检测棉花轮纹斑病的试剂盒及检测方法

文档序号:10715947阅读:319来源:国知局
检测棉花轮纹斑病的试剂盒及检测方法
【专利摘要】本发明公开了检测棉花轮纹斑病的试剂盒,所述试剂盒为PCR检测试剂盒,包括以下引物:SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2,并提供了使用上述试剂盒的棉花轮纹斑病的检测方法。本发明的有益效果为:本发明提供的检测棉花轮纹斑病的试剂盒及检测方法,与现有技术相比,具有操作简单、灵敏、快速的特点,能够对棉花轮纹斑病进行诊断及预测。
【专利说明】
检测棉花轮纹斑病的试剂盒及检测方法
技术领域
[0001] 本发明涉及农作物病害检测技术领域,具体涉及检测棉花轮纹斑病的试剂盒及检 测方法。
【背景技术】
[0002] 棉花轮纹斑病(Alternaria leaf spot ,Black leaf spot)又称黑斑病、腰折病, 多发生于幼苗期的子叶及成株期的叶片,是棉花叶部病害中分布最广、危害最严重的一种 毁灭性病害。近年来,该病害在我国主三大棉区均有发生,尤其在北方棉区阴湿多雨的年份 极易大面积爆发,严重时叶片全部脱落、植株枯死,造成重大的经济损失。
[0003] 棉花轮纹斑病是一种侵染性真菌病害,多发生于幼苗期子叶和成株期的叶片,是 棉花叶部病害中分布最广、危害最大、流行频率最高的一种毁灭性病害。其致病菌属于半知 菌亚门(Duteromyccotina),丝抱纲(Hyphomyceies),丝抱目(Hyphomycetoles),链格抱属 (Alternaria spp.)。病原菌以分生孢子在病叶、病莖上越冬,在棉籽和短绒上也能越冬,研 究发现棉籽带菌率达47.5%~84%。带菌棉籽及田间病残体是初侵染源,病原菌主要通过气 流传播,一般多经伤口入侵,也可直接入侵,先侵染子叶,再产生分生孢子,在田间多次再侵 染。棉花轮纹斑病多在温暖潮湿环境下发生,尤其在苗期1~2片真叶期遇见寒流阴雨天气, 容易大面积发生。棉花生长中后期,田间管理不当,植株衰弱,也容易发病。
[0004] 棉花轮纹斑病鉴定现主要通过传统的病原真菌分类鉴定:首先从病叶上分离、培 养、纯化获得真菌菌株,然后对所有菌株进行致病性鉴定,从中找到可以引起棉花轮纹斑病 的致病菌株,并对菌落形态、分生孢子和分生孢子梗等形态进行形态学鉴定。该方法费用 高、时间长、操作复杂,且链格孢属的形态指标易受培养基、温湿度、光质光强等环境条件的 影响,表现出极大的变异性,鉴定受环境影响较大,现有技术无法实现对棉花轮纹斑病的快 速、准确的检测。
[0005] rDNA序列分析: 核糖体由几十种蛋白质和rDNA组成。编码rRNA的基因(称为rRNA基因或rDNA)是基因组 DNA中的中等重复、并有转录活性的基因家族。rDNA-般由转录区和非转录区构成。转录区 包括55、5.88、185、283汕嫩,其中185、5.85和283汕嫩基因组成一个转录单元,它们之间 有内转录间隔区ITS(internal transcribed space,ITS)相隔,包括 18S rDNA与5.8S rDNA 之间的ITSl,5.8S rDNA与28S rDNA之间的ITS2;相邻的两个重复单元之间由基因内间隔区 IGS(intergenic spacer)隔开。5S、18S、5.8S、28S rDNA基因序列进化缓慢而相对保守,可 在属、科、目水平上用于不同生物种的比较,而内转录区(ITS)进化较快,常用于属内种间比 较或种内群体比较。rDNA的ITS区序列分析己被认为是目前进行真菌种间分类及种内分型 最可靠的方法之一。

【发明内容】

[0006] 本发明的目的就是针对上述现有技术中的缺陷,提供了一种主要目的在于能够快 速、准确检测棉花轮纹斑病的检测试剂盒及检测方法。
[0007] 为了实现上述目的,本发明提供的技术方案为:检测棉花轮纹斑病的试剂盒,所述 试剂盒为PCR检测试剂盒,包括以下引物:SEQ ID NO. 1和SEQ ID NO.2。
[0008] 进一步的,上述的检测棉花轮纹斑病的试剂盒,所述引物为浓度ΙΟμΜ的溶液。
[0009] 进一步的,上述的检测棉花轮纹斑病的试剂盒,所述试剂盒还包括无菌去离子水、 含]\%2+的10\?0?13肚€61、浓度为0.251111的(1犯1 3,浓度为5 1]/^1的了39〇嫩聚合酶。
[0010] 本发明的第二个目的是提供了棉花轮纹斑病的检测方法,包括如下步骤: 1) 将提取的待检测目标的DNA进行PCR扩增,得到PCR扩增产物,PCR反应溶液中的上下 游引物的核苷酸序列为:SEQ ID NO. 1和SEQ ID NO.2; 2) 将步骤1)得到的PCR扩增产物与溴酚蓝上样缓冲液混匀,用琼脂糖凝胶电泳分离,得 到电泳分离后的PCR扩增产物; 3) 将步骤2)得到的电泳分离后的PCR扩增产物经Go IdView DNA染料染色后在紫外凝胶 成像系统下观察,出现特异性片段大小为218 bp,则待测目标有棉花轮纹叶斑病。
[0011] 进一步的,上述的棉花轮纹斑病的检测方法,所述步骤1)中的PCR反应溶液由如下 组分组成:含Mg2+的10 XPCR buffer 1.0 μL,浓度为0.25 mM的dNTP ΙμL,浓度为5 U/μΙ的 TaqDNA聚合酶0.2μ1,浓度为10μΜ的上下游引物溶液各0.25μ1,无菌去离子水补齐至10μ1。
[0012] 进一步的,上述的棉花轮纹斑病的检测方法,所述步骤1)中的PCR反应过程具体如 下:94 cC 5 min;94 cC 45 sec,52 cC 45sec,72 cC 45sec,35个循环;72 cC 5 min。
[0013] 进一步的,上述的棉花轮纹斑病的检测方法,所述步骤2)中的电泳过程具体如下: 将5μ1 PCR产物与ΙμL溴酚蓝上样缓冲液混匀,用1.0%(重量/体积,即g/ml)琼脂糖凝胶电泳 分呙。
[0014] 进一步的,上述的棉花轮纹斑病的检测方法,所述步骤3)中,待测目标的DNA提取 步骤如下: a) 剪取待测棉花叶片0.2 g,在研钵中加入液氮充分研磨,研磨好的材料转入2 ml EP 管中,加入I ml提取缓冲液涡旋混匀,冰浴静置10min,10000 rpm、4°C离心20 min,弃上清, 得到沉淀; b) 向步骤a)得到的沉淀中加入0.8 ml 65°C预热的裂解缓冲液,并用铜丝搅松,涡旋混 匀,65°C 水浴 30min; c) 加入0.8 ml氯仿-异戊醇混合液,所述氯仿-异戊醇混合液中按照体积比氯仿:异戊 醇为24:1,翻转50次以上,10000rpm、15°C离心20min,将上清转入2 ml的离心管中,加入预 冷的异丙醇,异丙醇的加入比例为按照体积比上清:异丙醇为5:3,缓慢翻转30次,混匀,静 置IOmin,1000 Orpm,室温离心10min,弃上清,于沉淀中加入I ml 70%的乙醇洗涤,并转入 1.5 ml的离心管中,1000 Orpm离心5min,倒掉上清液,通风干燥20min; d) 加2 ml TE缓冲液溶解,65°C培养10~30min,加等体积的氯仿-异戊醇混合液,缓慢 翻转50次,混勾,室温静置5min,1000 Orpm离心10min; e) 上清液转入5ml离心管中,加 pH 5.2的3M醋酸钠,醋酸钠的加入比例为按照体积比上 清:醋酸钠为10:1,加等体积的异丙醇后翻转30次,放置30min,1000 Orpm离心5min,弃上清 液,加 I ml 70%乙醇洗DNA小团,转入1.5 ml的离心管中,1000 Orpm离心5min。弃上清液,自 然通风干燥DNA沉淀; f)用TE缓冲液溶解DNA,调整DNA浓度至50 ng/μL并保存备用,所述TE缓冲液组成为 IOmM 、PH 8.0的Tris/HCl,lmM 、PH 8.0的EDTA,PH 8.0。
[0015]进一步的,上述的棉花轮纹斑病的检测方法,所述步骤a)中,每100ml DNA提取缓 冲液的配制组成为:〇.351葡萄糖6.9368,0.謂1^8.!1(:110.〇1111,51111恥上0了厶1.〇1111,2% PVP 20.0ml,体积比 1%的β-Me 1.0ml,dd水 68.0ml。
[0016] 进一步的,上述的棉花轮纹斑病的检测方法,所述步骤b)中,每100mL裂解缓冲液 的配制组成为:1.4M NaCl 8.1816g,0.1M Tris.HCl 10.0ml,20mM Na.EDTA 4.0ml,2%CTAB 20.0ml,2% PVP 20.0ml,体积比 1%的β-Me 1.0ml,dd水 45.0ml。
[0017] 本发明的有益效果为:本发明提供的检测棉花轮纹斑病的试剂盒及检测方法,与 现有技术相比,具有操作简单、灵敏、快速的特点,能够对棉花轮纹斑病进行诊断及预测。
【附图说明】
[0018] 图1为棉花轮纹斑病检测结果的凝胶电泳图。
[0019]其中,1-5泳道为实验田中感染棉花轮纹斑病的棉花叶片检测结果,6泳道为阴性 对照。
[0020]图2为棉花轮纹斑病典型发病叶片病斑所提取DNA与正常叶片的对比凝胶图。
[0021 ]其中,1-5泳道为棉花轮纹斑病典型发病叶片病斑所提取DNA,6泳道为健康叶片提 取 DNA。
【具体实施方式】 [0022] 实施例1: 棉花轮纹斑病检测试剂盒,该试剂盒为PCR试剂盒,该试剂盒包括上游引物和下游引 物,其中 上游引物5: TGAAGAACGC AGCGAAAT -3' 下游引物5'- GCTCCGAAAC CAGTAGGC -3'。
[0023]该试剂盒中的上下游引物对棉花轮纹斑病DNA扩增的特异性片段大小为218 bp。 经GoldView DNA染料染色后在紫外凝胶成像系统下观察即可做出准确判断。
[0024] 试剂盒中的各组成部分具体如下,其中上游引物和下游引物的溶液的浓度为10μ M,含Mg2+的10 X PCR buffer,浓度为0.25mM的dNTP,浓度为5 U/μΙ的TaqDNA聚合酶和无菌去 呙子水。
[0025] 棉花轮纹斑病的检测方法,是通过上述试剂盒实现的,具体包括如下步骤: 1) 将提取的待检测目标的DNA进行PCR扩增; 2) 将PCR扩增产物与溴酚蓝上样缓冲液混匀,用琼脂糖凝胶电泳分离; 3 )将电泳分离后的PCR扩增产物经Go I dVi ew DNA染料染色后在紫外凝胶成像系统下观 察,出现特异性片段大小为218 bp,则待测目标有棉花轮纹叶斑病; 其中PCR反应溶液中的上下游引物的核苷酸序列如下, 上游引物5: TGAAGAACGC AGCGAAAT -3' 下游引物5'- GCTCCGAAAC CAGTAGGC -3'。
[0026] PCR反应溶液的具体组成如下:含Mg2+的10 XPCR buffer 1.0 μL,浓度为0.25 mM 的dNTP ΙμL,浓度为5 υ/μL的TaqDNA聚合酶0.2 μL,浓度为10 μΜ的上下游引物溶液各0.25 μL,无菌去离子水补齐至?〇μ1。
[0027] PCR反应过程具体如下:94 cC 5 min;94 cC 45 sec,52 cC 45sec,72 cC 45sec, 35个循环;72 °C 5 min。
[0028] 电泳过程具体如下:将5 μL PCR产物与I μL溴酚蓝上样缓冲液混匀,用1.0%(g/ ml)琼脂糖凝胶电泳分离。
[0029]待测目标的DNA提取步骤如下: a) 剪取待测棉花叶片0.2 g,在研钵中加入液氮充分研磨,研磨好的材料转入2 ml EP 管中,加入1ml提取缓冲液(配方见表1)涡旋混匀,冰浴静置10 min,l 0000 rpm离心20 min (4 °C),弃上清,DNA提取缓冲液配方如表1所示; 表1
b) 向沉淀中加入0.8 ml 65°C预热的裂解缓冲液(配方见表2),并用铜丝搅松,涡旋混 匀,65 °C水浴30 min,裂解缓冲液配方如表2所示; 表2
c) 加入0.8 ml氯仿:异戊醇(24:1)混合液,翻转50次以上,1000 Orpm离心20min( 15°C), 将上清转入2 ml的离心管中,加 O . 6体积的预冷的异丙醇,缓慢翻转30次,混匀,静置10 min,10000 rpm,离心10 min(室温),弃上清,于沉淀中加入I ml 70%的乙醇洗涤,并转入 1.5 ml的离心管中,10000 rpm离心5 min。倒掉上清液,通风干燥20 min; d) 加2 ml TE缓冲液溶解,65°C培养10~30min,加等体积的氯仿:异戊醇(24:1),缓慢 翻转50次,混勾,室温静置5 min,10000 rpm离心10 min; e) 上清液转入5 ml离心管中,加0.1体积的3 M醋酸钠 (pH 5.2),加等体积的异丙醇后 翻转30次,放置30 min,10000 rpm离心5 min。弃上清液,加 I ml 70%乙醇洗DNA小团,转入 1.5 ml的离心管中,10000 rpm离心5 min。弃上清液,自然通风干燥DNA沉淀; f) 用TE缓冲液(10 mM Tris/HC1(PH 8.0),1 mM EDTA(PH 8·0),ΡΗ 8.0)溶解DNA,调整 DNA浓度至50 ng/μL并保存备用。
[0030]最后应说明的是:以上所述仅为本发明的优选实施例而已,并不用于限制本发明, 尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明,对于本领域的技术人员来说,其依然可 以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分技术特征进行等同替换。 凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的 保护范围之内。 序列表 〈11〇>新疆农垦科学院 〈120>检测棉花轮纹斑病的试剂盒及检测方法 <210> 1 <211> 18 <212> DNA 〈213>上游引物 <400> 1 tgaagaacgc agcgaaat 18 <210> 1 <211> 18 <212> DNA 〈213>下游引物 〈400> 2 getccgaaac cagtaggc 18
【主权项】
1. 检测棉花轮纹斑病的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒为PCR检测试剂盒,包括以下 引物:SEQ ID N0.1 和SEQ ID N0.2。2. 根据权利要求1所述的检测棉花轮纹斑病的试剂盒,其特征在于,所述引物为浓度10 μΜ的溶液。3. 根据权利要求1所述的检测棉花轮纹斑病的试剂盒,其特征在于,所述试剂盒还包括 无菌去离子水、含Mg2+的10 X PCR buf f er、浓度为0.25mM的dNTP,浓度为5 U/μΙ的TaqDNA聚 合酶。4. 棉花轮纹斑病的检测方法,其特征在于,包括如下步骤: 1) 将提取的待检测目标的DNA进行PCR扩增,得到PCR扩增产物,PCR反应溶液中的上下 游引物的核苷酸序列为:SEQ ID NO. 1和SEQ ID NO.2; 2) 将步骤1)得到的PCR扩增产物与溴酚蓝上样缓冲液混匀,用琼脂糖凝胶电泳分离,得 到电泳分离后的PCR扩增产物; 3) 将步骤2)得到的电泳分离后的PCR扩增产物经GoldView DNA染料染色后在紫外凝胶 成像系统下观察,出现特异性片段大小为218 bp,则待测目标有棉花轮纹叶斑病。5. 根据权利要求4所述的棉花轮纹斑病的检测方法,其特征在于,所述步骤1)中的PCR 反应溶液由如下组分组成:含Mg2+的10XPCR buffer 1.0 μL,浓度为0.25 mM的dNTP ΙμL, 浓度为5 U/μΙ的TaqDNA聚合酶0.2μ1,浓度为ΙΟμΜ的上下游引物溶液各0.25μ1,无菌去离子 水补齐至?〇μ1。6. 根据权利要求4所述的棉花轮纹斑病的检测方法,其特征在于,所述步骤1)中的PCR 反应过程具体如下:94 °C 5 min;94 °C 45 sec,52 °C 45sec,72 °C 45sec,35个循环;72 °C 5 min〇7. 根据权利要求4所述的棉花轮纹斑病的检测方法,其特征在于,所述步骤2)中的电泳 过程具体如下:将5μ1 PCR产物与?μL溴酚蓝上样缓冲液混匀,用1.0%琼脂糖凝胶电泳分离。8. 根据权利要求4所述的棉花轮纹斑病的检测方法,其特征在于,所述步骤3)中,待测 目标的DNA提取步骤如下: a) 剪取待测棉花叶片0.2 g,在研钵中加入液氮充分研磨,研磨好的材料转入2 ml ΕΡ 管中,加入1 ml提取缓冲液涡旋混匀,冰浴静置10min,10000 rpm、4°C离心20 min,弃上清, 得到沉淀; b) 向步骤a)得到的沉淀中加入0.8 ml 65°C预热的裂解缓冲液,并用铜丝搅松,涡旋混 匀,65°C 水浴 30min; c) 加入0.8 ml氯仿-异戊醇混合液,所述氯仿-异戊醇混合液中按照体积比氯仿:异戊 醇为24:1,翻转50次以上,10000rpm、15°C离心20min,将上清转入2 ml的离心管中,加入预 冷的异丙醇,异丙醇的加入比例为按照体积比上清:异丙醇为5:3,缓慢翻转30次,混匀,静 置lOmin,lOOOOrpm,室温离心10min,弃上清,于沉淀中加入1 ml 70%的乙醇洗涤,并转入 1.5 ml的离心管中,lOOOOrpm离心5min,倒掉上清液,通风干燥20min; d) 加2 ml TE缓冲液溶解,65°C培养10~30min,加等体积的氯仿-异戊醇混合液,缓慢 翻转50次,混勾,室温静置5min,lOOOOrpm离心10min; e) 上清液转入5ml离心管中,加 pH 5.2的3M醋酸钠,醋酸钠的加入比例为按照体积比上 清:醋酸钠为10:1,加等体积的异丙醇后翻转30次,放置30min,lOOOOrpm离心5min,弃上清 液,加1 ml 70%乙醇洗DNA小团,转入1.5 ml的离心管中,lOOOOrpm离心5min; 弃上清液,自然通风干燥DNA沉淀; f)用TE缓冲液溶解DNA,调整DNA浓度至50 ng/μL并保存备用,所述TE缓冲液组成为 10mM 、PH 8.0的Tris/HCl,lmM 、PH 8.0的EDTA,PH 8.0。9. 根据权利要求8所述的棉花轮纹斑病的检测方法,其特征在于,所述步骤a)中,每 100ml DNA提取缓冲液的配制组成为:0.35M 葡萄糖6.936g,0.1M Tris.HCl 10.0ml,5mM 恥』〇了厶1.〇1111,2%?¥?2〇.〇1111,体积比1%的0-]^1.〇1111,(1(1水68.〇1111。10. 根据权利要求8所述的棉花轮纹斑病的检测方法,其特征在于,所述步骤b)中,每 100ml 裂解缓冲液的配制组成为:1.4M NaCl 8.1816g,0.1M Tris.HCl 10.0ml,20mM 恥』〇了厶4.〇1111,2%〇^8 2〇.〇1111,2%?¥?2〇.〇1111,体积比1%的0-]^1.〇1111,(1(1水45.〇1111。
【文档编号】C12Q1/68GK106086217SQ201610674978
【公开日】2016年11月9日
【申请日】2016年8月16日 公开号201610674978.5, CN 106086217 A, CN 106086217A, CN 201610674978, CN-A-106086217, CN106086217 A, CN106086217A, CN201610674978, CN201610674978.5
【发明人】孔宪辉, 田琴, 余渝, 陈红, 刘丽, 王娟, 王旭文, 司爱君, 王方永
【申请人】新疆农垦科学院
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