，脸上干燥起皮、黯黄粗糙，并且随着年龄增 长，皮肤问题越来越多，经服用本发明实施例2制备的压片糖3周后，肤色润滑，细腻，上述 症状彻底消失。
[0153]6.女，黄某，由于经常晚睡、熬夜或出差，脸部出现色斑、毛孔粗大、起痘、油脂分泌 旺盛，经服用本发明实施例2制备的压片糖周后，上述症状完全消失。
[0154] 7.女，高某，由于使用彩妆或化妆品，脸上干燥起皮、黯黄粗糙，并且随着年龄增 长，皮肤问题越来越多，经服用本发明实施例2制备的压片糖3周后，肤色润滑，细腻，上述 症状彻底消失。
[0155] 8.男，韩某，经常皮肤缺水、干燥，虽然每月做皮肤专业护理1次，但肌肤仍然松 弛，缺乏弹性。经服用本发明实施例2制备的压片糖3周后，肤色润滑，细腻，上述症状彻底 消失。
[0156] 9.女，申某，由于经常晚睡、熬夜或出差，脸部出现色斑、毛孔粗大、起痘、油脂分泌 旺盛，经服用本发明实施例2制备的压片糖3周后，上述症状完全消失。
[0157] 10.女，贾某，经常皮肤缺水、干燥，鱼尾纹、抬头纹等逐步显现，经服用本发明实施 例2制备的压片糖3周后，肤色正常，鱼尾纹、抬头纹几乎完全消失。
[0158] 以上试验结果表明，本发明保质期长的压片糖对由不同原因造成的皮肤松弛、无 弹性、色斑增多、抬头纹鱼尾纹增多等症状均具有显著治愈效果，具有较好的美容养颜效 果，并且本发明产品口感好，易于服用，无异味，真正实现以食养颜。
[0159] 需要说明的是：本发明实施例3-4同样具有上述实验效果，各实施例之间及与上 述实验效果差异性不大。
[0160] 实施例8本发明压片糖保质期内乳酸菌活菌含量稳定性试验
[0161] 取本发明实施例2制备的压片糖于室温22-25°C、通风条件下分别储藏3个月、6 个月、12个月、24个月、36个月并测定乳酸菌活菌含量，结果如表3 :
[0162] 表3:保质期内乳酸菌活菌含量检测结果
[0163]
[0164] 以上结果表明：本发明压片糖的储存稳定性较好，抗环境（温度、适度、氧气、光 照、水分等）影响因素能力大，保质期内乳酸菌活菌含量损失率最大（36个月）为15%，比 现有的同类产品活菌含量高、损失率低、保质期长，同时发映出压片糖的其它生物活性成分 具有同样的储存稳定性。
[0165]需要说明的是：本发明实施例3-4同样具有上述实验效果，各实施例之间及与上 述实验效果差异性不大。
[0166] 实施例9本发明压片糖的感官品评试验
[0167] 邀请24名人员对本发明实施例2制备的压片糖与市售两种同类相同生产日期的 压片糖进行品评，感官打分，其中专业和非专业人员各12名，专业人员青年、中年、老年各4 名，男女各半，非专业人员少年、青年、中年、老年各3名，男女各半；打分包括外观（20分）、 质地（25分）、风味（30分）、口感（25分）四个方面，打分人员独立进行，互不影响，以保证 品评结果准确。对品评结果进行了统计，均分值取近似值，保留整数，具体见表4 :
[0168] 表4:感官品评统计结果
[0169]
[0170] 注：同一行内标不同小写字母表示差异显著（P< 0.05)，标不同大写字母表示差 异极显著（P< 0. 01)，标有相同字母表示差异不显著（P> 0. 05)。
[0171] 以上结果表明，本发明制备的压片糖从外观、质地、风味和口感任何一方面都要明 显优于市售压片糖，特别是外观、风味和口感极好，同时也适合不同年龄段、不同消费层次 的消费者食用。
[0172]需要说明的是：本发明实施例3-4制备的压片糖同样具有上述实验效果，各实施 例之间及与上述实验效果差异性不大。
[0173] 实施例10本发明压片糖益生性试验
[0174] 将本发明实施例2制备的压片糖，用无菌水制备成活菌数为2XK^CFU/mL的益生 菌溶液，于4°C保存备用；
[0175] 1、取保存好的10mL益生菌溶液注入到试管1中，采用十倍逐级稀释至10 8,取lmL 稀释液在平板上，将灭菌后冷却至45°C的MRS琼脂培养基倾注在平板（灭菌）上，迅速摇 匀。再将装有10mL益生菌溶液的试管2置于80-90°C水浴锅中加热15-25min，取加热后的 益生菌溶液进行十倍逐级稀释至10 8,取lmL稀释液在平板上，将灭菌后冷却至45°C的MRS 琼脂培养基倾注在平板（灭菌）上并迅速摇匀。最后将加热前和加热后的平板均在35°C条 件下培养24h，计算加热前后的数量。
[0176] 结果表明，活菌存活率达到了 88%以上。
[0177] 2、模拟胃液及肠液的耐受试验：取100g/L的盐酸16. 4mL加蒸馏水稀释，使pH值 分别为1. 5、2. 5和3. 5,取100mL稀盐酸溶液，分别加入lg胃蛋白酶，使其充分溶解，得模拟 胃液，微孔滤膜除菌（0. 22ym)备用。取磷酸二氢钾6. 8g，加水500mL使溶解，用0.ImoL/ L氢氧化钠溶液调节pH值至6. 8 ;另取胰蛋白酶10g，加水100mL使溶解，将两液混合后， 加水稀释至l〇〇〇ml，得模拟肠液，微孔滤膜除菌（0.22ym)备用。取lmL保存好的益生菌 溶液加入到9mL的模拟胃液中（即十倍逐级稀释），并迅速在振荡器上充分混匀，然后置于 30-45°C静置培养2-4h。分别在lh、2h、3h、4h的时候取出培养液并立即计数残存活菌数，与 原活菌数进行比较，结果表明，活菌存活率为98%。然后取在人工胃液中消化不同时间的培 养液各lmL，分别接种于9mLpH值为6. 8的人工肠液中，置于3〇-45°C静置培养2-4h，并分 别在0、3、6、24h取样，测定其活菌数，与原活菌数进行比较，结果表明活菌存活率为99%。
[0178] 3、模拟胆盐的耐受试验：用胰液素制成lg/L的溶液，并在溶液中加入0.8%的猪 胆盐，用10%的NaOH调整pH为8. 0,然后用0. 45ym微滤膜过滤并除菌。将0. 5mL保存好 的益生菌溶液接种到4. 5mL模拟胆盐中，培养24h后得到培养液，计数残存的活菌数。将培 养液在灭菌生理盐水中十倍逐级稀释至10 8,并用MRS倾注，然后置于35°C静置培养24h。 结果表明活菌存活率为99%。
[0179] 以上试验结果表明，本发明压片糖中的益生菌益生性（耐热性、耐pH性、耐胆盐） 较强，非常适合人体胃肠环境，在模拟胃肠环境中存活率大，可有效改善胃肠功能。
[0180] 需要说明的是：本发明实施例3-4制备的压片糖同样具有上述实验效果，各实施 例之间及与上述实验效果差异性不大。
[0181] 实施例11本发明压片糖小鼠肠道性能试验
[0182] 将本发明实施例2制备的压片糖，用无菌水制备成活菌数为2XK^CFU/mL的益生 菌溶液，于4°C保存备用；
[0183] 选取普通昆明小白鼠60只，雌雄各半，18_20g，常规词养。从中随机挑选40只，每 天早晨9:00灌胃盐酸林可霉素0. 2mL (20mg) /只，其它作为对照组，每天同一时间灌胃等量 灭菌生理盐水，连续一周，制备肠道菌群失调的小鼠模型。模型组小鼠饮食下降，未出现死 亡和明显的腹泻现象，排软粪，外形正常含水分较多，垫料潮湿。将40只肠道菌群失调小 鼠，随机分为2组，一组20只作为治疗组，每天灌胃保存好的益生菌溶液0. 5ml(2 XK^cfu/ ml) /只，另20只作为自然恢复组，每天同一时间灌胃等量灭菌生理盐水，连续两周。整个试 验期21天，每天观察小白鼠的生长和排便情况，于第8、21天对压片糖治疗组和自然恢复组 的小鼠进行称重，计算各组体重平均增长率，结果如表5;每5天测各组小鼠粪便大肠杆菌 数量，计算平均数，结果如表6。取小鼠粪便约0.lg，于无菌操作台内加入3粒玻璃珠（以 〇.lg粪样加〇. 5mL稀释液），稀释并接种麦康凯琼脂培养基，计算每克湿便中的大肠杆菌 数。
[0184] 表5:小鼠增重情况
[0185]
[0186] 表6 :小鼠粪便中大肠杆菌数的情况
[0187]
[0188] 压片糖治疗组小鼠体重平均增长率（67. 96% )显著高于自然恢复组（32. 14% ); 饲喂溶液后肠道大肠杆菌数量显著下降，降低97. 07%，显著低于自然恢复组（24. 78% )， 表明本发明压片糖中的益生菌在小白鼠肠道内迅速定植，形成优势菌群，并有效抑制大肠 杆菌等病原菌的生长繁殖，并且定植时间长，持续、有效改善了肠道性能。
[0189] 需要说明的是：本发明实施例3-4制备的压片糖同样具有上述实验效果，各实施 例之间及与上述实验效果差异性不大。
[0190] 实施例12本发明压片糖对机体免疫力的影响
[0191] 1实验目的
[0192] 通过运动耐力测试（小鼠游泳试验），验证本发明压片糖的提高免疫力、抗疲劳作 用。
[0193] 2实验材料与试剂
[0194] 2.1供试药物：
[0195] 市售美容养颜压片糖（G1);市售美容养颜压片糖（G2);本发明实施例2-4制备的 压片糖（G3-G5)。
[0196] 2. 2 试剂：
[0197]肝/肌糖原测试盒，购自南京建成生物制品研究所；浓硫酸（AR)，南京化学试剂有 限公司；生理盐水，山东长富洁晶药业有限公司。
[0198] 3.实验动物
[0199]ICR小鼠，L清洁级，体重18_22g，由北京医科大学比较医学中心提供，实验期间 小鼠自由饮食。
[0200] 4.主要仪器
[0201] 错制游泳箱（50cmX50cmX40cm)，铅丝，低温高速离心机：5804R型，Eppendrof公 司；水浴锅：DK-S26型，上海精宏实验设备有限公司；电子称：BS224S型，Sartorius公司； 秒表，温度计
[0202] 5?实验分组
[0203] 5. 1剂量分组及受试样品给予时间：随机将小鼠分为8组，每组10只，第1组至第 5组分别给G1~G5的药物，第6组为空白对照组，给予等体积的双蒸水，每组每日均灌胃1 次，灌胃体积为〇. 2ml/10g，连续给予受试样品30天。
[0204] 5. 2样品配制：第1组至第5组：称取2. 25g药物样品，用蒸馏水配至150ml;空白 对照组（第6组）：双蒸水150ml。
[0205] 6?实验方法
[0206] 6. 1负重游泳实验末次给药30min后，置小鼠于游泳箱中，水深不少于30cm，水温 25±1°C，鼠尾根部负荷5%体重的铅皮，记录小鼠游泳开始至死亡的时间，作为小鼠游泳时 间。
[0207] 6. 2小鼠血清尿素测定末次给药30min后，在温度为30 °C的水中不负重游泳 90min，休息60min后摘眼球采血0. 5mL(不加抗凝剂），置4°C冰箱3h，血凝固后2000r/ min离心15min,取血清送北京医科大学附属医院检验科检测。
[0208] 6. 3肝糖原的测定末次给药30min后，在温度为25± 1°C的水中不负重游泳90min， 颈椎脱臼处死小鼠，用生理盐水洗净，并用滤纸吸干水分后，准确称取肝脏l〇〇mg，肝糖原检 测试剂盒检测小鼠肝糖原含量。
[0209] 6. 4血乳酸的测定末次给药30min后采血，然后不负重在温度为30°C的水中游泳 lOmin后停止。乳酸仪测定方法：分别在游泳前、游泳后、游泳后休息20min后各采血20yL 加入40yL破膜液中，立即充分振荡破碎细胞用乳酸仪测定。（血乳酸曲线下面积=5X(游 泳前血乳酸值+3X游泳后Omin的血乳酸值+2X游泳后20min的血乳酸值）
[0210] 7.观察指标负重游泳时间，血乳酸、尿素、肝糖原值
[0211] 8.统计方法实验数据用表示，采用t检验进行组间比较
[0212] 9.实验结果
[0213] 9. 1本发明压片糖对小鼠体重的影响
[0214] 各组小鼠在给予G1~G5药物后，前、中，后期体重分别见下表所示，各组小鼠的 初始体重和增重体重与对照组比较均无统计学差异（P> 0. 05)，表明G1~G5药物均无明 显的毒性。实验结果详见表7。
[0215]表7负重游泳实验小鼠的初始体重、中期体重和结束体重(T-土.〇
[0216]
[0217] 9. 2本发明压片糖对小鼠负重游泳时间的影响
[0218] 经口给予小鼠G1~G5药物后，G1~G2药物与空白对照组比较，可以明显延长小 鼠负重游泳时间，具有显著性差异（P< 0. 05)，本发明压片糖G3~G5药物与空白对照组比 较，可以显著延长小鼠负重游泳时间，具有极显著性差异（P< 0.01)，且明显优于G1~G2 药物。结果详见表8。
[0219] 表8压片糖对小鼠负重游泳时间的影响(i±.s')
[0220]
[0221] "*"p〈0. 05vs空白对照；
[0222] "**"p〈0.Olvs空白对照；
[0223] 9. 3本发明压片糖对小鼠运动前后血乳酸的影响
[0224] 经口给予小鼠本发明的压片糖后，本发明压片糖G3~G5药物对小鼠运动后血乳 酸曲线下面积与对照组比较有统计学差异（P< 0. 05)，G1~G2药物组小鼠血乳酸曲线下 面积与对照组比较虽有所降低，但并无统计学差异（P> 0. 05)。结果见表9。
[0225] 表9本发明压片糖对小鼠运动前后血乳酸水平的影响(I士.v)
[0226] L0227J"*〃p〈0. 05vs空臼对照；
[0228] 9. 4本发明压片糖对小鼠肝糖原的影响
[0229] 经口给予小鼠G1~G5药物后，G1~G2药物与空白对照组比较，小鼠肝糖原含量 均有明显的升高，具有显著性差异（P< 〇. 05)，本发明压片糖G3~G5药物与与空白对照组 比较，小鼠肝糖原含量均有明显的升高，具有极显著性差异（P< 0. 01)，且明显优于G1~ G2药物。结果详见表10。
[0230] 表10本发明压片糖对小鼠肝糖原含量的影响土.v)
[0231]
[0232] "*"p〈0. 05vs空白对照；
[0233] "**"p〈0.Olvs空白对照；
[0234] 9. 5本发明压片糖对小鼠血清尿素的影响
[0235] 经口给予小鼠G1~G5药物后，G1~G2药物组与空白对照组比较，小鼠运动