一种Ⅱ型伪狂犬病毒毒株及其应用的制作方法

本发明涉及生物技术领域，特别是涉及一种ⅱ型伪狂犬病毒毒株及其应用。

背景技术：

猪伪狂犬病是由猪伪狂犬病病毒(pseudorabiesvirus，prv)引起的猪的急性传染病。该病在猪呈暴发性流行。可引起妊娠母猪流产、死胎，公猪不育，新生仔猪大量死亡，育肥猪呼吸困难、生长停滞等，是危害全球养猪业的重大传染病之一。已经给世界养猪业带来巨大的经济损失。目前，有很多欧洲国家宣布通过免疫基因缺失疫苗并结合相关的血清学诊断技术根除了伪狂犬病。我国也通过基因缺失疫苗以及弱毒疫苗有效控制了伪狂犬病的流行趋势。但是，2012年来，我国部分免疫过疫苗的猪场出现了伪狂犬病的返强。

伪狂犬病毒属于疱疹病毒科(herpesviridae)、猪疱疹病毒属，病毒粒子为圆形，直径150～180nm，核衣壳直径为105～110nm。病毒粒子的最外层是病毒囊膜，它是由宿主细胞衍生而来的脂质双层结构。囊膜表面有长约8～10nm呈放射状排列的纤突。

prv对环境的抵抗力较其他疱疹病毒略强一些，夏季时在猪舍干草上存活时间能达到30天，冬天可达46天。对热的抵抗力较强，在煮沸的水中还可存活一分钟。常温和低温时也都能保持其稳定性，但是存活时间不同，其中4℃时病毒能存活20周，-40℃或-70℃可存活数年，而-20℃时只能存活3个月。将组织病料经50％甘油盐水处理后保存于4℃150天，其感染力只略微减弱。prv在不同ph条件下也较稳定，可适应ph4.0～12，甚至在极端ph中还能存活至少2小时。prv对乙醚、氯仿、1％naoh等试剂较敏感，可用这些试剂杀灭容器中的病毒。同时，病毒也对福尔马林和紫外照射敏感。

prv基因组为一条双链dna，全长约150kb，g+c含量约70％，含有至少70个基因，编码约100种病毒蛋白。其基因组有一部分为共线性排列，这些共线性排列的基因具有相类似的功能。根据prv感染细胞后的转录翻译情况，可以将prv基因分为立早期基因、早期基因和晚期基因，这三类基因依次以级联的方式进行调节。

prv核衣壳主要由ul19基因、ul35基因编码的蛋白构成，衣壳直径约125nm。prv病毒粒子核衣壳与囊膜之间存在被膜蛋白，其中至少有14种蛋白来自病毒基因组编码，同时被膜层还含有宿主细胞的肌动蛋白。prv的囊膜蛋白几乎能在所有感染的细胞上发现。对蛋白质功能确定的有11种糖蛋白，即gb、gc、gd、ge、gg、gh、gi、gk、gl、gm和gn。其中gb、gd、gh、gl是病毒体外复制和感染所必需的糖蛋白，与prv的神经传导有关；gc、ge、gg和gm是病毒复制的非必需糖蛋白，其中gc、ge与gi与prv在神经细胞间的传导方向有关。这些基因的表达产物既是诱导机体产生体液免疫的主要病毒抗原，也是病毒作用于细胞的重要成分。prv的毒力受到多个基因的联合控制，个别毒力基因的缺失能不同程度降低病毒的毒力。与其毒力有关的基因有ul区的ul10、ul13、ul21、ul23(tk)、ul39/40、ul44、ul50，us区的us3(pk)、us7、us8。其中tk或pk的缺失能导致病毒毒力的显著下降。

技术实现要素：

本发明从经免疫过疫苗的猪场里出现的伪狂犬病病猪身上分离纯化到一株新的伪狂犬病毒毒株，为一种新的ⅱ型伪狂犬病毒，对该毒株进行蚀斑纯化、基因组测定和生物学特性测定，确认为一株新流行的ⅱ型伪狂犬病毒。

猪伪狂犬病是oie认定的b类传染病，该病历史较久，此前许多国家通过实施严格的清除计划，包括大规模使用ge缺失疫苗和diva(区分野毒感染和疫苗免疫)策略，在很大程度上控制了该病，北美和欧洲许多国家已经基本将prv在猪群中净化，我国在上世纪90年代开始，通过接种bartha-k61疫苗来防控该病，并取得了一定的效果。但2011年末开始，华北以及华东地区许多伪狂犬疫苗免疫合格的猪场又开始出现了典型的伪狂犬病病毒感染现象，2013年，疫情开始扩散到南方多省，以广东、广西等地区表现最为明显。2014年，福建、山西、云南等地猪场也出现新型伪狂犬病病毒感染，到目前为止，这种现象已基本遍布我国主要养猪区域。因此，本发明中新流行毒株的分离鉴定及应用对我国猪伪狂犬病毒流行病学调查及新流行强毒株的防控具有重要的意义。

一种伪狂犬病毒毒株，命名为猪伪狂犬病病毒prv-dx，保藏号为cgmccno.14326。经基因测序及序列比对以及相关性能的检测得出本发明猪伪狂犬病毒毒株prv-dx为一种全新的猪伪狂犬病毒毒株，保藏于位于北京市朝阳区北辰西路1号院3号的中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(cgmcc)，保藏号为：cgmccno.14326，保藏时间为：2017年7月6日。

本发明又提供了所述的伪狂犬病毒毒株在制备伪狂犬病疫苗中的应用。本发明猪伪狂犬病毒毒株prv-dx可以用来制备相应的猪伪狂犬病疫苗，比如通过灭活的方法制备疫苗或通过基因工程方法通过敲除相关基因获得减毒疫苗等。

优选的，所述疫苗为基因工程减毒疫苗。

本发明还提供了所述的伪狂犬病毒毒株在作为伪狂犬病疫苗的检验用毒种中的应用。由于本发明猪伪狂犬病毒毒株prv-dx致病力强、毒价高，可以作为猪伪狂犬病疫苗的检验用毒种，用于检测猪伪狂犬病疫苗的效果。

本发明还提供了所述的伪狂犬病毒毒株在制备伪狂犬病毒感染模型中的应用。所述的伪狂犬病毒毒株可以用于制备伪狂犬病毒感染的动物模型。

本发明猪伪狂犬病毒毒株prv-dx从经免疫过疫苗的猪场里出现的伪狂犬病病猪身上分离纯化到的一株新的猪伪狂犬病毒，该毒株属于ii型伪狂犬病毒，毒力比经典的伪狂犬病毒强2倍(小鼠)～20倍(猪)，100％致死小鼠和不同发育阶段的猪。该病毒在vero细胞传代后，毒价逐渐升高至第8代后趋于稳定，最高可达10⁹tcid50/ml。根据基因组特征和致病性特征分析确认本发明猪伪狂犬病毒毒株prv-dx为一种新型的伪狂犬病毒，对我国猪伪狂犬病毒流行病学调查及新流行强毒株的防控具有重要的意义，可作为猪伪狂犬病毒相关研究与防控产品开发的毒种。

附图说明

图1为实施例1中病料上清接种vero细胞结果图，其中a为实验组，b为阴性对照组。

图2为实施例1中病料上清抽取dna后ge特异性基因片段扩增结果图，其中泳道m：dnamarker，泳道1：实验组，泳道2：阴性对照组。

图3为本发明毒株的生长曲线图。

图4为gb基因进化树分析结果图。

图5为gc基因进化树分析结果图。

图6为ge基因进化树分析结果图。

图7为全基因组核苷酸序列进化分析结果图。

具体实施方式

材料：

临床上疑似猪伪狂犬病患病仔猪脑组织病料：来源于浙江湖州某猪场。

vero细胞系为实验室保存；ezup柱式病毒dna抽提试剂盒购自上海生工有限公司；primestar聚合酶、dntpmix、2×gcbuffer、100bpmarker、pmd18-tkit均购自宝生物工程(大连)有限公司；胎牛血清购自gibco公司；mem培养基购自invitrogen；pcr产物清洁回收试剂盒、低熔点琼脂粉购自sigma公司。

prv-sc病毒为传统的猪伪狂犬病毒株，购自中国兽医药品监察所。

5-6周龄雌性balb/c小鼠购自浙江省实验动物中心。

60日龄实验猪购自宁波宁海跃龙街道元红农庄，经抗原抗体检测，实验猪prv、ppv、pcv2、prrsv及csfv抗原阴性，prv及prrsv抗体阴性。

实施例1

采集临床上疑似猪伪狂犬病患病仔猪脑组织病料，进行病料处理，抽提组织总dna，用pcr的方法筛选prv阳性病料，取prv筛选阳性病料研磨液，经无菌处理后，上清接种vero细胞传代培养，观察接种了疑似猪伪狂犬病病料上清的细胞折光性变化、圆缩、脱落病变情况。

根据genbank中prv的gb、ge序列，设计两对分别扩增gb和ge比较保守区域的鉴别引物gb300f、gb300r和ge300f、ge300r。同时根据genbank中prv全基因组参考序列nc_006151设计三对扩增gb、gc、ge全长序列的引物gb-f/r、gc-f/r、ge-f/r，引物交由北京六合华大基因科技有限公司合成，各引物序列如表1所示。

表1

在长满vero细胞的六孔板中，弃去培养基，用新鲜的培养基清洗一次，加入疑似病料上清液1ml，37℃感作60分钟。感作完成后，弃去上清液，加入含2％胎牛血清的mem培养基2ml，于37℃含5％co2的培养箱中培养，每天观察细胞病变情况。直到细胞出现80％病变，将其冻融三次后，离心取上清，获得的病毒称为第一代。

病毒的蚀斑纯化同样采用vero细胞。将所得病毒液按10倍倍比稀释，依次加入到长满vero细胞的六孔板中，37℃感作60分钟。同时配置浓度为2％的低熔点琼脂糖并高压灭菌，待感作完后，将高压好的2％低熔点琼脂糖液与2×mem培养基等体积混合，加入2％胎牛血清，混合液无菌保存于37℃水浴中。弃去细胞板中的感作上清液，用新鲜培养基洗一次后，加入已经配好的琼脂糖培养基混合液，室温待其凝固后，放入37℃培养箱中培养3天。待出现肉眼可见空斑后在显微镜下用枪头挑取，溶于1mlmem中，反复冻融三次后收毒，再接种于vero细胞中进行扩繁以备下一轮蚀斑纯化。如此重复蚀斑纯化操作5次，扩大培养所挑蚀斑，标记为prv-dxf1。

将prv-dxf1代以较合适的稀释度稀释后接种于长满单层的vero细胞中，同样在感作后盖上琼脂，待蚀斑长到合适大小时，用5％结晶紫染色1小时，小心弃去琼脂，观察蚀斑形态并拍照。

将病料上清接种vero细胞后，24小时后可观察到明显的细胞病变，即原本梭形的细胞开始变圆和透亮，随后会脱落形成一块空斑(图1a)，阴性细胞没有变化(图1b)。将病料上清抽提dna后进行pcr检测，可扩增得到332bp的ge特异性部分序列(图2)，说明分离到的为猪伪狂犬病毒，将其命名为猪伪狂犬病病毒prv-dx。

实施例2

病毒tcid50测定及生长曲线绘制。

待96孔板中vero细胞长满单层时，将经过传代的适应细胞毒prv-dx株f5代倍比稀释10^-1～10^-10接种于96孔板1至10列，每孔100μl。最后两列加入等体积的mem作为阴性对照。96孔板放入37℃培养箱中培养，96小时后统计出现细胞病变的孔数，用两氏法计算病毒tcid50，tcid50＝10^-8.0/0.1ml。

待25cm²细胞瓶中的vero细胞长满单层后，换成含2％胎牛血清的新鲜胚mem培养基，并接种100个tcid50的prv-dxf5。然后分别在接毒后12、24、36、48、60、72、84、96和108小时取500μl细胞上清，同时加入500μl含2％胎牛血清的新鲜胚mem培养基。将不同时间点所获得的细胞上清-70℃反复冻融3次后收毒，并按照以上方法分别测定不同时间点的tcid50，绘制其生长曲线，结果如图3所示。

prv-dx毒株经vero细胞传代，每代测定其tcid50，结果表明，该病毒在vero细胞传代后，毒价逐渐升高至第8代后趋于稳定，最高可达10⁹tcid50/ml。

实施例3

猪伪狂犬病病毒prv-dx株gb、gc、ge基因的克隆与分析。

用纯化后的病毒液prv-dxf5代按前述方法进行病毒dna的抽提，用所得dna溶液作为pcr模板进行进行pcr扩增，体系(25μl)如下：2×gcbuffer12.5μl，dntpmix2μl，引物各1μl，模板1μl，primestar酶0.25μl，最后加水补足25μl。pcr反应程序为95℃预变性5分钟，98℃变性10秒，57℃退火20秒，72℃延伸2分钟进行30个循环。pcr产物用1％琼脂糖凝胶电泳检测后，用sigma公司的pcr产物清洁回收试剂盒说明书进行回收。具体如下：

在pcr产物中，加入3倍产物体积的bufferpcr-a(若加入的buffer小于100μl，则补足至100μl)，用枪头吹打直至混匀。然后将混合液转移至试剂盒提供的制备管中，并将制备管置于2ml收集管中，12000rpm离心1分钟，弃滤液；将制备管放回收集管，加入700μl已经加过乙醇的bufferw2，12000rpm离心1分钟，弃滤液；再将制备管放回收集管，加入400μl上述bufferw2，12000rpm离心1分钟，弃滤液；制备管放回收集管后，12000rpm空离1分钟；将制备管置于一个洁净的1.5ml离心管中，在吸附膜中央加30-50μlte或去离子水，室温洗脱2min，然后12000rpm离心1分钟，收集管底溶液。

回收的产物用rtaq酶加polya粘性末端，72℃10分钟，体系如下：10×pcrbuffer2μl，rtaq酶0.25μl，dntpmix0.5μl，pcr产物400ng，最后加水补足20μl。将上述加上a尾的产物与pmd18t连接，16℃1小时，体系如下：solutioni10μl，pmd18t1μl，加a尾的pcr产物9μl。

将上述连接产物全部转化dh5α大肠杆菌感受态，然后涂于含有氨苄的lb固体培养基平板上，37℃培养过夜。待菌落长至合适大小时，挑取单菌落，进行pcr菌液鉴定后将阳性的单克隆送北京六合华大基因科技有限公司测序。

利用mega5.0软件，将dx株扩增所得基因序列与genbank上下载所得的不同毒株基因序列进行进化树分析。分析采用邻并法进行计算，bootstrap值为1000次。同时利用mega5.0软件，将之前一起比对的序列都翻译为氨基酸序列，并进行比对分析。

基因进化树结果(图4、图5、图6)显示，本研究中分离到的dx株gc(seqidno.15)基因序列与国内最近分离到的一些毒株的gc基因序列比较接近，都离一些经典毒株如kaplan、becker株较远，gb(seqidno.14)和ge(seqidno.16)基因序列分析结果也一样。

相应的氨基酸序列比对结果表明，dx株的gb基因与国内新流行的毒株一样较经典欧洲株有75-77位spg三个氨基酸插入，以及313位(v>m)、915位(s>n)、921位(l>p)的突变。gc基因则是63-69位连续aaastpa7个氨基酸的插入。dx株的ge基因与这些参考序列比较明显的区别即在48位和494位有天冬氨酸(d)的插入。54位为天冬氨酸(d)而非甘氨酸(g)、448位为异亮氨酸(i)而非缬氨酸(v)、510位为丝氨酸(s)而非甘氨酸(g)。

实施例4

培养prv-dx病毒，然后抽提病毒的全基因组，进行pacbio平台测序，获得病毒的全基因组序列。

上述病毒全基因组抽提及测序的方法为：

采用qiagengenomic-tip500g对浓缩纯化后的病毒液进行dna提取，具体步骤如下：

(1)将样品与预冷的等体积的bufferc1和3倍体积的双蒸水进行混合，冰上孵育10分钟；超速离心2小时后，弃上清；

(2)再加入预冷的2倍体积的bufferc1和6倍体积的双蒸水，翻转混匀，超速离心后，弃上清；

(3)加入10倍体积的bufferg2，涡旋震荡，将沉淀进行重悬；

(4)加入200μl的proteasek，50℃孵育1小时；

(5)充分孵育后，将液体加入到提前已经用10mlbufferqbt平衡好的柱子中，让其自然流下；

(6)加入15mlbufferqc到柱子中，进行洗杂，重复2遍；

(7)加入50℃预热的15mlbufferqf进行洗脱，并用收集管收集液体；

(8)加入0.7倍体积的异丙醇到收集管中，沉淀，去上清，并干燥5-10分钟；

(9)用4ml70％预冷的乙醇洗涤沉淀，翻转混匀，离心后，轻柔的吸去上清，并干燥5-10分钟，待沉淀干燥后用ph＝8.0的10mmtris-hcl溶解沉淀，并进行od260/od280和核酸含量检测；同时用0.6％的琼脂糖凝胶进行电泳检测，电压为170v，时长60min。

将检测合格的基因组dna样品送深圳华大基因科技服务有限公司进行测序及组装。采用genewise软件基于参考序列jq809328.1进行同源基因预测，预测出各orf。软件版本：genewise2.2.0，参数：genewise、-tfor、-sum、-genesf、-gff。

本发明分离鉴定纯化获得的猪伪狂犬病病毒prv-dx株dna经pacbio平台测序后，进行数据组装，最终获得1条全基因组序列。结果显示prv-dx株基因组全长为143754bp，比经典的伪狂犬病毒(i型伪狂犬病毒)的基因组长5990bp，gc含量为73.59％，共编码69个开放阅读框，其中us1和ie180为内部重复序列。将prv-dx全基因组与ncbi上21条分离得到的已知全长的参考毒株进行全基因组进化分析，结果如图7，进化分析显示prv各毒株可以划分为两个明显的分支，欧美株单独属于同一分支，命名为基因i型；包括prv-dx株在内的中国株属于另一分支，命名为基因ii型。对中国毒株进一步分析发现：prv-dx株与我国2012年以来分离的流行毒株亲缘关系最近，其次为ea，fa，sc毒株，与la株进化距离最远。

对全基因组序列分析说明本发明分离的猪伪狂犬病病毒prv-dx株为基因ii型。

实施例5

将5-6周龄雌性balb/c小鼠70只，随机分成7组，10只/组。1-3组分别背部皮下注射0.1ml各含有10⁴tcid50/ml，10⁵tcid50/ml，10⁶tcid50/ml的prv-dx株(实验组)病毒液；4-6组分别背部皮下注射0.1ml各含有10⁴tcid50/ml，10⁵tcid50/ml，10⁶tcid50/ml的prv-sc株(对照组，传统的猪伪狂犬病毒株)病毒液。第7组皮下接种0.1mldmem作为阴性对照。攻毒后2周内连续观察记录小鼠的临床症状、病理剖检及死亡情况等。

用含有不同浓度的prv-dx株和prv-sc株分别接种5-6周龄balb/c小鼠，攻毒后第3-7天，dx10⁶tcid50/ml组，dx10⁵tcid50/ml组，sc10⁶tcid50/ml组和sc10⁵tcid50/ml组实验小鼠均出现不同程度的精神萎靡，被毛粗乱，食欲下降等临床症状，严重的还会出现不断啃咬接种部位，导致皮肤出血，最终死亡。dx10⁴tcid50/ml组和sc10⁴tcid50/ml组在攻毒后第4天才开始出现精神萎靡等轻微临床症状，并有小鼠死亡。7天后上述各组小鼠基本恢复正常，无明显临床症状出现。阴性对照组小鼠在整个实验期均表现正常。

经统计，小鼠死亡时间主要集中在攻毒后第3-7天。dx10⁶、10⁵、10⁴tcid50/ml攻毒组小鼠死亡数量分别是9、6、1只；而sc10⁶、10⁵、10⁴tcid50/ml攻毒组小鼠死亡数量分别是9、4、1只；阴性对照组10只小鼠全部正常存活。根据实验结果计算得出prv-dx株对小鼠的ld50为：10^4.84tcid50/ml，我国经典强毒株sc株对小鼠的ld50为10^5.16tcid50/ml。说明新分离鉴定获得的prv-dx毒株对小鼠的致病力要强于经典强毒株prv-sc两倍以上。

实施例6

将15头60日龄实验猪随机分成3组，第一组接种4ml10^7.0tcid50/mlprv-dx株病毒液，第二组接种4ml10^7.0tcid50/mlprv-sc株病毒液，阴性对照组接种4mldmem，接种方式为滴鼻接种，隔离饲养，自由采食，连续观察14天，记录体温、临床症状；并对死亡猪及时进行剖检。组织样品采集，组织切片及病毒载量检测。

攻毒后第2天，dx毒株10^7.0tcid50/ml组和sc毒株10^7.0tcid50/ml组实验动物即出现明显体温升高，其平均体温分别为：41.7℃，41.9℃。dx毒株10^7.0tcid50/ml组在攻毒后第3天实验猪出现食欲废绝，呼吸困难等临床症状，攻毒后第4天该组实验动物全部死亡，致死率为100％。而sc毒株10^7.0tcid50/ml组在攻毒后第3天仅表现出食欲下降临床症状，直到攻毒后14天，仅一头猪死亡，致死率为20％。阴性对照组均在整个实验期内均表现正常。

实验过程死亡的实验猪或试验结束后剖杀耐过实验猪，观察大体病变：prv-dx株攻毒组实验猪脑膜增厚，充血，较难剥离；脑组织严重充血；肺脏充血，淤血，肋间压迹明显；肝脏有轻微淤血现象，扁桃体增厚，淤血。prv-sc株攻毒组实验猪除脑组织和肺稍有充血、肿胀外，肝脏和扁桃体无肉眼可见明显病变。取脑，肺，肝，扁桃体组织固定后，做石蜡切片，并进行he染色。显微镜下观察病理切片，prv-dx株攻毒组脑可见毛细血管淤血，且在血管周围有炎性细胞浸润，形成典型的“血管套”现象；肺脏可见局灶性肺泡腔变小，且有红细胞渗出，肺泡壁上有多量炎性细胞浸润；肝脏可见小叶间动脉充血；扁桃体可见炎性细胞重度浸润。prv-sc株攻毒组脑组织也出现毛细血管淤血现象，且有极少量神经元坏死，胞核固缩浓染，胞浆深染；肺脏可见肺泡壁增厚，炎性细胞增多；该组肝脏和扁桃体无明显病变。

采用以gd基因为目的片段的荧光定量pcr方法进行检测：上游引物gdp-f：cacgccgatgtggtgga，下游引物gdp-r：ggtactggccctcgttgaa，探针probe：cy5-actacatgttccccacggaggacgag-bhq2，反应体系为：premixextaq(proqpcr)：10μl，gdp-f：0.4μl，gdp-r：0.4μl，probe：0.4μl，ddh2o：6.8μl，模板：2μl。反应条件为：95℃预变性2min，95℃变性5s，55℃退火30s，60℃延伸1min进行40个循环，同时设定阴性对照，阳性对照采用pmd18t-gd标准质粒，通过倍比稀释后作为模板，按同样方法扩增后，绘制标准曲线，根据样品ct值和标准曲线计算出相应的拷贝数，计算出prv-dx株和sc株攻毒后各脏器中的病毒载量，结果表明：病毒含量相同的prv-dx和sc株攻毒后，扁桃体和脑的病毒载量高于肺和肝脏；且dx株攻毒组中脑和肺病毒载量显著高于sc株攻毒组，其中肺脏的病毒载量极显著高于prv-sc组。

说明本发明新分离鉴定获得的ii型伪狂犬病毒dx毒株(prv-dx)对猪的致病力要远远强于经典的prv标准强毒株sc株。

将本发明猪伪狂犬病病毒prv-dx毒株送到保藏机构进行保藏，保藏于位于北京市朝阳区北辰西路1号院3号的中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心(cgmcc)，保藏号为：cgmccno.14326，保藏时间为：2017年7月6日。

序列表

<110>浙江大学

<120>一种ⅱ型伪狂犬病毒毒株及其应用

<160>16

<170>siposequencelisting1.0

<210>1

<211>19

<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>1

cggcaagtgcgtctccaag19

<210>2

<211>20

<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>2

agggcgaaggagtcgtaggg20

<210>3

<211>19

<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>3

gctctgcgtgctgtgctcc19

<210>4

<211>20

<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>4

tcgtcacttccggtttctcc20

<210>5

<211>23

<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>5

ttttatctccgtccgcgccgttt23

<210>6

<211>23

<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>6

ctcgctgtagtagcagtccgagt23

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<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

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<212>dna

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<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>9

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<212>dna

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<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

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cacgccgatgtggtgga17

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<211>19

<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>12

ggtactggccctcgttgaa19

<210>13

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<212>dna

<213>人工序列(artificialsequence)

<400>13

actacatgttccccacggaggacgag26

<210>14

<211>2745

<212>dna

<213>猪伪狂犬病病毒prv-dx(pseudorabiesvirusstrainprv-dx)

<400>14

ctagggggcgtcggggtcctcgttctcgaggcgctggtagtgccggcggcgcgtggccat60

cgccccgacgcggctggccagcagcgcgggcccgctgttcttcttgcgcgccttgtgctc120

ctgctgctcgagggccgacacgatggacatgtaccggatcatgtcccgggcctggtccag180

cttggcctcgtccacgtcgtcctcttcgacgccgtcctccttgagcgccttcgtcgtgac240

ggggtacagggccttcatggggttgcggcgcaggcgcgagatgtgccggtaggccaggaa300

ggccgcgaccaggccggccagcaccagcagcccgatggcgagcgccccgaaggggttgga360

caggaaggacaccatgccgccgacggccgagatcacggcccccgtggcgcccaggaccac420

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