全细胞催化合成L-2-哌啶甲酸的方法与流程

文档序号:12030142阅读:489来源:国知局
全细胞催化合成L-2-哌啶甲酸的方法与流程
本发明属于生物催化
技术领域
,具体涉及全细胞催化合成l-2-哌啶甲酸的方法。
背景技术
:l-2-哌啶甲酸是一种天然存在的非蛋白质构型氨基酸,是重要的手性药物中间体,可用于制备雷帕霉素,抗肿瘤剂vx-710,免疫抑制剂fk506,哌啶生物碱等,具有很高的产业化应用价值。目前的主要生产方法为化学合成,存在产率低,能耗高,污染大等缺点。同时ee值难以控制。fujii等利用重组表达l-赖氨酸-6-氨基转移酶和二氢吡咯-5-羧酸酯还原酶的大肠杆菌工程菌,在159小时积累到了3.9g/l产物。后续通过添加lysp赖氨酸透性酶和yeie,在111小时最高积累到16g/l。该方案主要问题为反应时间过长,产物生成量过少,实际生产成本过高,难以放大生产。yasushitani等人通过共表达lysr,raip,dpka,gdh等共四个蛋白,实现了从dl-lysine到l-2-哌啶甲酸的转化,46小时产物转化率达到87.4%,但涉及到多个蛋白的共表达,存在菌种构建难度大,重复性差等缺点。ying等利用含有pipa基因的大肠杆菌做为全细胞催化剂,并优化nad浓度,反应温度,反应ph,金属离子以及表达活性剂添加等,最终产物可达到17.25g/l。该方案中pipa酶活不高,导致了使用全细胞量过多(od=200),底物浓度不高(赖氨酸25g/l),并且需要分批次添加底物才能反应完全。这些因素会导致在放大生产时成本过高等问题。技术实现要素:针对现有技术中存在的问题,本发明的目的是开发一种高效率的生物催化系统,以期提高底物投量,缩短反应时间,并能获得高ee值的产物。为了实现上述的发明目的,本发明的采用的技术方案如下:全细胞生物催化合成l-2-哌啶甲酸的方法,以l-赖氨酸盐酸盐或l-赖氨酸为底物,通过添加烟酰胺腺嘌呤二核苷酸及重组宿主菌,通过生物催化制备l-2-哌啶甲酸;其中重组宿主菌为含有arenimonasdonghaensisdsm18148蛋白编码基因的重组宿主菌、含有pseudomonasveroniicip104663蛋白编码基因的重组宿主菌或者含有streptomyceshirsutusatcc19091蛋白编码基因的重组宿主菌中的任意一种。其中,所述重组宿主菌为大肠杆菌。进一步地,反应在ph8.0的磷酸钾缓冲溶液中进行。优选地,反应温度为20℃-30℃。同时,我们还优选公开反应在摇床上进行,摇床转速为180rpm。最后,我们公开了其中重组宿主菌的浓度为50g/l-150g/l。采用本发明所公开的全细胞催化合成l-2-哌啶甲酸的方法,克服了目前化学合成法成本高、条件苛刻、转化率低、能耗高、污染大的问题。同时本发明所公开的生物催化系统酶活效率高,反应时间短,目标产物ee值高。附图说明图1为nypdc的表达质粒图谱图2为nypda,nypdb,nypdc,nypdd,nypde的蛋白表达上清、包涵体sds-page图谱图3为实施例8中生物转化反应的tlc图谱图4为实施例8中l-2-哌啶甲酸的hplc谱图图5为实施例8中l-2-哌啶甲酸的ms谱图图6为seqidno.10的表达质粒图谱图7为含有seqidno.10表达质粒的大肠杆菌的sds-page图谱。图8为实施例15中生物转化反应的tlc图谱图9为实施例15中l-2-哌啶甲酸的hplc谱图图10为实施例15中l-2-哌啶甲酸的ms谱图图11为seqidno.13的表达质粒图谱图12为含有seqidno.13表达质粒的大肠杆菌的sds-page图谱。图13为实施例19中生物转化反应的tlc图谱图14为实施例19中l-2-哌啶甲酸的hplc谱图图15为实施例19中l-2-哌啶甲酸的ms谱图具体实施方式为了更好的解释本发明,下面结合实施例对本发明进行进一步的阐述。在本实施例中所用到的仪器、试剂,除非有特殊说明,均为市售产品。以下实施例中涉及到的tlc检测中:展开剂:三氯甲烷:甲醇:水=6:5:1,混匀后放置10min左右。硅胶板规格:薄层层析硅胶板5*10。显色剂:茚三酮显色100ml乙醇加入0.1g茚三酮,500ul冰乙酸混匀。以下实例中涉及到的lc-ms检测条件为:prevailc18色谱柱(250×4.6mm,i.d.5μm);柱温:30℃;流动相:0.4%(v/v)三氟乙酸水溶液;流速:0.5ml/min;检测器:蒸发光散射检测器(elsd);检测器温度:120℃;载气:氮气(纯度99.9%);载气流速:4l/min;进样体积:10μl。实施例1将arenimonasdonghaensisdsm18148置于lb培养基中,置于30℃,180rpm培养3-5天,离心收集沉淀,用dna提取纯化试剂盒qiaampkit(qiagen,germany)提取纯化arenimonasdonghaensisdsm18148dna。用pfu高保真酶对arenimonasdonghaensisdsm18148基因组dna进行pcr扩增,所用引物为nypd-f5'atgaccatgacccagctcacca3'nypd-r5'tcaggccgcctgcttgc3'由于arenimonasdonghaensisdsm18148dna片段gc含量接近70%,故在扩增时添加终浓度0.5m的甜菜碱。之后将扩增的片段用taq聚合酶72℃处理10分钟,在dna3'端添加碱基a。之后将其连接到pmd19t-simple(takara宝生物公司,北京)克隆载体中,挑取单克隆送至上海生工生物进行测序。测序得到dna序列为seqidno.1,相应的氨基酸序列为seqidno.2。实施例2由于原dna序列gc含量过高,在宿主菌中培养时难以实现高效转录。故通过全基因合成的方法,对基因的二级结构以及密码子偏好性进行调整,以实现在大肠杆菌中的高表达。利用primerpremier(http://primer3.ut.ee/)和optimizer(http://genomes.urv.es/optimizer/)进行设计,并保证tm差异控制在3℃以内,引物长度控制在50base以内,得到以下引物:合成上述引物,并将获得的引物加双蒸水溶解后,加到如下的反应体系中,使得各引物的终浓度为30nm,首尾引物的终浓度为0.6μm。2mmdntpmix(2mmeachdntp)5μl10×pfubuffer5μlpfudnapolymerase(10u/μl)0.5μlddh2o使得反应体系总体积至50μl将配制好的pcr反应体系置于博日xpcycler基因扩增仪中,按下列程序进行扩增:98℃30s,55℃45s,72℃120s,35x。将pcr得到的dna片段进行切胶纯化,利用 同源重组的方法克隆进pet30a的ndei/xhoi位点。挑取单克隆进行测序。测序成功的dna序列为seqidno.3,命名为nypda。参考图1的方式构建含有nypda的表达质粒。实施例3通过全基因合成的方法,对基因的二级结构以及密码子偏好性进行调整,以实现在大肠杆菌中的高表达。利用primerpremier(http://primer3.ut.ee/)和optimizer(http://genomes.urv.es/optimizer/)进行设计,并保证tm差异控制在3℃以内,引物长度控制在50base以内,得到以下引物:合成上述引物,并将获得的引物加双蒸水溶解后,加到如下的反应体系中,使得各引物的终浓度为30nm,首尾引物的终浓度为0.6μm。2mmdntpmix(2mmeachdntp)5μl10×pfubuffer5μlpfudnapolymerase(10u/μl)0.5μlddh2o使得反应体系总体积至50μl将配制好的pcr反应体系置于博日xpcycler基因扩增仪中,按下列程序进行扩增:98℃30s,55℃45s,72℃120s,35x。将pcr得到的dna片段进行切胶纯化,利用同源重组的方法克隆进pet30a的ndei/xhoi位点。挑取单克隆进行测序。测序成功的dna序列为seqidno.4,命名为nypdb。参考图1的方式构建含有nypdb的表达质粒。实施例4通过全基因合成的方法,对基因的二级结构以及密码子偏好性进行调整,以实现在大肠杆菌中的高表达。利用primerpremier(http://primer3.ut.ee/)和optimizer(http://genomes.urv.es/optimizer/)进行设计,并保证tm差异控制在3℃以内,引物长度控制在50base以内,得到以下引物:合成上述引物,并将获得的引物加双蒸水溶解后,加到如下的反应体系中,使得各引物的终浓度为30nm,首尾引物的终浓度为0.6μm。2mmdntpmix(2mmeachdntp)5μl10×pfubuffer5μlpfudnapolymerase(10u/μl)0.5μlddh2o使得反应体系总体积至50μl将配制好的pcr反应体系置于博日xpcycler基因扩增仪中,按下列程序进行扩增: 98℃30s,55℃45s,72℃120s,35x。将pcr得到的dna片段进行切胶纯化,利用同源重组的方法克隆进pet30a的ndei/xhoi位点。挑取单克隆进行测序。测序成功的dna序列为seqidno.5,命名为nypdc。按照图1的方式构建含有nypdc的表达质粒。实施例5通过全基因合成的方法,对基因的二级结构以及密码子偏好性进行调整,以实现在大肠杆菌中的高表达。利用primerpremier(http://primer3.ut.ee/)和optimizer(http://genomes.urv.es/optimizer/)进行设计,并保证tm差异控制在3℃以内,引物长度控制在50base以内,得到以下引物:合成上述引物,并将获得的引物加双蒸水溶解后,加到如下的反应体系中,使得各引物的终浓度为30nm,首尾引物的终浓度为0.6μm。2mmdntpmix(2mmeachdntp)5μl10×pfubuffer5μlpfudnapolymerase(10u/μl)0.5μlddh2o使得反应体系总体积至50μl将配制好的pcr反应体系置于博日xpcycler基因扩增仪中,按下列程序进行扩增:98℃30s,55℃45s,72℃120s,35x。将pcr得到的dna片段进行切胶纯化,利用同源重组的方法克隆进pet30a的ndei/xhoi位点。挑取单克隆进行测序。测序成功的dna序列为seqidno.6,命名为nypdd。参考图1的方式构建含有nypdd的表达质粒。实施例6通过全基因合成的方法,对基因的二级结构以及密码子偏好性进行调整,以实现在大肠杆菌中的高表达。利用primerpremier(http://primer3.ut.ee/)和optimizer(http://genomes.urv.es/optimizer/)进行设计,并保证tm差异控制在3℃以内,引物长度控制在50base以内,得到以下引物:合成上述引物,并将获得的引物加双蒸水溶解后,加到如下的反应体系中,使得各引物的终浓度为30nm,首尾引物的终浓度为0.6μm。2mmdntpmix(2mmeachdntp)5μl10×pfubuffer5μlpfudnapolymerase(10u/μl)0.5μlddh2o使得反应体系总体积至50μl将配制好的pcr反应体系置于博日xpcycler基因扩增仪中,按下列程序进行扩增:98℃30s,55℃45s,72℃120s,35x。将pcr得到的dna片段进行切胶纯化,利用 同源重组的方法克隆进pet30a的ndei/xhoi位点。挑取单克隆进行测序。测序成功的dna序列为seqidno.7,命名为nypde。参考图1的方式构建含有nypde的表达质粒。实施例7挑取含有nypda表达载体的大肠杆菌单菌落接种于10ml高压灭菌后的培养基中:胰蛋白胨10g/l,酵母提取物5g/l,磷酸氢二钠3.55g/l,磷酸二氢钾3.4g/l,氯化铵2.68g/l,硫酸钠0.71g/l,七水硫酸镁0.493g/l,六水氯化铁0.027g/l,甘油5g/l,葡萄糖0.8g/l,添加卡那霉素至50mg/l。30℃,250rpm过夜培养。次日取1l三角瓶,按1:100的接种比例接入到100ml高压灭菌后的培养基中:胰蛋白胨10g/l,酵母提取物5g/l,磷酸氢二钠3.55g/l,磷酸二氢钾3.4g/l,氯化铵2.68g/l,硫酸钠0.71g/l,七水硫酸镁0.493g/l,六水氯化铁0.027g/l,甘油5g/l,葡萄糖0.3g/l,添加卡那霉素至50mg/l。于30℃中培养至菌体od5-6,立刻将三角瓶置于25℃摇床中,250rpm培养1小时。加iptg至终浓度0.1mm,并于25℃,250rpm继续培养16小时。培养结束后,将培养液于4℃,12000g下离心20分钟收集湿菌体。然后将菌体沉淀用蒸馏水清洗两次,收集菌体,-70℃保存。同时取少量菌体进行sds-page检测。按照上述方法,分别制备nypdb,nypdc,nypdd,nypde的菌体并进行sds-page蛋白胶检测,结果见图2。sds-page蛋白胶显示,其中nypdc的表达量最高,故做为优选序列进行后续实验。实施例8加入0.1m磷酸钾缓冲液(ph8.0),150g/lnypdc菌体,25g/ll-赖氨酸盐酸盐,0.1mmnad,敞口反应,25℃,摇床转速设为180rpm。反应中不断取样进行tlc检测,当反应16小时时,检测结果如图3,结果显示16小时生成大量产物,无底物残余。同时取样进行lc-ms检测,检测结果如图4,图5所示。实施例9加入0.1m磷酸钾缓冲液(ph8.0),50g/lnypdc菌体,74g/ll-赖氨酸盐酸盐,0.1mmnad,敞口反应,25℃,摇床转速设为180rpm。反应中不断取样进行tlc检测,结果显示48小时生成大量产物,无底物残余。同时取样进行lc-ms检测,测得最终产物浓度达到37g/l。实施例10加入0.1m磷酸钾缓冲液(ph8.0),50g/lnypdc菌体,100g/ll-赖氨酸盐酸盐,0.1mmnad,敞口反应,25℃,摇床转速设为180rpm。反应中不断取样进行tlc检测,结果显示48小时生成大量产物,无底物残余。同时取样进行lc-ms检测,测得最终产物浓度达到 66.7g/l。实施例11加入0.1m磷酸钾缓冲液(ph8.0),50g/lnypdc菌体,150g/ll-赖氨酸盐酸盐,0.1mmnad,敞口反应,25℃,摇床转速设为180rpm。反应中不断取样进行tlc检测,结果显示48小时生成大量产物,无底物残余。同时取样进行lc-ms检测,测得最终产物浓度达到76.9g/l。实施例12将pseudomonasveroniicip104663置于lb培养基中培养,控制温度为28.0℃,180rpm培养3天,离心收集沉淀,用dna提取纯化试剂盒qiaampkit(qiagen,germany)提取纯化pseudomonasveronii基因组dna。用pfu高保真酶对pseudomonasveronii基因组dna进行pcr扩增,所用引物为pve-f5'atggtggcacagcgagcaac3'pve-r5'tcatgctaattttaaggtacggtcg3'由于pseudomonasveroniicip104663的dna的gc含量接近50%,故使用pfu高保真酶直接扩增。之后将扩增的片段用taq聚合酶72℃处理10分钟,在dna3'端添加碱基a。之后将其连接到pmd19t-simple(takara宝生物公司,北京)克隆载体中,挑取单克隆送至南京金斯瑞生物进行测序。测序得到dna序列为seqidno.8,相应的氨基酸序列为seqidno.9。实施例13通过全基因合成的方法,对基因的二级结构以及密码子偏好性进行调整,并且调整dna序列的gc含量到40%~60%,以实现在大肠杆菌中的高表达。利用primerpremier(http://primer3.ut.ee/)和optimizer(http://genomes.urv.es/optimizer/)进行设计,并保证tm差异控制在3℃以内,引物长度控制在50base以内,得到以下引物:合成上述引物,并将获得的引物加双蒸水溶解后,加到如下的反应体系中,使得各引物的终浓度为30nm,首尾引物的终浓度为0.6μm。2mmdntpmix(2mmeachdntp)5μl10×pfubuffer5μlpfudnapolymerase(10u/μl)0.5μlddh2o使得反应体系总体积至50μl将配制好的pcr反应体系置于博日xpcycler基因扩增仪中,按下列程序进行扩增:98℃30s,65℃45s,72℃120s,35x。将pcr得到的dna片段进行切胶纯化,利用同源重组的方法克隆进pet30a的ndei/xhoi位点。挑取单克隆进行测序。测序成功的dna序列为seqidno.10。按照图6的方式构建含有seqidno.10的表达质粒。实施例14挑取含有seqidno.10表达载体的大肠杆菌单菌落接种于10ml高压灭菌后的培养基中:胰蛋白胨10g/l,酵母提取物5g/l,磷酸氢二钠3.55g/l,磷酸二氢钾3.4g/l,氯化铵2.68g/l,硫酸钠0.71g/l,七水硫酸镁0.493g/l,六水氯化铁0.027g/l,甘油5g/l,葡萄糖0.8g/l,添加卡那霉素至50mg/l。30℃,250rpm过夜培养。次日取1l三角瓶,按1:100的接种比例接入到100ml高压灭菌后的培养基中:胰蛋白胨10g/l,酵母提取物5g/l,磷酸氢二钠3.55g/l,磷酸二氢钾3.4g/l,氯化铵2.68g/l,硫酸钠0.71g/l,七水硫酸镁0.493g/l,六水氯化铁0.027g/l,甘油5g/l,葡萄糖0.3g/l,添加卡那霉素至50mg/l。于30℃中培养至菌体od5-6,立刻将三角瓶置于25℃摇床中,250rpm培养1小时。加iptg至终浓度0.1mm,并于25℃,250rpm继续培养16小时。培养结束后,将培养液于4℃,12000g下离心20分钟收集湿菌体。然后将菌体沉淀用蒸馏水清洗两次,收集菌体,-70℃保存。同时取少量菌体进行sds-page检测。结果见图7,其中1道为蛋白上清,2道为包涵体。sds-page蛋白胶显示,含有seqidno.10表达质粒的大肠杆菌表达量高,满足生物转化反应实验的需要。实施例15加入0.1m磷酸钾缓冲液(ph8.0),65g/l含有seqidno.10表达质粒的菌体,60g/ll-赖氨酸盐酸盐,0.1mmnad,敞口反应,25℃,摇床转速设为180rpm。反应中不断取样进行tlc检测,当反应16小时时,检测结果如图8,结果显示28小时生成大量产物,无底物残余。对获得的产物进行定量实验,产物最终浓度为48.7g/l。同时取样进行lc-ms检测,检测结果如图9,图10所示。 实施例16将streptomyceshirsutusatcc19091置于atccmedium196培养基中培养,控制温度为26.0℃,180rpm培养2天,离心收集沉淀,用dna提取纯化试剂盒qiaampkit(qiagen,germany)提取纯化streptomyceshirsutusatcc19091基因组dna。用pfu高保真酶对streptomyceshirsutusatcc19091基因组dna进行pcr扩增,所用引物为shi-f5'atcttgcaagctgagcgcacg3'shi-r5'tcatcgtcgcgctccggc3'由于streptomyceshirsutusatcc19091的dna局部gc含量接近80%,故在扩增时添加终浓度0.5m的甜菜碱。之后将扩增的片段用taq聚合酶72℃处理10分钟,在dna3'端添加碱基a。之后将其连接到pmd19t-simple(takara宝生物公司,北京)克隆载体中,挑取单克隆送至上海杰李生物进行测序。测序得到dna序列为seqidno.11,相应的氨基酸序列为seqidno.12。实施例17通过全基因合成的方法,对基因的二级结构以及密码子偏好性进行调整,并且调整dna序列的gc含量到40%~60%,以实现在大肠杆菌中的高表达。利用primerpremier(http://primer3.ut.ee/)和optimizer(http://genomes.urv.es/optimizer/)进行设计,并保证tm差异控制在3℃以内,引物长度控制在50base以内,得到以下引物:合成上述引物,并将获得的引物加双蒸水溶解后,加到如下的反应体系中,使得各引物的终浓度为30nm,首尾引物的终浓度为0.6μm。2mmdntpmix(2mmeachdntp)5μl10×pfubuffer5μlpfudnapolymerase(10u/μl)0.5μlddh2o使得反应体系总体积至50μl将配制好的pcr反应体系置于博日xpcycler基因扩增仪中,按下列程序进行扩增:98℃30s,65℃45s,72℃120s,35x。将pcr得到的dna片段进行切胶纯化,利用同源重组的方法克隆进pet30a的ndei/xhoi位点。挑取单克隆进行测序。测序成功的dna序列为seqidno.13。按照图11的方式构建含有seqidno.13的表达质粒。实施例18挑取含有seqidno.13表达载体的大肠杆菌单菌落接种于10ml高压灭菌后的培养基中:胰蛋白胨10g/l,酵母提取物5g/l,磷酸氢二钠3.55g/l,磷酸二氢钾3.4g/l,氯化铵2.68g/l,硫酸钠0.71g/l,七水硫酸镁0.493g/l,六水氯化铁0.027g/l,甘油5g/l,葡萄糖0.8g/l,添加卡那霉素至50mg/l。30℃,250rpm过夜培养。次日取1l三角瓶,按1:100的接种比例接入到100ml高压灭菌后的培养基中:胰蛋白胨10g/l,酵母提取物5g/l,磷酸氢二钠3.55g/l,磷酸二氢钾3.4g/l,氯化铵2.68g/l,硫酸钠0.71g/l,七水硫酸镁0.493g/l,六水氯化铁0.027g/l,甘油5g/l,葡萄糖0.3g/l,添加卡那霉素至50mg/l。于30℃中培养至菌体od5-6,立刻将三角瓶置于25℃摇床中,250rpm培养1小时。加iptg至终浓度0.1mm,并于25℃,250rpm继续培养16小时。培养结束后,将培养液于4℃,12000g下离心20分钟收集湿菌体。然后将菌体沉淀用蒸馏水清洗两次,收集菌体,-70℃保存。同时取少量菌体进行sds-page检测。结果见图12,其中1道为蛋白上清,2道为包涵体。sds-page蛋白胶显示,含有seqidno.13表达质粒的大肠杆菌表达量高,满足生物转化反应实验的需要。实施例19加入0.1m磷酸钾缓冲液(ph8.0),50g/l含有seqidno.13表达质粒的菌体,55g/ll-赖氨酸盐酸盐,0.1mmnad,敞口反应,25℃,摇床转速设为180rpm。反应中不断取样进行tlc检测,当反应16小时时,检测结果如图13,结果显示16小时生成大量产物,无底物残余。对获得的产物进行定量实验,产物最终浓度为32g/l。同时取样进行lc-ms检测,检测结果如图14,图15所示。当我们在体系中加入l-赖氨酸的时候,其快速转变为l-赖氨酸盐酸盐,然后按照前述实施例的方式进行反应。通过使用本发明的新酶蛋白质,以及优化后的基因序列,配合优化后的转化工艺,能够有效地制造做为医药中间体在工业上有用的化合物l-2-哌啶甲酸,工艺简单且得率高。转化所使用的底物为工业上大量生产的l-赖氨酸,且价格低廉,根据2016年1月份的国内赖氨酸市场行情,98%含量赖氨酸报价为8.5-8.6元/公斤左右,仅国内的产量可达120吨,保证了底物的充足供应。技术可移植性强,只要一般的发酵车间(如氨基酸、维生素生产车间)即可进行投入生产,不需购置特殊设备,易于推广应用。对比目前国内生产主要依赖于化学拆分法,有50%的原料被拆分浪费掉,同时生成大量无用的副产物,并且产物的ee值偏低。故本发明具有较强的实用性和推广价值。sequencelisting<110>南京诺云生物科技有限公司<120>全细胞催化合成l-2-哌啶甲酸的方法<130>2016<160>13<170>patentinversion3.3<210>1<211>1053<212>dna<213>arenimonasdonghaensis<400>1atgaccatgacccagctcaccacccaggacctgacccagatcgtcgcgacccacggcctg60ccgaccctgctcggccgcctggtggactacctggaggccgacttccggcgctgggaggac120ttcgacaagagcccgcgttcggcggcccactccccgggcggcgtgatcgaactgatgccg180gtcgccgataccaaggaatacagcttcaagtacgtcaacggccacccgggcaacaccaag240ctgggcctgtccaccgtggtggccttcggcgtgctcgccgacgtcgataccggcatgccg300accctgatcagcgaactgaccctgaccaccgcgctgcgcaccgccgccacctcggtgatg360gcggccaagctgctggcgcgcaaggattccaggaccatggcgctgatcggcaacggcgcc420cagagcgagttccaggcgctggccttccaccacctgctgggcatccaggaagtgcgtgtg480tacgacgtcgacccggccgccaccgacaagctggtgcgcaacctggccgcggccgcgccg540gaactgcgcgtggtgcgcagcaccggcgtcgcccaggccgtgcgcggcgccgacatcgtc600accaccgtcaccgcggacaaggccaatgccgacatcctgacgccggaaatgatcgagccg660ggcatgcacctcaacgccgtcggcggcgactgcccgggcaagaccgaactggccacggag720gtggtcgccaacgcctcggtgttcgtcgagttcgagccgcagtcgcgcatcgaaggcgag780gtgcagcagatgcccgccaactccccggtcaccgaactgtggcgcgtgctgaccatgcag840gccgccggccgccgcaacatcgccgaggtcaccctgttcgactcggtcggtttcgcgctg900gaggattattcggcgctgcgcctggtgcgcgattgcgccaaggaaatgggcctgggccgc960gaagccagcctcatccccgccctggccgacccgaagaacctgttcggcgagctggccgcg1020gcaccccaggccgcgcgcaagcaggcggcctga1053<210>2<211>350<212>prt<213>arenimonasdonghaensis<400>2metthrmetthrglnleuthrthrglnaspleuthrglnilevalala151015thrhisglyleuprothrleuleuglyargleuvalasptyrleuglu202530alaasppheargargtrpgluasppheasplysserproargserala354045alahisserproglyglyvalilegluleumetprovalalaaspthr505560lysglutyrserphelystyrvalasnglyhisproglyasnthrlys65707580leuglyleuserthrvalvalalapheglyvalleualaaspvalasp859095thrglymetprothrleuilesergluleuthrleuthrthralaleu100105110argthralaalathrservalmetalaalalysleuleualaarglys115120125aspserargthrmetalaleuileglyasnglyalaglnsergluphe130135140glnalaleualaphehishisleuleuglyileglngluvalargval145150155160tyraspvalaspproalaalathrasplysleuvalargasnleuala165170175alaalaalaprogluleuargvalvalargserthrglyvalalagln180185190alavalargglyalaaspilevalthrthrvalthralaasplysala195200205asnalaaspileleuthrproglumetilegluproglymethisleu210215220asnalavalglyglyaspcysproglylysthrgluleualathrglu225230235240valvalalaasnalaservalphevalgluphegluproglnserarg245250255ilegluglygluvalglnglnmetproalaasnserprovalthrglu260265270leutrpargvalleuthrmetglnalaalaglyargargasnileala275280285gluvalthrleupheaspservalglyphealaleugluasptyrser290295300alaleuargleuvalargaspcysalalysglumetglyleuglyarg305310315320glualaserleuileproalaleualaaspprolysasnleuphegly325330335gluleualaalaalaproglnalaalaarglysglnalaala340345350<210>3<211>1053<212>dna<213>人工序列<400>3atgaccatgacccagctgaccacccaggacctgacccagatcgttgctacccacggtctg60ccgaccctgctgggtcgtctggttgactacctggaagctgacttccgtcgttgggaagac120ttcgacaaatctccgcgttctgctgctcactctccgggtggtgttatcgaactgatgccg180gttgctgacaccaaagaatactctttcaaatacgttaacggtcacccgggtaacacca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