专利名称：促进猪成年前生长和提高猪饲料转化效率的组合物和方法
技术领域：
本发明涉及一种在原核生物里表达异源DNA 顺序(例如真核生物基因)的方法。在其中一个重要的实施例中，本发明指向在原核生物里生产具有一个N端为丙氨酸的多肽以及用该方法能够生产各种N端为丙氯酰的多肽。
由真核生物和原核生物表达基因，虽然在基因转录至信使RNA(mRNA)以及随之又把这种mRNA转译成蛋白质中都具有相同的基本步骤，但是要应用细胞内的不同组合以控制这些步骤。
此外，在真核生物里，许多成熟的蛋白质首先被转译成为前一蛋白质；即含有与引导顺序或信号顺序融合的成熟蛋白质顺序的多肽。真核生物的信使RNA(mRNA)编码整套前一蛋白质，它们在转译后被加工除去引导顺序以后才成为这种成熟蛋白质的。真核生物细胞装备有把这种前一蛋白质转变为成熟蛋白质的特异加工机制，原核生物的细胞一般不能识别存在于真核生物的蛋白质里的这种加工处理信号。因此，如果真核生物信使RNA(mRNA)的完整互补DNA(cDNA)转录物被用作DNA 顺序在原核生物里来表达，那就只能发现前一蛋白质而无成熟蛋白质。前一蛋白质在体外转变为成熟蛋白质是有可能的，但不能没有重要的代价。
在编码成熟蛋白质的DNA顺序在原核生物里用作成熟蛋白质表达的过程中，这一顺序将是没有真核的转译作用和通常包含在作引导顺序DNA里的转译后加工信号。因此，基于效能以及由于原核生物的宿主细胞也许不能识别真核生物的信号，现已证实，要在原核生物系统里表达所克隆的真核基因或其它异源DNA顺序。最理想的是应用原核生物控制讯号。
“异源DNA”一词在此定义为核DNA至少其有一部分序列不是正常地包含在宿主细胞的染色体组内。异源DNA的实例包括，病毒及真核基因，基因此段，等位基因以及合成的DNA顺序但不局限这些。“异源蛋白质”或“异源多肽”一词在此定义为一种蛋白质或多肽，其中至少有一部分氨基酸顺序不是正常地将其密码编在宿主细胞的染色体组里。
原核生物的控制讯号包括一启动子，它引发转录启始和转译控制讯号包括核糖体结合位点，转译启动以及转译停止。除了转译停止信号外，所有这些讯号都必须位于真核基因或其它待表达DNA的前面。
技术界已采用一些方法在原核生物里去表达异源DNA(即真核基因)。其中一个方法是，把编码终产物蛋白的DNA片段与受细菌启动子操纵编码细菌的全部或一部分蛋白的DNA相连接。这种内生的原核DNA也需要有核糖体结合位点及转译启动讯号。这样连接的DNA的表达结果产生一种所谓融合蛋白，它由真核多肽与整个细菌蛋白组成，这种真核生物的蛋白质的分离就可以用位点特异酶的或化学的方法在内源的——真核生物的蛋白质融合点上裂解而完成，或用原核生物对多肽顺序的选择降解而实现。
在细菌中，与生产真核生物蛋白融合的蛋白质，有关的出版物包括全欧专利申请47，600(1982，3，17出版)它涉及融合蛋白与非融合蛋白包括，牛前——生长激素或牛生长激素，在其羧基端(C-)上带有或在氨基端(-N)没有。原核生物蛋白质部分的。英联邦专利申请GB2，073，245A(1981，10，14出版)论及bGH与大肠杆菌E，coliβ-乳酰胺酶(β-Lactamase)的融合蛋白质；E.Keshet等人，核酸研究，(Nucleic Acid Research)919-30(1981)论及牛生长激素(bGH)与大肠杆菌β-乳酰胺酶的融合蛋白质；全欧专利申请95，361(1983，11，30出版)论及融合蛋白质包括依次为，在N基端的内源蛋白质，转译起动信号氨基酸，肠激酶切割优点以及羧基端(C-)上的外源蛋白质(即生长激素)。然而，这些融合蛋白质的方法都是繁琐的，其间在纯化之后还需要进行体外加工处理，而且达到商品化所需酶的成本过高。
不过，由于融合的产物似乎能保护终产物异源蛋白质免受细胞内的降解，因此已成为在原核生物细胞中表达某些真核基因或其它异源DNA的一种有吸引力的系统。细菌细胞似乎能识别出在其处产生的某些真核蛋白质是外来的，因而，在这些蛋白质合成时或刚合成后就尽快地使之降解。为保护目的而设计的融合蛋白质应用内源多肽顺序放在异源蛋白质的氨基端或羧基端。后者方法的例子见于欧州专利申请111，814(1984，6，27出版)其中论及融合蛋白质、包括一种具有一合成的前一端(氨基端)以及在羧基端(C-)上有一大肠杆菌(E，coli)β-半乳糖苷酶(β-galactosida-se)形式的牛生长激素bHG。它的优越性仍然由于象前面讨论过那样需要最后从内生多肽切割异源蛋白而受贬。
在另一方法里，转译启动讯号，ATG，受细菌启动子操纵之下，被直接连于编码异源蛋白质(即真核的蛋白质)的DNA顺序之前，该所产生的异源蛋白质在其氨基端(N-)及羧基端(C-)都没有内源蛋白质。虽然由这样构建的基因所产生的蛋白质不需要最后切割来产生期望获得的蛋白质，它们典型的在N端上总会有蛋氨酸(某些情况下是甲酰蛋氨酸)，因为ATG启动讯号本身也是蛋氨酸密码子。因此，除非所期望的成熟蛋白质以一蛋氨酸开始否则这种蛋白质将一在氨基端(N-)被包含有蛋氨酸残基在内的基团取代。
这样基团结构的例子包括Guarente等人，细胞(Cell)(1980)20∶543-553其中具有N基端为缬氨酸的家兔β-球蛋白基因(β-globin gene)是应用刚叙述的基因结构在大肠杆菌(E.coli)里表达的。研究者发现，有鉴于“在家兔β-球蛋白里没有氨基端的蛋氨酸，且发现亮氨酸位于3，14，28，31，32……位上。而在标记的蛋白质里则发现亮氨酸在4，15，29，32和33位上，还发现有一蛋氨酸在1位上。这一结果表明，该蛋白质是家兔β-球蛋白加上一个在大肠杆菌上未除去的氨基端的蛋氨酸。同上文献的546-547。
另一例子是与应用上述基因结构在细菌里生产生长激素有关。Schoner等人Proc.Natl Acad,Scie U.S.A(1984)81∶5403-5407叙述了在细菌里生产牛生长激素(bGH)一种高水平的表达系统。它导至产生出一种N-甲硫氨酰bGH；它是一种氨基酸顺序与天然存在的牛生长激素品种相似。在其N端加有蛋氨酸的化合物在细菌里生产在N端加蛋氨酸到各种生长激素品种里去又被再一次在全欧专利申请103，395(1984，3，21出版)里讨论，而全欧专利申请75，444(1983，3，30出版)论述了bGH和Seeburg etal，在DNA(1983)237-45论述了bGH及猪的生长激素(“PGH”)。
把一个N端蛋氨酸加到天然蛋白的N端去由于多种原因也许是不太理想的。首先，在一种有机体里，它的内源蛋白质没有为N-端蛋氨酸的，这种蛋氨酸就有可能会趋向于造成该蛋白质呈抗原。其次，把蛋氨酸加到蛋白质的N端部分对它的生物活性及它的物理学特性会有非所期望的影响。其三，蛋白质的这种改变形式会阻碍在测定天然蛋白质结构与功能相互关系上的科学尝试。再者，一种生物合成的蛋白质，使其结构尽可能地与天然的接近这对在请求政府批准医药的或兽医的申请时也许是有利的。
象细菌一样的原核生物，无论蛋白质正在产生或产生之后，从蛋白质上除去N端蛋氨酸的能力，一直是相当有趣的课题。例如，Waller，J,Mol.Biol.(1963)7∶483-496考查了“可除的“N-端氨基酸成分，以及从无细胞的大肠杆菌E.coli抽提液得到的核糖体蛋白，以及全欧专利申请103，395(1984，3，21出版)公开了从大肠杆菌E，coli产生的真核蛋白质去除N端蛋氨酸。特别的是，蛋氨酸从二个在细菌上生产的牛生长激素的一个上除去，该二个牛生长激素都会有丝氨酸残基紧接的是原先就存在的N端蛋氨酸。然而在这些研究里应用的基因结构包含有合成的编码5′-蛋氨酸-丝氨酸-亮氨酸-3′的启动顺序，它直接地插至紧接在牛生长激素编码顺序的5′端，在这bGH编码顺序里编码前面4个或9个天然存在的氨基酸的碱基已被删去。因此，在大肠杆菌里产生的终产物蛋白质是一种非天然存在的蛋白质。英联邦专利申请2，073，245A(1981，10，4出版)公开在成熟的bGH蛋白质里的丙氨酸被蛋氨酸、脯氨酸取代时，“蛋氨酸就能被细菌加工而成为用脯氨酸(Pro)，苯丙氨酸(Phe)，丙氨酸(Ala)脯氨酸(Pro)为一氨基酸顺序开始的修饰过的牛生长激素(bGH)。
因此，需要发展一种既经济而有预见性的在诸为细菌样的微生物里生产不带N基端蛋氨酸的异源(即真核生物的)蛋白质的方法。明确的说，人们特别希望发展一种方法，依靠它可以在细菌里生产这类蛋白质而不需要在体外进行发酵后加工处理，而且它不含有外加的非天然存在的N-端蛋氨酸。
生长激素(又称somatotropins)是由垂体细胞产生或分泌的多肽，大多数具有专一的活性。它的作用除了促进骨骼生长外，还可对包括激发泌乳增加从胰腺释放胰岛素和增加糖源分泌等代谢过程的变异型发生影响，而且它们还起脂类调动的作用。例如，给牛施用外源生长激素(bGH)证明可增加产奶量，饲养率和/或生长率，可降低肥育时间和增加瘦肉比率。然而，还没有完全弄清这种激素是怎样起到这么多效应的。
涉及人类生长激素(hGH)的工作已开始。例如人类垂体腺所分泌激素不是一个单一分子的实体而是多肽的混合物。不同类型的人类生长激素hGH的分级分离导至制成某些既不致糖尿病也不起脂解作用的人类生长激素(hGH)片断。
同样地，牛生长激素bGH是有多种类型在牛中产生的。明确地说，产生了四种类型的bGH，它们的差异是在蛋白质的两个位点上。由于在讯号肽(引导)顺序的除去上可能出现错误，所以N端氨基酸就会不同，因此成熟蛋白质就会用NH2-phe-pro开头，或者用NH2-ala-phe-pro开头。此外，在氨基酸126位处有一变异性或是亮氨酸或是缬氨酸，这是显然由于存在于牛种群里的一个等位基因的变异而引起的。Wallis(1969)FEBS Latters 3∶118-120;Fellows和Rogol(1969)J.Biol.Chem.244∶1567-1575；Fernandez等人(1971)FEBS Letters 18∶53-54,Fellows(1973)在Recent Progress in Hormone Research 29∶404的个人评述；Santome(1973) Eur.J.Biochem.37∶164-170；Grat和Li(1974)Biochem.Biophyc.Res.Comm.56∶168-176.垂体bGH的4种分子型式(种)命名并缩写如下Abbr.缩写 结构bGH(L) NH2-phe(1)-pro(2)…Leu(126)…COOHbGH(A,L) NH2-ala(-1)-phe(1)-pro(2)…Leu(126)…COOHbGH(V) NH2-phe(1)-pro(2)…Val(126)…COOHbGH(A,V) NH2-ala(-1)-phe(1)-pro(2)…Val(126)…COOHbGH(A,V)和bGH(V)品种这里有时合称“缬氨酸等位的bGH品种”或“缬氨酸品种”。同样，bGH(A，L)和bGH(L)品种这里有时合称“亮氨酸等位bGH品种”或“亮氨酸bGH品种”。在bGH蛋白中缩写如上的氨基酸旁边的号码，只是为了鉴定和参照的目的。
全部DNA编码顺序以及与bGH(L)及pGH(p)的对应氨基酸顺序已由See bvrg等人在DNA(1983)2∶37-45上发表。在此它被编入参考文献。
已发现单个牛的垂体细胞通常都至少含有bGH(A.L)和bGH(L)的混合物或bGH(A.V)和bGH(V)的混合物。
在培养的脑垂体细胞中所产生bGH蛋白的N端分析说明近50∶50分子混合物中含有N-端苯丙氨酸(Phe)或N-端丙氨酸(ala)从许多牛的垂体制成的在商业上有用的制剂通常包含有全部4种分子型的垂体牛生长激素。bGH而且，已有报告从腺体中收集得到的bGH制品中大约30%在126位氨基酸的亮氨酸已由缬氨酸代替(Ferandez等)(1971)FEBS Letters 18∶53-54用来分离已知4种bGH型的标准生化方法不容许按商业规模生产当中的每一品种或任一种类型。这些牛生长激素bGH的4种类型的不同生物活性将会被充分研究并用基本上没有其它三种型中一种或多种以及/或其他牛源蛋白方法制成这类型中一种有商业效益的类型在这里应用“基本上纯的”术语是指基本上没有在自然环境中或来源中与其结合的蛋白或其他物质。为了那些及其它目的，本发明的目标包括发明一种方法，借助它至少能够方便地生产那些牛生长激素单一型中的一些型。
据此，本发明的一个目的是在原核生物里生产真核的或其它异源的不具N端蛋氨酸残基的多肽。
本发明的另一目的是在原核生物里生产真核的或其它异源的多肽，它是不需要在体外进行加工来除去其N端的蛋氨酸。
本发明还有另一目的是提供一种方法以便在原核生物里生产真核的或其它异源的多肽它不需在体外进行加工就具有一N端丙氨酸。
本发明的一目的是在原核生物里生产真核的或其它异源的多肽，它具有的氨基酸顺序基本上与没有N端蛋氨酸的天然存在的蛋白质相同。
本发明更深远的目的是提供一种在原核生物里生产多肽的方法，该多肽具有在成熟真核多肽里例如在bGH(A.L)bGH(A.V)及pGH(A)中发现的氨基酸顺序。
本发明还有另外一个更深远的目的是提供实际上各自地不含牛或猪来的蛋白质的bGH(A、L)bGH(A.V)或PGH(A)，本发明的这些或其它的目的将会从本发明随后的一般的和详细的说明而更加明白。
在一个实施方案中，本发明的目的是通过用细菌生产一种具有N端为丙氨酸能在所选择的细菌里促使染色体组DNA表达的异源多肽的方法而达到的。所说的DNA含有邻接蛋氨酸的一个约到三个密码子包括转译启动讯号，紧接的是所说多肽的密码子，后面接着的是转译停止信号密码子，而且还回收在上述细菌内产生具有N端丙氨酸的终产物的异源多肽。
在另一实施例中，本发明提供了一种生产具有包含在所选择过的细菌里促使染色体组DNA表达的N端丙氨酸的异源多肽的方法，所说的DNA包含有转译启始讯号/蛋氨酸密码子，其后接有所说的多肽密码子，接着为转译停止信号密码子，而且回收在所说细菌内所产生的具有N端丙氨酸的终产物一异源多肽。
仍是在另一实施例中，本发明提供出一种在细菌里制备氨基酸顺序基本上与天然存在的真核多肽相同的异源多肽的方法。
在另一实施例中，本发明可提供包括象bGH(A.L)，bGH(A.V),PGH(A)这样的生长激素以及bGH(A、L、)和bGH(A.V)的混合物中各种组分，它们实际上各自没有牛源或猪源的或其它生长激素品种的多肽。
其它的实施例包括各种基因，DNA运载体和在前述方法上有用的转化过的细菌，以及利用前述的组分以增加牛以及/或猪泌乳，成年前生长，以及/或饲养转化率的某些方法。
在下列图示里，镶线框代表细菌启动子的编码顺序，黑框表示异源DNA编码顺序，线条表示附加的如所标明的DNA编码顺序，而定向箭头表示从5′到3′的DNA编码顺序方位。有关的限制性核酸酶内切位点亦表示出。这样标出的DNA区段只为图解示意的目的而不是按比例尺绘制的。
图1.M13mp8/xba I的构建图包含在SmaI切点上插入一个xbaI酶切片段的M13mp8运载体。
图2.M13mp8/BGH ex-1的构建图包括带有bGH(L)DNA编码顺序的M13mp8/xba T图3.以寡聚核苷酸导致一特异位点一诱发生成的bGH(A.L)DNA编码顺序的创造。
图4.以寡聚核苷酸导致特异位点诱发的bGH(A.V)DNA编码顺序的创造。
图5.PMON3209表达运载体的构建。其上在bGH(L)DNA编码顺序中带有bGH(A.L)DNA编码顺序的PBGHex-1。
图6.PMON3215表达运载体的构建，其上在bGH(L)DNA编码顺序中带有bGH(A.V)DNA编码顺序的PBGHex-1图7.M13mp9/PGHex-1的构建，其上带有-PGH(P)DNA编码顺序的M13mP9。
图8.由寡聚核苷酸导致特异位点一诱发的-PGH(A)DNA编码顺序的创造。
图9.含有PBGHex-1的PBGHex-1*的构建图其中位于Ptrp DNA编码顺序5′端上游的ECORI限制性内切介位点已被除去。
图10.PMON3213表达运载体的构建图，它含有用PPGH(A)DNA编码顺序代替bGH(L)DNA顺序的PBGHeX-1*本发明提供一种在原核生物里生产象真核生物(即哺乳动物或鸟类)蛋白质那样的具有N端丙氨酸的异源多肽的方法。因此产生的多肽N端不具蛋氨酸，因而可省去在生产该种N端具蛋氨酸的多肽时所需的体外加工。持续生产这样一种在基因编码顺序中缺N端蛋氨酸的多肽是一项崭新的以及完全设想到的成果。
本发明提供一种有价值的方法以生产基本上纯的具有N端丙氨酸的蛋白质。这样的蛋白质范围较广，包括特定牛生长激素品种和猪生长激素品种及其变异型，植物蛋白核酮糖-1，5-磷酸二氢羧化酶小亚基，谷胱苷肽S-转移酶，热体克蛋白70，本发明对期望生产具有N末端丙氨酸而不是蛋氨酸其他多肽的生产亦是有用的。使N端丙氨酸比N端蛋氨酸更能合乎需要的是因为在多肽中，N-丙酰氨型的多肽也许致免疫性较少，或者可能有不同的物理性和修饰了的生物活性。
在本发明的例子里，其中基本上纯的bGH成PGH品种是由细菌细胞生产的除去N末端蛋氨酸的证据和技术，显然还缺乏。事实上，由细菌细胞表达bGH的所有报导其中有关N端的包括与天然存在的bGHN端氨基酸顺序相同的都报告N端蛋氨酸的存在。在See-burg等人，DNA(1983)2∶37-45中44页里报导bGH即bGH(L)的N端苯丙氨酸品种的基因顺序是审慎地被选择在大肠杆菌表达，部分原因是想避免予想中的第二个疏水氨基酸(蛋氨酸)加到其它bGH品种即bGH(AL)的疏水的N端丙氨酸上去。因此有用的研究至今教导在细菌上生产bGH品种要保留这种N端蛋氨酸。不管这些报导如何，我根据上面讨论的理由认定，有必要生产两种bGH品种bGH(A、L)和bGH(A、V)中任一种以及PGH的bGH(A)品种。然而，企图在细菌里生产这些生长激素品种是带着产生的多肽将含有N端蛋氨酸的希望进行的。
正如在本发明例子里详细说明一样，我把在细菌里生产bGH(A、L)，bGH(A、V)及PGH(A)的方法简述如下前面所说蛋白质的DNA编码顺序，图3，4及8所示它是由含N端苯丙氨酸的牛和猪生长激素品种编码顺序的DNA往用寡聚核苷酸--导致位点一特导诱发而构建的。此后，这种bGH(A、L)，bGH(A、V)及PGH(A)的编码顺序插入到表达运载体，这样所包含最后的基因顺序依次为启动子，核糖体结合位点，1ATG启动/蛋氨酸密码子它紧接在bGH(A、L)，bGH(A、V)或PGH(A)的任一种密码顺序DNA上以及一个转译停止密码子。大肠杆菌随后被带有我们所期望得到的基因顺序的特定表达运载体感染，而且使它在可让这种所期望的异源DNA表达并能生产这种期望的蛋白质的条件下进行培养。这样生产的蛋白质随后进行顺序分析及检定它们适当的生物活性。
因此，人们在此发现当异源多肽含有的N-丙酰氨密码子紧跟启始讯号/蛋氨酸密码子的DNA顺序表达时，从原核生物有机体回收的蛋白质，在其N端上实际上是丙氨酸而不是蛋氨酸。人们相信，当丙氨酸密码子被直接前移到约三个邻接蛋氨酸的密码子，其中包含编码所期望得到多肽产物的信使RNA(mRNA)转译的启动信号时就获得相似的结果。例如用含有那种转译启动信号和期望得到多肽产物的密码子的DNA就能够包含任何合适地为蛋氨酸丙氨酸(met ala),蛋氨酸蛋氨酸丙氨酸(met met ala)，蛋氨酸蛋氨酸蛋氨酸丙氨酸(met met met ala)成其它任何动能相等物编码的顺序。
在这里把N丙氨酸多肽定义为其氨基端有-丙氨酸的一种多肽。然而申请人不希望受以下的机制原理所约束，人们相信转译之后，如果下一个氨基酸是丙氨酸或其它具有能使容易地除去N-蛋氨酸的，相似特性的氨基酸(即极性或疏水性)多肽上N-端的蛋氨酸就可被原核生物用酶除去。人们进一步相信，当上述N-端的蛋氨酸是直接地连有-丙氨酸，则许多原核生物是能从异源的以及/或内生的多肽上除去N-端的蛋氨酸。
这些原核生物(即熟知的以及通过公认的象ATCC或其它类似微生物保存机关获得对公众有益的各种细菌)包括大肠杆菌，但相信不限于大肠杆菌E.coli及其不同的品系。事实上期望的是对能产生具有N-端丙氨酸，DNA编码顺序开始约为1个到3个蛋氨酸密码子，紧接的是丙氨酸密码子之多肽的任何原核生物，这里公开发明的实际可能是有用的。在商业上或其它方面有用的原核生物可以用插入一个基因到所说有机体的基因组中，而根据他们生产这样的N-丙氨酸多肽的能力而被筛选到，插入的基因有序地包括一个在上述有机体起作用的启动子，编码核糖体结合位点的DNA，从约1个到3个邻接的蛋氨酸密码子其中包括一个转译启始信号紧接其后有异源的N-丙氨酸多肽密码子及一转译停止讯号，此后，促使所说基因的表达并从而测定所产生的异源多肽的N-端的氨基酸的顺序。在体内能产生这类异源N丙氨酰多肽的原核生物被发现时，按这里专利公开和权利要求的目的看，则此原核生物可被列入“选中”。
在本发明较佳的实施例中，大肠杆菌K12株的三种不同分离株，全都存放在美国马里兰州(Maryland)洛克维兰(Roc kville)标准菌种保存库并已标有ATcc 39936,53010,及53009的登记号。并注明上述N端的蛋氨酸后紧接丙氨酸时有除去N端蛋氨酸的能力。
本发明由于它提供在原核生物里生产具有N端丙氨酸的异源多肽的方法而有价值。
在其中一个较佳的具体实施例中，本发明的方法是用来生产两种bGH品种，bGH(A、L)及bGH(A、V)以及一种pGH品种pGH(A)它们分别不带有牛的或猪的蛋白质以及/或其他bGH或pGH品种。准确的说，本方法可为生产bGH(A、L)，bGH(A、V)或pGH(A)，作单一产种作准备。生产单一而氨基酸顺序与天然存在的生长激素相同的bGH品种或pGH品种的能力对测定每个bGH和PGH的已知品种的精确生物反应性是相当重要，bGH和pGH的很多潜在作用，大体上如前所引。
在其广泛实施例中的一个实施例中，本发明细致地应用DNA重组体技术直接在原核生物里生产异源多肽。因此，发明的叙述是以所应用的重组DNA工艺学的技术基础知识为先需条件，它包括编码多肽的DNA顺序的分离与克隆DNA顺序的重排与交换，克隆了的或经修饰过的DNA顺序在转化过微生物中的表达。这样的技术已处于工艺技术范畴之内。(见，例如，分子克隆化实验手册MolecularCloning:Alaboratory Manual;Maniatis,Fritsch & Sam brook eds.1982)异源DNA的分离以及/或构建在本发明的一个实施例里，已被选得或分离到为在原核生物里待生产想要得到的编码异源多肽的DNA顺序，或是说，编码它的DNA顺序已构建或已被化学合成。在许多重要的实施例中，这种多肽是一种真核生物蛋白质。如果这种多肽不大而且已知它的完整氨基酸顺序，一个合成的DNA分子或编码多肽的顺序就能够被构建。如果这种多肽的氨基酸顺序不知道，或是它或过大而实际上不能合成相应的DNA顺序，则可从表达这种多肽组织或细胞里获得的相应信使RNA，用它的逆转录能制备一个互补DNA(cDNA)顺序。例如，在本发明的一个实施里，bGH的顺序能够用Goodman等人，在酶学方法(Methods in Enz ymology 68∶75-90(1979)所述的目前常用的步骤从牛的重体获得。另一方面，一个互补的DNA(cDNA)顺序能够用以一适当的探针从生产GH动物基因库中分离得到的染色体组DNA亦可在不同的运载体系统进行修饰，使能在原核生物里表达。这些技术皆属工艺技术范畴。
一旦获得想要的多肽密码子的异源DNA顺序、有可能在该分子的核酸顺序上作一那修饰。例如，如果这一分子已从mRNA模板逆转录产生，它往往含有至少一部分是编码前——蛋白质的引导顺序的DNA。因此，必须除去想得到的蛋白质第一个密码子前面的所有带引导顺序的DNA。在某些情况下，如果这一顺序还未具有-N-端的丙氨酸密码子就有必要在编码想要得的蛋白质顺序引起点加进或替代一个丙氨酸密码子。随后在上游引入一转译起动信号(它亦是一蛋氨酸密码子)而且直接紧靠着丙氨酸密码子。虽然这个启始信号/蛋氨酸密码子通常会(而且较常地)是核苷酸顺序ATG，但GTG顺序偶然也能用作启动信号/蛋氨酸密码子。此外在本发明的方法内，把出现多于一个蛋氨酸密码子，即2，3或可能更多的邻接蛋氨酸密码子都理解为组建功能等值。
如果还未出现，也至少有一转译停止信号必须引到为羧基端氨基酸而编的密码子之后。转译停止信号的例子包括脱氧核苷酸三联体TAA，TGA，及TAG。因此，从本质上看，重组体DNA技术是用来组建重组体DNA顺序的，这些顺序按序地包括一个转译启动信号/蛋氨酸密码子，具有紧靠启始信号N-端丙氨酸密码子期望得到的多肽的密码子以及至少一个靠着为C-端氨基酸密码子的转译停止信号。
已发现在mRNA内由氢键结合将两个互补的核苷酸系列形成二级结构能够阻碍信使RNA的有效表达。消除这些互补的顺序，特别是编码N-端的分子的那段顺序，有利于将核糖体结合到mRNA上，从而增加表达级别。因此，有可能用氨基酸相同的密码子但包含不同的核苷酸三联体去取代那些参与形成二级结构的密码子。参阅全欧专利75，444(1983，3，30出版)；Seeburg等人，(1983)DNA2∶37-45和shoner等人(1984)。Proc，Nat′l Acad.Sci.U.S.A.81.5403-5407。
组建异源DNA顺序的其他方法对熟悉本行技术者们是很清楚的。例如，如果DNA分子合用的话，它编码的多肽是以NH2-met-X-y的N-端结构表达的，式中的X是除丙氨酸外的任一种氨基酸，一个丙氨酸密码子之间。另一方面，X密码子可以删去而用丙氨酸密码子代而插在其中。因此，在本发明的工艺过程里，将会产生N-端分别具有NH2-ala-X-y或NH2-ala-y……的蛋白质。
同样的，也许会对一个已知基因顺序的任一氨基酸密码子进行删减，加入以及/或取代，所以在本发明的工艺过程里就会表达出变异的多肽。一个“变异的”多肽在这里定义为与已知多肽天然存在的氨基酸顺序相比，有独个或多个氨基酸被删去，取代或加进。这样的变异实例包括在，但不局限在met-bGH(L)及met-bGH(D)型，这些变异品种的bGH的氨基酸顺序除了在N-端出现一个额外的蛋氨酸之外分别与bGH(L)和bGH(V)相同，都是用牛的垂体体细胞生产的。被构建成的这些变异的多肽的氨基酸顺序具有与天然存在的多肽基本相似。只要其生物活性不会减到不允许的程度。为达到增加积留，提高蛋白质的稳定性，便于纯化多肽以及/或使生物活性达到最适的程度，创建与表达变异多肽是有希望的。
上述编码期望得到的多肽的DNA分子的修饰能够使用限制性酶类，外切核酸酶，内切核酸酶等等的已知技术来完成。寡聚核苷酸一导致位点特导诱变的一般技术亦能在DNA分子的结构或顺序上起到上述修饰的作用。而这些一般性技术是熟知本行技术的人所知道的。参阅例如，Zoller及Smith (1982)Nuc. Acids Res.10∶6487-6500;Zoller及Smith,(1983)Meth. Enrymol. 100∶468∶500;Norris等人,(1983)Nuc. Acids Res, 11∶5103-5112。
按照重组体DNA技术，一旦获得想要得到的异源DNA顺序之后，就要将该顺序插入到一个合适的能提供复制这一DNA顺序的克隆运载体里。任何合适的克隆运载体都可采用，但最好是采用那些含有标记功能的克隆运载体，它包括colEl, Hershfield等人，Proc Nat′1,Acad,Sci.U.S.A(1974)71∶3455;pBR322,Bolivar等人，Gene(1977)2∶95,PBR325,Soberon等人；Gene(1978)4∶121;以及pKc7，Rao等人，Gene(1979)7∶79；以及大肠杆菌E·coli噬菌体运载体，它包括Charon入L47.1,Loenen等人，Gene(1980)10∶249；以及M13mp8和M13mp9，Messing等人，Gene(1982)19∶269。把上述DNA顺序插到一克隆运载体里去生成一个重组体的运载体的一般技术是属于工艺技术范围。参阅，Molecular Cloning∶A Laboratory Munual;Maniatis, Fritsch 和Sam brook, eds, (1982)。
一旦获得期望得到的异源体DNA顺序的多重拷贝，这些顺序就可按后面较详细的说明那样从重组的运载体里移去这顺序，并把它插入到为生产和分离期望得到的异源蛋白的表达系统里。在将这些DNA顺序插入到一个表达运载体之前或之后可以用工艺熟练者所知的方法对异源体DNA顺序进行修饰。
在本发明的一些例子里，Mesring等人在Gene(1982)19∶269所说的，修饰成含有一个Xbaz位点的M13mp8如图2所示，与M13mp9一道被选为克隆运载体，参考文献同上一。M13mp8及M13mp9一道被选为克隆运载体，参考文献同上一。M13mp8及M13mp9集合为“M13运载体”其双链(ds)或复制型(RF)及单链(ss)DNA型都可作分离用的重组体运载体。RFDNA重组体运载体的分离，如图5，6及10所示便于随后把已复制了的希望得到的DNA顺序插到表达运载体上。另一方面，分离这些单链型重组体运载体，对在合适的5′到3′表达位置上含有的所期望得到DNA顺序的重组体运载体的分离，以及如图3、4和8所示对用寡聚核苷酸导致特异位点诱变一类的技术所修饰的任何DNA顺序的创建都是方便的。此外，M13运载体能按纳长度是以克隆一个典型而又完整的真核基因顺序高达四千对碱基(4Kb)的DNA片段或基因。
用于M13运载体里的功能标记，正如Messing等人在Gene(1982)19∶269所述，它涉及与β-半乳糖苷酶有关的酶。确切地说，期望得到的异源DNA顺序被插到至M13运载体里的LacI基因片段上。这样它就破坏了在M13运载体上lncE基因片段与寄主(即大肠杆菌JM101)细胞染色体上部分lncE基因片段间的正常互补作用，所以，所论的宿主不能再代谢在细菌培养基里存在的乳糖。用无任何外来基因顺序插入并承受有lacz基因片段的M13运载体去侵染的大肠杆菌E，coli，如果菌是在含有0.8%(W/V)胰蛋白胨，0.5%(W/V)酵母提取液，0.5%(W/V)氯化钠以及一种β-半乳糖苷酶指示剂配成的1XYT培养基里生长，是能够代谢存在于细菌培养基里的乳糖并产生出特微性的兰色的噬菌斑。用在M13lacZ基因片段上已插入有异源DNA顺序的重组体运载体感染的大肠杆菌E·coli，如果仍是在上述培养基生长时，其噬菌斑的颜色就是透明的或无色的。据此，异源体DNA顺序插到这些克隆运载体的阳性反应可根据重组体运载体感染大肠杆菌寄主细胞后形成的无色噬菌斑进行鉴定。把编码bGH(L)及pGH(P)的DNA顺序插入到M13载体分别如图2和9所示。
在一个较准的实施例中，象在seeburg等人，DNA(1983)2(1)∶37-45所作一样分别在细菌质粒pBGHex-1及PPGHex-1′上的bGH(L)及pGH(P)DNA编码顺序是通过位点专一的限制性内切核酸酶切割方法从这些质粒分离得到的。应该注意的是，用细菌质粒pBGHex-1或pPGHex-1，分别对细菌转化，随后又分别在容许表达bGH(L)和PGH(P)密码顺序条件下进行培养可分别产生带有N-端蛋氨酸(即met-bGH(L)或met-PGH(P)的促生长激素。然后分别地把各个顺序插入到如图2和7所学的经修饰了的M13mp8运载体(M13mp8/XbaI)和M13mp9载体的复制型DNA(RFDNA)上。把期望得到的bGH(L)及pGH(P)DNA顺序插入到M13mp8/XbaI及M13mp9RFDNA是通过位点--专一的限制性内切核酸酶切割进行确定，仍分别如图2和7所示。随后，如Mcssing等人所述那样，见酶学方法(Methods in Enzymology 1983)101∶20用这些重组运载体中的一些运载体去感染大肠杆菌Jmlol Messing等人，在Gene (1982)19∶269上所说那样分离重组体运载体的单链DNA(SSDNA)Messing等人所引这些文献的有关部分在此 作参考文献。
一旦分离到这种重组体运载体的单链DNA(SSDNA)可通过寡聚核苷酸导致专一位点诱发进行修饰而创建bGH(A、V)，bGH(A、L)、bGH(V)及PGH(A)的DNA编码顺序。确切地说，DGH(L)是用加一个丙氨酸密码子进行修饰，例如，在bGH(L)编码顺序的5′-末端上加GCC(如图3所示。可以予见的是编码丙氨酸4个密码子中的任何一个都可以加入为得促生长激素最好产量而最好的编码丙氨酸密码子在这里表达系统中应用的是GCC。加入一个丙氨酸密码子而创建的bGH(A、L)编码顺序可借用Sanger等人1)Proc.Nat′l.Acad.Sci.U.S.A.(1977)74∶5463的方法对整个bGH(A、L)的DNA顺序或其5′-末端的DNA顺序分析而进行确证。
bGH(A、V)编码顺序是通过bGH(A、L)密码顺序的寡聚核苷酸导致特异位点诱发而生成的如图4所示、或是用127位氨基酸[在bGH(A、L)是如此]即亮氨酸、密码子变为缬氨酸密码子，例如转变成GTG。再一次可以肯定的是，任何缬氨酸密码子都可用于这类转变。这类bGH(A、V)密码顺序的创建仍然是通过对终产物bGH(A、V)编码顺序的DNA序列分析进行确认。
能使感染有包括bGH(V)编码序列的表达运载体的细菌中产生met-bGH(V)蛋白的编码顺序也同样可用寡聚核苷酸导致特异位点突变而创建，使bGH(L)编码序列在126位(在bGHL上)氨基酸改变成缬氨酸密码子GTG。
这种通过PGHCP)编码顺序的寡聚核苷酸导致特异位点诱发而创造PGH(A)编码顺序同样地象图8所示过程那样以及象后面将要较详细说明那样进行完成的，而且仍是通过DNA顺序分析进行确认的。
如果现在已分离和组建的这种期望得到的异源DNA顺序象所列举的bGH(A、L)bGH(A、V)及bGH(A)则，这些顺序可以靠熟悉本行技艺者们用已知的方法和参照上述文献扩增各个重组体运载体以复制和产生很多的拷贝数。现在这些异源DNA顺序就可以被插入到任何适合表达运载体上使在原核生物里生产这类期望得到的异源多肽。
N-端丙氨酸多肽的生产象前面讨论的那样在选定的宿主细胞里，一个适合表达的运载体应该含有为生产异源蛋白必需的转录与转译信号和与之一起用以识别那些已插入有异源DNA顺序的表达运载体上的功能标记。用原核生物的表达载体，能够通过转导作用，转化作用，或者转染作用(在此通称“作转染作用”)把重组体DNA顺序引入与其基因互补的生物体中，然后所说的原核生物能够在一定的条件里培养C一般都由启动子和所用宿主控制)从而导致生产出期望得到的异源蛋白质。因此，在本发明里所用的“染色体组”DNA包含有染色体的和附加体的DNA。
为了表达异源基因及在源核生物的宿主细胞里生产异源蛋白质。许多表达运载体已被描述，而且都为熟悉本行技艺者们掌握。
在本发明一个较佳的实施例里，应用了表达运载体pBGHex-1＇参阅Seeburg等人”DNA(1983)2(1)∶37-45。以及pBGHex-1*，还包括已修饰过的pBGHex-1运载体。
表达运载体bGHex-1是一种带有bGH(L)基因的细菌值粒pBR322。这个基因依次包括一色氨酸启动子(ptrp)。-Shine-Delgarro顺序，一种除接在N一端苯丙氨酸编码顺序上的ATG转译启动/蛋氨酸密码子，bGH(L)多肽的第一个氨基酸，bGH(L)编码顺序以及一个转译停止密码子。有关pBGHex-1表达载体的功能标记是抗菌素抗性。确切地说，pBGHex-l带有两种抗菌素抗性基因，一种是抗氨苄青霉素抗性(ampr)而第二种是抗四环素抗性(tetr)，这两种抗性由于表达运载体授与其它敏感性宿主细胞以对抗菌素的特异抗性而稳定地被转化。因此稳定的转化体通入在含有四环素，氨苄青霉素或二者都有的培养基上生长可以被选出来。
在本发明的一些例子里，表达运载体PMON3209以及包括有分别带bGH(A、L)及bGH(A、V)编码顺序以代替bGH(L)编码顺序的pBGHex-1质粒在内的PMON3215都分别如图5和6所示那样过程产生的。象大肠杆菌样的细菌随后被这些表达运载体的一种所稳定地转化，而且转化体通过在含有适当抗菌素的培养基上生长而被选出，在转化的细菌里含有的这些表达运载体随后用限制性酶切割方法查对在正确的5＇至3＇位置上筛选bGH(A，L)及bGH(A，V)编码顺序的存在。
在本发明的一个例子里pBGHex-1*包括位于Ptrp编码顺序5＇端上游经除EcoRI酶切位点方法修饰过的pBGHex-1也被应用以创造带有PGH(A)编码顺序代替bGH(L)编码顺序的表达运载体PMOM3213终产物pBGHex-1运载体只含有单一的EcoR1位点如图9所示在pBGHex-1*里用PGH(A)编码顺序代替bGH(L)编码顺序以创造表达运载体PMON3213图10所示。然后用所说混合物转化大肠杆菌，同时通过在含有抗菌素的培养基上生长选取转化体。在经过转化的细菌里含有的表达质粒随后用限制切割筛选PGH(A)编码顺序的存在。
在大肠杆菌里生产bGH(A、L)，bGH(A、V)或bGH(A)是用表达运载体PMON3209，pMON3215或pMON3213中任一种按照后面较详细说明的方法通过转化大肠杆菌株多ECodiW3110LE392或294而实现的，这些株多的ATCC登记号分别为39936，53010，及53009。转化了的大肠杆菌(E，COLi)W3110随后在容许表达生长激素基因和生产这种期望得到的异源多肽的条件下进行培养。
所产异源肽的纯化将随蛋白质及所选的宿主细胞二者而定。例如，曾观察到在象大肠杆菌那样的细菌里生产的异源蛋白质常常以“折射体”的形式在细胞里沉积，采用“折射体”一词是因为这些物体实际上用相差显微镜能够看见的。一种回收异源蛋白质及回收在生物学上有活性物质有用的方法已在全欧专利申请114，506(1984.8.1出版)里叙述，在此 作参考文献。这个纯化的方法简言之包括浓缩宿主细胞，将它们裂解以产生细胞提取液或匀浆液，继而用差速离心分离这些折射体，其中所有步骤对熟知本行技艺者都是知道的。分离得的折射体溶于一种象盐酸胍一类的强变性剂里，这种溶解了的蛋白质随后在适当的溶剂里(例如尿素)交换，用层析法纯化。最后使之在生物学上活化。即容许它呈假定的活性构型然后进行氧化之。因而使这样的构型就象在全欧专利申请114，506所述那样，通过它合适的半胱氨酸残基间的二硫键而保持它的构型。这种异源蛋白质更详细的纯化过程在两个同时申请的美国专利里叙述，其一是由storrs s.B题名生长激素可溶解化的方法“Method of somatotropin Solobibilitation”，而另一由Bentle,L.A storrs.S.B及Mitchell J.W.题名生长激素自然化的方法Method of Sometotropin Natura-tion”，在此均 作文献。”这两个同时申请的美国专利以及本申请一起全都同意转让给mon Santo公司。从这种异源多肽上去除污染的细菌性蛋白质的进一步纯化，可通过象凝胶过滤处理或离子交换层析的常规层析方法能够达到。经这样处理纯化过的组成物，典型地将含有N-丙氨酸、多肽大约为其全重的90%至99.5%而由细菌产生的蛋白质或在其它原核生物宿主上产生的多肽。大约为0.5%到10%。
已发现用本发明的方法所表达的异源肽，通常至少有大约80%具有-NH2-ala的N端结构……其余的多肽有代表性的是呈蛋氨酰型式，它具有-NH2-met-ala……的N端结构。然而，以不同的培养条件以及/或者诱导基因表达的时间，就有可能提高N端具有丙氨酸的多肽的比值至少到95%或甚至更高一些。
在本发明的一个特别好的实施例中，根据前面叙述那样生产和分离的多种生长激素多肽按照Tsushina及Frieses在J.clin,Endocpinol.Metab.(1973)37∶334-337所说那样在家兔肝受体上分析完成的方法进行测定以及对小白鼠增重的生物分析都表明有类生长激素的生物活性。在后者的分析里，大肠杆菌产生的生长激素的生物活性是通过切除重体小白鼠分别主入不同剂量待测生长激素与注入一些已知的生长激素(例如猪或牛的垂体生长激素)后所得小白鼠的相对增重进行评定。确切地说，给去除垂体的小白鼠(体重95-135克)注射滴定剂量未知的或标准的(0至60微克之间)生长激素，按日为基础进行7天或更长的试验时间。使用多重回归分析，接受已知或未知激素组的动物的体重增量与剂量的对数变换值呈回归，测试斜率以确定非平行现象及截距普遍性。生物活性是以斜率的比值乘标准的活性。
正如前面讨论过一样，本发明亦期望bGH变异型的产品其上有-N-端丙氨酸，但此沿着多肽链可进行删减、加进倒转和/或取代。这种具有期望得到的泌乳和/或生长增效功能的修饰作用能够通过在牛里进行的常规试验鉴定。
下列例子阐述了较佳的实施例本发明，但无论如何不想限制本发明的界限。虽然本发明已在与发明有关的较好的实施例中作了阐述熟知本行技术者从阅读这个申请里，提出各种各样的修正那将是显然的。
微生物及质粒下列微生物可从美国标准菌种库(ATCC)12301 parklawn Drive,Rockville,Maryland,20852,U.S.A.获得，它们也已在武汉的中国典型培养物保藏中心进行了保藏，保藏号为CCTCCM90031-M90036。
ATCC 39936-CCTCC: M90033-E.Coli W3110ATCC 53010-CCTCC: M90032-E.Coli LE392ATCC 53009-CCTCC: M90031-E.Coli Strain 294ATCC 53024-CCTCC: M90034-E.Coli W3110(pMON3209)ATCC 53022-CCTCC: M90036-E.Coli W3110(pMON3215)ATCC 53023-CCTCC: M90035-E.Coli W3110(pMON3213)这些存放菌种可通过本申请的受让人(Monsanto公司)取得美国专利(局)同意而为共众使用。这些存放菌种将会由于这个申请具有申请日期开始获利的任何这样的美国(U.S)专利的有效期内而可取得使用。然而，必须明了这些存放菌种的可用性并不构成允许去实施本主题的发明以贬低政府同意颁发的专利权。况且本发明不限于存放微生物的范畴，因为这个存放菌种的实施例只是企图作为本发明的具体阐述而已。
例一所有的寡聚核苷酸的合成都是依据制造厂应用生物系统公司(Applied Biosystem,Inc.Foster City,Califor-nia)提出的步骤用一个应用生物系统DNA合成仪在Monsanto公司生物科学部(Department of BiologiCal Science,Monsanto)进行的、限制性内切酶和DNA修饰酶是由新英伦生物实验室(New England Biolabs Beverly,MassaChu-Setts)新英伦核子公司(New England Nuclear,Boston,MassachuSetts)及Bettesda研究实验室(Bethesda Research Laboratories,(BRL)(Gaithersburg,Maryland)供应，限制性核酶内切酶Xbal接头(XbaI linker)是从合作研究公司(Collabora tive Research,Inc.(Lexington,Massachus etts)获得、T4DNA连接酶是由BRL供应。T4DNA激酶是从新英伦生物实验室购买。32P-林记核苷酸是由Amercham(Arlington Heights, Illinois)供应。E.Coli DNA多聚酶I.Klenow片段，是由新英伦核子公司供应，E.Coli Jmioi是从Dr.JoMessing,University of Minnesota(st.paul,Minnesots)处获得。
限制性酶的酶解过程，T4DNA连接酶的连接及大肠杆菌E·Coli DNA多聚酶I,KlenoW片段酶的反应都可以按制造商提出的步骤进行。对下列限制性酶的较佳缓冲液如下用于XbaI:100毫摩尔Nacl,50毫摩尔Tris(三羟甲基氨基甲烷)PH.7.5,10毫摩尔mgSo4;用于EcoRI,Hind Ⅲ及SmaI∶50毫摩尔NaCl，10毫摩尔Tris pH7.5,10毫摩尔mgSo4DNA连接酶反应是在含在25毫摩尔Tris,pH8.0 10毫克Mgcl2,10毫摩尔dithiothritol (DTT)[二巯基赤癣糖醇]2毫摩尔亚精胺以及0.2毫摩尔ATp的缓冲液内进行，大肠杆菌E·Coli DNA多聚酶I,klenow片段酶，是在含有20毫摩尔Tris pH7.2,10毫摩尔Mgcl2,10毫摩尔(DTT)，1毫摩尔ATP，及1毫摩尔下列各物之一dATA,dGTp,dCTP,dTTp的缓冲液中使用。如果标记新合成的DNA链，则可加入Alpha-32P-dATp(400居里/毫摩尔)至KlenoW反应液里。
标记寡聚核苷酸是用伽马(γ)-32P-ATp(比活性大于5000居里/毫摩尔)及T4DNA激酶于100毫摩尔Tris,pH8.0 10毫摩尔MgCl2,5毫摩尔DTT。
供bGH(L)及pGH(P)用的带有DNA密码顺序的质粒(分别是pBGHex-1及pBGHex-1)是从遗传工程有限责任公司Genentech Inc.获得，So.San·Francisco,California。这些质粒也能按在全欧专利申请75，444(1983、3、30出版)；Seeburg·等人，DNA(1983)2(1)∶37-45；Goed-del等人，Nature(1979)281∶544-548；DeBoer等人，在启动子Promoters结构与功能(Structure and Function)(1982)；M·J·Chamberlin and R·Rodriguer ed Charptor 293；Miozzari and yanofsky, J·Bacteriol.(1978)133∶1457-1466；以及Rosenberg and Court,Annual RevieW of Genetics B:319-353所述制备。如在全欧专利的申请75，444(DeBer等人)所示，在bGH(L)DNA前面21个转译密码是ATG，TTC CCA GCT ATG TCT CTA TCT GGT CTA TTC GCT AAC GCT GTT CTT CGT GCT CAG CAT CTT或是它们的功能等值物编码氨基酸相同的不同密码子)(那些密码子的功能等值物当然可以交换使用的。)这些出版刊物的有关部份在此皆并作文献。
M13mp8及M13mp9是从明尼苏达大学(圣保罗，密苏里)Mes-Sing Jo博士处获得。
所有细菌培养基成份及抗菌素是Sigma(St.louis Mo)或是从DifCo实验室(Detroit,MiChigan)获得的。
例二下面的例子说明三种DNA密码顺序的组建，这些顺序在细菌里表达时，就提供直接在细菌里生产具-N端丙氨酸的多肽。确切地说，DNA密码顺序就是建成这样以致在转译启始/蛋氨酸密码子(ATG)之后紧接有-丙氨酸密码子(即GCC)。这三种DNA编码顺序，它们包括bGH(A.L.)，bGH(A.V)及pGH(A)，是从以前分离的生长激素DNA顺序通过寡聚核苷酸-导致特异位点-诱变而建成的。此例也说明在细菌中表达使产生metbGH(V)的编码bGH(V)密码顺序的DNA的构建。
a.bGH(A.L)DNA密码顺序的组建生长激素bGH(L)的DNA密码顺序是由pGHex-1质粒上切出-XbaI片段并克降至一个修饰了的M13mp8运载体(M13mp8/XbaI)的XbaI位点上。在原来SmaI位点处含有一个XbaI接头(或称连接子)·的M13mp8/XbaI运载体其组建过程在图1示出。如图2所示，XbaI能在bGH(L)密码顺序的任一端酶切，因此切出完整的bGH(L)密码顺序。在存在有T4DNA连接酶时，XbaI限制酶切过的pBGHex-1质粒与用XbaI限制性酶裂开后并用小牛肠碱性磷酸酶去末端磷处理呈线形化复制型的(RF)M13mp8/XbaI DNA相混合。随后这种混合物在14℃里温育过液，用小牛肠碱性磷酸处理防止了M13mp8/XbaI运载体重新环化。将bGH(L)DNA密码顺序插到M13mp8/XbaI运载体里制造成重组运载体M13mp8/BGHex-1，开始时是以在含有10微升100毫摩尔IPTG(异丙基-β-D-硫代半乳糖吡喃糖苷)和50微升2%(W/V)X-GAL(5-溴-4氯-3吲哚氧基-β-D-半乳糖吡喃糖苷)加入到3ml上层琼脂中并用前面所述的重组运载体去转柒分子克隆化Molecular CloningAlaboratory Manual,Maniatis,Fritsch 和 Sambrook, eds (1982)pq·64，所说的运用软琼脂复盖步骤(双层法)，在IXyT培养基上生长的大肠杆菌E·ColiJM101 菌层上形成无色的噬菌斑进行确定，bGH(L)密码顺序插入可用酶解分离出的复制型(RF)DNA而确证，把重组运载体用XbaI酶切，产生含有插入序列590碱基对片段。参阅分子克隆化Molecular CloningALabora-tory Manual,Maniatis,Fritsch and Sambrook,eds·(1982)第三章。这590对碱基片段是在百分之一(W/V)琼脂糖里按在Molecular CloningALaboratory Manual,Maniatis,Fritsch Sambrook,eds(1982)所述用琼脂糖凝胶电泳鉴定出的。所有后面的限制性酶酶切片段都用这种参比的方法鉴定。插入的bGH(L)密码顺序的方位是通过用SamI和HindⅢ酶解RF重组运载体进行确定的。当这种密码顺序是在正确的5＇至3′方位，用这些限制性酶酶解时应该产生-207对碱基的片段。单链噬菌体DNA的分离是按Messing et al,在Gene(1982)19:269里的方法进行的。M13mp8/BGHex-1运载体以后在寡聚核苷酸导致特异位点诱变中被用作模板，基本上按Eoller和Smith，在NuC.Acids Res.(1982)10:64876500,Eoller and Smith在 Methods in EnZymol (1983)100:468-500所述进行，Norris等人，NuC.ACids ResearCh(1983)11:5103-5112,其中有关部分在此并作文献。
图3绘出从bGH(L)密码顺序构建成一个为bGH(A.L)编码的DNA顺序的诱变步骤。简言之含有希望突变顺序寡聚核苷酸引物(见后表1)被用作合成单链DNA M13mp8/BGHex-1运载体的闭环DNA拷贝引物的模板。因此而产生的闭环双链DNA分子按Zoller和Smith Methods in Enzymol(1983)100:468-500里所述那样方法用碱性庶糖梯度离心从不完整环和单链DNA环中分离开。这种闭环的双链DNA分子随后用来转化大肠杆菌(E·Coll)JM101方法像 MeSSing等人，Gene (1982) 19:269-276所述那样，而且挑取出无色的噬菌斑，把它们放在从pall Vltrafine Filtration Corp·(Glen Cove,NeW york)获得的pall滤器上与用以产生特异位点诱变并用32P标记的寡核苷酸引物作分子杂交进行筛选。上述噬菌体的挑取是按pall滤器制造厂所述方法进行。分子杂交筛选是用生物达因尼龙沪器实现的，该方法按pall超细沪器公司在其“DNA转移到pall生物达因尼龙沪器上的指导方案”中所述。用升高温度洗涤沪器，直到用M13mp8/bGHex-1制备的对照沪器洗尽放射性为止。一个标准的滤器清洗方案包括用6×SSC(0.9MNaCl和0.09M柠檬酸钠)在室温清洗10分钟，接着在50℃用6×SSC洗5分钟，最后升高5℃洗涤之。与放射性标记寡聚核苷酸引物分子杂交的噬菌斑，温度比对照噬菌体高时，被假设为带有新构建成的bGH(A.L)密码顺序，而且各之为潜在阳性。另一方面，从转化的E.Coli JM101上挑取各个无色噬菌斑，并放在5ml2XyT培养基(1.6%(W/v)胰蛋白胨Tryptone,1.0%(W/V)酵母抽提液，0.5%(W/V)Nacl)置37℃下好气培养过液。依据Messing等人，在Gene(1982)19:269方法制备噬菌体DNA随后在硝酸纤维上与放射性标记引物一起分子杂交，并像上述一样升温洗涤之。显示出杂交温度比M13mp8/bGHex-1对照噬菌斑高的噬菌体DNA同样地被各之为潜在阳性。从两种筛选过程中取得具潜在阳性的噬菌斑按上述一样培养，并用来制备单链(SS)噬菌体DNA，随后又按Sanger等人，在proC·Nat＇1,ACad-Sai U.S.A.(1977)74∶5463-的方法进行序列分析以确证它们带有bGH(A.l)密码顺序。因为丙氨酸密码子可创造成一个附加的HalⅢ限制性位点，所以M13mp8/BGH(aLa)复制型也可以用HaeⅢ限制性内切配介分析筛选以证实加入的一个丙氨酸密码子跟在启始讯号/蛋氨酸密码子ATG之后。在这种bGH(L)DNA密码顺序上加进丙氨酸密码子的频率大约是2%。
b.bGH(A.V)DNA密码顺序的组建bGH(A.V)DNA密码顺序的组建，筛选及顺序确认除了模板如图4所示是M13mp8/BGHex-1(ala)以及寡聚核苷酸引物是如后表1所示外都是使用前面同样的步骤完成的。亮氨酸密码子转化为缬氨酸密码子的频率大约是10%。
c.bGH(V)DNA密码顺序的组建bGH(V)DNA密码顺序的组建，筛选，和顺序硝定是用与上述相同的方法实现的。明确的说，模板，M13mp8/BGHex-1和寡核苷酸引物也与创建DGH(AV)所应用的相同，亮氨酸密码子到缬氨酸密码子的转变频率再次为约10%。
d.pGH(A1)DNA密码顺序的组建寡聚核苷酸——特异位点——诱变，像Seeburg等人，在DNA(1983)2(1)∶37-45里所说的那样同样可以用来把丙氨酸密码子加到pGH(P)DNA密码顺序里。这一锈变方法如图8所示进行如后。
在pPGHex-1质粒上所带的590对碱基pGH(p)DNA密码顺序在pGH(p)密码顺序5＇端和3＇端分别用ECoRI和HindⅢ限制性酶切割质粒从质粒上把它移去，如图7所示。这个限制性酶切过的PGex-1质粒随后与MBmp9复制型DNA混合，该复制型DNA在混合之前同样用E.CoPl及HindⅢ酶切开，并另外再用小牛肠碱性磷酸酶予处理以予防该M13mp9的限制性片段重新连接。T4DNA连接酶随后加入上述混合物里。由于畸型的端部位于用两种不同的限制性酶酶切生成RF噬菌体DNA和pGH(P)DNA密码顺序卫，所以pGH(P)DNA将能选择地被插到RF噬菌体DNA里，并且将会插至正确的5＇至3＇方位上，如图7所示。如前面所述M13mp8/BGHex-1一样，随后大肠杆菌E.eoliM101用带有pGH(P)DNA密码序的重组体M13Mp9/pGHex-1运载体转化。然后把这种转化了的大肠杆菌E.CollJM101放在有指示剂的1XTY培养基里生长，而且也像前面所说那样选择无色噬菌斑。这种pGH(p)DNA密码顺序的插入是用下法确认的。挑取无色的噬菌斑，按前面所说方法分离M13mp9/pGHex-1的复制型DNA然后用ECoRl及HindⅢ切开，并在琼脂糖凝胶上电脉产生含有所插入pGH(p)DNA的一个590对碱基的片段。然后把M13mp9/pGHex-1噬菌体在大肠杆菌E.ColiJM101里增殖并按前所说的方法分离单链噬菌体DNA。
随后将M13mp9/pGHex-1DNA用作步骤核苷酸——特异位点——诱发的模板，如图8所示，按前面所说的步骤构造成一个应用专性引物的bGH(AL)密码顺序(见后表1)。在这种pGH(p)密码顺序上加进一个在此是GCC的丙氨酸密码子的频率几乎是12%。终产物pGH(A)密码顺序再用DNA顺序分析法进行确认。
例三这个例子说明供直接在细菌里生产含有N-端丙氨酸的多肽的三个重组的表达运载体的组建及表达。这样生产出的三种多肽是bGH(A.L)，bGH(A.V)及PGH(A)型的生长激素。这个例子也说明bGH(V)表达运载体和bGH(L)表达运载体的组建。这样产生的多肽分别是mef-bGH(V)和mef-bGH(L)。
a.bGH(A.L)、bGH(A.V)和bGH(L)的表达。
分别用重组的运载体M13mp8/BGHex-1(ala),M13mp8/BGHex-1(ala,Val)及M13mp8/BGHex-1(Val)上带有的bGH(A.l)及bGH(A.V)DNA密码顺序去代替在pBGHex-1表达质粒上带有的bGH(L)DNA密码顺序(参阅图5和图6)。这是用XbaI酶解相应的M13RFDNA上片段而完成的。表达质粒pBGHex-1亦用Xbal酶解，并接着用小牛肠碱性磷酸酶处理以防止这些限制性酶切片段重新连接。每种已酶解了的RFDNA的片段随后分别与已酶解了和处理过的pBGHex-1DNA混合，并如前面所说那样在14℃下连接过夜。这样形成的重组的表达运载体把带有bGH(A.L)bGH(A.V)和bGH(V)DNA密码顺序分别标记为pMoN3209、pMoN3215和pMoN3214。随后大肠杆菌E.ColiW3110用含有pMoN3209或含有pMoN3215或含有pMoN3214或含有pBGHex-1的连接混合物转化，并在Lauria肉汤上生长出Lauua肉汤含有.1%(w/v)胰蛋白胨，0.5%(w/v)酵母抽提液和0.5%Nacl(w/v)以及含有12.5微克/毫升四环素和200微克/毫升氨苄青霉素。含pMoN3209的大肠杆菌E.Coli W3110其ATCC登记号为53024。含pMoN3215的E.Coli W3110其ATCC登记号为53022。转化作用简要地进行如下。把近50MlE.Coli W3110在LB培养液里生长到光密度(oD)600=0.60。随后将其细胞收集成小丸并悬浮在含有25毫摩尔Tris,pH7.6和10毫摩尔NaCl的10毫升缓冲液A里。然后，又把这些细胞收集成小丸并再悬浮在1毫升缓冲液A内于其中加入14毫升缓冲溶液B使成悬浮液并在水中保持30分钟，缓冲液B含有25毫摩尔Tris,pH7.6,10毫摩尔NaCl，50毫摩尔Cacl2。然后又把这些细胞再收集成小丸并再悬浮在3毫升缓冲溶液B内。取再悬浮的细胞的一份等分试样0.2毫升随后与0.1毫升缓冲液B及0.1-0.5μg理想的重组的表达运载体(PMON3209或pMoN3215或pMoN3214或BGHex-1)混合，并在水上孵育60分钟。这些孵育的混合液随后在37℃上加热1分钟在此之后加入3毫升LB培养基，然后把终产混合物在37℃温育60分钟。随后收集这些细胞成小丸并再将其悬浮在300毫升LB培养液内，并使它在如前面所述的含抗菌素的LB平板上生长。就这样选出了抗性菌落以及按Molecular Cloning Alabor atory manual, maniatiS,Fritsch and Sambrook,eds(1982)所说的步骤分离出pMoN3209、pMoN3215,pMGHex-1和pMoN3214表达运载体DNA的片段。这些pMoN3209、pMoN3215,pBGHex-1和pMoN3214的DNA片段可用它存在有590对碱基的XbaI片段与200碱基对HindⅢ/Smal DNA片段进行筛选因为它说明在正确的方位上存在有bGH(A.L)bGH(V)和bGH(A.V)DNA编码顺序。pMoN3209和pMoN3215表达质粒可以用HaeⅢ酶酶解分析进一步筛选，并从而确证由于加进GCC(丙氨酸)密码子导致产生一个HaeⅢ新位点的存在。最后，从pMoN3209、pMoN3214和pMoN3215三运载体来的590碱基对的XbaI片段，可按前面所述进行部分顺序测定以确定在这些表达运载体上存在有bGH(A.L)bGH(V)与bGH(A.V)DNA编码顺序。
带有pMoN3209 pMoN3214.BGHex-1＇或pMoN3215的E.Coli W3110的单菌落分别接种在含有12.5Mg/ml四环素的5毫升培养基LB里，而且在37℃下通气培养过夜。然后取0.5毫升过夜培养物分别接种装在250ml锥形瓶里的25毫升的M9培养液。M9培养液组分为(按升计)100毫升10倍浓缩盐液(按千毫升总体积计含有70克(g)Na2Hpo4,30gKH2po4,5gNaCl 10gNH4Cl,1.2毫升1MMgSo4，0.25毫升0.1%B1,12.5毫升20%(W/V)葡萄糖，0.025毫升1MCaCl2，并再补充0.5%(W/V)酪蛋白氨基酸液和6.25μg/ml四环素。随后把这些接种物各自在37℃通气培养至达到OD600(光密度在600毫微米)=1.0。每份0.2ml等份试液再从每个上述的锥形瓶里取出并逐个裂解后放在十二烷基硫酸钠(SDS)-聚丙烯酰胺凝胶电脉(PAGE)缓冲液里，并按Laemmli,在Nature(1970)227∶680-685所说方法用SDS-pAGE分析。从这两种基团结构得出的22,000道尔顿的蛋白质在大肠杆菌E.ColiW3110里处于高水平。而且，与在Western浸渍分析中，两种22,000道尔顿蛋白质由抗牛垂体生长激素所产生，单克隆抗体，F11-A1-B6结合(参图Kriviand RoWold, Hybridoma(1984),因此，证实这种多肽是与垂体生长激素有关。带有亲本的pBR322质粒的E.ColiW3110细胞不产生与抗生长激素抗体结合22，000道尔顿蛋白质。
带有表达质粒pMoN320 pMoN3214,pBGHex-1及pMoN3215的细菌贮存方法如下，用这些质粒(pMoN3209或pMoN3215)或pMoN3214,或pBGHex-1)转化了的E.Coli W3110的单菌落，放入5m′加有12.5μg/ml四环素的LB在37℃下通气生长过夜。从每一过夜培养物里取出1m(等分成液分别地加到各个含有25mlLB和12.5μg/ml四环素的三角瓶里生长至oD600=1.0，然后把每个瓶里的细胞用6000Xg在4℃下离心5分钟收集。离心集成小丸逐个地再悬浮在12毫升加有7.5%(V/V)DMSO的LB里并且用1毫升等分试液立即在干水上冻结。这些细胞随后就贮存在一个液氮瓶内。另外，大约10毫克纯化了的质粒DNA可贮存在-80℃。
b.pGH(A)DNA顺序的表达如图10所示，重组的运载体M13mp9/pGHex-1(a/a)上的pGH(A)密码顺序可代替在修饰过的pBGHex-1表达运载体上所带的bGH(L)DNA密码顺序。一个修饰过的表达运载体pBGHex-1包括一个pBGHex-1表达载体，其上位于色氨酸启动子(ptrp)上游的ECoRI限制性位点已经被除去(见图9)。已修饰的pBGHex-1*表达运载体是先用pBGHex-1*的ECoRI部分酶介之后用Sl核酸酶处理除去其粘性端面创建成。这种经限制性酶切的pBGHex-1运载体随后用J4DNA连接酶环化并用它转化E、ColiJM101，以上皆按前面所说方法进行。第二步就是从单菌落的质粒DNA中筛选带有pGH(A)密码顺序的590对碱基的EooR1/HindⅢ片段以及带有色氨酸启动区(ptrp)顺序的1050对碱基的ECoR1/pat1片段(见图9)。这种ECoR1酶切位点的除去，使得在正确方位上把pGH(A)密码顺序插到pBGHex-1*表达运载体上去的专性位点插入过程变得简便，如图10所示，由此形成的这种重组的表达运载体在下文皆称作PMoN3213。含有pMoN3213的混合物随后用来转化E.Coli W3110，而且如上所述一样对生长出的转化体进行筛选。含有pMoN3213的E、Coli W3110有-ATCC的登记号53023。在pBGHex-1*表达运载体里用pBGH(A)密码顺序取代pBGH(L)密码顺序的证实是用分离pMoN3213DNA，并随后用E(oR)及HindⅢ酶切上述表达运载体产生出590对碱基片段，以及用HaeⅢ切割表明pGH(A)DNA密码顺序里含丙氨酸密码子导致额外的一种HaeⅢ限制性酶片段的存在等方法进行。在pMoN3212表达运载体里有pGH(A)DNA顺序存在的最后确认是把EcoRI/HinclⅢ的590对碱基的片段按前面所说方法作部分序列测定。
pGH(A)DNA密码顺序的表达以及pGH(A)在E.Coli W3110内的生产是按前所说生产bGH(A.L)及bGH(A.V)所提出的作法实现的。证明22，000道尔顿蛋白质的高水平同样地是像前面所说那样用SDS/pAGE来完成的。
带有pMoN3212表达运载体的E.Coli W3110可按前面所说的那样保存的，而且供大规模(10-100升发酵)生产pGH(A)用的亦像前面所说那样进行。这种100升批量发酵的pGH(A)蛋白质含量按ROSner等人，J.lmmunol.Methods(1982)52:175-181用放射免疫法测定产量接近1克/升肉汁培养基。
例四完成这个实例是为了测定在细菌里生产的bGH(A、L)、bGH(A、V)met-bGH(V)、met-bGH(L)及pGH(A)等导源蛋白质的N端氨基酸顺序而作为本发明方法的实例。
这种在大肠杆菌所产生的促生长激素多肽是从含有bGH(A.L),bGH(A、V)met-bGH(v)met-bGH(L)或pGH(A)的粗而可溶的折射体中用按Krivi& ROwold,Hybridoma(1984)3∶151-161所说的免疫吸附层析法被纯化的，用免疫吸附层析法纯化的所有三种促生长素品种似乎都比按Laemmli,Nature(1970)227∶680-685的方法用SDS-pAGE分析在7.5-15%(W/V)梯度凝胶里处理所得1μg纯化蛋白质所得95%纯度要高。纯化后的bGH品种的蛋白溶度按常规的高压液相层析法分析。
由免疫吸附层析纯化供N一端序列分析使用的蛋白质要对水充份透析，然后亲水化。在作N一端序列分析之前，把纯化蛋白质再悬浮在含有50毫摩尔重碳酸胺加0.1%(W/V)SDS的重碳酸胺缓冲液里，而且对相同的缓冲液透析以除去残留的tris(羟甲基)氨基甲醇(tris)及甘氨酸。然后用“应用生物系统”的蛋白质顺序分析仪470A型(Applied、Biosystems,InC.Foster(ity CA)按HunKapiller等人，(1983)，Methods in Enzymol、91∶399-413 and Hunkapiller等人(1983)，Method-SinEngmol、91∶486-493，所说的方法把所有的都进行N-端的序列分析。
后面的表2列出了几种bGH(A.L),bGH(A.V),met-bGH(V),met-bGH(L)及pGH(A)多肽制品序列分析的结果。是N-端蛋氨酸的蛋白质含量是作为样品内生长激素总量的百分比而列于表内的。两种方法都在蛋氨酸定量中使用。使用直接法，NH2-met-ala-phe的量……在主要为NH2-ala-phe…组群里根据迟滞讯号的差导进行计算。由于这一方法取决于对“正常”顺序延迟滞的估计。这种延迟各环不同，所以只能是对NH2-ala-phe顺序的粗略估计。直接法包括ECdan的降解反应，它能在用高压液相层析从化学干扰里(Hplc)分开pTH-met，之后对pTH-met和pTH-ala的讯号强度进行比较。“pTH”指的是苯基一硫化乙内酰尿。确切地说，这个Edman降解顺序反应是由与N端氨基酸作用的试剂组成，它促使氨基酸断裂并随之释放出那个氨基酸的pTH-衍生物，这后一过程只要游离氨基酸污染是低就会给met-ala-phe的百分比作出好的估计。根据后表2所列的N-端序列分析的结果表明，当N-端蛋氨酸之后是苯丙氨酸就见不到蛋氨酸加工的证据。然而有80%或更多的从MBs(A.L)及MBs(A.V)基因结构所产生的分子在其N-端具有丙氨酸而不是蛋氨酸。从不同发酵生产里得到的细胞其N-端蛋氨酸的加工过程是各不相同的，但至少有80%生长激素分子经常发生的。此外，在转化微生物里生产生长激素的生产水平接近细菌蛋白质总量10-15%。
表2met-bGH(L),bGH(A、L),bGH(A.V)及pGH(A)蛋白质N-端顺序分析%N-端蛋氨酸样品 间接法 直接法met-bGH(L) 92.0 100.0bGH(A、L) 20.3218.42210.8 <6.0bGH(A、V) 7.52<3.0216.7 9.0pGH(A) 16.7 17.0met-bGH(V) 没有做 100.01、具N-端蛋氨酸蛋白质的含量是按样品中生长激素总量的%列出2、两个数字代表从2个单独的发酵中纯化而得蛋白质的数据。
补充实施例 CPCH946356D实施例6制备一种pH约为6的制剂，该制剂含有30%用实施例3b方法生产的pGH(A)、3%组氨酸盐酸盐、33.5%甘油和33.5%水。用200μ1的14天Alzet 渗透分配器将该制剂施用于总数为8头的一组杂交繁育的阉猪，用量达到每天3.6mg pGH(A)。将装满制剂的分配器皮下植入耳后，14天后再植入第二个分配器。给类似的一组猪每天注射3.6mg配制在pH9.5的25mM碳酸氢钠中的pGH(A)。记录每头猪的平均日增重(ADG)和平均日饲料消耗量(FC)，并计算每头猪的饲料效率(FE)。饲料效率以FC/ADG表示，所以饲料效率越低越好。28天处理期间处理猪的平均结果，与未施用激素的阴性对照组猪的结果一起示于表4。
表4阴性对照每日注射pGH(A)(无pGH) pGH(A) 甘油制剂处理第1－14天ADG(kg／天).64.67.60FC(kg/天)2.671.921.85FE4.223.023.27第15－28天ADG(kg/天).74.66.58FC(kg/天)2.661.761.68FE3.642.713.49第1－28天ADG(kg/天).69.66.60FC(kg/天)2.661.841.75FE3.892.843.17
在第15天和第29天观察到饲料效率得到改善，胰岛素样生长因子1水平得到提高。这证实了每日注射pGH(A)和给予缓释pGH(A)制剂都能显著改善饲料效率。
实施例7将杂交繁育的阉猪分成8组，其中7组用pGH(A)处理。所用的制剂在水中含有下列数量的pGH(A)和1M磷酸二氢钠3.0% pGH(A)和3.5%磷酸盐溶液；4.5% pGH(A)和5.3%磷酸盐溶液；6.0% pGH(A)和7.0%磷酸盐溶液；15% pGH(A)和17.5%磷酸盐溶液；30% pGH(A)和35%磷酸盐溶液。每种制剂的其余部分是甘油。分配器释放出足量的制剂达到指定的日剂量。设一组不作pGH处理的阴性对照猪。另一组类似的猪每日注射2mg溶解于pH9.5的碳酸氢钠缓冲液中的pGH(A)。对于甘油/磷酸盐制剂处理组，处理1以推进型(push-type)植入物形式施用，处理2-6用持续时间为4周的2ml Alzet渗透分配器施用。处理5和6在第5周开始时用2周的Alzet渗透分配器再次植入，同时计算pGH(A)制剂的量以维持指定的日剂量。pGH(A)负荷量和所达到的日剂量如下所示处理编号 处理内容1 1.3-1.4mg/天；推进型分配器；30%负荷2 2mg/天；Alzet分配器；3.0%负荷3 3mg/天；Alzet分配器；4.5%负荷4 4mg/天；Alzet分配器；6.0%负荷5 10mg/天；Alzet分配器；15.0%负荷6 20mg/天；Alzet分配器；30.0%负荷处理1持续6周，处理2-4持续5周，处理5和6持续6周。这些处理的ADG、FC和FE示于表5，并与每日注射pGH(A)的处理及阴性对照作了比较。
表5处理编号阴性对照每日注射123456第1周ADG 1.10 1.27 1.15 1.17 1.22 1.15 .51 .74FC 3.11 2.83 2.88 2.84 2.91 2.64 1.45 1.76FE 3.07 2.28 2.60 2.44 2.56 2.35 2.77 2.44第2周ADG .81 1.07 .80 .98 1.13 .88 .76 .84FC 3.49 3.06 3.25 3.12 3.04 2.61 1.69 2.13FE 4.01 2.95 4.10 3.48 2.91 3.02 2.30 2.56第3周ADG 1.02 .97 .97 1.01 .93 .89 1.01 .85FC 2.99 2.63 3.05 3.49 3.00 2.59 1.88 2.19FE 3.00 2.78 3.21 3.54 3.48 3.01 1.89 2.95第4周ADG .78 .82 .75 .75 .84 1.02 .80 .81FC 3.74 3.07 3.40 3.93 3.43 3.08 2.17 2.57FE 4.82 4.64 5.48 6.32 4.25 3.22 2.69 2.96第5周ADG .85 .94 .81 .72 .97 .90 .67 .64FC 3.49 2.94 3.33 3.44 3.48 3.10 1.74 1.63FE 4.06 3.23 .613 12.85 3.59 3.59 2.64 2.43第6周ADG .55 .91 .83 -- -- -- .61 .48FC 3.54 3.21 3.61 -- -- -- 1.98 1.70FE 7.84 3.73 4.81 -- -- -- 3.94 2.36第1－4周ADG .93 1.03 .92 .98 1.03 .98 .81 .82FC 3.33 2.90 3.14 3.35 3.09 2.73 1.85 2.19FE 3.62 2.84 3.47 3.46 3.00 2.78 2.33 2.68第1－6周ADG .85 1.00 .89 -- -- -- .75 .77FC 3.39 2.96 3.76 -- -- -- 1.85 1.96FE 4.04 2.97 3.71 -- -- -- 2.49 2.59
处理1、5和6表明，在整整6周的处理时间内，活性pGH(A)都能有效释放。处理3和4表明在5周的处理过程中有效释放活性pGH(A)。处理2接近可观察到效果的阈值。
实施例8以9头肥育猪为一组分为6组进行研究，比较用推进型渗透分配器以不同的用量施用来自不同制剂的pGH(A)的效果，以及用碳酸氢盐缓冲液每日注射pGH(A)的效果。分配器以一定的用量施用含30%pGH(A)的制剂，使日剂量为2mg/天。一种制剂是30%pGH(A)、35%甘油和35% 1M磷酸二氢钠水溶液。另一种制剂含15% pGH(A)。有两种制剂的配制与含30%pGH(A)的制剂相似，但含有0.07%和0.70%吐温80润湿剂。第5种制剂在磷酸盐/甘油赋形剂中含有40%pGH(A)、0.6%吐温80。如前面所指出的那样植入一个或2个分配器，以达到指定的日剂量。这些处理是处理编号处理内容12mg／天磷酸盐甘油；1个分配器(30％负荷)23mg／天磷酸盐甘油；1个分配器(30％负荷)和1个分配器(15％负荷)34mg／天磷酸盐甘油；2个分配器(均为30％)4同1，但含0.07%吐温805同1，但含0.07%吐温8062.8mg／天磷酸盐甘油＋0.6%吐温80；1个分配器(40％负荷)该研究持续6周时间(处理2除外，该处理在3周后终止)。ADG、FC和FE的结果示于下表6，并与不施用pGH(A)的阴性对照组和每日注射2mg溶解于pH9.5碳酸氢盐缓冲液中的pGH(A)的实验组进行比较。
表6处理编号阴性对照每日注射123456第1周ADG .76 1.18 1.07 .99 1.03 1.03 1.14 1.14FC 3.14 3.04 2.42 2.38 2.25 2.78 2.62 2.85FE 4.18 2.63 2.30 2.43 2.22 2.71 2.36 2.54第2周ADG .89 .93 .77 .89 .76 .78 .80 .76FC 3.32 2.75 2.38 2.44 2.24 2.59 2.60 2.63FE 3.87 3.03 3.18 2.98 3.21 4.16 3.36 3.63第3周ADG .84 .94 .92 .78 .73 .89 .93 .84FC 3.59 3.10 2.98 2.81 2.45 3.08 3.10 2.90FE 4.59 3.34 3.22 3.94 4.52 3.76 3.50 3.53第4周ADG .74 .85 .65 -- .84 .71 .63 .84FC 3.50 3.21 3.15 -- 2.84 3.16 3.15 2.96FE 5.05 3.84 5.17 -- 3.91 4.56 5.02 3.64第5周ADG .84 .94 .81 -- 1.05 .68 1.01 .90FC 3.61 3.41 3.30 -- 3.69 3.44 3.52 3.51FE 4.44 3.69 4.16 -- 3.55 4.44 3.57 4.05第6周ADG .84 .95 .85 -- 1.04 1.01 .87 .95FC 3.70 3.27 3.47 -- 4.05 3.70 3.60 3.75FE 4.57 3.76 4.05 -- 3.89 3.82 4.23 4.13第1－6周ADG .82 .95 .85 -- .92 .84 .89 .90FC 3.49 3.13 2.96 -- 2.99 3.08 3.11 3.11FE 4.25 3.30 3.50 -- 3.24 3.68 3.51 3.47实施例9基本上如实施例3b所述，通过重组DNA的表达来制备pGH(A)(在实施例9-19中称为“APS”)。通过破碎细胞而后离心，分离出APS折射体。然后在脲和三羟甲基氨基甲烷(TRIS)缓冲剂的溶液中使折射体溶解、折叠和氧化。使APS缓冲液通过装有DE-52离子交换树脂的色谱柱。用碳酸氢钠缓冲液对APS缓冲液进行透析，所得的碳酸氢盐缓冲液进行无菌过滤并冰冻干燥。该物质在下面的实施例中称为“APS”散装粉末”。将5.4g该APS溶解于250ml去离子水中，并在4℃下用16倍体积的水透析24小时，其间更换4次水。用350微摩尔的100硫酸铜溶液使透析后的APS在pH6-8下沉淀。用离心法分离出由于加入硫酸铜而形成的沉淀物，并冰冻干燥。所得产物的铜含量为0.43%。
实施例10由如实施例9生产的APS散装粉末和铜结合的APS制备压实制品。制备铜结合APS时所用的铜与APS的摩尔比在1.2-1.4∶1范围内。将数量足以达到60mg或90mg剂量的APS装入直径为2.4mm或3.2mm的压片模具中，在Carver C-12型12吨压片机中压制，该压片机带有面积为21.25cm2(3.294英寸2)的液力压头，所施加的负荷为4448牛顿(1000磅)。除指明者外，用1%棕榈酸钠(NaP)或5%硬脂酸镁(MgS)作润滑剂。将压实制品肠道外植入商品型杂交繁育的肥育猪体内。平均日增重(ADG，kg/天)和饲料效率(FE，定义为饲料日摄取量除以ADG，FE越低越好)，以及植入后的猪与未施用生长激素的阴性对照猪相比较改善的百分比，均进行了测定。这些结果及每日注射2mg溶液态APS的阳性对照组猪的结果概括于表7。试验期的第一阶段为14天，接着是7天的间歇期，接着是14天的第二阶段。
表7第一阶段类型Cu Cu APS APS直径3mm 3mm 3mm 3mm剂量60mg 60mg 2×30mg 6×10mg-对照＋对照润滑剂Nap Nap Nap Nap1(未处理)(2mg/天)部位耳脂肪耳耳ADG(kg) .98 1.11 1.03 1.03 .95 .87FE(饲料／ 4.10 3.24 3.43 3.61 3.73 4.29增重)FE改善％-- -- 16.3% 12.0% 9.0% --第二阶段类型 Cu Cu Cu Cu Cu直径 3mm 3mm 2mm 3mm 3mm剂量 60mg 60mg 60mg 60mg 90mg-对照＋对照润滑剂Nap Nap Nap2 MgS Nap(未处理) (2mg/天) 部位 耳 脂肪 耳 耳 耳ADG(kg) .90 1.02 1.07 1.05 1.02 1.08 1.12FE(饲料／ 4.81 3.78 3.63 3.74 3.61 3.34 3.19增重)FE改善％ -- -- 24.5% 22.2% 25.0% 30.6% 33.7%1 10%棕榈酸钠2 2％棕榈酸钠本发明的植入制品比每日注射要好，与经处理的猪相比使增重和饲料效率大大改善。10%含量的棕榈酸钠使生长激素的释放受到不利影响，因此10%棕榈酸钠高于润滑剂的有效量。
实施例11由微生物表达的APS散装粉末制备压实制品，所述粉末已如实施例3b所述进行了分离纯化。所用的压实方法大致是实施例10的方法，所不同的是施加17，790牛顿(4000磅)的力制备直径为6.4mm的60mg制品。在该项研究的第一天，将这些制品用外科手术方法植入颈背部的脂肪内。分别用30mg和60mg生长激素，以4448牛顿(1000磅)制备另一组直径为3.2mm的制品。用植入枪(implant gun)将这些制品植入颈背部的脂肪内。该第二组3.2mm制品在该项研究的第15天植入。所用的猪是商品型杂交繁育的肥育猪，其中有10头猪施用30mg制品，10头猪施用60mg制品，10头猪为进行与受处理猪类似的假手术操作的对照猪。测定这三组猪的ADG、FE和FE改善百分比，结果示于表8。
表8对照30mg60mg第1周ADG(kg).87.941.02FE(饲料／增重)3.842.782.53第2周ADG(kg).82.77.67FE(饲料／增重)4.274.624.58第1－2周ADG(kg).85.85.84FE(饲料／增重)3.943.493.30FE改善％--11.4%16.2%第3周ADG(kg).841.151.00FE(饲料／增重)4.412.973.17第4周ADG(kg).95.71.62FE(饲料／增重)3.956.706.31第3－4周ADG(kg).89.93.81FE(饲料／增重)4.013.754.29FE改善％--6.5%--第1－4周ADG(kg).87.89.81FE(饲料／增重)3.913.603.66FE改善％--7.9%6.4%这些数据证实，这些压实制品有一个约1周的有效缓释期。在每个植入循环的第二周，受处理的猪显示出预期的饲料效率下降，这通常是给猪停用生长激素时所观察到的现象。即使有饲料效率下降的时期，在4周的研究过程中两种处理方案也使饲料效率提高7.9%和6.4%。
实施例12由如实施例9所制备的APS散装粉末和铜结合APS制备压实制品。制备铜结合APS时所用的铜与APS摩尔比约为2∶1。所用的压实方法大致是实施例10所述的方法，所不同的是用5%硬脂酸镁作润滑剂。将数量足以达到60mg和90mg剂量的APS装入2.4mm或3.2mm模具中，施加4448牛顿(1000磅)的负荷进行压制。以10头商品型杂交繁育的肥育猪为一组，以14天和21天的间隔将上述制品植入各组猪颈背部的脂肪内。该研究持续42天。在这42天期间测定ADG、FE和饲料效率相对于阴性对照的改善百分比。结果示于表9，并与未施用生长激素的阴性对照和每日注射2mg溶液态APS的阳性对照作了比较。数据显示有一个约1周的有效缓释期，该缓释期过后出现预期的饲料效率下降。在整整6周的研究过程中，所有的植入方案都显示饲料效率比阴性对照有改善，而且大多数植入方案都显示出与每日注射的阳性对照大致相等的饲料效率。
表9APS Cu APS剂量: 90mg 60mg 90mg 60mg 90mg 60mg-对照 +对照 间隔: 3周 2周 2周 2周 3周 2周(未处理) (2mg/天) 直径: 3mm 3mm 3mm 2mm 3mm 3mm第1周ADG(kg/天) .99 1.33 1.03 1.05 1.17 1.14 1.12 1.16FE(饲料/增重) 3.40 2.73 2.99 2.81 2.69 2.71 2.21 2.34第2周ADG(kg/天) .98 .99 .78 .80 .75 .70 .62 .65FE(饲料/增重) 3.84 3.72 4.57 4.46 4.50 5.25 5.21 4.96第3周ADG(kg/天) .99 1.13 .82 1.01 1.16 1.19 .92 1.26FE(饲料/增重) 3.83 3.16 4.00 2.84 2.76 3.05 3.90 2.58第4周ADG(kg/天) .84 1.01 1.28 .95 .70 .82 1.23 .71FE(饲料/增重) 4.62 3.74 3.20 4.16 5.27 4.72 2.60 5.21第5周ADG(kg/天) .79 1.03 .97 .93 1.04 1.05 .69 1.17FE(饲料/增重) 4.34 3.78 3.94 3.70 3.39 3.64 6.08 3.16第6周ADG(kg/天) 1.00 1.19 .78 .99 1.06 1.03 .87 .82FE(饲料/增重) 3.88 3.43 5.87 3.75 3.83 3.84 4.75 4.84第1-6周ADG(kg/天) .93 1.11 .95 .96 .98 .99 .91 .96FE 3.98 3.34 3.82 3.43 3.45 3.58 3.54 3.45FE改善% -- -- 4.0% 13.8% 13.3% 10.1% 11.1% 13.3%实施例13如实施例9所述，由APS散装粉末和铜结合APS(铜与APS摩尔比为2∶1)制备含5%硬脂酸镁润滑剂的压实制品，但与实施例9有如下不同。所制备的压实制品的大小为60mg和30mg，施加4448牛顿(1000磅)压制成3.2mm直径，施加8895牛顿(2000磅)压制成4mm直径。4mm直径制品的高度与直径大致相等，这样使圆柱体的表面积最小。将一组60mg、3.2mm的制品和一组30mg、3.2mm的制品装入拉伸的2mm硅橡胶管内，管的两端无包衣。每隔6周在商品型杂交繁育猪颈背部的脂肪内植入60mg的剂量。5周期间的结果示于表10，并与未施用生长激素的对照猪作了比较。施用带硅橡胶管的植入物的两组猪的结果，证实了可以通过控制释放表面的大小来控制效果。施用2个30mg制品的猪与施用1个60mg制品的猪相比，效果有改善。30mg制品的植入物由于有开放的端部，其释放表面是60mg制品的两倍，使效果有所改善。
表10类型: APS APS Cu Cu*Cu*剂量: 60mg 60mg 60mg 60mg 2-30mg对照 直径: 3mm 4mm 4mm 3mm 3mm第1周ADG(kg/天) .84 1.03 0.94 .82 .93 0.83FE(饲料/增重) 4.23 2.53 3.14 3.58 3.33 3.53第2周ADG(kg/天) .95 .63 .69 .73 .65 .64FE(饲料/增重) 3.69 4.44 4.64 4.08 4.92 9.79第3周ADG(kg/天) 1.02 1.05 .76 .92 .81 .75FE(饲料/增重) 3.66 3.50 4.09 3.44 4.19 3.97第4周(给猪再次植入)ADG(kg/天) .72 .87 .89 .74 .74 .84FE(饲料/增重) 5.35 3.92 3.84 4.42 4.29 3.90第5周ADG(kg/天) .83 .82 .78 .99 .78 .99FE(饲料/增重) 5.58 4.15 3.89 3.15 4.16 3.30第1-5周ADG(kg/天) .87 .88 .81 .84 .78 .81FE(饲料/增重) 3.90 3.53 3.65 3.55 3.98 3.65FE改善% -- 9.5% 6.4% 9.0% -- 6.4%*在硅橡胶管内实施例14用以下方法制备铜结合APS将如实施例9制备的APS散装粉末以60mg/ml溶于去离子水中。加入足量的100mM CuSO溶液，达到所需的Cu∶APS摩尔比。加入硫酸将pH调至7，沉淀出生长激素。分离出沉淀物并冰冻干燥。由这些具有指定Cu∶APS摩尔比的铜结合生长激素制备压实制品。所用的压实方法大致是实施例10所述的方法，所不同的是直径为3.2mm，加入5%硬脂酸镁作润滑剂，所施加的负荷为4448牛顿(1000磅)，并按所指出的那样使用60mg和30mg生长激素。以10头猪为一组，每隔14天在颈背部的脂肪内植入上述制品。在6周的研究期间对猪进行监测，结果示于表11，并与未施用生长激素的阴性对照和每日注射溶液态APS的阳性对照作了比较。每个处理的有效持续时间各不相同，但铜比例较低的处理比铜比例较高的处理的有效持续时间长。
表11-对照 +对照 剂量: 60mg 60mg 2×30mg 2×30mg 2×30mg(未处理) (2mg/天) Cu:APS: 1:1 2:1 1:1 2:1 1.5:1第1周ADG(kg/天) 1.00 1.05 1.05 1.01 .99 .89 .92FE(饲料/增重) 2.83 2.73 2.57 3.08 2.97 2.90 2.95第2周ADG(kg/天) .79 .98 .86 .69 .81 .87 .92FE(饲料/增重) 4.24 2.97 3.73 4.64 3.72 3.33 3.19第3周ADG(kg/天) .95 1.02 1.05 1.21 .91 1.00 1.07FE(饲料/增重) 3.36 2.76 2.35 2.41 2.87 2.84 2.66第4周ADG(kg/天) .99 1.13 .64 .70 .93 1.01 .81FE(饲料/增重) 3.28 2.75 4.69 6.71 3.32 3.24 3.90第5周ADG(kg/天) .81 .97 1.13 1.11 1.05 .99 1.00FE(饲料/增重) 3.90 3.15 2.40 2.95 2.58 3.16 2.94第6周ADG(kg/天) .75 .68 .69 .69 .29 .63 .38FE(饲料/增重) 4.23 4.16 5.86 5.03 7.05 5.69 4.72第1-6周ADG(kg/天) .88 .97 .91 .90 .83 .90 .85FE 3.43 2.85 2.88 3.31 3.17 3.23 3.38FE改善% -- -- 16.0% 3.5% 7.6% 5.8% 1.5%实施例15由如实施例9制备的APS散装粉末制备压实制品，该粉末已与足量的CuSO4干混而使Cu与APS达到指定的摩尔比。由具有指定的Cu与APS摩尔比的沉淀的铜结合APS制备压实制品。压实方法大致上如实施例10所述，所不同的是加入5%硬脂酸镁作润滑剂，所施加的负荷按所指出的那样或者是1000牛顿(225磅)，或者是2224牛顿(500磅)。以10头商品型杂交繁育猪为一组，按所指明的那样每隔1周或2周在颈背部的脂肪内植入上述制品。该项研究的结果在下面的表12给出。
表12处理*: 1 2 3 4 5 6 7第1周ADG(kg/天) .93 1.24 1.00 1.24 1.13 1.19 1.19FE(饲料/增重) 3.05 2.31 2.71 2.42 2.44 2.34 2.34第2周ADG(kg/天) .89 1.11 .88 1.05 .91 .95 .84FE(饲料/增重) 4.19 2.76 3.28 3.17 3.60 3.17 3.62第3周ADG(kg/天) .93 1.13 .97 1.09 1.14 1.20 1.04FE(饲料/增重) 3.99 2.96 3.32 3.19 3.06 2.70 3.36第4周ADG(kg/天) 1.00 1.21 1.09 1.11 1.08 1.02 .94FE(饲料/增重) 3.31 2.83 3.08 3.40 3.27 3.62 3.83第5周ADG(kg/天) 1.02 1.18 1.12 1.21 1.02 1.08 1.30FE(饲料/增重) 3.54 3.11 3.08 3.08 3.37 3.12 2.68第6周ADG(kg/天) .69 .98 .75 1.01 .73 1.01 .63FE(饲料/增重) 5.29 4.89 4.47 4.18 6.00 4.43 7.06第1-6周ADG(kg/天) .91 1.14 .97 1.12 1.00 1.08 .99FE(饲料/增重) 3.63 2.93 3.23 3.15 3.35 3.07 3.32FE改善% -- -- 11.0% 13.2% 7.7% 15.4% 8.5%
*处理1阴性对照，未施用生长激素处理2阳性对照，每天施用2mg溶液态APS处理3每周施用21mg APS，无Cu，2.4mm直径，1000牛顿(225磅)处理4每周施用21mg APS，干混物，Cu∶APS比例2∶1，2.4mm直径，1000牛顿(225磅)处理5每两周施用42mg APS，干混物，Cu∶APS比例4∶1，3.2mm直径，2224牛顿(500磅)处理6每两周施用60mg APS，沉淀物，Cu∶APS比例1∶1，3.2mm直径，2224牛顿(500磅)处理7每两周施用42mg APS，沉淀物，Cu∶APS比例1∶1，3mm直径，2224牛顿(500磅)实施例16由如实施例9制备的Cu∶APS的摩尔比为1∶1的铜结合APS沉淀制备压实制品，并由摩尔比为4∶1的CuSO和APS散装粉末的干混物制备压实制品。所用的压实方法大至是实施例10的方法，所不同的是压实制品含14mg和21mg生长激素，直径为2.4mm，含有5%硬脂酸镁润滑剂，施加1000牛顿(225磅)的负荷进行压制。以10头商品型杂交繁育猪为一组，每周在各组猪颈背部的脂肪内植入上述制品。结果示于表13，并与未施用生长激素的阴性对照和每天施用2mg溶液态APS的阳性对照作了比较。
表13类型: 沉淀物 干混物 干混物-对照 +对照 Cu:APS比例: 1:1 4:1 4:1(未处理) (2mg/天) 剂量: 14mg 21mg 14mg第1周ADG(kg/天) 1.23 1.15 1.03 1.06 1.21FE(饲料/增重) 2.44 2.32 2.74 2.49 2.32第2周ADG(kg/天) 1.08 1.00 .91 .83 .93FE(饲料/增重) 3.30 3.16 3.15 3.52 3.44第3周ADG(kg/天) 1.02 1.05 .96 1.01 1.00FE(饲料/增重) 3.47 2.64 3.11 2.54 3.22第4周ADG(kg/天) 1.05 .99 .84 .79 .82FE(饲料/增重) 3.62 3.15 4.02 3.89 4.34第5周ADG(kg/天) .78 .86 .99 .75 .84FE(饲料/增重) 5.22 3.49 3.62 4.10 4.01第6周ADG(kg/天) .78 1.27 .88 .99 1.02FE(饲料/增重) 6.45 3.32 4.25 4.95 3.95第1-6周ADG(kg/天) .99 1.05 .93 .90 .97FE(饲料/增重) 3.56 2.73 3.30 3.17 3.28FE改善% -- -- 7.3% 11.0% 7.9%
实施例17由APS散装粉末和CuSO4的干混物(Cu∶APS摩尔比为2∶1)制备压实制品，并由通过使Cu∶APS摩尔比为1∶1的APS/CuSO4溶液冰冻干燥而制得的铜结合APS制备压实制品。压实方法大致是实施例10的方法，所不同的是直径为2.4mm，加5%硬脂酸镁作润滑剂，所施加的负荷为1000牛顿(225磅)，每剂量使用21mg生长激素。以10头商品型杂交繁育的猪为一组，在各组猪颈背部的脂肪内每周进行一次植入，共进行4周。结果示于表14，并与未施用生长激素的阴性对照组猪和每天施用2mg溶液态APS的阳性对照组猪作了比较。摩尔比为1∶1的铜结合APS的冰冻干燥溶液，与摩尔比为2∶1的干混物的效果基本相等。
表14-对照＋对照冰冻干燥溶液干混物(未处理)(2mg/天)第1周ADG(kg/天)1.041.32.911.26FE(饲料／增重)2.881.992.792.10第2周ADG(kg/天).791.04.90.79FE(饲料／增重)4.092.843.223.59第3周ADG(kg/天)1.091.26.99.96FE(饲料／增重)3.182.473.163.26第4周ADG(kg/天).76.59.86.77FE(饲料／增重)4.863.503.733.84第1－4周ADG(kg／天).921.05.91.94FE(饲料／增重)3.432.773.053.05FE改善％----11.1%11.1%
实施例18用CuSO4和APS散装粉末的干混物，以指定的摩尔比和剂量制备压实制品。压实方法大致是实施例10的方法，所不同的是加5%硬脂酸镁作润滑剂，使用2.4mm模具，所施加的力为1000牛顿(225磅)。以10头商品型杂交繁育猪为一组，每周在各组猪颈背部的刚好耳后处植入上述压实制品，共植入6周。该项研究的结果示于下面的表15，并与未施用生长激素的阴性对照组和每天施用2mg溶液态APS的阳性对照组作了比较。
表15-对照 +对照 比例: 1:1 2:1 3:1 2:1 2:1 2:1(未处理) (2mg/天) 剂量: 21mg 21mg 21mg 17mg 25mg 21mg第1周ADG(kg/天) .93 1.03 1.02 1.08 1.01 .98 1.09 1.14FE(饲料/增重) 3.79 3.58 3.29 3.11 3.51 3.30 3.68 3.23第2周ADG(kg/天) 1.00 1.20 .98 1.09 1.10 .92 1.13 1.06FE(饲料/增重) 3.88 3.25 3.49 3.30 3.19 3.82 3.11 3.46第3周ADG(kg/天) .81 .94 .94 .79 .93 .92 .97 1.01FE(饲料/增重) 4.71 3.97 3.54 4.02 3.75 3.76 3.63 3.72第4周ADG(kg/天) .86 1.01 .95 .90 1.01 .97 .93 .89FE(饲料/增重) 4.56 3.72 3.73 3.96 3.43 3.82 3.87 7.06第5周ADG(kg/天) .79 1.02 1.05 1.05 .94 .84 .92 1.00FE(饲料/增重) 5.11 3.56 3.61 3.75 3.98 4.63 4.23 4.16第6周ADG(kg/天) .87 1.06 .99 1.03 1.17 .97 1.23 1.09FE(饲料/增重) 4.55 3.73 3.94 3.56 3.51 3.95 3.46 3.73第1-6周ADG(kg/天) .88 1.04 .99 .99 1.03 .93 1.05 1.03FE(饲料/增重) 4.29 3.56 3.52 3.45 3.46 3.76 3.53 3.71FE改善% -- -- 17.9% 19.6% 19.3% 12.4% 17.7% 13.5%实施例19由CuSO4与APS散装粉末的干混物，以2∶1的Cu∶APS摩尔比制备压实制品。压实方法大至是实施例10的方法，所不同的是如所指出的那样加5%硬脂酸镁或1%硬脂酸镁作润滑剂，所施加的负荷为1000牛顿(225磅)，直径为2.4mm。以10头商品型杂交繁育猪为一组，在各组猪颈部刚好耳后处进行植入，每周植入21mg，共植入6周。结果示于表16，并与未施用生长激素的阴性对照组猪和每天施用2mg溶液态APS的阳性对照组猪作了比较。在6周的研究期间，1%硬脂酸镁和5%硬脂酸镁有相似的效果。
表16-对照 +对照 5%硬脂酸镁 1%硬脂酸镁(未处理) (2mg/天)第1周ADG(kg/天) 1.19 1.41 1.26 1.20FE(饲料/增重) 2.48 2.10 2.31 2.36第2周ADG(kg/天) .92 .97 .86 .92FE(饲料/增重) 3.87 3.27 3.91 4.61第3周ADG(kg/天) .92 1.03 .99 .99FE(饲料/增重) 4.28 2.93 3.23 6.02第4周ADG(kg/天) .72 1.13 .85 .96FE(饲料/增重) 3.96 3.07 3.88 3.51第5周ADG(kg/天) .81 1.05 1.03 .80FE(饲料/增重) 5.05 3.52 3.46 4.31第6周ADG(kg/天) .83 .96 .86 1.03FE(饲料/增重) 4.52 3.83 4.28 3.66第1-6周ADG(kg/天) .90 1.09 .97 .94FE(饲料/增重) 3.80 2.99 3.27 3.28FE改善% -- -- 13.9% 13.9%
权利要求
1.一种组合物，该组合物含有基本上不含猪源蛋白pGH(A)。
2.一种促进猪的成年前生长的方法，该方法包括给猪施用pGH(A)。
3.一种提高猪的饲料转化效率的方法，该方法包括给猪施用pGH(A)。
全文摘要
本发明提供含有pGH(A)的组合物，以及通过施用pGH(A)来促进猪的成年前生长和提高饲料转化效率的方法。
文档编号C12NGK1100272SQ9410566
公开日1995年3月22日 申请日期1994年5月10日 优先权日1985年2月22日
发明者格温·格拉博斯基·克里瓦 申请人:孟山都公司