本发明涉及分子生物学领域，具体涉及一种单加氧酶复合体及其在手性亚砜合成中的应用。
背景技术：
手性亚砜是一类非常重要的化合物，可作为手性中间体和辅剂、手性配体、催化剂以及临床药物，在有机合成和药物合成中有广泛的应用。现有的手性亚砜合成技术还存在着过度氧化、副产物多、反应条件苛刻等不足。生物酶的高效和高选择性，使得生物催化技术可望发展成为工业化绿色制备手性亚砜类药物的新途径。但现有研究表明，高活性和高对映选择性的手性亚砜合成酶还十分匮乏，无法满足绿色工业化生产的需求，获得高催化效率的生物酶和相应的生物催化合成方法，仍然是手性亚砜生物催化制备发展过程中的难点和瓶颈。
技术实现要素：
本发明旨在克服上述缺点，提供一种高催化活性的单加氧酶复合体，以及该单加氧酶复合体在手性亚砜生物催化合成中的应用。
为了达到上述目的，本发明提供如下基础技术方案：单加氧酶复合体pmtod，包含4个亚基，命名为：pmtoda，pmtodb，pmtodc，pmtodd；其氨基酸残基序列如seqidno.1所示。
pmtod是该单加氧酶复合体的英文解释。
本发明所涉及的单加氧酶复合体(pmtod)是从实验室保存的菌种中分离获得，获得的方法为本领域常规方法；较佳地为从重组表达pmtod的基因工程菌中分离获得或者人工合成获得。
以下是对基础技术方案的优化：
优化方案一：所述单加氧酶复合体为具有催化硫醚底物生成(r)-亚砜的蛋白质。
优化方案二：包含上述基础方案或者优化方案一的单加氧酶复合体的蛋白质编码基因。
优化方案三，基于优化方案二：所述蛋白质编码基因的核苷酸序列如seqidno.2所示。
本发明所述的单加氧酶复合体pmtod基因是从本实验室保存的菌种中克隆获得，获得的方法为本领域常规；较佳地为提取菌株基因组dna，通过pcr扩增获得，或者根据seqidno.2所示核苷酸序列人工合成获得。
优化方案四，包含优化方案二的蛋白质编码基因的重组表达载体。
优化方案五，包含优化方案三的蛋白质编码基因的重组表达载体。
本发明所述重组表达载体由通过本领域常规方法将所述pmtod基因连接于各种骨架载体上构建而成；较佳地，可通过下述方法制得：将通过pcr所得的pmtoda和pmtodb基因和骨架载体pet-dute-1连接形成重组载体petdute1-pmtoda-b，将通过pcr所得的pmtodc和pmtodd基因和骨架载体prsf-dute-1连接形成重组载体prsfdute1-pmtodc-d。
优化方案六，包含优化方案四或优化方案五中所述重组载体的基因工程菌。
本发明所述基因工程菌由通过本领域常规方法将所述重组表达载体转化至宿主微生物中制得；所述宿主微生物可为本领域常规的各种宿主微生物，只要能满足所述重组表达载体可稳定地自行复制，且所携带的亚砜还原酶基因可被有效表达即可；较佳地，可通过下述方法制得：将重组载体petdute1-pmtoda-b与prsfdute1-pmtodc-d转化至大肠杆菌bl21(de3)中。
本发明还提供了基础方案所述的单加氧酶复合体在手性亚砜制备中的应用，表达如权利要求1所述单加氧酶复合体，将其悬浮于反应缓冲液中，加入硫醚底物，放入摇床反应后，再加入乙酸乙酯萃取并收集有机相，通过柱层析分离获得(r)构型的手性亚砜。
优化方案七，基于上述单加氧酶复合体在手性亚砜制备中的应用，其特征在于：所述缓冲液为50mm浓度、ph6～9的磷酸钠缓冲液；所述的摇床转速为200-250rpm/min；反应温度为25～35℃；反应时间为12～24小时；所述的硫醚底物浓度为2～8mm。
优化方案八，所述单加氧酶复合体可以为纯化后的重组酶蛋白，含重组酶蛋白的粗酶液和含重组酶蛋白的基因工程菌休止细胞、基因工程菌生长期细胞、基因工程菌固定化细胞中的一种。
本发明的积极进步效果在于：利用所述的单加氧酶复合体能制备高光学纯度的(r)构型亚砜。相对于其它现有的制备方法，使用所述制备方法反应速率高，耗时短；所述制备方法可在常温、常压及水相环境中进行，反应条件温和，且所述制备方法不需使用强氧化剂或有毒试剂，因此具有较高的催化活性，对环境友好，操作简便。
含重组单加氧酶复合体的基因工程菌催化消旋体亚砜底物制备手性亚砜的反应过程为：
附图说明
图1为本发明的单加氧酶复合体重组表达质粒的示意图；
图2为pmtod重组蛋白sds-page凝胶电泳图片；泳道1为蛋白质分子量标志；泳道2为pmtod重组蛋白的表达情况，箭头所示为pmtod复合体的4个亚基条带。
具体实施方式
下面通过实施例的方式进一步说明本发明，但并不因此将本发明限制在所述实施例范围之中。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，按照常规方法和条件，或按照商品说明书选择。
实施例1：单加氧酶复合体基因的获得，包括以下步骤：
以基因组dna为模板，使用引物1：5’-ggccagatctcatgaatcagaccgacacatc-3’和2：5’-aattctcgaggcgtgtcgccttcagcgcg-3’进行pcr扩增获得pmtoda基因；使用引物3：5’-ggaaggatccgatgattgattcagccaacag-3’和4：5’-aaccgtcgacctagaagaagaaactgagg-3’进行pcr扩增获得pmtodb基因；使用引物5：5’-ggccagatctatggcgttgcccggcagcc-3’和6：5’-aattctcgagacgttaggtctccttcattcg-3’进行pcr扩增获得pmtodc基因；使用引物7：5’-ggaaggatccatgacttggacatacatatt-3’和8：5’-aaccgtcgaccttcaactccccgttgtcg-3’进行pcr扩增获得pmtodd基因。pcr反应体系如下：2×taqpcrmastermix10.0μl、基因组dna1μl、上下游引物各0.5μl、ddh2o8.0μl。pcr反应条件：95℃10min；98℃10s，58℃30s，72℃30s，30个循环循环；72℃延伸5min。pcr产物以1％琼脂糖凝胶电泳验证是否获得符合目的基因大小的片段。
实施例2：单加氧酶复合体基因工程菌的构建，包括以下步骤：
用限制性内切酶bamhi和sali对含有pmtoda基因序列的dna片段及载体petdute-1进行双酶切，酶切回收的目的片段和载体。用t4dna连接酶，16℃连接4h后，连接产物转化大肠杆菌dh5α。过夜培养后，挑取长出的单克隆菌落摇菌并提取质粒，利用bamhi和sali对重组质粒petdute1-pmtoda进行双酶切检测。接着，接着用bglii和xhoi对pmtodb基因及重组质粒petdute1-pmtoda进行同样的操作后，获得重组载体petdute1-pmtoda-b。接着，用限制性内切酶bamhi和sali对含有pmtodc基因序列的dna片段及载体prsfdute-1进行双酶切，用t4dna连接酶连接后，连接产物转化大肠杆菌dh5α，获得重组质粒prsfdute1-pmtodc进行双酶切检测。接着，接着用bglii和xhoi对pmtodd基因及重组质粒prsfdute1-pmtodc进行同样的操作后，获得重组载体prsfdute1-pmtodc-d。最后，将两个重组载体petdute1-pmtoda-b和prsfdute1-pmtodc-d共转化到大肠杆菌菌株bl21(de3)中，获得含pmtod重组表达质粒的基因工程菌，保存于-80℃冰箱。
实施例3：单加氧酶复合体重组蛋白的获得，包括以下步骤：
将保存于甘油中含重组质粒的基因工程菌bl21(de3)划平板活化后，挑单菌落于2ml含相应抗生素的液体lb培养基中，37℃振荡培养12h，次日以2％接种量转接于新鲜的含抗生素的100mllb液体培养基中，37℃250rpm振荡培养od600为0.6(约3h)，加入终浓度为0.2mm的iptg，25℃160rpm诱导培养8h。诱导结束后5000rpm/min离心5min收集菌体，菌体重悬于pbs缓冲液中，超声波破碎菌体，15000rpm离心5min去细胞碎片，取上清与2x上样缓冲液混合后，于恒温金属浴中100℃加热5min后作sds-page电泳分析。附图2的结果说明，获得了大量的可溶性表达的亚砜还原酶。
实施例4：利用含重组亚砜还原酶的基因工程菌制备(r)构型手性苯甲亚砜，包括以下步骤：
1)基因工程菌的培养：挑取构建好的基因工程菌单菌落于2mllb培养基，于37℃摇床180rpm的转速下培养12h后，转入含有50mllb培养基的250ml的大摇瓶，培养至od600＝0.6时加入终浓度为0.2μm的iptg，继续培养14h后，于5000rpm的条件下离心去除上清液，获得菌株的湿细胞备用；
2)生物转化：将所培养菌株的湿细胞，以30g/l的细胞浓度悬浮于5ml、ph为7.5的pbs缓冲液中，将底物苯甲硫醚2.5mg加入上述5ml反应体系中，放入摇床于30℃，250rpm条件下反应16h后，加入乙酸乙酯萃取，收集15瓶萃取后的有机相，用无水硫酸钠干燥，离心去除硫酸钠并过滤。加压蒸去溶剂，柱层析分离，获得(r)-苯甲亚砜。产物做手性hplc分析，(r)-苯甲亚砜28％产率，99％ee。
以上所述，仅是本发明的较佳实施例而已，并非对本发明作任何形式上的限制，任何未脱离本发明技术方案内容，依据本发明的技术实质对以上实施例所作的任何简单修改、等同变化与修饰，均仍属于本发明技术方案的范围内。
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