干扰素调节因子8（irf8）在脑卒中疾病中的应用的制作方法
【专利摘要】本发明公开一种IRF8基因在脑卒中疾病中的功能和应用，属于基因的功能与应用领域。本发明以IRF8基因敲除小鼠和神经特异性IRF8转基因小鼠为实验对象，通过大脑中动脉缺血再灌注模型，结果表明与野生型C57小鼠对比，IRF8基因敲除小鼠脑袋梗死体积明显增加，神经功能也明显恶化，而神经特异性IRF8转基因小鼠的梗死体积则明显减少，且神经功能明显好转。这提示一种IRF8基因在脑卒中疾病中的功能，主要体现在IRF8基因具有保护神经系统功能的作用，特别是IRF8基因能够保护脑卒中疾病的作用。针对IRF8的上述功能，提供IRF8在制备治疗脑卒中疾病药物中应用。
【专利说明】干扰素调节因子8 (IRF8)在脑卒中疾病中的应用
[0001]
【技术领域】
[0002]本发明属于基因的功能与应用领域，特别涉及一种干扰素调节因子8(interfer0nregulatory factor 8, IRF8)在脑卒中疾病中的应用。
[0003]【背景技术】[0004]缺血性脑卒中目前是全球主要致死致残的疾病，目前组织纤溶酶原激活剂(tissue一typeplasminogenactivator, tPA)纤溶仍是治疗缺血性脑血管病的主要治疗方法，但伴随的缺血再灌注会进一步加重缺血神经细胞损伤。研究表明，神经元保护策略可以在脑缺血损伤后较长时间内改善大脑功能，减少神经元细胞损失。凋亡是大脑缺血/再灌注过程中细胞死亡的基本机制之一，但其调控机制仍未完全阐明。因此，研究大脑缺血/再灌注时神经元细胞凋亡生存的分子机制，将有助于为神经元保护提供新的治疗策略和方法。
[0005]大脑缺血再灌注损伤可以引起多种不同但相互重叠的信号通路，调控细胞存活或者死亡。神经元局灶性脑缺血时，梗死核心区绝大部分细胞均发生坏死(necrosis)，特征是能量供应剧减导致细胞水肿、细胞器破裂及细胞不可逆的死亡。梗死核周边低灌注脑组织称为“缺血半暗带”，由于其仍具有代谢活性，如果脑血流灌注得到改善，该区域细胞活性仍能恢复。因此挽救缺血半暗带对于卒中后治疗具有重要价值。尽管1996年起组织纤溶酶原激活剂(tPA)即批准用于缺血性脑卒中治疗，迄今为止其仍然是美国药监局(FDA)唯一审核通过的溶栓药物。因为随时间延长出血风险增加，tPA的治疗时间窗仅为4.5小时；考虑到缺血性和出血性脑卒中在早期影像学不易鉴别，进一步延误了患者接受tPA治疗的机会。目前只有小于5%的缺血性脑卒中患者使用tPA溶栓治疗。此外，研究发现脑组织如果长时间严重缺血缺氧，即使在后期恢复脑血流仍会对脑组织造成不可逆转的损伤，因此当前仍迫切需要研究针对缺血缺氧和(或)再灌注所致病理生理学事件的治疗策略。自20世纪90年代以来，研究保护神经和脑组织的治疗策略一直是脑卒中治疗的热点，这些策略不仅可以延长tPA的治疗时间窗，也可以减轻缺血再灌注诱导的脑组织损伤。多种神经保护药物已在动物实验中取得了令人振奋的结果，但是进入脑卒中3期临床实验后，绝大部分药物均未取得预期效果，其首要失败的原因之一是大部分已知神经保护机制作用于在卒中后4-6小时以内，而临床实践中很难在如此短暂是时间窗内实施治疗，因此进一步阐明卒中发生后较长一段时间内促进或保护脑组织损伤的分子机制对于研究有效的卒中治疗革巴点或者策略具有重要意义。
[0006]干扰素调节因子(interferon regulatory factor, IRF)家族现已发现有10个成员，其组成为IRFl~IRF10。现有的研究提示，IRF家族成员参与了广泛的生物学过程，主要涉及天然免疫和获得性免疫反应，调控细胞生长及生存、凋亡和增殖，参与造血，抗肿瘤形成等。IRF8是干扰素的共识别结合蛋白(interferon consensus sequence-bindingprotein, ICSBP)，是IRF家族的一员，作为一个转录因子，可以转录调控DNA从而发挥作用。IRF8首次被发现是在髓细胞和淋巴细胞中，已有研究表明IRF8在免疫调节和髓细胞分化中起着核心作用。多项研究表明，IRF8可能参与多发性硬化症、中枢神经系统炎性脱髓鞘疾病，周围神经损伤等疾病。
[0007]
【发明内容】
[0008]为解决上述现有技术的缺陷和不足，本发明的首要目的在于提供一种IRF8在制备治疗神经系统疾病药物中的应用。
[0009]本发明的另一目的在于提供一种IRF8在制备治疗脑卒中疾病药物中的应用。
[0010]本发明的目的通过下述技术方案实现:
本发明以IRF8基因敲除小鼠和神经细胞特异性IRF8转基因小鼠为实验对象，通过大脑中动脉缺血再灌注模型，结果表明与野生型C57小鼠对比，IRF8基因敲除小鼠脑袋梗死明显加重，神经功能也明显恶化，而神经细胞特异性IRF8转基因小鼠的梗死体积则被抑制，且神经功能也好转。这提示IRF8基因具有保护神经系统功能的作用，能保护脑缺血引起的神经损伤，为研究防治脑缺血的新药和新策略提供了理论依据和临床基础。
[0011]一种IRF8基因在脑卒中疾病中的功能，主要体现在IRF8基因具有保护神经系统功能的作用，特别是IRF8基因能够保护脑缺血疾病的作用。
[0012]针对IRF8基因的上述功能，提供IRF8在制备治疗神经系统疾病的药物中应用。
[0013]一种治疗神经系统疾病的药物，包含IRF8。
[0014]针对IRF8基因的上述功能，提供IRF8在制备治疗脑卒中疾病药物中应用。
[0015]一种治疗脑卒中疾病的药物，包含IRF8。
[0016]本发明的研究成果表明，IRF8- KO小鼠在大脑中动脉缺血再灌注引起的损伤中，小鼠梗死体积明显加重，神经功能明显恶化，神经细胞凋亡也明显增加。证明IRF8基因在脑卒中疾病模型中有着重要的保护作用。
[0017]本发明相对于现有技术具有如下的优点及效果: 1.本发明发现IRF8基因的新功能，即IRF8基因能够保护脑卒中疾病的作用。
[0018]2.1RF8在保护脑卒中疾病中的作用，用于制备治疗脑卒中疾病药物。
[0019]
【专利附图】
【附图说明】
[0020]图1是神经特异性IRF8转基因小鼠的构建及鉴定结果图 A为神经特异性IRF8转基因小鼠的构建图；
B为神经特异性IRF8转基因小鼠的鉴定结果图；
图2是WT和IRF8-K0小鼠的TTC染色结果图。
[0021]A为TTC染色结果图；
B为脑梗体积统计柱状图；
C为神经功能评分统计柱状图；图3是IRF8-TG和NTG小鼠的TTC染色结果图。
[0022]A为TTC染色结果图；
B为脑梗体积统计柱状图；
C为神经功能评分统计柱状图；
图4是WT和IRF8-K0小鼠的脑组织梗死周边区神经元细胞凋亡情况测定结果图。
[0023]图A为Fluoro Jade B检测显示图和统计结果图；
图B为TUNEL细胞凋亡图和统计结果图；
图5是IRF8-TG和NTG小鼠的脑组织梗死周边区神经元细胞凋亡情况测定结果图。
[0024]图A为Fluoro Jade B检测显示图和统计结果图；
图B为TUNEL细胞凋亡图和统计结果图；
【具体实施方式】
[0025]下面结合实施例及附图对本发明作进一步详细的描述，但本发明的实施方式不限于此。
[0026]实验用动物及饲 养
实验动物:选用11-12周龄、体重在25-30g，背景为雄性C57BL/6品系的野生型小鼠(WT，购自北京华阜康生物科技有限公司)、IRF8基因敲除小鼠(IRF8-K0，C57BL/6J背景，购自 EMMA,货号 EM: 02414)、非转基因小鼠(NTG, Neuron-specific Cre transgenic mice(CaMKII a -Cre;购自 Jackson Laboratory , Stock N0.005359))及神经特异性 IRF8 转基因小鼠(IRF8-TG，由IRF8-flox转基因小鼠和CaMKII a -Cre小鼠杂交得到，IRF8_flox转基因小鼠由本实验室自己构建，IRF8-flox转基因小鼠的构建过程如下文中所述)。
[0027]饲养环境:所有实验小鼠均饲养在武汉大学心血管病研究所SPF级实验动物中心。小鼠专用饲料由中国军事医学科学院动物中心提供。饲养条件:室温在22-24°C之间，湿度在40-70%之间，明暗交替照明时间为12h，自由饮水摄食。
[0028]【实施例1】神经特异性IRF8转基因小鼠的构建 IRF8-flox转基因小鼠构建信息:
转基因载体构建信息:用上游引物，即5 ’ -CCAGATTACGCTGATTGTGACCGGAACGGCGGGCG-3’ (SEQ ID N0.1);下游引物，5 ’-AGGGAAGATCTTGATTTAGACGGTGATCTGTTGAT-3 ’ (SEQID N0.2)，扩增小鼠 IRF8 全长基因(NCBI, Gene ID: 15900, NM_008320.3)，把cDNA插入pCAG-CAT-LacZ载体，这个载体包含一个CMV增强子和一个鸡的P -actin基因(CAG，chicken ^ -actin gene)的启动子，并且连接到氯霉素乙酰转移酶基因(CAT，chloramphenicol acetyl transferase), 1xP 位点位于 CAT 两侧。神经细胞 IRF8 的表达由CAG启动子驱动得到(图1A)。 IRF8-f 1xed老鼠:将构建的pCAG-1RF8-CAT_LacZ载体通过显微注射构造成受精胚胎(C57BL/6J背景)，得到IRFS-floxed转基因小鼠。神经元特异性IRF8转基因小鼠通过IRF8-flox小鼠和CaMKII a -Cre小鼠杂交繁殖得到。
[0029]转基因小鼠通过剪尾巴取基因组DNA，使用PCR鉴定，PCR鉴定引物信息为:检测正向引物 5’- CCAGATTACGCTGATTGTGACCGGAACGGCGGGCG -3’ (SEQ ID N0.3)，检测反向引物 5’- AGGGAAGATCTTGATTTAGACGGTGATCTGTTGAT-3’ (SEQ ID N0.4)。通过蛋白质印迹法(Western Blot )实验鉴定不同转基因鼠脑袋中IRF8蛋白的表达量:提取不同转基因鼠脑组织蛋白，通过聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)，验证IRF8过表达(图1B)
我们构建了几株神经特异性IRF8转基因小鼠(IRF8-TG)。为了反映病理生理状态下IRF8的改变，我们选择了 IRF8-TG5小鼠，Western Blot及定量分析显示，其脑组织中IRF8表达量约为正常组织10.5倍。
[0030]【实施例2】小鼠脑梗死模型(I/R)获得
1.实验动物分组:雄性C57BL/6品系野生型小鼠、IRF8基因敲除小鼠及脑袋特异性IRF8转基因小鼠和非转基因小鼠，通过大脑中动脉缺血再灌注建立脑梗死模型(I/R)。随机分为8组，每组10只小鼠:C57BL/6品系野生型小鼠假手术组(WT SHAM)及I/R术组(WTI/R)、IRF8基因敲除小鼠假手术组(K0 SHAM)及I/R术组(K0 I/R)、非转基因小鼠假手术组(NTG SHAM)及I/R术组(NTG I/R)、神经元特异性IRF8转基因小鼠假手术组(TG SHAM)及 I/R 术组(TG I/R)。
[0031]2.线栓法脑梗死I/R手术采用小鼠大脑中动脉缺血再灌注(middle cerebralartery Ischemia Reperfusion)模型操作流程:
(1)抓取小鼠，使用3%异氟烷麻醉小鼠，8%硫化钠脱去颈部的鼠毛，颅顶鼠毛用手术剪迅速剪掉，3%活力碘消毒颈部及颅顶皮2次，75%酒精脱碘I次；
(2)在小鼠的颅顶部位横向切口，暴露颅骨，用镊子轻轻剥离颅骨表面的结缔组织。将激光多普勒血流仪的光纤探头用生物胶固定在前因后方2_，左侧5_的部位；
(3)将小鼠仰卧固定， 颈正中线切口，沿胸锁乳突肌内缘分离肌肉和筋膜，分离左侧颈总动脉(CCA)、颈外动脉(ECA)和颈内动脉(ICA)。在ECA 远心端用8-0线结扎，ECA近心端处挂线备用。用微动脉夹暂时夹闭ICA、CCA ;然后在ECA远心端结扎和近心端挂线中间剪一小口，将线栓由剪口送入到CCA，并将ECA近心端的挂线在剪口处打一活结，松紧度以线栓可自由进出但略带摩擦感为宜，再松ICA动脉夹，将线栓送入ICA，从血管分叉处开始算距离，当插入深度在9-llmm左右至血流下降遇阻力停。这时将绕在ECA近心端处活结轻轻系牢拴线，整个过程必须维持小鼠的肛温在37±0.5°C ；
(4)从线栓进入脑血管至血流下降遇阻力停时开始计时，45min后先松开ECA近心端处活结，将线栓拔出，并将ECA近心端处活结扎紧，迅速松开CCA处动脉夹，并将ECA近心端结扎(Sham组在从线栓进入脑血管至血流下降遇阻力时抽出线栓)。注意观察血流恢复情况，选择血流下降75%以上，血流恢复达70%以上的小鼠纳入实验；
(5)缝合小鼠颈部及头部皮肤，并用活力碘消毒伤口。手术结束后，将小鼠放在温箱中，箱温维持在28 °C，给水和饲料至取材。
[0032]【实施例3】脑梗死模型(I/R)小鼠脑梗死体积测定
脑缺血/再灌注损伤严重程度的评估指标主要包括大脑梗死体积和神经功能评分，这些指标均与缺血/再灌注损伤严重程度正相关。
[0033](I)分别在手术后24h，72h取材前进行神经功能及形为学评分；
基于Berderson神经功能评分改进方法(9分制):
0分:无神经受损的症状；
I分:提尾时对侧前肢蜷曲，或者不能完全到达患侧前肢；
2分:提尾时对侧肩膀内收；
3分:平推:向对侧推动时阻力下降；4分:可自发的向各个方向运动，但在脱尾巴时只向对侧转弯；
5分:自发运动时转圈或只向对转；
6分:无自主运动,只在刺激时运动；
7分:无自主运动,刺激时也无运动；
8分:与脑缺血有关的死亡。
[0034](2)抓取小鼠，腹腔注射3%戊巴比妥钠麻醉小鼠，剪开小鼠胸腔，剪破心脏放血；
(3)体积分数75%酒精消毒后颈部皮肤，剪开后颈部皮肤，暴露头及颈部，从颈椎处剪断颈髓，分离除去后颈部肌肉，眼科剪纵向剪开脑干小脑外颅骨，用纹齿钳剥开颅骨，分离大脑表面的硬脑膜，避免硬脑膜划伤脑组织。取脑时从延髓开始，小心分离颅底组织，避免损伤大脑；
(4)将取下的脑组织放入装有PBS的培养皿中润洗，用纱布吸干PBS，将脑组织放入Imm小鼠脑模，置于_20°C冰箱冻存(不超过4h);
(5)脑组织2，3，5-三苯基氯化四氮唑(2，3，5-Triphenyltetrazolium chloricej,TTC)染色:从_20°C冰箱取出脑组织，立即切成Imm厚的切片，包括前囟前方切4片，后方切3片，共切7片。将切片立即置于10mL2% TTC溶液的血清瓶中，37°C恒温孵育lOmin。不时翻动切片，使组织均匀染色。正常脑组织染色后呈鲜红色，而梗死区呈苍白色；
(6)脑组织固定:将烧杯里的脑组织及溶液一同转入做好标记的杯中，弃去TTC溶液，用10%中性福尔马林溶液固定脑组织切片，24h后拍照并用IPP软件分析；
(7)脑梗体积计算:梗死体积％=(对侧大脑半球体积-梗死侧未梗死体积)/ (对侧大脑半球体积X2) X 100% ；
总梗死体积为各自7张脑片结果数据之和。
[0035]TTC染色结果如图2所示，经过I/R缺血45min再灌注24小时后IRF8-K0小鼠梗死体积较野生型小鼠增加；且这种恶化作用在I/R术后72小时仍然持续，而神经功能评分在I/R术后24小时、72小时均加重。
[0036]如图3所示，经过I/R缺血45min再灌注24小时后IRF8-TG小鼠梗死体积较野生型小鼠明显减轻；且这种保护作用在I/R术后72小时仍然持续，而神经功能评分在I/R术后24小时和72小时均减轻。
[0037]实施例4.脑组织梗死周边区神经元细胞凋亡情况测定
1.脑组织冰冻切片制备
1)实验小鼠按50mg/kg剂量腹腔注射戊巴比妥钠麻醉；
2)开胸暴露心脏，用注射针头穿刺如左心室，同时剪开右心房；
3)用0.lmol/1PBS (pH7.4)IOOmmHg压力灌流至肝脏变苍白后，用4%多聚甲醛灌流15min ；
4)开颅迅速取出小鼠大脑，室温4%多聚甲醛后固定6-8h；
5)切除脑组织的嗅球和小脑，再延正中线将大脑分为先后两个部分，用先前的固定液再固定15min ；
6)随后浸没于含30%蔗糖的磷酸盐 缓冲液中，4°C冰箱沉底过夜；
7)30%蔗糖与OCT按1:1混合后，倒适量到包埋框中，将前一步的组织取出，在纱布上吸去液体后在该包埋框中浸泡一会儿，再将其转入到先已加入2滴OCT的另一个包埋框中，调整组织的位置，使其正好位于包埋框的正中；
8)将盛组织的包埋框，移入干冰中，尽量使其处于水平位，稍待一会儿后，继续加入OCT，浸没组织一定的高度，待OCT凝固后，将其储存于_80°C的冰箱中；
9)用冰冻切片机的标准程序切5u m的冰冻切片备用。
[0038]2.TUNEL试剂盒染色检测凋亡。
[0039]用TUNEL试剂盒染色检测凋亡。(TUNEL试剂盒:ApopTag? Plus In SituApoptosis Fluorescein Detection Kit (S7111, Chemicon)):
1)将冰切组织切片置于(pH7.4)1%的多聚甲醛中，室温固定水解10分钟；
2)PBS洗两次，每次5 min ；
3)置于预冷的乙醇:乙酸(2:1)溶液中，-20°C浸泡5分钟，去除多余液体，但注意不要干燥；
4)PBS洗两次，每次5 min ；
5)滤纸小心吸去多余液体，立即在切片上按75uL/5 cm2直接加入平衡缓冲液，室温孵育 1-5 min ；
6)滤纸小心吸去多余液体，立即在切片上按55u 1/5 cm2直接加入TdT酶反应液，置于避光保湿盒中作用I h (阴性对照加入不含TdT酶的反应液)；
7)将切片置于终止/洗涤缓冲液中，轻轻摇动15sec，室温孵育10 min;此时准备适量抗地高辛抗体，预热至室温，注意避光；
8)PBS洗三次，每次I min ；
9)滤纸小心吸去多余液体，直接在切片上按65uL/5 cm2加入抗地高辛抗体，室温下于避光保温湿盒中作用I h；
10)PBS洗四次，每次2 min ；
11)SlowFade Gold antifade reagent with DAPI (Invitrogen ,S36939)封片；
12)荧光镜下观察，拍照。若需保存，于暗湿盒中4°C保存。在荧光显微镜下观察，拍照，计数凋亡神经元细胞。(若需保存，于暗湿盒中4°C保存)
3.FJB (Fluoro Jade B)染色
1)将冰切组织切片在烘箱中烘干I小时；
2)1% Na0H+80% 无水乙醇 5min ；
3)70%无水乙醇2min ；
4)dd H2O 2min ；
5)Flouro jade B 稀释液(AG310, Millipore, Billerica, MA),室温避光 20min ;
6)dd H2O Imin 洗 3 次;
7)在烘箱中烘片5-10min；
8)二甲苯处理2-3min ；
9)封片，拍照。
[0040]脑组织梗死周边区神经元细胞凋亡情况测定结果见图4、图5。图4是IRF8-K0小鼠和野生型小鼠I/R术后24小时脑组织梗死周边区神经元细胞凋亡情况。Fluoro Jade B染色(A)和TUNEL染色(B)检测细胞凋亡，结果显示IRF8-K0小鼠神经元细胞凋亡率均比野生型小鼠增加，进一步提示IRF8与神经元细胞缺血/再灌注时死亡相关。同样图5是IRF8-TG小鼠和NTG小鼠I/R术后24小时脑组织梗死周边区神经元细胞凋亡情况，FluoroJade B染色(A)和TUNEL染色(B)结果显示IRF8-TG小鼠神经元细胞凋亡率均比NTG小鼠降低。这些结果表明，促进IRF8表达可以改善脑组织缺血/再灌注损伤，且可能与神经元细胞凋亡密切相关。
[0041]我们的研究成果表明，IRF8 KO小鼠在大脑中动脉缺血再灌注引起的损伤中，我们发现IRF8敲除后，小鼠梗死体积显著增加，神经功能明显恶化，神经细胞凋亡也明显增多。证明IRF8基因在脑卒中疾病模型中有着重要的保护作用。
[0042]上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方 式，都包含在本发明的保护范围之内。
【权利要求】
1.1RF8在制备治疗神经系统疾病药物中的应用。
2.一种治疗神经系统疾病的药物，其特征在于:包含IRF8。
3.1RF8在制备治疗脑卒中疾病药物中的应用。
4.一种治疗脑卒中疾病的药物，其特征在于:包含IRF8。
【文档编号】A61K38/17GK103784974SQ201410031606
【公开日】2014年5月14日 申请日期:2014年1月23日 优先权日:2014年1月23日
【发明者】李红良, 郭森, 卢燕云, 蒋曦, 向梅, 张晓东 申请人:武汉大学