱鲍迪苷a、莱鲍迪苷d、莱鲍迪苷m的路线示意图。
[0055]
图2显示了本发明的实施例中的酶催化反应体系合成莱鲍迪苷a，实现udpg在生物催化反应中的循环。
[0056]
图3为第二轮筛选时所用底物甜菊苷的图谱，甜菊苷的保留时间为12.76min。
[0057]
图4为产物莱鲍迪苷a对照品的图谱，保留时间12.38min。
[0058]
图5是表10中复筛enz.11催化合成ra活性的hplc图；
[0059]
图6是表10中复筛enz.24催化合成ra活性的hplc图。
具体实施方式
[0060]
下面通过实施例的方式进一步说明本发明，但并不因此将本发明限制在所述的实施例范围之中。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，按照常规方法和条件，或按照商品说明书选择。
[0061]
本发明中的实验方法如无特别说明均为常规方法，基因克隆操作具体可参考j.萨姆布鲁克等编的《分子克隆实验指南》。
[0062]
本发明中的氨基酸简写符号如无特殊说明均为本领域常规，具体简写符号对应的氨基酸如表1所示。
[0063]
表1
[0064][0065][0066]
所述氨基酸对应的密码子也为本领域常规，具体氨基酸与密码子的对应关系如表2所示。
[0067]
表2
[0068][0069]
kod mix酶购自toyobo co.，ltd.，dpni酶购买自英潍捷基(上海)贸易有限公司；e.coli trans10感受态细胞购买自北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司，e.coli bl21(de3)感受态细胞购买自北京鼎国昌盛生物技术有限责任公司。蔗糖购自生工生物。第一轮筛选所用反应底物ra60(甜菊苷，其中ra含量60％，晨光生物，产品规格tsg90/ra60)。第二轮筛选所用反应底物甜菊苷购自毕得医药(纯度95％)。reb a对照品购自麦克林。
[0070]
转化率hplc检测方法：色谱柱：agilent 5tc-c18(2)(250
×
4.6mm)。流动相：0.1％fa水溶液为流动相a，0.1％fa乙腈溶液为流动相b，按下表3进行梯度洗脱。检测波长：210nm；流速：1ml/min；进样体积：20μl；柱温：40℃。甜菊苷出峰时间：12.76min；reb a出峰时间：12.38min。
[0071]
表3
[0072]
时间(分钟)流动相a％流动相b％0.007030
15.00604020.00307025.00307025.10703032.007030
[0073]
本发明的实施例主要以udp-葡萄糖基转移酶亲本enz.1为模板，第一轮筛选出了308位点突变为n的糖基转移酶突变体enz.11，以enz.11为模板进行第二轮筛选，筛选出来了双位点或三位点突变的udp-葡萄糖基转移酶。
[0074]
实施例1第一轮gt010-308突变体文库的构建
[0075]
全合成seq id no:1所示的编号为enz.1的β-1,3-糖基转移酶(β-1,3-gt酶)酶基因，该基因已连接在pet28a质粒载体上，得到重组质粒pet28a-gt010，基因合成公司为生工生物工程(上海)股份有限公司(上海市松江区香闵路698号)。
[0076]
以pet28a-gt010质粒为模板，采用表4所示的引物序列，分别以gt010-l308x-f/et-r和et-f/gt010-l308x-r为引物(其中x为：a、d、e、g、h、i、k、m、n、p、s、v、w)，采用kod酶进行pcr扩增目标dna片段和载体片段。
[0077]
表4
[0078]
[0079][0080]
pcr扩增反应体系为：
[0081]
试剂用量(μl)kod mix酶25引物f2引物r2模板1去离子水20
[0082]
扩增程序如下：
[0083][0084]
对pcr产物进行dpni消化并进行跑胶及胶回收得到目标dna片段。通过诺唯赞的两
片段同源重组酶(exnase ii)连接。连接后转化至e.coli trans10感受态细胞，涂布在含有50μg/ml卡纳霉素的lb培养基，37℃培养过夜；挑点培养并进行测序，得到含有突变体基因的重组质粒。
[0085]
实施例2udp-葡萄糖基转移酶突变体的制备
[0086]
1.进行突变载体的蛋白表达：
[0087]
将测序正确的上述重组质粒转化至宿主e.coli bl21(de3)感受态细胞，得到含有点突变的基因工程菌株。挑单菌落接种至含50μg/ml卡那霉素的5ml lb液体培养基中，37℃震荡培养4h。按2v/v％接种量转接至50ml同样含50μg/ml卡那霉素的新鲜tb液体培养基中，37℃震荡培养至od
600
达到0.6-0.8时，加入iptg(异丙基-β-d-硫代半乳糖苷，isopropylβ-d-thiogalactoside)至其终浓度为0.1mm，25℃诱导培养20h。培养结束后，将培养液10000rpm离心10min，弃上清液，收集菌体(即，菌泥)。-20℃保存备用。
[0088]
2.粗酶液的获取：
[0089]
配制50mm ph6.0的磷酸缓冲液(pbs)，将上述所得菌泥按照(m/v)1:5进行悬浮，之后，进行均质获得粗酶液，粗酶液经离心，取上清获得udp-葡萄糖基转移酶突变体的粗酶液。
[0090]
实施例3蔗糖合成酶sus的制备
[0091]
全合成seq id no:31所示的编号为enz.2的蔗糖合成酶(sus)基因，该基因已连接在pet28a质粒载体上得到重组质粒pet28a-sus。基因合成公司为生工生物工程(上海)股份有限公司(上海市松江区香闵路698号)。
[0092]
将质粒pet28a-sus转化至宿主e.coli bl21(de3)感受态细胞，得到enz.2基因工程菌株。挑单菌落接种至含50μg/ml卡那霉素的5ml lb液体培养基中，37℃震荡培养4h。按2v/v％接种量转接至50ml同样含50μg/ml卡那霉素的新鲜tb液体培养基中，37℃震荡培养至od
600
达到0.6-0.8时，加入iptg至其终浓度为0.1mm，25℃诱导培养20h。培养结束后，将培养液10000rpm离心10min，弃上清液，收集菌体(即，gt012菌泥)。-20℃保存备用。
[0093]
配制50mm ph6.0的磷酸缓冲液(pbs)，将上述所得enz.2菌泥按照(m/v)1:5进行悬浮，之后，进行均质获得粗酶液，粗酶液经离心，取上清获得蔗糖合成酶sus(酶编号enz.2,氨基酸序列如seq id no:32所示)的粗酶液。
[0094]
实施例4第一轮突变体的筛选
[0095]
将实施例2和实施例3中得到的粗酶液分别进行80℃恒温孵育20min，离心取上清即分别获得udp-葡萄糖基转移酶突变体反应酶液和蔗糖合成酶反应酶液。
[0096]
以ra60为底物，1ml反应体系中，加入udp-葡萄糖基转移酶突变体的反应酶液150μl，ra60终浓度为100g/l，udp终浓度为0.1g/l，蔗糖终浓度为200g/l，蔗糖合成酶反应酶液30μl，最后加入50mm ph6.0磷酸缓冲液至终体积1ml。将配制好的反应体系置于金属浴中，60℃，600rpm下反应60min，反应液稀释50倍，进行hplc分析reb a的浓度(详见表5的reb a％)。(蔗糖合成酶是用于将蔗糖上葡萄糖基转移至udp上合成udpg)。初筛结果如表5所示。
[0097]
表5
[0098]
酶编号突变位点reb a％dna seq id no:enz.1/93.7872enz.3l308a87.771％33
enz.4l308d72.570％34enz.5l308e74.487％35enz.6l308g81.027％36enz.7l308h89.885％37enz.8l308i83.863％38enz.9l308k75.395％39enz.10l308m84.221％40enz.11l308n96.157％41enz.12l308p75.643％42enz.13l308s72.799％43enz.14l308v87.985％44enz.15l308w91.806％45
[0099]
由表5中的初筛结果可知：相对于enz.1,enz.11催化效果较好，所得reb a的产率较高。
[0100]
2.复筛
[0101]
采用boil和unboil两种反应条件进行复筛，boil复筛反应条件和初筛反应条件相同，unboil指不加热条件下反应，其余反应条件和boil反应条件相同。复筛结果如表6所示(表中％数值对应反应液中reb a的含量)。
[0102]
表6
[0103]
酶编号enz.3enz.7enz.1enz.11enz.14enz.15boil84.212％85.939％92.314％92.100％83.793％87.168％unboil79.577％82.266％84.522％83.475％80.686％81.180％
[0104]
由表6中的复筛结果可知：相对于enz.1，enz.11效果最好，其反应效果与enz.1相当。
[0105]
实施例5第二轮突变体文库的构建
[0106]
将第一轮得到的编码糖基转移酶(β-1,3-gt酶)enz.11的基因连接载体pet28a，得到pet28a-enz.11重组质粒，以pet28a-enz.11为模板，采用表7所示的引物序列，采用kod酶进行pcr扩增，获得目标突变体enz.16-enz.34的基因片段和载体片段。
[0107]
以pet28a-enz.34质粒为模板，gt029-l378g-f/km-r和km-f/gt029-l378g-r为引物序列，pcr扩增目标突变体enz.35的基因片段和载体片段。
[0108]
表7
[0109]
[0110]
[0111][0112]
pcr扩增反应体系为表8-1所示：
[0113]
表8-1
[0114][0115]
[0116]
扩增程序如下表8-2所示：
[0117]
表8-2
[0118][0119]
对pcr产物进行dpni消化并进行跑胶及胶回收。采用诺唯赞两片段同源重组酶进行连接。连接完成转化至e.coli trans10感受态细胞，涂布在含有50μg/ml卡纳霉素的lb培养基，37℃培养过夜；挑点培养并进行测序，得到含有突变体基因的重组质粒。
[0120]
实施例6udp-葡萄糖基转移酶突变体的制备
[0121]
1.进行突变载体的蛋白表达：
[0122]
将实施例5中测序正确的重组质粒转化至宿主e.coli bl21(de3)感受态细胞，得到含有点突变的基因工程菌株。挑单菌落接种至含50μg/ml卡那霉素的5ml lb液体培养基中，37℃震荡培养4h。按2v/v％接种量转接至50ml同样含50μg/ml卡那霉素的新鲜tb液体培养基中，37℃震荡培养至od
600
达到0.6-0.8时，加入iptg至其终浓度为0.1mm，25℃诱导培养20h。培养结束后，将培养液4000rpm离心20min，弃上清液，收集菌体(即菌泥)。-20℃保存备用。
[0123]
2.粗酶液的获取：
[0124]
配制50mm ph6.0的磷酸缓冲液(pbs)，将上述所得菌泥按照(m/v)1:10进行悬浮，之后，进行均质获得粗酶液，粗酶液经离心，取上清获得udp-葡萄糖基转移酶突变体的粗酶液。-4℃保存备用。
[0125]
实施例7第二轮突变体的筛选
[0126]
1.初筛
[0127]
将实施例6和实施例2中得到的粗酶液分别进行80℃恒温孵育15min，离心取上清即分别获得udp-葡萄糖基转移酶反应酶液和蔗糖合成酶反应酶液。
[0128]
以甜菊苷(甜菊苷含量95％，毕得医药)为底物，1ml反应体系中，加入udp-葡萄糖基转移酶突变体的反应酶液150μl，甜菊苷终浓度为100g/l，udp终浓度为0.1g/l，蔗糖终浓度为200g/l，蔗糖合成酶30μl，最后加入50mm ph6.0磷酸缓冲液至终体积1ml。将配制好的反应体系置于金属浴中，60℃，600rpm下反应60min，稀释50倍，进行hplc分析reb a的浓度。以enz.1和enz.11作为双对照对20个突变体进行筛选。初筛结果如表9所示。
[0129]
表9
[0130][0131][0132]
由表9中的初筛结果可知：enz.17、enz.18、enz.21、enz.22、enz.24、enz.26、enz.27、enz.28、enz.31、enz.32均优于对照10％以上，选择这些突变体进行复筛。此外，前述反应是将粗酶液进行80℃恒温孵育15min，离心取上清获得反应酶液再进行的反应，可以看出酶的稳定性很好。
[0133]
2.复筛
[0134]
复筛反应条件和初筛反应条件相同。复筛结果如表10所示。
[0135]
表10
[0136]
酶reb a％enz.147.066enz.1161.639enz.1773.639enz.1872.940enz.2166.063enz.2274.680enz.2476.903enz.2672.557enz.2763.514enz.2861.659enz.3166.672enz.3259.815
[0137]
由表10中的复筛结果确认enz.17、enz.18、enz.21、enz.22、enz.24、enz.26、enz.27、enz.28、enz.31、enz.32均优于亲本对照10％以上。与udp-葡萄糖基转移酶亲本enz.1相比，上述所得udp-葡萄糖基转移酶突变体在催化活性方面有了明显的提高。
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图1显示了本发明的实施例中由甜菊苷制备莱鲍迪苷a、莱鲍迪苷d、莱鲍迪苷m的路线示意图；图2显示了本发明的实施例中的酶催化反应体系合成莱鲍迪苷a，实现udpg在生物催化反应中的循环。图3为第二轮筛选时所用底物甜菊苷的图谱，保留时间12.76min。图4为产物莱鲍迪苷a对照品的图谱，保留时间12.38min。图5是表10中复筛enz.11催化合成ra活性的hplc图；
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图6是表10中复筛enz.24催化合成ra活性的hplc图。