一种珠子参的组织培养与离体再生方法与流程

文档序号:15834108发布日期:2018-11-07 07:39阅读:795来源:国知局

本发明属于生物工程技术领域,具体涉及一种珠子参的组织培养与离体再生方法。

背景技术

珠子参(panaxjaponicusvar.major)系五加科人参属多年生草本植物,其根状茎入药为珠子参,具有补肺、养阴、活络和止血的作用,常用于治疗气阴两虚、烦热口渴、虚劳咳嗽、跌扑损伤、关节疼痛、咳血、吐血和外伤出血等症。珠子参主要成分是皂苷类化合物,包括竹节参皂苷ⅴ、ⅳ、ⅳa、ⅳa甲酯,人参皂苷rb1、rc、rd、re、rg1、rg2及珠子参苷r1、r2等,其中4(r)-珠子参苷r1具有治疗胰岛素抵抗活性,能显著降低肥胖小鼠体重。药理研究表明,珠子参总皂苷具有抗炎、中枢抑制、增强免疫功能、抗脑缺血、抗肿瘤等作用,具有很高的药用价值。

在野外,珠子参自然分布集中于2600-3000m高海拔地区,为典型的阴生c3植物,对光、温度等生态因子十分敏感,适应性差,生长适温为16-20℃,生长期夜间温度不低于8℃,喜肥湿润,忌强光直射,耐寒惧高温,自然生境主要为阴湿的针阔叶林、阔叶灌木、竹叶林以及杂灌丛。我国陕西、四川、云南、湖北、甘肃、贵州、西藏等地有其分布,是秦巴山区特色中药材“太白七药”之一。

珠子参根状茎呈串珠状,生长周期长,药材更新慢。自然条件下,种子结实率低、不易采收,且胚为后熟类型,有较长的休眠期,采用种子育苗一般需要2年才可移栽,种植4年才能收获。生产中多采用根茎直播繁殖,其根状茎有休眠芽,从愈缩茎的节间处切断,形成独根茎做为繁殖体,4年以上根茎萌芽率低,不宜作为繁殖材料,通常选1-3年生根茎作为繁殖体。

近年来随着珠子参药用范围不断扩大,需求量也逐年增加,现有药源远不能满足市场需求。长期以来,珠子参野生资源由于大量采挖早已濒临枯竭,人工种植一直停留在引种驯化栽培初级阶段,种植成本高,产量低。由于种苗的缺乏,珠子参很难实现规模化生产,提高产量。



技术实现要素:

为了解决上述问题,本发明提供了一种方法,即一种珠子参的组织培养与离体再生方法,可实现珠子参组培苗的大量繁殖,解决珠子参种植成本高,产量低的问题。

本发明采用的技术方案如下:

(1)外植体的选择与消毒:选择当年生根茎或者当年新发的幼苗茎段为外植体,用软毛刷在自来水下洗去泥土,再蘸取少量洗洁精刷洗1-2min,自来水下冲洗1-2h,然后置于超净工作台上用75%酒精(体积浓度)消毒8-10s,无菌水冲洗2遍,再用0.1%升汞溶液消毒10-15min,适当摇晃,使外植体与消毒液充分接触,最后倒掉升汞溶液,用无菌水冲洗6次,洗净备用;

(2)愈伤组织的诱导:将消毒好的外植体在无菌操作下剪切并接种,当年生幼苗的茎段切成1-1.5cm长,圆球形根茎切做两半,接种时平放,以切面接触培养基,两种外植体所接培养基相同,均为愈伤组织诱导培养基:ms+6-ba0-2.0mg/l+2,4-d0-2.0mg/l+naa0-1.0mg/l+蔗糖25-30g/l+琼脂4-5g/l;培养条件:温度25±2℃,空气相对湿度50%-60%,光照强度2000lx,光照时间12小时/天;

(3)芽的分化:将步骤(2)中诱导出的愈伤组织接种至分化培养基上,培养30-40天后可分化出许多小芽,所述分化培养基为:1/2ms+tdz0.5-2.0mg/l+naa0-0.1mg/l+蔗糖30g/l+琼脂4.5g/l;培养条件:温度25±2℃,空气相对湿度50%-60%,光照强度2000lx,光照时间12小时/天;

(4)生根培养:将步骤(3)中诱导出的珠子参小芽切下,接种至生根培养基中,培养15-20天便开始生根;所述生根培养基为:1/2ms+iba0.1-2.0mg/l+naa0-1.0mg/l+蔗糖25-30g/l+琼脂4-5g/l;培养条件:温度25±2℃,空气相对湿度50%-60%,光照强度2000lx,光照时间12小时/天;

上述方法中,步骤(2)、(3)、(4)所用培养基都经过高温湿热灭菌,灭菌条件为121℃/25min;

上述方法中,步骤(2)、(3)、(4)的培养条件为:温度25±2℃,空气相对湿度50%-60%,光照强度2000lx,光照时间12小时/天;

上述方法中,步骤(2)所述的愈伤组织诱导培养基优选为:ms+6-ba0.1-2.0mg/l+2,4-d0.5-2.0mg/l+naa0-1.0mg/l+蔗糖25-30g/l+琼脂4-5g/l;

上述方法中,步骤(3)中所述的芽分化诱导培养基优选为:1/2ms+tdz1.0-1.5mg/l+naa0.1mg/l+蔗糖25-30g/l+琼脂4-5g/l;

上述方法中,步骤(4)中所述的生根培养基优选为:1/2ms+iba0.1-1.0mg/l+naa0.5-1.0mg/l+蔗糖25-30g/l+琼脂4-5g/l;

本发明还提供了一种用于珠子参愈伤组织诱导的培养基,所述培养基包含以下成分:ms+6-ba0-2.0mg/l+2,4-d0-2.0mg/l+naa0-1.0mg/l+蔗糖25-30g/l+琼脂4-5g/l;

优选地,所述培养基包含以下成分:ms+6-ba1.0mg/l+2,4-d1.5mg/l+naa1.0mg/l+蔗糖25g/l+琼脂5.0g/l;

优选地,所述培养基包含以下成分:ms+6-ba0.1mg/l+2,4-d2.0mg/l+蔗糖25g/l+琼脂5.0g/l;

优选地,所述培养基包含以下成分:ms+6-ba0.3mg/l+2,4-d0.5mg/l+蔗糖25g/l+琼脂5.0g/l;

优选地,所述培养基包含以下成分:ms+6-ba0.5mg/l+2,4-d2.0mg/l+naa0.5mg/l+蔗糖30g/l+琼脂4.5g/l;

优选地,所述培养基包含以下成分:ms+6-ba2.0mg/l+2,4-d2.0mg/l+蔗糖30g/l+琼脂4.5g/l。

本发明的优点在于以珠子参根茎或幼苗茎段为外植体,通过外植体的消毒、愈伤组织的诱导、芽的分化、以及生根培养等过程获得了珠子参离体再生植株,建立了有效的珠子参组培快繁体系,为实现珠子参规模化种植解决种苗问题,提供了一种可行的技术方案。

附图说明

图1为本发明组织培养与离体再生方法获得的珠子参愈伤分化小芽。

具体实施方式

实施例1

(1)外植体的选择与消毒:选择珠子参当年生根茎,在自来水下将泥土洗净,用软毛刷蘸取少量洗洁精刷洗,自来水冲洗2h,放入烧杯中转至超净工作台上,加入75%酒精轻轻摇晃10s,倒掉酒精,无菌水洗2遍,加入0.1%升汞溶液没过外植体,适当摇晃,消毒15min后倒掉升汞,用无菌水清洗6次,洗净备用。

(2)愈伤组织的诱导:将消毒好的珠子参根茎在无菌操作下切成两半,以平放的方式接入愈伤组织诱导培养基,根茎切面与培养基接触,培养20天后,根茎切面边缘开始产生愈伤组织。培养条件:温度25±2℃,空气相对湿度50%-60%,光照强度2000lx,光照时间12小时/天,培养30天后统计外植体消毒灭菌率和愈伤组织诱导率。所用愈伤组织诱导培养基为ms+6-ba2.0mg/l+2,4-d2.0mg/l+蔗糖30g/l+琼脂4.5g/l;

(3)芽的分化:将步骤(2)中诱导出的愈伤组织接种至分化培养基上,培养30-40天后可分化出许多小芽,所述分化培养基为:1/2ms+tdz1.0mg/l+naa0.1mg/l+蔗糖30g/l+琼脂4.5g/l;培养条件:温度25±2℃,空气相对湿度50%-60%,光照强度2000lx,光照时间12小时/天,培养30天后统计分化率。

(4)生根培养:将步骤(3)中诱导出的珠子参小芽切下,接种至生根培养基中:1/2ms+iba0.5mg/l+naa1.0mg/l+蔗糖30g/l+琼脂4.5g/l,培养15-20天便开始生根;培养条件:温度25±2℃,空气相对湿度50%-60%,光照强度2000lx,光照时间12小时/天,培养30天后统计生根率。

实施例2-5按实施例1的步骤进行,不同点仅在于步骤(2)中的愈伤组织诱导培养基成分不同,实施例2-5步骤(2)中愈伤组织诱导培养基分别为:

①ms+6-ba0.5mg/l+2,4-d2.0mg/l+naa0.5mg/l+蔗糖30g/l+琼脂4.5g/l;

②ms+6-ba0.3mg/l+2,4-d0.5mg/l+蔗糖25g/l+琼脂5.0g/l;

③ms+6-ba0.1mg/l+2,4-d2.0mg/l+蔗糖25g/l+琼脂5.0g/l;

④ms+6-ba1.0mg/l+2,4-d1.5mg/l+naa1.0mg/l+蔗糖25g/l+琼脂5.0g/l。

实施例1-5培养结果如下:

由结果可知,本发明的消毒方法具有很好的灭菌效果,愈伤组织诱导率高,愈伤组织分化成苗率可达90%以上,所得小苗95%以上均能正常生根。

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