一种以左旋多巴为底物合成咖啡酸的方法与流程

本发明涉及一种以左旋多巴为底物合成咖啡酸的方法，属于生物化工领域。

背景技术：

咖啡酸是一种高价值的芳香类化合物，结构上可划分为羟基肉桂酸，其同时具有酚羟基和丙烯酸2个官能团。体内和体外研究表明，咖啡酸具有一系列生理功能。例如，通过氧化机制，咖啡酸可以抑制癌细胞增殖；咖啡酸具有免疫调节和抗炎活性；咖啡酸亦可作为抗氧化剂，且优于其他天然化合物；另外，咖啡酸还具有抗病毒、抗抑郁、治疗糖尿病等活性。

作为木质素合成的关键中间代谢产物，咖啡酸存在于几乎所有植物中。该途径以L-酪氨酸或L-苯丙氨酸为前体，涉及到反-肉桂酸4-单加氧酶(CYP73A)、苯丙氨酸/酪氨酸氨基裂合酶、对香豆酸3-羟化酶等。然而，咖啡酸在植物中的含量普遍很低，因此提取困难。另一方面，化学方法合成的咖啡酸为顺势咖啡酸和反式咖啡酸的混合物；且由于结构的相似性，完全分离纯化出单一的任一化合物都较为困难。通过合成生物学途径策略，将咖啡酸在植物中的合成途径平移至微生物底盘中，构建具有咖啡酸合成能力的工程菌是目前主要的研究思路。然而，由于酪氨酸等底物的溶解性较差，该类工程菌的咖啡酸产量和对底物的转化率均较低。通过以L-酪氨酸高产菌株作为咖啡酸异源合成途径的底盘，有助于解决该问题，然而效果并不理想，其表现为生产周期较长，且产量并未显著提高。

技术实现要素：

本发明要解决的问题是提供一种咖啡酸的生物合成方法，为此，本发明首先提供了一种表达酪氨酸氨基裂合酶TcXAL的重组大肠杆菌。

所述的酪氨酸氨基裂合酶TcXAL来源于皮状丝孢酵母(Trichosporon cutaneum)，其氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示，编码酪氨酸氨基裂合酶的基因序列如SEQ ID NO.2所示。

所述的大肠杆菌为大肠杆菌BL21(DE3)。

所用的表达载体为pET-28a(PB)，其DNA序列如SEQ ID NO.3所示，基因TcXAL通过限制性酶切位点Bam HI/Hind III亚克隆至表达载体pET-28a(PB)。

本发明还提供以所述重组大肠杆菌生产咖啡酸的方法，是以左旋多巴为底物，通过重组大肠杆菌全细胞转化合成咖啡酸。

所述的转化体系中，全细胞转化的反应介质为10-200mM的磷酸盐缓冲液，全细胞转化体系中重组大肠杆菌的浓度为OD₆₀₀＝20±1，底物浓度范围为0.01-10g/L，所述的反应体系的pH范围为6.0-9.0，反应温度范围为25-42℃。

在本发明的一种实施方式中，所述的反应介质为10-200mM的磷酸盐缓冲液。

在本发明的一种实施方式中，全细胞转化的反应介质为50mM的磷酸盐缓冲液，全细胞转化体系中重组大肠杆菌的浓度为OD₆₀₀＝20±1，底物浓度为1g/L，所述的反应体系的pH范围为7.5，反应温度范围为37℃。

在本发明的一种实施方式中，重组大肠杆菌的培养使用TB培养基。

本发明的有益之处：本发明创建了一种以左旋多巴为底物的咖啡酸的生物合成方法。与以往的以L-酪氨酸为底物的转化方法相比，该方法底物溶解度较高，产量高，转化率，且生产效率高。与化学合成方法相比，该方法的产物为单一的反-咖啡酸，不需要对同分异构体进行进一步的分离。在本研究的最优条件下，反应6小时后咖啡酸的产量为910.90mg/L，转化率为99.70％。为目前已知转化率最高的一种生物法合成咖啡酸的方法。

附图说明

图1咖啡酸的色谱图。其中，1为咖啡酸对应的色谱峰。

图2阴离子模式下咖啡酸的质谱图。其中，A为179.0350m/z对应的提取粒子流；B为咖啡酸的一级质谱图；C为咖啡酸对应的二级质谱图。

图3转化过程中不同时间点对应的咖啡酸产量。

图4不同温度条件下咖啡酸的产量。

图5不同pH条件下咖啡酸的产量。

图6不同底物浓度条件下咖啡酸的产量。

具体实施方式

材料与方法

咖啡酸和左旋多巴(L-DOPA)标准品购自Sigma-Aldrich(St.Louis,MO)，Trichosporon cutaneum酪氨酸氨基裂合酶基因TcXAL由金斯瑞生物科技有限公司优化并合成，序列为SQ2。

TB培养基的配置：酵母粉24g/L，胰蛋白胨12g/L，甘油4ml/L，磷酸二氢钾17mM，磷酸氢二钾72mM。为防止沉淀，将磷酸二氢钾/磷酸氢二钾配制成10倍浓度的母液，过滤除菌，使用前加入。其他成分121℃高压蒸汽灭菌15min。

50mM磷酸盐缓冲液PBS的配置：分别配置50mM的NaH₂PO₄和50mM的Na₂HPO₄，以NaH₂PO₄滴定Na₂HPO₄至不同的pH。

样品分析：将样品12000rpm离心2min，取上清，以甲醇稀释10倍后，使用0.22μm滤膜过滤。样品分析使用Shimadzu LC-MS/MS-IT-TOF，进样体积10μL，使用自动进样器进样。使用C18反向色谱柱(Thermo scientific,ODS-2 HYPERSIL,Dim.(mm)250×4.6,particle size 5μm)对样品进行分离。流动相A为水，流动相B为甲醇。使用梯度洗脱，0min 5％B，8min 25％B，9min 5％B，维持该浓度至12min。流速为1mL/min。柱温：40℃。使用紫外检测器，λ＝323nm测定咖啡酸，λ＝280nm测定左旋多巴。质谱分析使用负离子模式，以提取离子流(extracted ion chromatograms,EIC)m/z＝179.0350检测咖啡酸，以提取离子流m/z＝196.0615检测左旋多巴。二级质谱MS/MS分析的前体分别为：咖啡酸179.0350m/z，左旋多巴196.0615m/z；宽度设置为1Da。通过与标准品的保留时间、一级质谱、二级质谱图进行比对，确定目标物质。使用液相色谱图的峰面积对咖啡酸和左旋多巴进行定量分析。

实施例1

重组大肠杆菌的构建方法：TcXAL由金斯瑞生物科技有限公司优化合成，并克隆至pUC57-Simple，重组质粒命名为pUC57-TcXAL。使用限制性内切酶Bam HI/HindIII消化重组载体pUC57-TcXAL和表达载体pET-28a(+)，使用琼脂糖凝胶电泳分离没切产物，并分别回收目的基因TcXAL(2070bp)和表达载体(5368bp)。按照摩尔比4:1混合酶切后的目的基因和表达载体，使用T4连接酶在16℃条件下连接过夜。将连接产物转化大肠杆菌JM109感受态细胞，涂布含有50μg/mL卡那霉素的LB平板。通过菌落PCR验证阳性转化子，所用引物序列为SQ4/SQ5。将阳性转化子转接至含有50μg/mL卡那霉素的液体LB培养基，37℃、220rpm过夜培养后提取质粒，将质粒转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞，即得到表达TcXAL的重组大肠杆菌工程菌株，命名为E.coli DCA-1。

重组大肠杆菌的培养方法：将平板划线分离的单菌落转接至含有50μg/mL卡那霉素的液体LB培养基，37℃、220rpm过夜培养。以1％(v/v)的接种量转接至装有25mL TB培养基的250mL三角瓶中，同时添加终浓度为50μg/mL的卡那霉素。37℃、220rpm培养4h后，添加终浓度为500μM的IPTG诱导TcXAL的表达，将三角瓶转移至25℃、220rpm，继续培养10h。将菌液收集到离心管中，4000rpm、4℃离心5min收集菌体。

咖啡酸的全细胞转化方法：以25mL PBS洗涤收集的菌体，离心后重悬于等体积的PBS(50mM,pH 7.0)中，菌体浓度为OD₆₀₀＝18±1。同时添加终浓度为1g/L的左旋多巴作为底物进行反应，该反应在37℃、220rpm恒温摇床上进行。以含有空质粒pET-28a(+)的大肠杆菌BL21(DE3)作为空白对照。特定时间点取样，测定咖啡酸的合成情况。

结果表明，以E.coli DCA-1催化的反应体系中有咖啡酸的合成，而空白对照中则未检测到咖啡酸。该结果验证了TcXAL催化左旋多巴合成咖啡酸的能力，且该合成过程不能自发进行。咖啡酸的色谱图如图1，其中，1为咖啡酸对应的峰；咖啡酸的质谱图如图2所示，其中A为提取粒子流，B为一级质谱图，C为二级质谱图。通过咖啡酸的产量对取样时间点作图，可以确定在转化6小时咖啡酸达到最大产量583.98mg/L，转化率为63.92％，如图3所示。

实施例2咖啡酸转化过程中温度条件优化

对咖啡酸转化过程中温度条件进行优化，以重组大肠杆菌E.coli DCA-1作为催化剂，以PBS(50mM,pH 7.0)作为反应介质，左旋多巴添加浓度为1g/L。分别在20℃、25℃、30℃、37℃和42℃的温度条件下进行转化，转速设定为220rpm。由于咖啡酸在6小时达到最大产量，因此在第6小时取样，测定咖啡酸的产量和转化率。

如图4所示，结果表明，咖啡酸的产量随着温度的升高而增加，温度超过37℃后，咖啡酸的产量不增反而降低。这可能与咖啡酸在较高温度条件下的降解有关。在37℃条件下转化6小时后，咖啡酸达到最大产量，即865.75mg/L，转化率为94.76％。

实施例3 pH对咖啡酸生产结果的影响

对咖啡酸转化过程中的pH条件进行优化，以重组大肠杆菌E.coli DCA-1作为催化剂，左旋多巴添加浓度为1g/L。转化条件设定为37℃、220rpm。分别以不同pH(6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5)的PBS(50mM)作为转化介质。分别在第6小时取样，测定咖啡酸的产量和转化率。

如图5所示，结果表明，咖啡酸的产量随着pH的升高而增加，当pH超过7.5后，咖啡酸的产量开始降低。这可能和咖啡酸在碱性条件下容易转化为苯醌类化合物有关。在37℃条件下转化6小时后，咖啡酸达到最大产量，即910.90mg/L，转化率为99.70％，为目前已知生物法合成咖啡酸中转化率最高的一种方法。

实施例4不同底物浓度对咖啡酸生产的影响

对咖啡酸转化过程中的底物浓度进行优化，以重组大肠杆菌E.coli DCA-1作为催化剂，左旋多巴添加浓度分别为2g/L、5g/L和10g/L。转化条件为在上述最优条件，即37℃、220rpm、pH 7.5。在第6小时取样，测定咖啡酸的产量和转化率。

如图6所示，结果表明，随着底物浓度的增加，咖啡酸的产量不断提高，10g/L时的咖啡酸产量最高，达到3.12g/L。但是，随着底物浓度的提高，底物的转化率不断降低。原因可能在于，底物在6h时尚未完全转化。因此，延长转化时间可能有利于进一步提高底物的转化率。

虽然本发明已以较佳实施例公开如上，但其并非用以限定本发明，任何熟悉此技术的人，在不脱离本发明的精神和范围内，都可做各种的改动与修饰，因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。

SEQUENCE LISTING

<110> 江南大学

<120> 一种以左旋多巴为底物合成咖啡酸的方法

<160> 5

<170> PatentIn version 3.3

<210> 1

<211> 689

<212> PRT

<213> 皮状丝孢酵母

<400> 1

Met Phe Ile Glu Thr Asn Val Ala Lys Pro Ala Ser Thr Lys Ala Met

1 5 10 15

Asn Ala Gly Ser Ala Lys Ala Ala Pro Val Glu Pro Phe Ala Thr Tyr

20 25 30

Ala His Ser Gln Ala Thr Lys Thr Val Ser Ile Asp Gly His Thr Met

35 40 45

Lys Val Gly Asp Val Val Ala Val Ala Arg His Gly Ala Lys Val Glu

50 55 60

Leu Ala Ala Ser Val Ala Gly Pro Val Arg Ala Ser Val Asp Phe Lys

65 70 75 80

Glu Ser Lys Lys His Thr Ser Ile Tyr Gly Val Thr Thr Gly Phe Gly

85 90 95

Gly Ser Ala Asp Thr Arg Thr Ser Asp Thr Glu Ala Leu Gln Ile Ser

100 105 110

Leu Leu Glu His Gln Leu Cys Gly Phe Leu Pro Thr Asp Ala Thr Tyr

115 120 125

Glu Gly Met Leu Leu Ala Ala Met Pro Ile Pro Ile Val Arg Gly Ala

130 135 140

Met Ala Val Arg Val Asn Ser Cys Val Arg Gly His Ser Gly Val Arg

145 150 155 160

Leu Glu Val Leu Gln Ser Phe Ala Asp Phe Ile Asn Arg Gly Leu Val

165 170 175

Pro Cys Val Pro Leu Arg Gly Thr Ile Ser Ala Ser Gly Asp Leu Ser

180 185 190

Pro Leu Ser Tyr Ile Ala Gly Ala Ile Cys Gly His Pro Asp Val Lys

195 200 205

Val Phe Asp Thr Ala Ala Ser Pro Pro Thr Val Leu Thr Ser Pro Glu

210 215 220

Ala Ile Ala Lys Tyr Gly Leu Lys Thr Val Lys Leu Ala Ser Lys Glu

225 230 235 240

Gly Leu Gly Leu Val Asn Gly Thr Ala Val Ser Ala Ala Ala Gly Ala

245 250 255

Leu Ala Leu Tyr Asp Ala Glu Cys Leu Ala Ile Met Ser Gln Thr Asn

260 265 270

Thr Val Leu Thr Val Glu Ala Leu Asp Gly His Val Gly Ser Phe Ala

275 280 285

Pro Phe Ile Gln Glu Ile Arg Pro His Ala Gly Gln Ile Glu Ala Ala

290 295 300

Arg Asn Ile Arg His Met Leu Gly Gly Ser Lys Leu Ala Val His Glu

305 310 315 320

Glu Ser Glu Leu Leu Ala Asp Gln Asp Ala Gly Ile Leu Arg Gln Asp

325 330 335

Arg Tyr Ala Leu Arg Thr Ser Ala Gln Trp Ile Gly Pro Gln Leu Glu

340 345 350

Ala Leu Gly Leu Ala Arg Gln Gln Ile Glu Thr Glu Leu Asn Ser Thr

355 360 365

Thr Asp Asn Pro Leu Ile Asp Val Glu Gly Gly Met Phe His His Gly

370 375 380

Gly Asn Phe Gln Ala Met Ala Val Thr Ser Ala Met Asp Ser Ala Arg

385 390 395 400

Ile Val Leu Gln Asn Leu Gly Lys Leu Ser Phe Ala Gln Val Thr Glu

405 410 415

Leu Ile Asn Cys Glu Met Asn His Gly Leu Pro Ser Asn Leu Ala Gly

420 425 430

Ser Glu Pro Ser Thr Asn Tyr His Cys Lys Gly Leu Asp Ile His Cys

435 440 445

Gly Ala Tyr Cys Ala Glu Leu Gly Phe Leu Ala Asn Pro Met Ser Asn

450 455 460

His Val Gln Ser Thr Glu Met His Asn Gln Ser Val Asn Ser Met Ala

465 470 475 480

Phe Ala Ser Ala Arg Arg Thr Met Glu Ala Asn Glu Val Leu Ser Leu

485 490 495

Leu Leu Gly Ser Gln Met Tyr Cys Ala Thr Gln Ala Leu Asp Leu Arg

500 505 510

Val Met Glu Val Lys Phe Lys Met Ala Ile Val Lys Leu Leu Asn Glu

515 520 525

Thr Leu Thr Lys His Phe Ala Ala Phe Leu Thr Pro Glu Gln Leu Ala

530 535 540

Lys Leu Asn Thr His Ala Ala Ile Thr Leu Tyr Lys Arg Leu Asn Gln

545 550 555 560

Thr Pro Ser Trp Asp Ser Ala Pro Arg Phe Glu Asp Ala Ala Lys His

565 570 575

Leu Val Gly Val Ile Met Asp Ala Leu Met Val Asn Asp Asp Ile Thr

580 585 590

Asp Leu Thr Asn Leu Pro Lys Trp Lys Lys Glu Phe Ala Lys Glu Ala

595 600 605

Gly Asn Leu Tyr Arg Ser Ile Leu Val Ala Thr Thr Ala Asp Gly Arg

610 615 620

Asn Asp Leu Glu Pro Ala Glu Tyr Leu Gly Gln Thr Arg Ala Val Tyr

625 630 635 640

Glu Ala Val Arg Ser Glu Leu Gly Val Lys Val Arg Arg Gly Asp Val

645 650 655

Ala Glu Gly Lys Ser Gly Lys Ser Ile Gly Ser Ser Val Ala Lys Ile

660 665 670

Val Glu Ala Met Arg Asp Gly Arg Leu Met Gly Ala Val Gly Lys Met

675 680 685

Phe

<210> 2

<211> 2070

<212> DNA

<213> 皮状丝孢酵母

<400> 2

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gcaaaagcgg ccccggtcga accgttcgct acctatgcgc atagtcaggc caccaaaacg 120

gtgtccatcg atggccacac gatgaaagtt ggtgacgtgg ttgctgttgc gcgtcatggc 180

gcgaaagttg aactggcagc tagtgttgct ggtccggtcc gtgcgtccgt ggattttaaa 240

gaaagcaaaa aacacacctc gatttatggc gtgaccacgg gtttcggcgg ttcagccgat 300

acccgtacgt cggacacgga agcactgcag atctctctgc tggaacatca actgtgcggc 360

tttctgccga ccgatgcgac gtacgagggt atgctgctgg cggccatgcc gattccgatc 420

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ctggaagtcc tgcagagctt tgccgatttc attaatcgtg gtctggttcc gtgcgtcccg 540

ctgcgtggta ccatcagtgc atccggtgac ctgtcaccgc tgtcgtatat tgctggcgcg 600

atctgtggtc atccggatgt taaagtcttc gacaccgcag cttcaccgcc gaccgttctg 660

acgtcgccgg aagcaattgc aaaatatggc ctgaaaaccg tcaaactggc gagcaaagaa 720

ggcctgggtc tggttaacgg tacggcagtc tctgcggcgg caggtgctct ggcactgtac 780

gatgccgaat gcctggcaat catgagtcag accaatacgg tgctgaccgt tgaagctctg 840

gacggccatg ttggttcctt tgcaccgttc attcaggaaa tccgtccgca cgcgggccaa 900

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gaatcggaac tgctggctga tcaggacgcg ggtattctgc gtcaagatcg ctacgccctg 1020

cgtaccagtg cacagtggat cggtccgcaa ctggaagccc tgggtctggc acgccagcaa 1080

attgaaacgg aactgaactc caccacggat aatccgctga tcgacgtgga aggcggtatg 1140

tttcatcacg gcggtaactt ccaggcgatg gcggtcacca gtgctatgga ttccgcgcgc 1200

attgtgctgc agaatctggg taaactgtca tttgcacaag tgaccgaact gatcaactgc 1260

gaaatgaatc atggcctgcc gtcgaacctg gcgggtagcg aaccgtctac caattatcat 1320

tgtaaaggcc tggatattca ctgcggtgcc tactgtgcag aactgggctt tctggcgaac 1380

ccgatgagca atcatgttca gtctaccgaa atgcacaacc agagcgtgaa cagcatggcg 1440

ttcgcaagcg cacgtcgcac gatggaagcg aacgaagttc tgagtctgct gctgggttcc 1500

cagatgtatt gtgctaccca agcgctggat ctgcgcgtca tggaagtgaa atttaaaatg 1560

gccattgtga aactgctgaa tgaaaccctg acgaaacatt ttgccgcatt cctgaccccg 1620

gaacagctgg cgaaactgaa cacccacgct gcgatcacgc tgtacaaacg tctgaatcag 1680

accccgtcat gggattcggc accgcgcttt gaagacgccg caaaacatct ggtgggcgtt 1740

attatggatg cgctgatggt taacgatgac atcaccgacc tgacgaatct gccgaaatgg 1800

aagaaagaat ttgccaaaga agcaggtaac ctgtatcgta gcattctggt ggctaccacg 1860

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<210> 3

<211> 5368

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 3

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agctcacgct gtaggtatct cagttcggtg taggtcgttc gctccaagct gggctgtgtg 3540

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<212> DNA

<213> 人工序列

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