一种清火速溶茶的制作方法

文档序号:12309721阅读:267来源:国知局
本发明属于食品加工
技术领域
,具体涉及一种清火速溶茶。
背景技术
::“上火”为民间俗语,又称“热气”,可以从中医理论解释,属于中医热证范畴。中医认为人体阴阳失衡,内火旺盛,即会上火。因此所谓的“火”是形容身体内某些热性的症状,而上火也就是人体阴阳失衡后出现的内热证候,具体症状如眼睛红肿、口角糜烂、尿黄、牙痛、咽喉痛等。“上火”在干燥气候及连绵湿热天气时更易发生。解决方法是“去火”,即中医的清热泻火法,可服用滋阴、清热、解毒消肿的食物或药物。百合,又名强蜀、番韭、山丹、倒仙、重迈、中庭、摩罗、重箱、中逢花、百合蒜、大师傅蒜、蒜脑薯、夜合花等,中医学认为,百合味甘微苦,性平,入心、肺经,有润肺止咳、清心安神之功,可用于热病后余热未消、虚烦惊悸、神志恍惚和肺痨久咳、咯血、肺脓疡等症;或因过食煎、炒、油炸食品后觉得燥热时食用。麦芽,为禾本科植物大麦的成熟果实经发芽干燥的炮制加工品。将麦粒用水浸泡后,保持适宜温、湿度,待幼芽长至约5mm时,晒干或低温干燥。麦芽,性甘,平。归脾、胃经、肝经,可用于肝郁气滞,胸胁胀闷,及肝脾不各,嗳气少食等症。莲子,是睡莲科水生草本植物莲的种子。又称白莲、莲实、莲米、莲肉。莲,又称荷芙蓉、水芝。莲子具有清心醒脾,补脾止泻,养心安神明目、补中养神,止泻固精,益肾涩精止带,滋补元气的功效。莲子作为保健药膳食疗时,一般是不弃莲子芯的,莲子芯是莲子中央的青绿色胚芽,味苦,有清热、固精、安神、强心之功效。山楂,也叫山里红、红果、胭脂果,为蔷薇科植物山里红或山楂的干燥成熟果实,质硬,果肉薄,酸甜适中,风味独特。山楂味酸性温,气血并走,化瘀而不伤新血,行滞气而不伤正气,应用于肉食积滞证,泻痢腹痛、疝气痛、瘀滞腹痛胸痛、恶露不尽、痛经、吐血、便血等。山楂含有大量的维生素C与微量元素,能够扩张血管,降低血压,降低血糖,能够改善和促进胆固醇排泄而降低血脂,预防高血脂的发生,山楂能够开胃促进消化,山楂所含有的脂肪酶也能够促进脂肪的消化。山楂所含有的黄酮类与维生素c、胡萝卜素等物质能够阻断并减少自由基的生成,可增强机体的免疫力,延缓衰老,防癌抗癌。山楂能够活血化瘀,帮助消除瘀血状态,辅助治疗跌打损伤。近几年来,山楂在降血脂、降血压、抗脑血及其作用机制方面取得了重大进展。金银花,又名忍冬,自古被誉为清热解毒的良药。它性甘寒气芳香,甘寒清热而不伤胃,芳香透达又可祛邪。金银花既能宣散风热,还善清解血毒,用于各种热性病,如身热、发疹、发斑、热毒疮痈、咽喉肿痛等症,均效果显著。菊花,是菊科植物,性甘、微寒,是中国常用中药,具有散风热、平肝明目、消咳止痛的功效,用于治疗头痛眩晕、目赤肿痛、风热感冒、咳嗽等病症效果显著。而上述成分也常出现在现有的清火产品中。公布号为CN102144694A的中国发明专利《一种山楂麦芽茶》公布了一种山楂麦芽茶,由生山楂、炒麦芽、炒谷芽和炒莱菔子加工而成,所述蒲公英、菊花、桑叶、夏枯草、紫花地丁、野菊花的重量比为3∶1∶1∶1,分别将净选的所述原料干燥、筛选,再将加工过的原料按比例称量配齐、混合均匀、灭菌消毒、装纸袋、灌装及包装后,即为本发明产品。它具有消食化积之功效。公布号为CN105724675A的中国发明专利《清火茶》提供了一种清火茶,由以下重量份数的原料配制而成:金银花2份、菊花1份、胖大海1份、麦冬3份、藏青果1份、罗汉果1份、射干1份、枸杞子1份和甘草1份。本发明的优点在于采用科学方法与传统中医药理论相结合,具有清热解毒、滋阴润燥的功效,常饮可防治声音嘶哑、咽喉肿痛、各类疮疖肿毒等,其制备方法简单,成本低,适合规模化工业生产。公布号为CN105456677A的中国发明专利《一种芦荟清火排毒胶囊》,以芦荟、莲子、百合、青木香、槐花作为原料,按适宜的配比制备成的保健排毒胶囊。该胶囊含多种营养成分和有益人体健康的成分,长期食用该胶囊,能清宿便、清热解毒、清除人体多种毒素、使人口、胃舒适,口气清新,促进身体健康。可作为一种新的保健品供长期宿便不清、体内毒素较多的人群服用,起到美容保健的效果,特别受到爱美女士的欢迎。但是现有技术中的产品要么有效成分含量较低,要么过多的追求复合功能而添加其他的辅助成分,使得现有的产品逐渐丧失了其原有的香气与口味。此外,麦芽、莲子以及山楂等成分都有较高的含糖量,不适于所有人群食用。本发明为了克服上述问题将提供一种茶香浓郁,且具有复合功能、成本低廉的速溶清火茶。技术实现要素::为了解决上述技术问题,本发明将提供一种速溶清火茶,所述速溶清火茶由以下重量份数的原料制备而成:百合15-20份,麦芽18-20份,莲子12-15份,山楂3-5份,金银花20-30份,菊花20-30份;所述速溶清火茶的制备方法如下:(1)将进过挑选、去核、清洗并烘干的百合、麦芽、莲子、山楂、金银花、菊花按照重量份数要求进行称取;(2)将各原料分别粉碎至80-140目后混合,添加原料总重量5-10倍的水在40-50℃下浸泡1-2h;之后进行超声浸提,超声条件为200-300W,频率30-40KHz、40-50℃、1-2h;之后进行高压脉冲电场浸提,脉冲条件为电场强度25-35kV/cm,脉冲频率200-1000Hz,0.5-1h;(3)4000rpm,离心5-10min分别收集上清浸提液A,及沉淀料渣B;(4)向料渣B中添加原料总重3-5倍重量的水,搅拌均匀,同时加入原料总重量0.05%的纤维素酶,0.02%的α-淀粉酶,0.03%的β-淀粉酶,0.005%的麦芽糖酶,0.005%糖化酶,于30-40℃酶解30-50min,之后升温至90℃灭酶10min得酶解液C;(5)将酶解液C进行二次浸提,超声条件为200-300W,频率30-40KHz、40-50℃、20-40min;之后进行高压脉冲电场浸提,脉冲条件为电场强度25-35kV/cm,脉冲频率200-1000Hz,10-20min得二次浸提液D;(6)向二次浸提液D中按5-8%的接种量接入酿酒酵母种子液进行发酵,30℃,通气量6L/min,罐压0.03MPa,500rpm,恒pH6.0条件下进行发酵培养,30h后一次性添加终浓度为25mmol/L的L-半胱氨酸,继续发酵18-24h;(7)发酵结束后离心分离上清E;(8)合并浸提液A及上清E,45℃下真空浓缩,得到至固形物含量约为30-40%的浓缩液,继而进行冷冻干燥,得速溶清火茶;进一步地,接种酿酒酵母种子液时向二次浸提液D中添加终浓度为100g/L的葡萄糖;所述的种子液培养条件:取酿酒酵母斜面菌种一环,接入装有30mL摇瓶培养基的250mL摇瓶中150rpm,30℃培养30h得种子液;摇瓶培养基(g/L):(NH4)2SO46、葡萄糖35、K2HPO4·3H2O3、KH2PO40.5、酵母粉11、MnSO40.1、KCL0.1、FeSO40.1、MgSO4·7H2O0.1,pH6.0;所述酿酒酵母菌株具体为酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)tlj2016,该菌株已于保藏于2016年7月15日中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为CGMCCNo.12789,保藏地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号,中国科学院微生物研究所,邮编100101;所述酿酒酵母tlj2016是从一株宁夏果园中分离得到的酿酒酵母出发菌株经以下步骤得到:原始出发菌种→试管活化→硫酸二乙酯(DES)诱变→高渗平板筛选→亚硝基胍(NTG)诱变筛选→高渗平板初筛→摇瓶筛选→发酵复筛(产GSH能力)→传代稳定性试验。经过诱变后获得的菌株tlj2016其葡萄糖耐受能力以及L-半胱氨酸耐受能力均得到提高,一方面,tlj2016对葡萄糖的耐受能力达到300g/L,在高浓度葡萄糖培养下能够提高细胞密度,另一方面L-半胱氨酸耐受能力的提高将有利于GSH在胞内大量合成,从而提高菌株大规模生产GSH的能力。由于所述酿酒酵母tlj2016是一株可在外源添加L-半胱氨酸条件下大量合成谷胱甘肽的酵母菌,将经过初步浸提之后的料渣经酶解后作为发酵基质,充分利用其酶解产物,使用酿酒酵母tlj2016在添加L-半胱氨酸的条件下发酵生产谷胱甘肽,发酵完成后,将发酵液分离,并于之前获得的浸提液进行合并,浓缩后冻干的速溶清火茶产品,所得产品不仅具有较高的有效成分,而且含有谷胱甘肽,增加了产品的抗氧化功能,降低了产品的含糖量。有益效果:1、本发明所提供的速溶清火茶,将超声浸提、高压脉冲电场浸提以及酶解浸提相结合,能够增加提取产物中的有效成分,茶香浓郁,营养丰富;此外本产品仅以优质百合、麦芽、莲子、山楂、金银花、菊花为提取原料,不添加任何辅助成分,充分保留了原有的风味;2、本发明将经过初次浸提的原料渣经过酶解后作为发酵基质,生产谷胱甘肽,一方面充分利用原料酶解产生的葡萄糖,实现了废物利用,节省成本,提高了经济效益,同时降低产品的含糖量,另一方面发酵生成的谷胱甘肽,谷胱甘肽作为重要的抗氧化剂和自由基清除剂,可以与体内的自由基、重金属等结合,从而将机体内的有害物质转化为无害物质排出体外,此外,还可以提高人体免疫力,维护健康,抗衰老,在老人迟缓化的细胞上发挥功效;3、本发明可提供该两种风味的产品,发酵过程中添加葡萄糖的产品中谷胱甘肽含量高,且成品口味微甜,适合健康人群饮用;未添加葡萄糖的产品中谷胱甘肽含量略低,茶香更浓郁,糖分含量低,适合三高病人等对糖摄入量有要求或有减肥需求的人群饮用。具体实施方式:实施例1一种低糖速溶清火茶及其制备方法一种速溶清火茶,其制备方法包括如下步骤:(1)将百合、麦芽、莲子、山楂、金银花、菊花经过挑选、去核、清洗并烘干后,按以下重量份数组成进行称取:百合15份,麦芽18份,莲子12份,山楂3份,金银花20份,菊花30份;(2)将各原料分别粉碎至80目后混合,添加原料总重量5倍的水在50℃下浸泡1h;之后进行超声浸提,超声条件为200W,频率40KHz、40℃、2h;之后进行高压脉冲电场浸提,脉冲条件为电场强度25kV/cm,脉冲频率1000Hz,0.5h;(3)4000rpm,离心5min分别收集上清浸提液A,及沉淀料渣B;(4)向料渣B中添加原料3倍重量的水,搅拌均匀,同时加入原料总重量0.05%的纤维素酶,0.02%的α-淀粉酶,0.03%的β-淀粉酶,0.005%的麦芽糖酶,0.005%糖化酶,于30℃酶解50min,之后升温至90℃灭酶10min得酶解液C;(5)将酶解液C进行二次浸提,超声条件为200W,频率40KHz、40℃、40min;之后进行高压脉冲电场浸提,脉冲条件为电场强度25kV/cm,脉冲频率1000Hz,10min得二次浸提液D;(6)向二次浸提液D中按5%的接种量接入酿酒酵母tlj2016种子液进行发酵,30℃,通气量6L/min,罐压0.03MPa,500rpm,恒pH6.0条件下进行发酵培养,30h后一次性添加终浓度为25mmol/L的L-半胱氨酸,继续发酵18h;发酵结束后经检测,发酵液中含有375.3mg/L谷胱甘肽;所述的种子液培养条件:取酿酒酵母tlj2016斜面菌种一环,接入装有30mL摇瓶培养基的250mL摇瓶中150rpm,30℃培养30h得种子液;摇瓶培养基(g/L):(NH4)2SO46、葡萄糖35、K2HPO4·3H2O3、KH2PO40.5、酵母粉11、MnSO40.1、KCL0.1、FeSO40.1、MgSO4·7H2O0.1,pH6.0;(7)发酵结束后离心分离上清E;(8)合并浸提液A及上清E,45℃下真空浓缩,得到至固形物含量为30%的浓缩液,继而进行冷冻干燥,得速溶清火茶,此产品为实验组。对照组:步骤(1)-(8)完全相同,仅将步骤(6)中酿酒酵母tlj2016种子液经过121℃,30min灭菌后再加入二次浸提液D中。经检测,实验组速溶清火茶中总糖含量为对照组的46.96%。实施例2一种含糖速溶清火茶及其制备方法一种速溶清火茶,其制备方法包括如下步骤:(1)将百合、麦芽、莲子、山楂、金银花、菊花经过挑选、去核、清洗并烘干后,按以下重量份数组成进行称取:百合18份,麦芽19份,莲子13份,山楂4份,金银花25份,菊花25份;(2)将各原料分别粉碎至100目后混合,添加原料重量10倍的水在40℃下浸泡2h;之后进行超声浸提,超声条件为300W,频率30KHz、50℃、1h;之后进行高压脉冲电场浸提,脉冲条件为电场强度35kV/cm,脉冲频率200Hz,0.5h;(3)4000rpm,离心10min分别收集上清浸提液A,及沉淀料渣B;(4)向料渣B中添加原料5倍重量的水,搅拌均匀,同时加入原料重量0.05%的纤维素酶,0.02%的α-淀粉酶,0.03%的β-淀粉酶,0.005%的麦芽糖酶,0.005%糖化酶,于40℃酶解30min,之后升温至90℃灭酶10min得酶解液C;(5)将酶解液C进行二次浸提,超声条件为300W,频率30KHz、50℃、20min;之后进行高压脉冲电场浸提,脉冲条件为电场强度35kV/cm,脉冲频率200Hz,20min得二次浸提液D;(6)向二次浸提液D中按8%的接种量接入酿酒酵母tlj2016种子液进行发酵,同时添加终浓度为100g/L的葡萄糖,30℃,通气量6L/min,罐压0.03MPa,500rpm,恒pH6.0条件下进行发酵培养,30h后一次性添加终浓度为25mmol/L的L-半胱氨酸,继续发酵24h,发酵结束后测定发酵液中的谷胱甘肽含量为932.7mg/L;所述的种子液培养条件:取酿酒酵母斜面菌种一环,接入装有30mL摇瓶培养基的250mL摇瓶中150rpm,30℃培养30h得种子液;摇瓶培养基(g/L):(NH4)2SO46、葡萄糖35、K2HPO4·3H2O3、KH2PO40.5、酵母粉11、MnSO40.1、KCL0.1、FeSO40.1、MgSO4·7H2O0.1,pH6.0;(7)发酵结束后离心分离上清E;(8)合并浸提液A及上清E,45℃下真空浓缩,得到至固形物含量约为40%的浓缩液,继而进行冷冻干燥,得速溶清火茶,此产品为实验组。对照组:步骤(1)-(8)完全相同,仅将步骤(6)中酿酒酵母tlj2016种子液经过121℃,30min灭菌后再加入二次浸提液D中。经检测,实验组速溶清火茶中总糖含量为对照组的55.74%。实施例3一种低糖速溶清火茶及其制备方法一种速溶清火茶,其制备方法包括如下步骤:(1)将百合、麦芽、莲子、山楂、金银花、菊花经过挑选、去核、清洗并烘干后,按以下重量份数组成进行称取:百合20份,麦芽20份,莲子15份,山楂5份,金银花30份,菊花20份;(2)将各原料分别粉碎至140目后混合,添加原料重量8倍的水在45℃下浸泡1.5h;之后进行超声浸提,超声条件为250W,频率35KHz、45℃、1.5h;之后进行高压脉冲电场浸提,脉冲条件为电场强度30kV/cm,脉冲频率500Hz,0.8h;(3)4000rpm,离心8min分别收集上清浸提液A,及沉淀料渣B;(4)向料渣B中添加原料4倍重量的水,搅拌均匀,同时加入原料重量0.05%的纤维素酶,0.02%的α-淀粉酶,0.03%的β-淀粉酶,0.005%的麦芽糖酶,0.005%糖化酶,于35℃酶解40min,之后升温至90℃灭酶10min得酶解液C;(5)将酶解液C进行二次浸提,超声条件为250W,频率35KHz、45℃、30min;之后进行高压脉冲电场浸提,脉冲条件为电场强度30kV/cm,脉冲频率500Hz,15min得二次浸提液D;(6)向二次浸提液D中按6%的接种量接入酿酒酵母tlj2016种子液进行发酵,30℃,通气量6L/min,罐压0.03MPa,500rpm,恒pH6.0条件下进行发酵培养,30h后一次性添加终浓度为25mmol/L的L-半胱氨酸,继续发酵20h,发酵结束后测定发酵液中的谷胱甘肽含量为556.8mg/L;所述的种子液培养条件:取酿酒酵母斜面菌种一环,接入装有30mL摇瓶培养基的250mL摇瓶中150rpm,30℃培养30h得种子液;摇瓶培养基(g/L):(NH4)2SO46、葡萄糖35、K2HPO4·3H2O3、KH2PO40.5、酵母粉11、MnSO40.1、KCL0.1、FeSO40.1、MgSO4·7H2O0.1,pH6.0;(7)发酵结束后离心分离上清E;(8)合并浸提液A及上清E,45℃下真空浓缩,得到至固形物含量约为35%的浓缩液,继而进行冷冻干燥,得速溶清火茶,此产品为实验组。对照组:步骤(1)-(8)完全相同,仅将步骤(6)中酿酒酵母tlj2016种子液经过121℃,30min灭菌后再加入二次浸提液D中。经检测,实验组速溶清火茶中总糖含量为对照组的37.95%。实施例4高糖条件下tlj2016发酵产GSH能力实验(1)摇瓶培养取tlj2016斜面菌种一环,接入装有30mL摇瓶培养基的250mL摇瓶中150rpm,30℃培养30h得种子液;摇瓶培养基(g/L):(NH4)2SO46、葡萄糖35、K2HPO4·3H2O3、KH2PO40.5、酵母粉11、MnSO40.1、KCL0.1、FeSO40.1、MgSO4·7H2O0.1,pH6.0;(2)5L发酵罐培养将种子液按10%接种量,接入装有3L发酵培养基的发酵罐中,30℃,通气量6L/min,500rpm,恒pH6.0条件下进行发酵培养,发酵至30h时,一次性添加终浓度为25mmol/L的L-半胱氨酸,总发酵时间为50h;发酵培养基(g/L):(NH4)2SO410、葡萄糖100、K2HPO4·3H2O8、KH2PO40.5、酵母粉11、MnSO40.1、KCL0.1、FeSO40.1、MgSO4·7H2O0.1,pH6.0;发酵结束后,测定发酵液中GSH的含量为3308mg/L.实施例5L-半胱氨酸耐受力实验将出发菌株以及tlj2016斜面菌种各一环,分别接入装有30mL摇瓶培养基的250mL摇瓶中150rpm,30℃培养进行培养,在培养至12h时,向摇瓶中加入不同终浓度的L-半胱氨酸,再培养10h,测定细胞干重,结果表1、2;摇瓶培养基(g/L):(NH4)2SO46、葡萄糖20、K2HPO4·3H2O3、KH2PO40.5、酵母粉11、MnSO40.1、KCL0.1、FeSO40.1、MgSO4·7H2O0.1,pH6.0;表1:出发菌株L-半胱氨酸耐受力L-半胱氨酸浓度mmol/L0510152040出发菌株干重g/L22.615.710.24.32.20.8GSH浓度(mg/L)35.646.743.240.737.925.3表2tlj2016L-半胱氨酸耐受力L-半胱氨酸浓度mmol/L0510152040tlj2016干重g/L25.728.523.621.220.618.7GSH浓度(mg/L)73.298.3113.5121.7127.5135.8从表1、2的结果可以看出,对于出发菌株,培养基中添加L-半胱氨酸,细胞停止生长,并且开始自溶,导致GSH增长率随着L-半胱氨酸浓度的升高而降低;而低浓度L-半胱氨酸下,tlj2016仍能够缓慢生长,随着L-半胱氨酸浓度的提高,tlj2016菌株的细胞干重缓慢下降,而GSH浓度持续增长,这一结果将有利于GSH生产过程中通过添加前体氨基酸-L-半胱氨酸提促进GSH的生产。实施例6耐盐能力实验取tlj2016菌液1mL接种菌种于含有不同NaCl浓度的(含量梯度为0%、2%、5%、10%、15%、18%)的10mLYPD液体培养基(pH=6.5),置于30℃下分别培养24h,每个处理3个重复。各取1ml样品菌液于9ml生理盐水中混匀,制备稀释度溶液,取0.1ml稀释液于YPD固体平板中涂布,于30℃生化培养箱中倒置培养36小时(每个稀释度做3个平行)记录计算平板上的菌数个数。结果见表3,可知该菌的耐盐浓度为18%,说明tlj2016不仅可以在常规环境中生存,在高盐条件下依然具有活力,可应用于酱油、腌制品等高盐食品加工过程中耗糖产谷胱甘肽。表3耐盐能力检测(×107cfu/ml)NaCl含量0%2%5%10%15%18%原始菌株5.16±0.424.38±0.422.15±0.210.12±0.1100tlj20165.33±0.285.10±0.714.83±0.423.98±0.332.57±0.480.83±0.15当前第1页1 2 3 
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