专利名称：：产量提高的植物的制作方法产量提高的植物本发明一般涉及植物细胞和/或植物，其与相应的未转化野生型植物细胞相比，通过在植物中提高或产生一种或多种与中间体磷酸核糖焦磷酸(PRPP)相关多肽的活性而具有提高的产量。具体地，本发明涉及植物细胞和/或植物，其与相应的未转化野生型植物细胞相比，通过提高或产生磷酸核糖焦磷酸合酶(PRPP合酶，PRS)的一种或多种活性而具有提高的产量。植物是光合自养的生物，能产生发育和生长所需的所有有机化合物。在过去几年中，已经鉴定了许多影响植物细胞和器官生长的因子，生长相关蛋白的分子功能也开始得以阐明。鉴于发育过程与代谢途径使用共同的资源库，并且这两个过程都应答于环境能量和资源供应，很显然资源可用性可能对细胞增殖和生长具有直接影响。Baldet及其同事最近证明了这种密切的相关关系(丄Exp.Bot.57，961-970，2006)，其显示番茄植林的果实负荷降低在所有其他植物器官(包括根、茎、叶、花和其他果实)中导致光同化作用提高和生长速率提高。另一方面，之前的实验已显示，在核苷酸从头合成降低的情况下，马铃薯和烟草植林的生长降低，而没有进一步的多效性(Schr6der等，PlantPhysiol.138，1926—1938，2005)。对植物代谢途径的靶向调控(优选通过重组方法实现)使得可以有利的方式改变植物代谢，这在使用传统育种方法时只有在复杂的操作之后才能实现，或者根本无法实现。因此，罕见的脂肪酸(例如特定的多不饱和脂肪酸)仅在某些植物中合成或在植物中根本不合成，因此只能通过在转基因植物中表达相关的酶来产生(例如Millar等TrendsPlantSci5:95-101,2000)。三酰甘油和其他脂质是由脂肪酸合成的。脂肪酸生物合成和三酰甘油7生物合成由于区室作用而可以认为是独立的生物合成途径，但就终产物而言则是一个生物合成途径。脂质合成可分成两个部分机制，一个可称为"原核的"，另一个可称为"真核的，，(Browse等BiochemicalJ235:25-31，1986;Ohlrogge&BrowsePlantCell7:957-970，1995)。该合成的原冲亥才A4'H立于质体中，包括生物合成游离的脂肪酸，它们被输出到胞质溶胶中，在此以脂肪酸酰基CoA酯的形式进入真核机制，并与甘油-3-磷酸(G3P)酯化得到磷脂酸(PA)。PA是合成中性和极性脂质的起点。中性脂质在内质网上通过Kennedy途径等合成(VoelkerGeneticEngineering,Setlow(ed.)18:111-113，1996;Shankline&Cahoon，AnnuRevPlantPhysiolPlantMolBiol49:611-649，1998;Frentzen等，Lipids100:161-166，1998)。除了三酰甘油的生物合成以外，G3P也在甘油合成中发挥作用。该合成所必需的G3P通过以甘油-3-磷酸脱氢酶(G3PDH，也称为二羟丙酮磷酸还原酶)还原二幾丙酮磷酸(DHAP)来合成。通常，NADH作为还原性同底物(EC1.1.1.8)。另一类甘油-3-磷酸脱氢酶(ECl丄99.5)利用FAD作为同底物。这一类别的酶催化DHAP到G3PDH的反应。在真核细胞中，这两类酶分布在不同区室中，NAD依赖性的酶位于胞质溶胶中，FAD依赖性的酶位于线粒体中(就酿酒酵母而言，参阅如Larsson等，Yeast14:347-357，1998)。WO2003/095655公开了通过表达来自酵母的甘油-3-磷酸脱氢酶(G3PDH)来提高转基因植物的总含油量。此外，WO2004/039946公开了基于改变FAD2mRNA或FAD2蛋白的浓度来提高植物的含油量的方法。WO2004/057946描述了通过使用表达豆血红蛋白和/或血红蛋白的转化植物来改变植物中贮藏物质含量的方法。磷酸核糖焦磷酸合酶(PRS;EC2.7.6.1)催化5-磷酸核糖基a-l-焦磷酸(PRPP)的形成，其中焦磷酸基从ATP转移至核糖5-磷酸(R5P)(Kronberg等，1955)。该反应通过R5P中Cl-OH基对ATP中p-磷酰基的亲核攻击来进行。就其本身而言，5-磷酸核糖a-l-焦磷酸(PRPP)在从头合成和补救途径(再循环)中都作为合成所有其他核普酸的中心化合物而是必需的，因此是整个细胞代谢中重要的中间体。由于在代谢中的这种中心作用，所有的生命形式中都具有编码PRS的至少一个PRS基因拷贝也就不足为奇了(Krath等，1999)。PRS已在分子和生化水平在多种生物中进行了表征，如(Fox&Kelly，1971)、大肠杆菌(Hove-Jensen等，1986)、枯草芽孢杆菌(Bacillussubtilis)(Arnvig等，1990)、酉良酒酵母(Saccharomycescervisiae)(Carter等，1994)和拟南芥(A.thaliana)(Krath等，1999)等。原核生物仅有一个PRS基因拷贝，而真核生物则含有多种同工型。大鼠和人分别具有两个和三个PRS基因(Taira等，1987)，菠菜中可鉴定出四种同工型(Krath&Hove-Jensen，1999)，拟南芥中有五种同工型，白杨树(Populustrichocarpa)中甚至有6种同工型。菠菜的四种同工型中有两种位于细胞器中，另一种在胞质溶胶中(Krath等，1999)。PRS蛋白可分为两类。第I类("经典，，PRS)代表例如大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、哺乳动物的酶以及一些植物同工型。相反，第二类看来是植物特异性的，包括如菠菜的PRS同工型3和4(Krath等，1999)。这两类是基于其酶特性来区分的。I类PRS的活性和稳定性取决于Pi的供给，而II类酶的活性则不然。与第二类PRS相反，第一类"经典"酶被ADP(腺苷5，-二磷酸)别构抑制。还发现了底物特异性的差异"经典"酶特别地使用ATP(腺苷5，-三磷酸)作为底物，在一些情况下也使用dATP，而II类酶具有更宽的底物谱。除了ATP和dATP以外，它们还接受GTP、CTP和UTP。这两类酶的这些重大的酶特性差异还反映在其氨基酸序列的低相似性(Krath等，1999;Krath&Hove-Jensen，1999;2001)。美国申请20050176033公开了使用来自大肠杆菌的磷酸核糖焦磷酸合酶(PRPP合酶)的反馈抗性突变体来制备L-组氨酸。5-磷酸核糖a-l-焦磷酸(PRPP)和腺脊5'-三磷酸(ATP)是组氨酸生物合成的起始材料。美国申请20020137169还公开了过表达编码PRPP合酶的PRS基因(登录号U76387)。这时，将PRS基因与编码烟酸核苷酸焦磷酸化酶蛋白的9nadC基因一起过表达，用于制备烟酸及其衍生物。迄今为止，还没有发现核苷酸可用性在脂质合成中的重要性。如上文所述，对于植物中生长与产生防御化合物或贮藏产物之间的关系还没有重要的发现。但基于目前的知识，可以推测，植物中在生长、产生防御化合物和贮藏产物之间存在对代谢物分布的严谨调节。例如，根冠干重比提高主要是由于枝条干重相对降低。种子产量与地上部分千重的比值在许多环境条件下都相对稳定，因此经常可在植物大小与籽粒产量之间获得强相关性。这些过程之间存在内在联系，因为大部分籽粒生物量取决于当前植物的叶和茎中贮藏的光合作用生产力。需要鉴定植物中能提高产量的基因。本发明的一个目的是鉴定赋予植物或植物细胞提高的产量的新方法。本发明的另一目的是提出提高植物产量的生物技术方法作为替代性的可再生能源。还非常需要提高可栽培植物的产量，优选这些植物的种子产量。除了提高植物产量(优选为所用植物生物的高收获产量)以外，应从该种子中培养迅速且强健地生长的幼苗。此外，除了产生期望特征的改变(例如产量提高，优选生物量或总含油量提高，以及本发明方法所产生种子长出的幼苗生长更为迅速)以外，这样的方法不应给植物生物带来任何其他不期望或负面的特性。因此，例如为了提高转基因植物的总含油量，应向植物中引入尽可能少的基因。此外，该方法应该简单且经济。因此，在第一个实施方案中，本发明提供用于产生转基因植物细胞或植物的方法，所述转基因植物细胞或植物与相应的(未转化)野生型或起始植物细胞相比，通过提高或产生一种或多种活性而具有提高的产量，所述活性选自磷酸核糖焦磷酸合酶。就本发明的描述而言，增强或提高的"产量"指选自以下的一个或多个产量参数生物量、干生物量产量、地上部分生物量产量、地下部分干生物量产量、鲜重生物量产量、地上部分鲜重生物量产量、地下部分鲜重生物量产量；提高的可收获部分产量，其可以是干重或鲜重或二者皆有，地上部分或地下部分或二者皆有；增加的作物果实，其可以是干重或鲜重或二者皆有，地上部分或地下部分或二者皆有；优选提高的种子产量，其可以是干重或鲜重或二者皆有，地上部分或地下部分或二者皆有；幼苗的鲜重积累、花结(rosette)鲜重、植物高度、总氨基酸含量、总核苷酸含量、总含油量、总含脂量。"产量"的含义主要取决于目的作物，应该理解，每个特定情况下，本领域技术人员会明白在本说明书中的含义。在一个实施方案中，通过提高一种或多种蛋白质的量和/或活性来提高所述活性，所述蛋白质具有选自以下的活性磷酸核糖焦磷酸合酶，以及包含选自SEQIDNO:2，4，13，51,52，53，54，55，56，57，58，59，60，61，62，63，51,52，53，54，55，56,57,58，59，60，61,62，63，7，8，9，10，11,14，15，16，n，i8的多肽的多肽。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型或起始光合活性生物相比显示出提高的生物量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型或起始光合活性生物相比显示出提高的干生物量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的地上部分干生物量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦辨酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相ii比显示出提高的地下部分干生物量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的鲜重生物量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的地上部分鲜重生物量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的地下部分鲜重生物量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的植物可收获部分产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的植物干可收获部分产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的植物地上部分干可收获部分产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的植物地下部分干可收获部分产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的植物鲜重可收获部分产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的植物地上部分鲜重可收获部分产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的植物地下部分鲜重可收获部分产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的作物果实产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始才直物细月包相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的鲜作物果实产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的干作物果实产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始才直物细^^目比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相13比显示出提高的籽粒干重。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的种子产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的鲜重种子产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的千种子产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的幼苗鲜重产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的花结鲜重产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的植物高度。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的总氨基酸含量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的总核苷酸含量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细胞相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的总含油量产量。在一个实施方案中，与相应(未转化)野生型或起始植物细月包相比通过提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性而具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分与相应(未转化)野生型光合活性生物相比显示出提高的总脂类含量产量。本发明的光合活性生物包括植物细胞、植物或其部分；起始植物细胞以及植物的某些组织、器官和部分；植物的繁殖材料(如种子、块茎和果实)或种子；以及植物的所有表现形式，例如花药、纤维、根毛、茎、叶、胚、愈伤组织、子叶、叶柄、枝、幼苗、收获材料、植物组织；来自实际转基因植物和/或可用于产生转基因植物的生殖组织和细胞培养物。还包括成熟植物。成熟植物应理解为幼苗之后任何发育阶段的植物。幼苗是早期发育阶段的年幼未成熟植物。在一个实施方案中，术语"提高的产量"指该光合活性生物(特别是植物)与相应的野生型光合活性生物相比显示出提高的生长速率。提高的生长速率可通过以下方面来反映完整植物的生物量产生提高，或植物地上部分的生物量产生提高，或者植物地下部分的生物量产生提高，或植物部分(如茎、叶、花、果实和/或种子)的生物量产生提高等。在一个实施方案中，提高的产量包括更高的果实产量、更高的种子产量、更高的鲜物质产生和/或更高的千物质产生。在另一实施方案中，本发明满足了对鉴定能在表达或过表达内源和/15或外源基因后赋予光合活性生物(特别是植物)产量提高的新的独特基因的需要。在另一实施方案中，本发明满足了对鉴定能在表达或过表达内源基因后赋予光合活性生物(特别是植物)产量提高的新独特基因的需要。在另一实施方案中，本发明满足了对鉴定能在表达或过表达外源基因后赋予光合活性生物(特别是植物)产量提高的新独特基因的需要。在一个实施方案中，本发明涉及产生转基因光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)的方法，所述光合活性生物或其部分与相应的未转化野生型光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)相比具有提高的产量，该方法包括(a)在光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)中提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性，和胞、植物或其部分)相比具有提高的产量的光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)发育的条件下，培养所述光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)。在一个实施方案中，本发明涉及产生转基因光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)的方法，所述光合活性生物或其部分与相应的未转化野生型光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)相比具有提高的产量，该方法包括(a)在光合活性生物细胞的质体中提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性，和胞、植物或其部分)相比具有提高的产量的光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)发育的条件下，培养所述光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)。在一个实施方案中，本发明涉及产生转基因光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)的方法，所述光合活性生物或其部分与相应的未转化野生型光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)相比具有提高的产量，该方法包括(a)在光合活性生物细胞的胞质中提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性，和胞、植物或其;分)二比具有提高的产量的光合活性i物i其部分(优选植物细胞、植物或其部分)发育的条件下，培养所述光合活性生物或其部分(优选才直物细胞、纟直物或其部分)。在一个实施方案中，本发明涉及产生转基因光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)的方法，所述光合活性生物或其部分与相应的未转化野生型光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)相比具有提高的产量，该方法包括(a)在光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自SEQIDNO:2，4，13，51,52，53，54，55，56，57，58,59，60，61，62，63，51，52，53，54，55，56，57，58，59，60，61，62，63或其同源物，和比具有提高的产量的光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)发育的条件下，培养所述光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)。在一个实施方案中，本发明涉及产生转基因光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)的方法，所述光合活性生物或其部分与相应的未转化野生型光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)相比具有提高的产量，该方法包括(a)在光合活性生物细胞的质体中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自SEQIDNO:2，4，13，51，52，53，54，55，56,57，58,59，60，61，62，63，51，52，53,54,55,56，57，58，59，60，61，62，63或其同源物，和A/17比具有提高的产量的光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)发育的条件下，培养所述光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)。在一个实施方案中，本发明涉及产生转基因光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)的方法，所述光合活性生物或其部分与相应的未转化野生型光合活性生物或其部分(优选植物细胞、植物或其部分)相比具有提高的产量，该方法包括(a)在光合活性生物的胞质中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自SEQIDNO:2，4,13，51，52，53，54，55，56，57，58，59，60，61,62，63，51，52，53，54，55，56，57，58，59，60，61，62，63或其同源物，和比具有提高的产量的光合活性生物或其部分(优选植物细胞、4直物或其部分)发育的条件下，培养所述光合活性生物或其部分(优选植物细^>、植物或其部分)。因此，本发明涉及产生转基因植物细胞、植物或其部分的方法，所述转基因植物细胞、植物或其部分与相应的未转化野生型转基因植物细胞、植物或其部分相比具有增强的营养限制耐性和/或提高的产量，该方法包括(a)在植物细胞的质体中提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性，和(b)在允许与相应的未转化野生型植物相比具有增强的营养限制耐性和/或提高的产量的植物发育的条件下，培养所述植物细胞。在另一实施方案中，本发明涉及产生转基因植物细胞、#_物或其部分的方法，所述植物细胞、植物或其部分与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比具有增强的营养限制耐性和/或提高的产量，该方法包括(a)在植物细胞的胞质中提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性，和(b)在允许与相应的未转化野生型植物相比具有增强的营养限制耐性和/或提高的产量的植物发育的条件下，培养所述植物细胞。在另一实施方案中，本发明涉及产生转基因植物细胞、植物或其部分的方法，所述光合活性生物或其部分与相应的未转化野生型植物细胞、档_物或其部分相比具有增强的营养限制耐性和/或提高的产量，该方法包才舌(a)在植物细胞的质体中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自SEQIDNO:2,4，13，51，52，53，54,55，56，57，58，59,60,61，62，63，51,52，53,54,55，56，57，58，59，60，61，62，63或其同源物，和(b)在允许与相应的未转化野生型植物相比具有增强的营养限制耐性和/或提高的产量的植物发育的条件下，培养所述植物细胞。在一个实施方案中，本发明涉及产生转基因植物细胞、植物或其部分的方法，所述光合活性生物或其部分与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比具有增强的营养限制耐性和/或提高的产量，该方法包括(a)在植物细胞的胞质中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自SEQIDNO:2，4，13，51，52，53,54，55，56,57，58，59，60，61，62，63，51，52，53，54，55，56，57，58，59,60，61，62，63或其同源物，和(b)在允许与相应的未转化野生型植物相比具有增强的营养限制耐性和/或提高的产量的植物发育的条件下，培养所述植物细胞。在另一实施方案中，本发明涉及产生转基因植物细胞、植物或其部分的方法，所述植物细胞、植物或其部分与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比具有提高的产量，该方法包括(a)在植物细胞的细胞器中提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性，或者(b)在植物细胞中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自由选自SEQIDNO:1，3，12，38，39，40，41，42，43，44，45，46，47，48，49，50或其同源物的核酸序列所编码的SEQIDNOs:2，4，13,51，52，53，54，55，56，57，58,59，60，61，62，63或其同源物，所述核酸序列与编码转运肽的核酸序列连接，或者(c)在植物细胞中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自由选自SEQIDNO:1，3，12，38，39,40，41,42，43，44，45，46，47，48，49，50或其同19源物的核酸序列所编码的SEQIDNOs:2，4，13，51,52，53，54，55，56，57，58,59，60，61，62，63或其同源物，所述核酸序列与编码叶绿体定位序列的核酸序列连接，和(d)在允许与相应的未转化野生型植物相比具有提高的产量的植物发育的条件下，培养所述植物细胞。在另一实施方案中，本发明涉及产生转基因植物细胞、植物或其部分的方法，所述植物细胞、植物或其部分与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比具有提高的产量，该方法包括(a)通过转化细胞器而在植物的细胞器中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自由选自SEQIDNO:1，3，12，38，39，40，41，42，43，44，45，46，47，48，49,50或其同源物的核酸序列所编码的SEQIDNOs:2，4，13，51，52，53，54，55，56，57，58，59，60，61，62，63或其同源物，或者(b)通过转化质体而在植物或其一个或多个部分的质体中提高或产生蛋白质的活性，所述蛋白质选自由选自SEQIDNO:1，3，12，38，39，40，41，42，43,44，45，46，47，48，49，50或其同源物的核酸序列所编码的SEQIDNOs:2，4，13，51，52，53，54，55，56，57，58，59，60，61，62，63或其同源物，和(c)在允许与相应的未转化野生型植物相比具有提高的产量的植物发育的条件下，培养所述植物细胞。原则上，编码转运肽的核酸序列可分离自每种生物，例如微生物，例如含有质体(优选叶绿体)的藻类或植物。"转运肽"是一种氨基酸序列，其编码核酸序列与相应的结构基因一起被翻译。这意味着转运肽是翻译后蛋白质的整体部分，形成了蛋白质的氨基酸端延伸。这两者一起翻译成所谓的"前蛋白"。一般而言，转运肽在蛋白质运输进正确的细胞器(如质体)的过程中或运输后立即被切下，得到成熟蛋白。转运肽通过协助蛋白质转运穿过胞内膜而确保了成熟蛋白的正确定位。编码转运肽的优选核酸序列来自最终位于质体并且来自于选自以下的生物的核酸序列伞藻属(Acetabularia)、拟南芥属(Arabidopsis)、芸苔属(Brassica)、辣椒属(Capsicum)、衣藻属(Chlamydomonas)、南瓜属(Cururbita)、杜氏藻属(Dunaliella)、棵藻属(Euglena)、黄花菊属(Flaveria)、大豆属(Glycine)、向日葵属(Helianthus)、大麦属(Hordeum)、浮萍属(Lemna)、黑麦草属(Lolium)、番茄属(Lycopersion)、苹果属(Malus)、苜蓿属(Medicago)、日中花属(Mesembryanthemum)、烟草属(Nicotiana)、月见草属(Oenotherea)、稻属(Oryza)、牵牛属(Petunia)、菜豆属(Phaseolus)、剑叶藓属(Physcomitrella)、松属(Pinus)、豌豆属(Pisum)、萝卜属(Raphanus)、蝇子草属(Silene)、芥属(Sinapis)、茄属(Solanum)、菠菜属(Spinacea)、甜菊属(Stevia)、集球藻属(Synechococcus)、小麦属(Triticum)和玉蜀黍属(Zea)。有利地，有益地用于本发明方法中的这些转运肽来自编码选自以下蛋白质的核酸序列核酮糖二磷酸羧化酶/加氧酶、5-烯醇式丙酮酰莽草酸-3-磷酸合酶、乙酰乳酸合酶、叶绿体核糖体蛋白CS17、Cs蛋白、铁氧还蛋白、质体蓝素、核酮糖二磷酸羧化酶活化酶、色氨酸合酶、酰基载体蛋白、质体陪伴蛋白-60、细胞色素cs52、22-kDA热休克蛋白、33-kDa氧相关增强子蛋白1(Oxygen-evolvingenhancerprotein1)、ATP合酶y亚基、ATP合酶6亚基、叶绿素-a/b-结合蛋白II-l、氧相关增强子蛋白2、氧相关增强子蛋白3、光系统I:P21、光系统I:P28、光系统I:P30、光系统I:P35、光系统I:P37、甘油-3-磷酸酰基转移酶、叶绿素a/b结合蛋白、CAB2蛋白、羟甲基胆色烷合酶、丙酮酸-正磷酸双激酶、CAB3蛋白、质体4失蛋白、铁蛋白、早期光诱导蛋白、谷氨酸-l-半醛氨基转移酶、原叶绿素还原酶、淀粉粒结合的淀粉酶合酶(starch-granule-boundamylasesynthase)、光系统II的光收获叶绿素a/b结合蛋白、主要花粉变应原Lolp5a、质体ClpBATP依赖性蛋白酶、超氧化物歧化酶、铁氧还蛋白NADP氧化还原酶、28-kDa核糖核蛋白、31-kDa核糖核蛋白、33-kDa核糖核蛋白、乙酰乳酸合酶、ATP合酶CFQ亚基1、ATP合酶CFo亚基2、ATP合酶CFq亚基3、ATP合酶CFo亚基4、细胞色素f、ADP-葡萄糖焦磷酸化酶、谷氨酰胺合酶、谷氨酰胺合酶2、石灰酸酐酶、GapA蛋白、热休克蛋白hsp21、磷酸易位酶、质体ClpAATP依赖性蛋白酶、质体核糖体蛋白CL24、质体核糖体蛋白CL9、质体核糖体蛋白PsCL18、质体核糖体蛋白PsCL25、DAHP合酶、淀粉磷酸化酶、根酰基载体蛋白II、甜菜酪脱氢酶、GapB蛋白、谷氨酰胺合成酶2、磷酸核酮糖激酶、亚硝酸还原酶、核糖体蛋白L12、核糖体蛋白L13、核糖体蛋白L21、核糖体蛋白L35、核糖体蛋白L40、磷酸丙糖-3-磚酸甘油酸-磷酸易位蛋白、铁氧还蛋白依赖性谷氨酸合酶、甘油酪-3-磷酸脱氢酶、NADP依赖性苹果酸酶和NADP苹果酸脱氩酶。编码转运肽的更优选核酸序列来自编码最终位于质体并且来自于选自以下生物的蛋白质的核酸序列地中海伞藻(Acetabulariamediterranea)、才以南芥('Arabidopsisthaliana)、芸吝(Brassicacampestris)、欧洲油菜(Brassicanapus)、辣椒(Capsicumannuum)、雷氏衣藻(Chlamydomonasreinhardtii)、南瓜(Cururbitamoschata)、盐生杜氏藻(DunalielIasalina)、;^土氏藻(Dunaliellatertiolecta)、细小棵藻(Euglenagracilis)、Flaveriatrinervia、大豆(Glycinemax)、向日葵(Helianthusannuus)、大麦(Hordeumvulgare)、浮萍(Lemnagibba)、黑麦草(Loliumperenne)、番痴(Lycopersionesculentum)、苹果(Mahisdomestica)、野苜蓿(Medicagofalcata)、紫苜莆(Medicagosativa)、水叶日中花(Mesembryanthemumcrystallinum)、白花丹叶烟草(Nicotianapl腿baginifolia)、美花烟草(Nicotianasylvestris)、烟草(Nicotianatabacum)、月见草(Oenothereahookeri)、稻(Oryzasativa)、碧冬茄(Petuniahybrida)、菜豆(Phaseolusvulgaris)、展叶剑叶藓(Physcomitrellapatens)、黑松(Pinustunbergii)、豌豆(Pisumsativum)、萝卜(Raphanussativus)、白花錄子草(Silenepratensis)、白芥(Sinapisalba)、马铃薯(Solanumtuberosum)、菠菜(Spinaceaoleracea)、甜菊(Steviarebaudiana)、聚球藻属(Synechococcus)、集胞藻属(Synechocystis)、小麦(Triticumaestivum)和玉米(Zeamays)。更优选的冲亥酸序歹'j编石马如vonHeijne等(PlantMolecularBiologyReporter,9(2)，104，(1991))所述的转运肽，该文献通过参考并入本文。表V显示了vonHeijne等所述转运肽的一些实例。根据本发明特别是实施例中的公开内容，本领域技术人员能够将vonHeijne等所公开的其他核酸序22列连接起来。最优选的编码转运肽的核苷酸序列来自菠菜属，例如叶绿体30S核糖体蛋白PSrp-l、根酰基载体蛋白II、酰基载体蛋白、ATP合酶:Y亚基、ATP合酶:S亚基、细胞色素f、铁氧还蛋白I、铁氧还蛋白NADP氧化还原酶(二FNR)、亚硝酸还原酶、磷酸核酮糖激酶、质体蓝素或碳酸酐酶。本领域技术人员会理解，可以从质体定位蛋白中容易地分离编码转运肽的多种其他核酸序列，所述蛋白从核基因中表达为前体，接着靶向至质体。这样的转运肽编码序列可用于构建其他表达构建体。有利地用于本发明方法并且作为本发明核酸序列和蛋白质的一部分的转运肽一般长度为20至120个氨基酸，优选25至110、30至100或35至90个氨基酸，更优选40至85个氨基酸，最优选45至80个氨基酸，并在翻译后发挥将蛋白质引导至质体(优选叶绿体)的功能。编码这些转运肽的核酸序列位于编码成熟蛋白的核酸序列的上游。为了将转运肽编码核酸与编码待靶向蛋白质的核酸正确地进行分子连接，有时必须在连接位置引入额外的碱基对，其形成可用于对不同核酸分子进行分子连接的限制酶识别序列。该方法可导致成熟输入蛋白的N端出现很少的额外氨基酸，它们通常(并且优选)不干扰蛋白质的功能。在任何情况下，连接位置处形成限制酶识别序列的额外碱基对都必须慎重选择，以避免形成终止密码子或编码对蛋白质折叠产生强烈影响的氨基酸(如脯氨酸)的密码子。优选地，这些额外的密码子编码结构柔软的小氨基酸，例如甘氨酸或丙氨酸。因此，如上述，可将编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质(由SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50种编码转运肽的核酸序列确保将该蛋白质运输至质体。待表达基因的核酸序列与编码转运肽的核酸序列有效连接。因此，转运肽与编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质(由SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物的核酸序列编码)的核酸序列框内融合。本发明的术语"细胞器，，表示例如"线粒体"或优选地表示"质体"。本发明的术语"质体"旨在包括多种形式的质体，包括前质体、叶绿体、色质体、gerontoplast、白色体、造粉体、油质体和黄化质体，优选叶绿体。它们都具有共同的祖先——前述的前质体。Schmidt等(J.Biol.Chem.268(36)，27447(1993))、Della-Cioppa等(Plant.Physiol.84，965(1987))、deCastroSilvaFilho等(PlantMol.Biol.30,769(1996))、Zhao等(J.Biol.Chem.270(11)，6081(1995))、R6mer等(Biochem.Biophys.Res.Commun.196(3)，1414(1993))、Keegstra等(Annu.Rev.PlantPhysiol.PlantMol.Biol.40，471(1989》、Lubben等(PhotosynthesisRes,17，173(1988))和Lawrence等(J.Biol.Chem.272(33),20357(1997))描述了其他转运肽。KermodeAllisonR.在CriticalReviewsinPlantScience15(4)，285(1996)中以"MechanismsofIntracellularProteinTransportandTargetinginPlantCells,，，为题描述了关于靶向的一般性综述。用于本发明方法中并构成本发明核酸序列一部分的有利的转运肽序列一般富含羟基化氨基酸残基(丝氨酸和苏氨酸)，这两种残基一般构成了总数的20至35%。它们经常具有不含Gly、Pro和带电残基的氨基末端区域。此外，它们含有大量小疏水氨基酸，例如缬氨酸和丙氨酸，一般缺少酸性氨基酸。此外，它们一般具有富含Ser、Thr、Lys和Arg的中间区域。总体而言，它们通常带有正的净电荷。或者，可以根据本领域已公开转运肽序列的结构，部分或完全地化学合成编码转运肽的核酸序列。所述天然或化学合成的序列可以与编码成熟蛋白的序列直接连接，或者通过接头核酸序列连接，所述接头的长度一般小于500个碱基对，优选小于450、400、350、300、250或200个碱基对,更优选小于150、100、卯、80、70、60、50、40、或30个碱基对，最优选小于25、20、15、12、9、6或3个碱基对，并与编码序列符合读框。此外，编码转运肽的有利的核酸序列可包含来自一种以上生物和/或化学来源的序列，并可包括在天然状态下与该转运肽相连的来自成熟蛋白氨基端区域的核酸序列。在本发明的一个优选实施方案中，所述成熟蛋白的氨基端区域的长度一般小于150个氨基酸，优选小于140、130、120、110、100或90个氨基酸，更优选小于80、70、60、50、40、35、30、25或20个氨基酸，最优选小于19、18、17、16、15、14、13、12、11或10个氨基酸。但更短或更长的节段也是可能的。此外，靶向序列也可以是本发明核酸序列的一部分，所述靶向序列有利于将蛋白质转运至其他细胞区室，例如液泡、内质网、高尔基复合体、乙醛酸循环体、过氧化物酶体或线粒体。由所述本发明核酸序列翻译成的蛋白质是一种融合蛋白，这意味着编码转运肽的核酸序列(例如表I所示，优选该表中的最后一个)与选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物的核酸序列连接。本领域技术人员能够以功能性方式连接所述序列。有利地，在转运(优选转运至质体)过程中将转运肽部分从选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质部分上切下。表I最后一行所示优选转运肽的所有切割产物均优选地在选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质的起始曱硫氨酸之前具有N端氨基酸序列QIACSS或QIAEFQLTT。在选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质的起始甲硫氨酸之前还可以存在1至20个氨基酸、优选2至15个氨基酸、更优选3至10个氨基酸、最优选4至8个氨基酸的其他短氨基酸序列。对于氨基酸序列QIACSS的情况，起始甲硫氨酸之前的三个氨基酸来自于LIC=(ligatationin^pendent￡loning，连接独立的克隆)盒。所述短氨基酸序列在表达大肠杆菌基因时是优选的。对于氨基酸序列QIAEFQLTT的情况，起始曱疏氨酸之前的六个氨基酸来自于LIC盒。所述短氨基^列在表达酿酒酵母基因时是优选的。本领域技术人员了解，其他短序列也可用于表达选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、2545、柏、4、48、49、50或其同源物的基因。此外，本领域技术人员理解，这些短序列不是基因表达中必需的。<table>tableseeoriginaldocumentpage26</column></row><table>转运肽生物转运肽SEQIDNO:参考文献RPKKNRSRYHVSVMNVATEINSTEQVVGKFDSKKSARPVYPFAAI7拟南芥MASTALSSAIVGTSFIRRSPAPISLRSLPSANTQSLFGLKSGTARGGRWAM25PlantPhysiol.93,572(1990)8拟南芥MAASTMALSSPAFAGKAVNLSPAASEVLGSGRVTNRKTV26Nucl.AcidsRes.14，4051(1986)9拟南芥MAAITSATVTIPSFTGLKLAVSSKPKTLSTISRSSSATRAPPKLALKSSLKDFGVIAVATAASIVLAGNAMAMEVLLGSDDGSLAFVPSEFT27Gene65,59(1988)10拟南芥MAAAVSTVGAINRAPLSLNGSGSGAVSAPASTFLGKKVVTVSRFAQSNKKSNGSFKVLAVKEDKQTDGDRWRGLAYDTSDDQIDI28Nud.AcidsRes.17，2871(1989)11拟南芥MKSSMLSSTAWTSPAQATMVAPFTGLKSSASFPVTRKA画DITSITSNGGRVSC29PlantMol.Biol.11，745(1988)12拟南芥MAASGTSATFRASVSSAPSSSSQLTHLKSPFKAVKYTPLPSSRSKSSSFSVSCTIAKDPPVLMAAGSDPALWQRPDSFGRFGKFGGKYVPE30Proc.Natl.Acad.Sci.USA,86，4604(1989)13芸苔MSTTFCSSVCMQATSLAATTRISFQKPALVSTTNLSFNLRRSIPTRFS31Nucl.AcidsRes.15，27<table>tableseeoriginaldocumentpage28</column></row><table>作为借助于例如表I所述靶向序列(单独或与其他靶向序列结合，优选耙向质体中的序列)对选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的序列(优选一般而言在核中编码的序列)进行靶向的替代，也可以将本发明的核酸直接引入质体基因组中。因此在一个优选的实施方案中，将选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物的核醋列直接引入质体中并表达。本说明书上下文中的术语"引入"指通过"转染"、"转导"或优选通过"转化"将核酸序列插入生物中。如果核酸序列被引入质体中(即，该序列已穿过该质体的膜)，则该质体(例如叶绿体)被该外源(优选外来的)核酸序列"转化"。所述外源DNA可整合进(共价连接进)组成该质体基因组的质体DNA中，或者可以保持不被整合(例如，通过包含叶绿体复制起点)。"稳定"整合的DNA序列是这样的序列，它们在质体复制中遗传，从而将带有所整合DNA序列之特征的新质体转移至后代中。为进行表达，本领域技术人员熟悉将核酸序列引入不同细胞器(例如优选的质体)的不同方法。这些方法^^开于例如MaigaP.(Annu.Rev.PlantBiol.55，289(2004))，EvansT.(WO2004/040973)，McBrideK.E.等(US5,455,818)，DaniellH，等(US5,932,479和US5，693，507)以及StraubJ.M.等(US6,781,033)。优选的方法是转化小孢子来源的下胚轴或子叶组织(是绿色的，因此含有大量质体)叶组织，其后在选择培养基上从所述转化的植物材料再生嫩枝。用于对植物材料进行转化轰击的方法以及独立复制穿梭载体的使用为本领域技术人员所熟知。还可以进行质体的PEG介导转化，或者用双元载体进行农杆菌转化。用于质体转化的有用标记是阳性选择标记，例如氯霉素、链霉素、卡那霉素、新霉素、阿米霉素、大观霉素、三溱和/或林可霉素耐性基因。通常作为第二标记的本领域中已知的其他标记，编码针对除草剂耐性的基因可用于进一步选择，例如膦丝菌素(-草铵膦，BASTA,LibertyTM，由bar基因编码)、草甘膦(=N-(膦酰基甲基)甘氨酸，RoimdupTM，由5-烯醇式丙酮基莽草酸J-磷酸合酶基因-epsps编码)、磺脲类(如Staple,由乙酰乳酸合酶(ALS)基因编码)、咪唑啉酮卜IMI，29如咪草烟，imazamox，Clearfield,由乙酰羟酸合酶(AHAS,也称为乙酰乳酸合酶(ALS))编码或者溴草腈(-Buctril,由oxy基因编码)或者编码抗生素(如潮霉素或G418)的基因。这些第二标记在转化多数基因组拷贝的情况下是有用的。此外，阴性选择标记(如细菌胞嘧啶脱氨酶，由codA基因编码)也可用于转化质体。为了提高鉴定转化体的可能性，还期望使用报告基因作为上述耐性基因的替代或补充。报告基因为例如P-半乳糖苷酶、P-葡糖醛酸糖苷酶(GUS)、碱性磷酸酶和/或绿色焚光蛋白基因(GFP)。就本发明方法而言，通过转化质体来阻断种内特异性转基因流是非常有利的，因为许多物种(例如玉米、棉花和水稻)具有严格的质体母系遗传。通过替换植物质体中选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物或活性片段的基因，这些基因将不会存在于所述植物的花粉中。本发明的另一优选实施方案涉及使用所谓的"叶绿体定位序列"，其中第一RNA序列或分子能将第二RNA序列从细胞内的外部环境中或质体外转运或"陪伴"至叶绿体中，所述第二RNA序列为例如转录自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物的序列，或者是编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质的序列。在一个实施方案中，所述叶绿体定位信号与完整或完好的类病毒序列基本相似或互补。叶绿体定位信号可由转录成叶绿体定位RNA的DNA序列编码。术语"类病毒，，指天然的单链RNA分子(Flores，C.R.AcadSciIII.324(10)，943(2001))。类病毒通常含有约200-500个核苷酸，并一般作为环状分子存在。含有叶绿体定位信号的类病毒实例包括但不仅限于ASBVd、PLMVd、CChMVd和ELVd。类病毒序列或其功能性部分可与选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物的序列或与编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质的序列融合，其融合方式使得该类病毒序列将选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物的序列或与编码选自SEQII)NO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质的序列转运进叶绿体中。优选的实施方案使用经修饰的ASBVd(Navarro等，Virology.268(1)，218(2000))。在另一具体实施方案中，待在质体中表达的蛋白质(例如选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质)由不同的核酸编码。这样的方法公开于WO2004/040973，其通过参考并入本文。WO2004/040973教导了这样的方法，其涉及通过叶绿体定位序列将对应于基因或基因片段的RNA转运进叶绿体中。将应在植物或植物细胞中表达的基因分成《1入植物不同区室(例如核、质体和/或线粒体)的核酸片段。此外，描述了这样的植物细胞，其中叶绿体含有在一个末端与编码本发明方法所用蛋白质片段的RNA融合的核酶，从而该核酶可以将转运的融合RNA反式剪接成编码基因片段的RNA,以形成核酸片段并可能将其再结合成完整mRNA，其编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的功能蛋白质。在本发明的一个优选的实施方案中，将本发明方法中所用的选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的核酸序列转化进有代谢活性的质体中。这些质体应优选地在目的植物或植物组织中维持高拷贝数，最优选可见于绿色植物组织(例如叶或子叶或种子)中的叶绿体。为在质体中良好表达，使用在质体中有活性的优选的启动子和终止子(优选叶绿体启动子)将选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的核酸序列引入表达盒中。这些启动子的实例包括来自菠菜或豌豆基因的psbA启动子、rbcL启动子以及来自玉米的atpB启动子。在本说明书中使用时，"包含/包括"应理解为指存在所述特征、整数、31步骤或组分或其组，但不排除存在或添加一种或多种其他特征、整数、步骤、组分或其组。根据本发明，术语"植物细胞"或术语"生物"在本文中理解为总是指植物的细胞或其细胞器，优选质体，更优选叶绿体。本文使用的"植物"旨在不仅包括完整植物，而且还包括其部分，即一种或多种细胞和組织，包括如叶、茎、嫩枝、根、花、果实和种子。在一个实施方案中，编码磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸序列来源于和/或分离自选自子嚢菌、丝状真菌的真菌，优选选自曲霉属(Aspergillus)、木霉属(Trichoderma)、阿舒嚢霉属(Ashbya)、假嚢酵母属(Eremothecium)、脉孢菌属(Neurospora)、镰孢霉属(Fusarium)、白僵菌属(Beauveria)、#皮孑包霉属(Mortierella)、水霉属(Saprolegnia)、腐霉属(Pythium)的真菌。在一个实施方案中，编码磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸序列来源于和/或分离自选自以下的生物棉阿舒嚢霉(Ashbyagossypii)、烟曲霉(Aspergillusfumigatus)、黑曲霉(Aspergillusniger)、光滑假丝酵母(Candidaglabrata)、粗球孢子菌(Coccidioidesimmitis)、汉逊德巴利酵母(l)ebaryomyceshansenii)、乳酸克鲁维酵母(Kluyveromyceslactis)、洛德酵母(Lodderomyceselongisporus)、Neosartoryafischeri、树干毕赤酵母(Pichiastipitis)、酉良酒酵母(Saccharomycescerevisiae)、冲亥盘菌(Sclerotiniasclerotiorum)和Vanderwaltozymapolyspora。在一个实施方案中，编码磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸序列来源于和/或分离自棉阿舒嚢霉种的真菌。在本发明的另一变型中，该方法的特征在于编码磷酸核糖焦磷酸合酶的基因在ADP结合位点区域中含有至少一个点突变。如果可能的话，该ADP结合位点中的点突变应防止对酶活性不利的别构调节。在一个优选的实施方案中，将SEQIDNO:3的核酸序列或其功能等同物用于该目的。优选地，发现了以下点突变Leul33Ile和Hisl96Glu。在一个实施方案中，编码磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸序列来源于和/或分离自玉米(玉蜀黍)、小麦、黑麦、燕麦、黑小麦、水稻、大麦、大32豆、花生、棉花、油菜籽(包括芸苔和冬季油菜籽)、木薯、胡椒、向日葵、亚麻、琉璃苣、红花、亚麻子、报春花、油菜籽、球茎甘蓝、万寿菊；茄科植物，包括马铃薯、烟草、茄子、西红柿；蚕豆属物种、豌豆、苜蓿、咖啡、可可、茶、柳属物种、油棕榈、椰子、多年生草本植物、饲料作物和拟南芥，优选玉米。出人意料的是，在植物(如拟南芥或烟草(A7cWflWflto^c"附))中转基因表达SEQIDNO:2所示棉阿舒嚢霉蛋白和/或转基因表达SEQIDNO:4所示的突变棉阿舒嚢霉蛋白赋予该转基因植物细胞、植物或其部分与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。因此，在一个实施方案中，对于在植物细胞、植物或其部分(优选细胞的胞质)中提高或产生分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2的棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽的活性的情况(例如提高或产生这样的核酸分子或多肽的活性分别包含选自SEQIDNO:7、8、9、10、11的ADP结合位点的核酸或多肽或多肽基序，或者包含选自SEQIDNo.64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽)，赋予了与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。因此，在一个实施方案中，对于在植物细胞、植物或其部分(优选细胞的胞质)中提高或产生分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4的棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽的活性的情况(例如提高或产生这样的核酸分子或多肽的活性分别包含选自SEQIDNO:14、15、16、17、18的ADP结合位点的核酸或多肽或多肽基序，或者包含选自SEQIDNo.64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽)，赋予了与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。因此，在一个实施方案中，对于在植物细胞、植物或其部分(优选细胞的质体)中提高或产生分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2的棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽的活性的情况(例如提高或产生这样的核酸分子或多肽的活性分别包含选自SEQIDNO:7、8、9、10、11的ADP结合位点的核酸或多肽或多肽基序，或者包含选自SEQIDNo.64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽)，赋予了与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。因此，在一个实施方案中，对于在植物细胞、植物或其部分(优选细胞的质体)中提高或产生分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4的棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽的活性的情况(例如提高或产生这样的核酸分子或多肽的活性分别包含选自SEQIDNO:14、15、16、17、18的ADP结合位点的核酸或多肽或多肽基序，或者包含选自根据SEQIDNo.64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽)，赋予了与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。除非另外指明，否则术语"多核苷酸"、"核酸"和"核酸分子"在本文中可互换使用。除非另外指明，否则术语"肽"、"多肽，，和"蛋白质，，在本文中可互换使用。术语"序列"可涉及多核苷酸、核酸、核酸分子、肽、多肽和蛋白质，这取决于使用术语"序列"的上下文。本文使用的术语"基因"、"多核苷酸"、"核酸序列"、"核苷酸序列"或"核酸分子"指任何长度的核苷酸(核糖核苷酸或脱氧核糖核苷酸)聚合形式。该术语仅涉及分子的一级结构。因此，本文使用的术语"基因"、"多核苷酸"、"核酸序列"、"核苷,列"或"核酸分子"包括双链或单链的DNA和/或RNA。它们还包括已知类型的修饰，例如曱基化、"加帽"、将一个或多个天然核苷酸替换为类似物。优选地，所述DNA或RNA序列包含编码本文所述多肽的编码序列。"编码序列"是核苷酸序列，其转录成RNA,例如调节性RNA(例如miRNA、ta-siRNA、共抑制分子、RNAi、核酶等)，或者转录成mRNA，其在置于适当调节序列控制下时翻译成多肽。编码序列的边界由5'端的翻译起始密码子和3'端的翻译终止密码子决定。编码序列可包括但不仅限于mRNA、cDNA、重组核苷酸序列或基因组DNA，在某些情况下也可存在内含子。本文使用的"核酸分子"还可包括位于编码基因区3，和5'末端的非翻译序列，例如编码区5'末端上游的至少500个、优选200个、特别优选100个核苷酸的序列，以及编码基因区3，末端下游至少100个、优选50个、特34别优选20个核苷酸的序列。对于例如反义、RNAi、snRNA、dsRNA、siRNA、miRNA、ta-siRNA、共抑制分子、核酶等技术的情况，可以有利地使用编码区以及5，和/或3，区。然而，仅选择编码区用于克隆和表达目的经常是有利的。"多肽"指氨基酸的多聚体(氨基酸序列)，不涉及该分子的具体长度。因此，肽和寡肽包括在多肽的定义之内。该术语还包括多肽的翻译后修饰，例如糖基化、乙酰化、磷酸化等。该定义包括例如含有一个或多个氨基酸类似物(包括如非天然氨基酸)的多肽、具有取代键以及本领域已知的其他修饰(天然或非天然的)的多肽。在本说明书中使用时，术语"包含"或"包括"应理解为指存在所述特征、整数、步骤或组分或其组，但不排除存在或添加一种或多种其他特征、整数、步骤、组分或其组。根据本发明，如果蛋白质或多肽的新活性或其表达提高直接或间接导致并赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量，并且该蛋白质具有上述磷酸核糖焦磷酸合酶的活性，则该蛋白质或多肽具有"选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物之蛋白质的活性"。在本说明书全篇中，如果SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质的生物活性或酶活性，或者与棉阿舒嚢霉磷酸核糖焦磷酸合酶相比具有原始酶活性的至少10%、优选20%、30%、40%、50%、特别优选60%、70%、80%、最优选卯％、95%、98%、99%，则它们的活性(优选生物活性)是相同或相似的。术语"提高"、"升高"、"延长"、"增强"、"改善，，或"扩增，，涉及植物、生物、生物部分(例如组织、种子、根、叶、花等)或细胞中特性的相应改变，并可互换使用。优选地，如果提高或增强涉及基因产物活性的提高或增强，则体积中的总活性是提高或增强的，无论基因产物的量或者基因产物的比活性或二者同时是否提高或增强，还是编码该基因产物的核酸序列或基因的量、稳定性或翻译效率是否提高或增强。术语"提高"涉及植物、生物(例如组织、种子、根、叶、花等)或细胞中特性的相应改变。优选地，在提高涉及基因产物活性提高的情况下，体积中的总活性是提高的，无论基因产物的量或者基因产物的比活性或二者同时是否提高或产生，或者编码该基因产物的核酸序列或基因的量、稳定性或翻译效率是否提高。"特性的改变"应理解为特定体积中基因产物的活性、表达水平或量相对于相应体积的对照、参照或野生型相比发生改变，包括从头产生活性或表达。术语"提高"包括所述特性仅在本发明受试者的一部分中改变，例如，修饰可见于细胞区室(如细胞器)中或植物的一部分(如组织、种子、根、叶、花等)中，但在测试整体受试者(即完整的细胞或植物)时则检测不到。因此，术语"提高，，指酶的比活性以及化合物或代谢物(例如本发明的多肽、核酸分子或者编码mRNA或DNA)可在一定体积中提高。通过该方法，植物生物的产量提高至少20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49或50%(以重量计)，有利地提高至少51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79或80%(以重量计)，特别有利地提高至少81、82、83、84、85、86、87、88、89、卯、91、92、93、94、95、96、97、98、99或100。/。(以重量计)，非常特别有利地提高至少101、102、103、104、105、106、107、108、109、110、111、112、113、114、115、116、117、118、119、120、121、122、123、124、125、126、127、128、129、130、131、132、133、134、135、136、137、138、139、140、145、150、160、170、180、190or200、300、400或500%(以重量计)。在一个实施方案中，转基因植物细胞、植物或其部分的产量提高是与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比通过t检验或未配对双侧t36检验测定的显著提高。术语"活性"描述酶将底物转化成产物的能力。可在所谓的活性测试中，通过以产物的增加、底物(或起始材料)的减少或者特定辅因子的减少或者通过至少两种以上参数的组合作为时间的函数来测定活性。根据本发明，磷酸核糖焦磷酸合酶的活性是将核糖5-磷酸(R5P)催化转化成5-磷酸核糖基a-l-焦磷酸(PRPP)的能力，优选为IUPAC名EC2.7.6.1所定义的酶。根据本发明，活性、产量或浓度的提高或降低；物质、产物、起始材料或底物的提高和降低指与在相同条件下进行的比较实验中本发明的EC2.7.6.1酶活性未提高的野生型相比。术语"野生型"、"对照，，或"参照，，可互换使用，并可以是未根据本发明所述方法进行^修饰或处理的细胞或生物部分(例如细力包器，如叶绿体)或组织或生物，特别是植物。因此，用作野生型、对照或参照的细胞或生物部分(例如细胞器，如叶绿体)或组织或生物(特别是植物)尽可能地与该细胞、生物、植物或其部分一致，并且在除本发明方法之结果以外的任何其他方面均尽可能地与本发明的主题相同。因此，相同或尽可能相同地处理所述野生型、对照或参照，即，仅有不影响测试特性的品质的条件或特性可以不同。优选地，在类似条件下进行任何比较。术语"类似条件"指所有条件(例如培养条件或生长条件、土壤、养分、土壤含水量、温度、周围空气或土壤的湿度、测定条件(如緩沖液组成、温度、底物、病原体菌林、浓度等))在待比较的实验之间均保持一致。以有限养分进行培养的植物是以一定含量的盐、N、P2Os、K20进行培养，其量为正常培养条件所用盐含量的50、49、48、47、46、45、"、43、42、41、40%。"参照"、"对照，，或"野生型，，优选为这样的受试者，例如细胞器、细胞、组织、器官，特别是植物其未以本发明方法进行修饰或处理，并且任何其他特性均尽可能地与本发明的主题相似。参照、对照或野生型在其基因组、转录物组、蛋白组或代谢物组方面与本发明的主题尽可能地相似。优选地，术语"参照"、"对照，，或"野生型"细胞器、细胞、组织或生物(特别是植物)指这样的细胞器、细胞、组织或生物(特别是植物)其与本发明的细胞器、细胞、组织或生物(特别是植物)或其部分在遗传上近乎相同，优选95%，更优选98%，甚至更优选99.00%,特别是99.10%、99,30%、99.50%、99.70%、99.卯％、99.99%、99.999%或更高。最优选地，"参照"、"对照"或"野生型"是与本发明方法中所用生物(特别是植物)、细胞、组织或细胞器在遗传上相同的细胞器、细胞、组织或生物(特别是植物)，只是导致作、改变或引入。在无法提供与本发明主题的差异仅为不是本发明方法之受试者的对照、参照或野生型的情况下，对照、参照或野生型可以是这样的生物，其中赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比产量提高的活性调节的原因或者本发明核酸分子的表达已被调回或关闭，例如通过敲除负责基因产物的表达，例如通过反义抑制，通过使激活剂或激动剂失活，通过使抑制剂或拮抗剂活化，通过加入抑制性抗体实现抑制，通过加入活性化合物(如激素)，通过引入负显性突变体等。例如，基因产生可通过引入失活性点突变来进行敲除，所述点突变导致酶活性抑制或者去稳定或者抑制结合辅因子的能力等。因此，优选的参照受试者是本发明方法的起始受试者。优选地，本发明的参照和主题在标准化和归一化后进行比较，例如以总RNA、DNA或蛋白质的量或者参照基因(如持家基因，如泛蛋白、肌动蛋白或核糖体蛋白)的表达进4于标准化和归一化。本发明的提高或调节可以是組成型的，例如由于稳定的永久性转基因表达，或者编码本发明核酸分子的相应内源基因中的稳定突变，或者调节赋予本发明多肽表达之基因的表达或行为；或者可以是暂时的，例如由于瞬时转化或者暂时加入调节剂(如激动剂或拮抗剂)；或者可以是诱导型的，例如用带有诱导型启动子控制之下的本发明核酸分子的诱导型构建体转38化，并加入诱导物，例如四环素或下文所述。优选地，细胞、组织、细胞器或生物(特别是植物)或其部分中多肽量的活性提高与对照、参照或野生型相比至少为5%，优选至少20%或至少50%，特别优选至少70%、80%、卯％或更高，非常特别优选至少100%、150%或200%,最优选至少250%或更高。在一个实施方案中，术语"提高"指相对于所述生物或其部分之重量的量提高(重量/重量)。在一个实施方案中，细胞器(如质体)中多肽量的活性提高。在一个实施方案中，胞质中多肽量的活性提高。本发明核酸分子所编码多肽或本发明多肽的比活性可如实施例中所述进行测试。具体地，将细胞(例如植物细胞)中目的蛋白的表达与对照进行比较是简单的测试，并可如本领域所述进行。术语"提高"包括将化合物或活性(特别是活性)从头引入细胞、胞质或亚细胞区室或细胞器中，或者该化合物或活性(特别是活性)之前检测不到，换言之，"产生"了该化合物或活性。因此，在下文中，术语"提高"还包括术语"产生"或"刺激"。提高的活性表现为与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比产量提高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比苗鲜重为1.1倍至1.3倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选烟草)的胞质中提高或产生至少一种赋予棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比苗鲜重为1.1倍至1.25倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒囊霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比苗鲜重为l.l倍至1.6倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选烟草)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比苗鲜重为1.1倍至1.5倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比总核苷酸为1.1倍至1.15倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南齐)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比总核苷酸为1.1倍至1.15倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比总氨基酸为1.1倍至1.15倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比总氨基酸为1.1倍至1.15倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比花结鲜重为l.l倍至1.2倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生40型植物细胞、植物或其部分相比花结鲜重为1.1倍至1.2倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选烟草)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比植物高度为1.1倍至1.2倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选烟草)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比鲜重为1.1倍至1.2倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的质体中提高或产生至少一种赋予棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比种子总脂类含量为1.1倍至1.3倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比种子总脂类含量为1.1倍至1.5倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的质体中提高或产生至少一种赋予棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型^t物细胞、植物或其部分相比种子总含油量为1.1倍至1.5倍或更高。令人惊奇的是，观察到在细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比种子总含油量为1.1倍至2.3倍或更高。令人惊奇的是，观察到在以有限养分培养的细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:1或多肽SEQIDNO:2)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比花结鲜重为1.1倍至1.15倍或更高。令人惊奇的是，观察到在以有限养分培养的细胞(优选拟南芥)的胞质中提高或产生至少一种赋予突变棉阿舒嚢霉核酸分子或多肽(分别包含核酸SEQIDNO:3或多肽SEQIDNO:4)的活性赋予了提高的产量，优选与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比花结鲜重为1.1倍至1.2倍或更高。有利地，用于本发明方法的植物具有高收获油产量/公顷。这种油收获产量为至少100、110、120、130、140或150kg油〃i^页，有利地为至少250、300、350、400、450或500kg油〃〉项，优选至少550、600、650、700、750、800、850、900或950kg油/一^项，特别优选至少1000kg油/公项或更高。在另一变型中，转化植物以使其在贮藏器官中特异性表达磷酸核糖焦磷酸合酶。在一个实施方案中，本发明方法提高植物种子中的总含油量。特别优选地，在培养后收获植物，并且适当时分离种子中所包含的油。在本发明方法中，在拟南芥中异源表达来自棉阿舒嚢霉的PRS基因(PRS)导致(特别是在种子中)含油量显著提高，如上述。这时，与野生型对照植物相比，含油量优选提高约20-60%,特别优选25-55%，特别是28-52%(基于种子干重)(图1)。在本发明方法中，在拟南芥中异源表达突变的PRS基因(PRSM:Leul33Ile，Hisl96Glu)导致(特别是在种子中)含油量显著提高，如上述。这时，与野生型对照植物相比，含油量优选提高约60-150%，尤其优选70-140%，特别优选75-132%(基于种子干重)(图1)。有利地，磷响。在一个实施方案中，通过本发明方法产生的含油量提高的植物可直接上市，而无需分离所合成的油。在本发明的方法中，植物应理解为指完整植物以及所有的植物部分、植物器官或植物部分，例如来自转基因植物和/42或可用于产生转基因植物的叶、柄、种子、根、块茎、花药、纤维、根毛、茎、胚、愈伤组织、子叶、叶柄、收获材料、植物组织、再生组织、细胞培养物。此时，种子包括种子的所有部分，例如种皮、表皮细胞和种子细胞、胚乳或胚组织。然而，也可以以油、脂肪、脂质和/或游离脂肪酸的形式从植物中分离根据本发明方法产生的油。可通过从其生长的培养基或大田中收获植物来获得本发明方法所产生的油。这可通过压榨或萃取^t物部分(优选植物种子)来进行。这时，可使用"冷打浆(coldbeating)"或"冷压榨(coldpressing)"通过压榨来获得油而无需热输入。这样，植物部分(特别是种子)可以更容易地消化，将其预先捣碎、蒸汽处理或烘烤。接着可对以该方式预处理的种子进行压榨或使用溶剂(如温的己烷)进行萃取。接着再除去溶剂。这样，通过该方法可分离所产生油的96%以上。接着将这样获得的产品进一步加工，即精制。这时，首先除去例如才直物黏液和导致混浊的固体。祐液的除去可以酶促方式进行，或者可例如通过添加酸(如磷酸)以化学/物理方式进行。接着用碱(例如氢氧化钠水溶液)处理除去游离脂肪酸。为了除去仍留在产品中的碱，将所得产品用水彻底清洗并干燥。为了除去仍留在产品中的染料，使用如漂白土或活性碳对产品进行漂白。最后，使用如蒸汽将产品除臭。本发明的一个实施方案是通过本发明制备的油或通过将这些油与动物、微生物或植物油、脂质或脂肪酸混合而获得的油在饲料、食品、化妆品或药物中的用途。通过本发明方法制备的油可以本领域技术人员已知的方式使用，用于与动物来源的其他油、脂质、脂肪酸或脂肪酸混合物(如鱼油)混合。通过碱处理从本发明方法制备的油中释放的脂肪酸也可以惯用量直接加入饲料、食品、化妆品和/或药物中，或者在与动物来源的其他油、脂质、脂肪酸或脂肪酸混合物(如鱼油)混合后加入。在本发明方法中制备的油含有化合物，例如鞘脂、磷酸甘油酯、脂质、糖脂、磷脂、单酰甘油、二酰甘油、三酰甘油或其他脂肪酯，优选三酰甘油(见表1)。"沃异TS^、的^^久小処^的脂43肪酸，例如通过碱处理(例如使用KOH或NaOH水溶液)或酸水解(有利地在醇如甲醇或乙醇存在下进行)或通过酶切割来释i文，并通过如相分离来分离，其后使用如H2S04来酸化。可以直接释放脂肪酸而无需上述处理步骤。术语"油"应理解为还包括"脂质，，或"脂肪"或"脂肪酸混合物"，其包含不饱和的、饱和的(优选酯化的)脂肪酸，其有利地附着于甘油三酯上。这对于油来说是优选的。油还可包含多种其他饱和或不饱和的脂肪酸，例如软脂酸、棕榈油酸、硬脂酸、油酸、亚油酸或a-亚麻酸等。特别地，取决于原始植物，油中多种脂肪酸的含量可以不同。"总含油量"指所有油、脂质、脂肪或脂肪酸混合物的总和，优选为所有三酰甘油的总和。"油，，包括中性和/或极性的脂质及其混合物。例如但不仅限于表II中提到的那些。表II:植物脂质的类别中性脂质三酰甘油(TAG)二酰甘油(DAG)单酰甘油(MAG)极性脂质单半乳糖基二酰甘油(MGDG)二半乳糖基二酰甘油(DGDG)磷脂酰甘油(PG)磷脂酰胆碱(PC)磷脂酰乙醇胺(PE)磷脂酰肌醇(PI)磷脂酰丝氨酸(PS)磺基异鼠李糖基二酰甘油中性脂质优选指三酰甘油。中性及极性脂质均可包含多种脂肪酸。例如但不仅限于表2中提到的脂肪酸。表III:多种脂肪酸的概述(选登)'链长:双键数+仅在少数植物属中出现*不在植物中天然出现命名1名称14:0豆蔻酸16:0软脂酸16:1棕榈油酸16:3十六碳三烯酸18:0硬脂酸18:1油酸18:2亚油酸a-18:3亚麻酸Y画18:3y-亚麻酸十20:0花生酸20:1二十碳一烯酸22:6二十二碳六烯酸(DHA)20:2二十碳二烯酸20:4花生四烯酸(AA^20:5二十碳五烯酸(￡入)+22:1芥酸因此，根据本发明，术语"油，，指一种或多种上述三酰甘油、脂质、脂肪酸、脂肪和/或脂肪酸酯本身，或者2、3、4、5、6、7、8、9或10种或更多种这些化合物的混合物。优选地，油指种子油。术语"表达，，指编码基因区段或基因的转录和/或翻译。通常，所得产物45是mRNA或蛋白质。然而，表达产物还可包括功能性RNA，例如反义、核酸、tRNA、snRNA、rRNA、RNAi、siRNA、核酶等。表达可以是全身性的，局部的或时间性的，例如局限于某些细胞类型、组织器官或细胞器或时间段。在一个实施方案中，本发明的方法包括以下步骤中的一个或多个(a)使蛋白质稳定，所述蛋白质赋予本发明核酸分子所编码蛋白质或本发明多肽提高的表达，所述本发明多肽具有选自磷酸核糖焦磷酸合酶的本文所述活性，并且与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比赋予提高的产量；(b)使mRNA稳定，所述mRNA赋予本发明核酸分子或其同源物所编码的蛋白质或编码本发明多肽的mRNA提高的表达，所述本发明多肽具有选自磷酸核糖焦磷酸合酶的本文所述活性，并且与相应的未转化野生型才直物细胞、植物或其部分相比赋予提高的产量；(c)提高蛋白质的比活性，所述蛋白质赋予本发明核酸分子所编码蛋白质或本发明多肽提高的表达，或者降低本发明多肽的抑制性调节；(d)产生或提高介导蛋白质表达的内源或人工转录因子的表达，所述蛋白质赋予本发明核酸分子所编码蛋白质或本发明多肽提高的表达，所述本发明多肽具有选自磷酸核糖焦磷酸合酶的本文所述活性，并且与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比赋予提高的产量；(e)通过向生物或其部分添加一种或多种外源诱导因子来刺激蛋白质的活性，所述蛋白质赋予本发明核酸分子所编码蛋白质或本发明多肽提高的表达，所述本发明多肽具有选自磷酸核糖焦磷酸合酶的本文所述活性，并且与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比赋予提高的产量；(f)表达编码蛋白质的转基因，所述蛋白质赋予本发明核酸分子所编码蛋白质或本发明多肽提高的表达，所述本发明多肽具有选自磷酸核糖焦磷酸合酶的本文所述活性，并且与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比赋予提高的产量；(g)提高基因的拷贝数，所述基因赋予本发明核酸分子所编码蛋白质或本发明多肽提高的表达，所述本发明多肽具有选自磷酸核糖焦磷酸合酶的本文所述活性，并且与相应的未转化野生型植物细^^、植物或其部分相比赋予提高的产量；(h)通过加入正表达元件或除去负表达元件来提高编码本发明多肽或其同源物的内源基因的表达，例如，可使用同源重组将正调节元件(例如用于植物的35S增强子)引入启动子中，或者从调节区中除去阻抑物元件。可以使用其他基因转换方法来破坏阻抑物元或增强正元件的活性——可通过T-DNA或转座子诱变向植物中随机f1入正元件，并鉴定其中正元件已整合进本发明基因附近从而增强其表达的林系；和/或(i)调节植物的生长条件，以使编码本发明蛋白质的基因或该蛋白质本身的表达或活性被增强；(j)从天然来源或从诱变来源中选择具有特别高活性的本发明蛋白质的生物，并将其培育成靶生物，例如良种作物。优选地，所述mRNA是本发明的核酸分子和/或赋予本发明核酸分子所编码蛋白质提高表达的蛋白质，它们是单独的或者与转运核酸序列或转运肽编码核苷酸序列或者多肽相连，所述多肽具有本文所述活性(例如在提高所编码多肽的表达或活性后赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量)，或者具有选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其同源物的蛋白质的活性。一般而言，生物的细胞或区室中mRNA或多肽的量与所编码蛋白质的量相关，因此与所述体积中所编码蛋白质的总体活性相关。所述相关性并不总是线性的，该体积中的活性取决于分子的稳定性或者激活或抑制性辅因子的存在情况。此外，酶的产物抑制和离析物抑制(eductinhibition)为本领域所熟知，并描述于教科书中，例如Stryer，Biochemistry-一般而言，生物的细胞或区室中mRNA、多核苷酸或核酸分子的量与所编码蛋白质的量相关，因此与所述体积中所编码蛋白质的总体活性相关。所述相关性并不总是线性的，该体积中的活性取决于分子的稳定性、分子的降解或者激活或抑制性辅因子的存在情况。此外，酶的产物抑制和离析物抑制为本领域所熟知，例如Zinser等"Enzyminhibitoren"/Enzymeinhibitors"。可以多种方式提高上述本发明核酸分子所编码蛋白质和/或多肽的活性。例如，通过提高基因产物数(例如通过提高表达率，例如引入强启动子，或者通过提高所表达mRNA的稳定性，从而提高翻译率)和/或提高基因产物的稳定性从而减少被破坏的蛋白质，来提高生物或其部分(如细胞)中的活性。此外，可以实现降低或提高反应速率或改变(降低或提高)对所得底物的亲和力的方式影响酶的活性或更新。本发明多肽(例如酶)催化中心中的突变可改变酶的更新率，例如敲除必要氨基酸可导致降低或完全敲除酶活性，或者调节子结合位点的缺失或突变可降低负调节，如反馈抑制(或者底物水平也提高时的底物抑制)。可以提高本发明酶的比活性，从而提高更新率或改善辅因子结合。改善编码mRNA或蛋白质的稳定性也可提高基因产物的活性。对活性的刺激也在术语"提高的活性"的范围之内。此外，可以改变对上述核酸序列的调节，从而提高基因表达。这可有利地通过异源调节序列或通过改变(例如突变)已有的天然调节序列来实现。有利的方法还可彼此组合。一般而言，可以通过提高生物或其部分(特别是植物细胞或植物细胞细胞器、植物或植物组织或其部分或微生物)中特定编码mRNA或相应蛋白质的量来提高所述生物或其部分中基因产物的活性。"蛋白质或mRNA的量，，应理解为指生物(特别是植物)、组织、细胞或细胞区室中多肽或mRNA分子的分子数。蛋白量的"提高"指与野生型、对照或参照相比，生物(特别是植物)、组织、细胞或细胞区室(例如细胞器如质体或线粒体或其部分)中所述蛋白质分子数的定量提高，例如通过下述方法之一提高。分子数量的提高优选为至少1%，优选高于10%，更优选30%或更高，特别优选50%、70%或更高，非常特别优选100%，最优选500%或更高。然而从头产生的表达也认为是本发明的主题。48修饰(如提高)可通过内源或外源因子来实现。例如，生物或其部分中活性的提高可通过向培养基或养分中加入基因产物或前体或激活剂或激动剂来实现，或者可通过将所述对象瞬时或稳定地引入生物中来实现。此外，这样的提高可通过使用转化和/或靶向将本发明的核酸序列或所编码蛋白S1入正确的细胞区室(例如分别？1入核或胞质或S1入质体)来实现。就本发明说明书的目的而言，术语"胞质的，，应表示在未加入非天然转运肽编码序列的情况下表达本发明的核酸。非天然转运肽编码序列是这样的序列，它不是本发明核酸的天然部分，而是通过分子操作步骤(例如"质体靶向表达"中所述)加入的。因此，术语"胞质，，不应排除通过其天然序列特性将本发明核酸序列的产物靼向定位至任何细胞区室。在一个实施方案中，植物或其部分(例如细胞、组织、器官、细胞器、胞质等)中与相应的未转化野生型植物细胞相比产量的增强通过提高本发明多肽的内源水平来实现。因此，在本发明的一个实施方案中，本发明涉及一种方法，其中编码本发明多核苷酸或核酸分子的基因的基因拷贝数被提高。此外，可通过修饰多肽的转录或翻译调节来提高本发明多肽的内源水平。在一个实施方案中，植物或其部分中产量的提高可通过对本发明内源基因进行靶向诱变或随机诱变来实现。例如，可使用同源重组将正调节元件(如用于植物的35S增强子)引入启动子中，或者从调节区中除去阻抑物元件。此夕卜，可以使用Kochevenko和Willmitzer(PlantPhysiol.132(1)，174者增强正调节元件的活性。此外，可通过T-DNA或转座子诱变向(植物)基因组中随机引入正元件，并可篩选正元件整合进本发明基因附近从而增强其表达的林系。通过随机整合增强子元件来激活植物基因的方法描述于Hayashi等(Science258,1350(1992))或Weigel等(PlantPhysiol.122，1003(2000))以及其中的其他参考文献。已在多种情况下描述了用于鉴定目的基因附近的插入(最终带有激活元件)的反向遗传策略，例如Krysan等(PlantCell11，2283(1999));Sessions等(PlantCell14，2985(2002));Young等(PlantPhysiol.125,513(2001));Koprek等(PlantJ.24，253(2000));Jeon等(PlantJ.22,561(2000));Tissier等(PlantCell11,1841(1999));Speulmann等(PlantCell11,1853(1999))。简言之，收获来自大T-DNA或转座子诱变植物群中所有植物的材料，并制备基因组DNA。接着按照Krysan等(PlantCell11，2283(1999))所述的特定结构合并基因组DNA。接着通过检测插入诱变原(如T-DNA或转座子)与目的基因之组合的特异性多重PCR反应来筛选基因组DNA库。因此，用T-DNA或转座子边界引物与基因特异性引物的特定组合对DNA库进行PCR反应。引物设计的一般原则也可得自Krysan等(PlantCell11，2283(1999))。对低水平DNA库再次进行筛选，导致鉴定出目的基因被插入诱变原激活的个体植物。正调节元件的增强或者负调节元件的破坏或弱化也可通过常用诱变技术来实现产生化学或放射诱变的群体是一种常用^L术，并为本领域技术人员所知。用于植物的方法描述于Koorneef等(MutatRes.Mar.93(1)(1982))及其参考文献，以及Lightner和Caspar"MethodsinMolecularBiology"Vol.82。这些技术一般诱导点突变，可使用诸如TILLING(Colbert等，PlantPhysiol,126，(2001))的方法在任何已知基因中鉴定所述点突变。因此，如果通过同源重组、Tilling法或基因转换修饰了编码赋予编码本发明多肽表达提高之多肽的内源基因(特别是包含本发明核酸分子的基因)，则可提高表达水平。还可以如本文所述向本发明核酸序列中加入靶向序列。需要时，除了靶向序列或其部分以外，调节序列也可与内源蛋白的编码区有效连接，并控制其转录和翻译或者编码mRNA或所表达蛋白的稳定性或衰退。为了j奮饰和控制表达，可以改变、加入或〗务改启动子、UTR、剪接位点、加工信号、多腺苷酸化位点、终止子、增强子、阻抑物、转录后或翻译后修饰位点。例如，Hayashi等(Science258，1350(1992))或Weigel等(PlantPhysiol.122，1003(2000))描述了通过随才几整合增强子元件来激活植物基因。例如，可通过将内源启动子替换为更强的转基因启动子或通过将内源3'UTR替换为提供更高稳定性而不改变编码区的3，UTR来调节内源蛋白的表达水平。此外，可通过引入人工转录因子(如实施例中所述)来改变转录调节。替代性启动子、终止子和UTR描述于下文。还可以通过引入与编码表II第3列之蛋白质的基因的编码区紧密结合并激活其转录的合成转录因子增加内源多肽的激活，所述内源多肽具有上述活性，例如具有编码表II第3列之蛋白质或本发明多肽的活性，例如在胞质和/或细胞器(如质体)中提高表达或活性后赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。可以构建嵌合锌指蛋白，其包含特异性DNA结合结构域和激活结构域，例如单纯疱渗病毒的VP16结构域。特异性结合结构域可与编码表II第3列蛋白质之基因的调节区结合。嵌合转录因子在生物(特别是植物)中的表达导致表II第3列所示蛋白质的特异性表达。其方法为本领域技术人员所知和/或描述于例如WO01/52620,Oriz，Proc.Natl.Acad.Sci.USA，99，13290(2002)或Guan，Proc.Natl.Acad.Sci.USA99,13296(2002)。在本发明方法的另一实施方案中，使用这样的生物，其中上述基因之一或上述核酸之一被突变，以使得与所编码基因产物的活性与未突变蛋白相比受细胞因子的影响较小，或者完全不受其影响。例如，熟知的酶活性调节机制是底物抑制或反馈调节机制。用于引入相应序列的一个或多个碱基、核苷酸或氨基酸的替换、缺失和添加的方法和技术描述于下文相应段落中以及列出的参考文献中，例如Sambrook等，MolecularCloning,ColdSpringHabour，NY，1989。本领域技术人员能够通过将本发明核酸分子或合位点，这通过包含用于鉴定结合位点和调节结构域之算法的计算机软件方法来实现，或者通过向核酸分子或蛋白质中系统性地引入突变并测定导致比活性提高或每单位体积(特别是细胞)中活性提高的突变来实现。因此，在生物中表达来自在进化上关系较远的生物的本发明核酸分子或本发明多肽可能是有利的，例如在真核宿主中使用原核基因，因为在这些情况下宿主细胞的调节机制可能不会弱化该基因或其表达产物的活性(细胞活性或比活性)。所述突变以不对产量提高产生不良影响的方式引入。对基因或其基因产物的调节影响较低应理解为该降低的酶活性调节导致该基因或其产物的比活性或细胞活性提高。酶活性提高应理解为指酶活性与起始生物相比提高至少10%,有利地至少20、30或40%,特别有利地至少50、60或70%。这导致与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比的产量提高。本发明提供了，可以实施上述方法以提高产量。本发明不仅限于特定的核酸、特定多肽、特定细胞类型、特定宿主细胞、特定条件或特定方法等本身，而是可以改变，其多种修改和变化对本领域技术人员来说是很明显的。应该理解，本文使用的术语仅用于描述具体实施方案的目的，而不旨在限制。本发明还涉及分离的核酸，其包含选自以下的核酸分子(a)编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之多肽的核酸分子；(b)选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子；(c)核酸分子，其由于遗传密码的简并性而衍生自选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之多肽序列，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(d)核酸分子，其与包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之核酸分子的多核苷酸的核酸分子序列具有至少30%同一性，优选至少40%、50%、60%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、99.5%同一性，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；52(e)核酸分子，其编码与(a)、(b)、(c)或(d)核酸分子所编码多肽的氨基酸序列具有至少30。/。同一性、优选至少40%、50%、60%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、99.5%同一性的多肽，并具有包含选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核苷酸的核酸分子所代表的活性，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(f)核酸分子，其在严格杂交条件下与(a)、(b)、(c)、(d)或(e)的核酸分子杂交，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(g)核酸分子，其编码可借助于针对(a)、(b)、(c)、(d)、(e)或(f)核酸分子之一所编码多肽产生的单克隆或多克隆抗体来分离的多肽，并具有包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核苷酸的核酸分子所代表的活性；(h)核酸分子，其编码包含选自SEQIDNO:7、8、9、10、11、14、15、16、17、18之ADP的多肽基序的多肽或者包含选自SEQIDNo.64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽，并优选地具有包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核苷酸的核酸分子所代表的活性；(i)多核苷酸，其编码具有选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之蛋白质所代表的活性的多肽，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(j)核酸分子，其包含可通过使用选自SEQIDNO:5、6的引物扩增cDNA文库或基因组文库获得的多核苷酸，该核酸分子在其5，末端不以核苷酸ATA开始，并优选地以包含选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核苷酸的核酸分子所4戈表的活性；和(k)核酸分子，其可通过严格杂交条件下篩选合适的核酸文库(特别是53cDNA文库和/或基因组文库)获得，所述篩选中使用包含(a)或(b)核酸分子之互补序列的探针或者使用其片段，所述探针或其片段具有(a)至(e)所表征核酸分子序列之互补核酸分子的至少15nt，优选20nt、30nt、50nt、100nt、200nt、500nt、750nt或1000nt，并且该核酸分子编码多肽，该多肽具有包含选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之多肽的蛋白质所代表的活性；其中(a)，(b)、(c)、(d)、(e)、(f)、(g)、(h)、(i)、(j)和(k)的核酸分子至少在一个或多个核苷酸上不同于选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列，并优选地编码至少在一个或多个氨基酸上不同于选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的蛋白质序列的蛋白质。在一个实施方案中，本发明涉及上述序列同源物，它们可有利地分离自酵母、真菌、病毒、藻类、细菌，例如醋化醋杆菌(Acetobacteraceti，醋杆菌亚属)；Acidithiobacillusferrooxidans;不动杆菌属(Acinetobacter);放线杆菌属(Actinobacillus);杀鲑气单胞菌(Aeromonassalmonicida);根癌农杆菌(Agrobacteriumtumefaciens);Aquifexaeolicus;化脓隐禾乂、杆菌(Arcanobacteriumpyogenes);翠菊黄化植原体(Asteryellowsphytoplasma);芽孢杆菌属(Bacillus);双岐杆菌属(Bifidobacterium);布氏疏螺旋体(Borreliaburgdorferi);扩展短杆菌(Brevibacteriumlinens);马尔他布鲁氏菌(Brucellamelitensis);巴克纳氏菌属(Buchnera);溶纤维丁酸弧菌(Butyrivibriofibrisolvens);空肠弯曲杆菌(Campylobacterjejuni);新月柄杆菌(Caulobactercrescentus);衣原体(Chlamydiasp.);Chlamydophilasp.;泥生绿菌(栖泥绿菌)(Chlorobiumlimicola);Citrobacterrodentium;梭菌(梭状芽孢杆菌)(Clostridiumsp.);睾丸酮丛毛单胞菌(Comamonastestosteroni);棒杆菌(棒状菌)(Corynebacteriumsp.);伯氏考克斯氏体(Q热病原体，伯氏立克次氏体)(Coxiellaburnetii);耐放射异常球菌(Ddnococcusradiodurans);节瘤偶蹄形菌(Dichelobacternodosus);鲶鱼爱德华氏菌(Edwardsiellaictaluri);肠杆菌(Enterobacter54sp.);猪红斑丹毒丝菌(Erysipelothrixrhusiopathiae);大肠杆菌(Escherichiacoli);黄杆菌(Flavobacteriumsp.);土拉热弗朗西丝氏菌(Francisellatularensis);弗兰克氏菌(Frankiasp.Cpll);具核梭杆菌(Fusobacteriumnucleatum);Geobacillusstearothermophilus;氧化葡糖杆菌(Gluconobacteroxydans);嗜血菌(Haemophilussp.);幽门螺杆菌(Helicobacterpylori);肺炎克雷伯氏菌(Klebsiellapneumoniae);享L軒菌(Lactobacillussp.);乳酸專'U求菌(Lactococcuslactis);利^)t特氏菌(Listeriasp.);Mannheimiahaemolytica;Mesorhizobiumloti;深海谨甲基菌(Methylophagathalassica);铜绿微嚢蓝细菌(Microcystisaeruginosa);微颤蓝细菌(Microscillasp.PRE1);莫拉氏菌(Moraxellasp.TA144);分枝杆菌(Mycobacteriumsp.);枝原体(Mycoplasmasp.);奈瑟氏球菌(Neisseriasp.);亚硝化单胞菌(Nitrosomonassp.);念珠蓝细菌(Nostocsp.PCC7120);Novosphingobiumaromaticivorans;酒酒J求菌(Oenococcusoeni);斗宁樣夕乏菌(Pantoeacitrea);多杀巴斯德氏菌(Pasteurellamultocida);戊糖片球菌(Pediococcuspentosaceus);坑形席蓝细菌(Phormidiumfoveolarum);Phytoplasmasp.;Plectonemaboryanum;栖瘤胃普雷沃氏菌(Prevotellaruminicola);丙酸杆菌(Propionibacteriumsp.);普通变形菌(Proteusvulgaris);有i单胞菌(Pseudomonassp.);Ralstoniasp.;才艮瘤菌(Rhizobiumsp.);马红球菌(Rhodococcusequi);海洋红嗜热盐菌(Rhodothermusmarinus);立克次氏体(Rickettsiasp.);鸭痘立默氏菌(Riemerellaanatipestifer);生黄瘤胃球菌(Ruminococcusflavefaciens);沙门氏菌(Salmonellasp.);反刍月形单月包菌(Selenomonasruminantium);嗜虫沙雷氏菌(Serratiaentomophila);希瓦氏菌(Shigellasp.);苜蓿中华根瘤菌(Sinorhizobiummdiloti);葡萄球菌(Staphylococcussp.);链球菌(Streptococcussp.);链霉菌(Streptomycessp.);聚球蓝细菌(Synechococcussp.);集胞蓝细菌(Synechocystissp.PCC6803);海栖热袍菌(Thermotogamaritima);密虫累旋体(Treponemasp.);解脈鸟枝原体(Ureaplasmaurealyticum);霍乱弧菌(Vibriocholerae);副溶血弧菌(Vibrioparahaemolyticus);苛养木杆菌(Xylellafastidiosa);耶尔森氏菌(Yersiniasp.);运动发酵单胞菌(Zymomonasmobilis)，优选沙门氏菌(Salmonella)或大肠杆菌或植物，优选分离自酵母，例如分离自酵母属(Saccharomyces)、毕赤酵母属(Pichia)、假丝酵母属(Candida)、汉逊酵母属(Hansenula)、球拟酵母属(Torulopsis)或裂殖酵母属(Schizosaccharomyces)或者才直净勿，^口4以南芥、玉米、小麦、,、麦、燕麦、黑小麦、水稻、大麦、大豆、花生、棉花、琉璃苣、向日葵、亚麻子、报春花、油菜籽、芸苔和球茎甘蓝、木薯、胡椒、向日葵、万寿菊；茄科植物包括马铃薯、烟草、茄子、西红柿；蚕豆属物种、豌豆、苜蓿；灌木植物如咖啡、可可、茶；柳属物种；树木如油棕榈、椰子；多年生草本植物如黑麦草和羊茅草；饲料作物如苜蓿和三叶草；以及分离自例如云杉、松或冷杉。更优选地，上述序列的同源物可分离自酿酒酵母(Saccharomycescerevisiae)、大肠杆菌或集胞蓝细菌属(Synechocystis)或才直物，优选欧洲油菜、大豆、玉米、棉花或稻。本发明的蛋白质优选通过重组DNA技术产生。例如，将编码该蛋白的核酸分子克隆进表达载体中，例如克隆进双元载体中，将该表达栽体引入宿主细胞，例如拟南芥野生型NASCN卯6或下文实施例中所述任何其他植物细胞，蛋白质在所述宿主细胞中表达。双元载体的实例为pBIN19,pBI101、pBinAR、pGPTV、pCAMBIA、pBIB-HYG、pBecks、pGreen或pPZP(Hajukiewicz，P.等，PlantMol.Biol.25，989(1994)，和Hellens等，TrendsinPlantScience5，446(2000))。在一个实施方案中，本发明蛋白质优选在细胞区室(更优选质体)中产生。将核酸引入质体并在该区室中产生蛋白质的方法为本领域技术人员已知，并描述于本申请中。在另一实施方案中，本发明蛋白质优选在细胞的胞质中产生。在胞质中产生蛋白质的方法为本领域技术人员已知。有利地，本发明的核酸序列或基因构建体与至少一个报告基因一起克隆进表达盒中，该表达盒通过载体引入生物中，或者直接引入基因组中。该报告基因应允许通过生长、荧光、化学物质、生物发光或耐性测定或通过光度测量而容易地进行检测。可以提到的报告基因的实例为抗生素或除草剂耐性基因、水解酶基因、荧光蛋白基因、生物发光基因、糖或核苷酸代谢基因或生物合成基因，例如Ura3基因、11v2基因、萤光素酶基因、卩-半乳糖苷酶基因、gfp基因、2-去氧葡萄糖-6-磷酸磷酸酶基因、p-葡糖醛酸糖苷酶基因、p-内酰胺酶基因、新霉素磷酸转移酶基因、潮霉素磷酸转移酶基因、突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)基因(也称为乙酰乳酸合酶(ALS)基因)、D-氨基酸代谢酶基因或BASTA(=草铵膦耐性)基因。这些基因允许容易地测量和定量转录活性，从而测量和定量基因表达。这样，可以鉴定显示不同生产力的基因组位置。在一个优选的实施方案中，核酸构建体(例如表达盒)包含编码序列上游(即5，末端)的启动子和下游(即3，末端)的多腺苷酸化信号，以及任选的其他调节元件，它们与选自SEQIDNO:1,3，12,38，39，40，41，42，43，44，45,46，47，48，49，50的间插编码序列有效连接。有效连接指启动子、编码序列、终止子和任选的其他调节元件依次排列，以使得每个调节元件可以正确的方式在编码序列的表达中发挥其功能。在一个实施方案中，优选用于有效连接的序列为确保亚细胞定位至质体的靶向序列。然而，也可以利用确保亚细胞定位至线粒体、内质网(-ER)、细胞核、油小体或其他区室的耙向序列，以及翻译启动子例如烟草花叶病毒的5，前导序列(Gallie等，Nucl.AcidsRes.158693(1987))。例如，核酸构建体(例如表达盒)可以含有组成型启动子或组织特异性启动子(优选USP或油菜籽蛋白启动子)、待表达基因和ER滞留信号。就ER滞留信号而言，优选使用KDEL氨基酸序列(赖氨酸、天冬氨酸、谷氨酸、亮氨酸)或KKX氨基酸序列(赖氨酸-赖氨酸-X-停止，其中X表示每一种其他已知的氨基酸)。为在宿主生物(例如植物)中进行表达，有利地将表达盒插入载体中，例如质粒、噬菌体或其他允许该基因在宿主生物中最佳表达的DNA。合适的质粒的实例为大肠杆菌中的pLG338、pACYC184、pBR系列如pBR322、pUC系列如pUC18或pUC19、M113mp系列、pKC30、pRep4、pHSl、pHS2、pPLc236、pMBL24、pLG200、pUR290、pIN-III"3-Bl、kgtll或pBdCI;链霉菌中的pIJ101、pIJ364、pIJ702或pIJ361;芽孢杆菌中的pUB110、pC194或pBD214;棒杆菌中的pSA77或pAJ667;真菌中的pALSl、pIL2或pBB116;其他有利的真菌载体描述于RomanosM.A.等，Yeast8，423(1992)和vandenHondel，C.A.M.J.J.等1(1991)"Heterologousgeneexpressioninfilamentousfungi"j以及"MoreGeneManipulations"in"Fungi"BennetJ.W.&LasureLL编辑，396-428页，AcademicPress,SanDiego，和，，Genetransfersystemsandvectordevelopmentforfilamentousfungi"[vandenHondel，C.A.M.J.J.&Punt,P.J.(1991):AppliedMolecularGeneticsofFungi,Peberdy,J.F.等编辑，1-28页，CambridgeUniversityPress:Cambridge。有利的酵母启动子的实例为2jiM、pAG-l、YEp6、YEpl3或pEMBLYe23。藻类或植物启动子的实例为pLGV23、pGHlac+、pBIN19、pAK2004、pVKH或pDH51(参阅Schmidt,R.和Willmitzer，L.，PlantCellRep.7，583(1988)))。上文指出的载体或者上文所指出载体的衍生物仅为可能的质粒中的一部分。其他质粒为本领域技术人员所熟知，并可见于例如，，CloningVectors"(PouwelsP.H.等编辑Elsevier,Amsterdam-NewYork-Oxford,1985，ISBN0444卯4018)。合适的植物载体描述于"MethodsinPlantMolecularBiologyandBiotechnology，，(CRCPress,Ch.6〃，71-119页)等。有利的载体已知为能在大肠杆菌和农杆菌中复制的穿梭载体或双元载体。载体指除质粒以外本领域技术人员已知的所有其他栽体，例如噬菌体；病毒如SV40、CMV、杆状病毒、腺病毒；转座子；IS元件；噬粒；噬菌粒；粘粒；线性或环状DNA。这些载体可在宿主细胞中自主复制或随染色体复制，优选随染色体复制。在载体的另一实施方案中，本发明的表达盒还可有利地以线性DNA的形式引入生物中，并通过异源或同源重组整合进宿主生物的基因组中。这种线性DNA可由线性化的质粒构成，或者仅由作为载体的表达盒或本发明核酸序列构成。在另一有利的实施方案中，本发明的核酸序列还可以其自身引入生物中。如果除了本发明核酸序列外还向生物中引入其他基因，则在单个载体与报告基因一起或者每个基因在载体中带有一个报告基因均可引入，其中不同载体可同时或连续引入。所述栽体有利地含有至少一个拷贝的本发明核酸序列和/或本发明的表达盒(-基因构建体)。本发明还提供分离的重组表达栽体，其包含编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽的核酸，其中该载体在宿主细胞中的表达导致与宿主细胞的野生型品种相比提高的产量。本文使用的术语"载体"指能运输与其相连的其他核酸的核酸分子。载体的一种类型是"质粒"，指其中可连接其他DNA区段的双链DNA环。另一种类型的载体是病毒载体，其中其他DNA区段可连接到病毒基因组中。某些载体能在其所引入的宿主细胞中自主复制(例如，具有细菌复制起点的细菌载体和附加型哺乳动物载体)。其他载体(例如非附加型哺乳动物载体)在引入宿主细胞后整合进宿主细胞或细胞器的基因组中，从而与宿主或细胞器的基因组一起复制。此外，某些载体能知道与其有效连接的基因表达。这样的载体称为"表达载体"。一般而言，重组DNA技术中使用的表达栽体一般为质粒形式。在本说明书中，"质粒"和"载体"可互换使用，因为质粒是最普遍使用的载体形式。然而，本发明旨在包括发挥相同功能的这些其他形式表达载体，例如病毒载体(例如复制缺陷型逆转录病毒、腺病毒和腺伴随病毒)。本发明的重组表达载体包含本发明的核酸，其为适于在宿主细胞中表达该核酸的形式，这意味着，重組表达载体包含基于用于表达的宿主细胞选择的与待表达核酸序列有效连接的一个或多个调节序列。在本文中涉及重组表达载体使用时，"有效连接，，旨在表示目的核苷酸序列与调节序列以59允许表达该核苷酸序列(例如，在体外转录/翻译系统中或当该载体引入宿主细胞的情况下为在宿主细胞中)的方式连接。术语"调节序列，，旨在包括启动子、增强子和其他表达控制元件(例如多腺苷酸化信号)。这些调节序列描述于例如Goeddel，GeneExpressionTechnology:MethodsinEnzymology185，AcademicPress,SanDiego,CA(1990)以及Gruber和Crosby,:MethodsinPlantMolecularBiologyandBiotechnology,Glick和Thompson编辑，第7章，89-108，CRCPress;BocaRaton,Florida,包括其参考文献。调节序列包括指导核苷酸序列在许多宿主细胞类型中组成型表达的调节序列以及指导核苷酸序列仅在某些宿主细胞或在某些条件下表达的调节序列。本领域技术人员应该理解，表达载体的设计可取决于诸如待转化宿主细胞的选择、期望的多肽表达水平等因素。本发明的表达载体可引入宿主细胞中，从而产生本文所述核酸(例如编码磷酸核糖焦磷酸合酶)所编码的多肽或肽，包括融合多肽或肽。本发明的重组表达载体可设计成在植物细胞中表达本发明的多肽。例如可在植物细胞中表达PRS基因(参阅SchmidtR.，和WillmitzerL.，PlantCellRep.7(1988);PlantMolecularBiologyandBiotechnology,CPress,BocaRaton,Florida,第6/7章，71-119页(1993);WhiteF.F.，JenesB.等，TechniquesforGeneTransfer,:TransgenicPlants,Vol,1，EngineeringandUtilization,Kung和WuR.编辑，128-43，AcademicPress:1993;Potrykus，Annu.Rev.PlantPhysiol.PlantMolec.Biol.42，205(1991)，及其参考文献)。合适的宿主细月包还讨论于Goeddel，GeneExpressionTechnology:MethodsinEnzymology185，AcademicPress:SanDiego,CA(19卯)。或者，重组表达载体可以体外转录和翻译，例如使用T7启动子调节序列和T7聚合酶。经常使用含有指导融合或非融合多肽表达的组成型或诱导型启动子的载体在原核生物中表达多肽。融合载体在其中所编码多肽中加入多个氨基酸，一般在重组多肽的氨基端加入，但也可在C端加入，或者融合进多肽的合适区域中。这些融合载体一般用于三个目的l)提高重组多肽的表达；2)提高重组多肽的溶解度；和3)通过作为亲和纯化中的配体而帮助纯化重组多肽。在融合表达载体中，经常在融合部分与重组多肽的连接处引入蛋白酶切割位点，以允许在纯化融合多肽后将重组多肽与融合部分分离。这些酶及其相应的识别序列包括因子Xa、凝血酶和肠激酶。例如，可将植物表达盒装入pRT转化载体中((a)Toepfer等，MethodsEnzymol.217，66(1993)，(b)Toepfer等，Nucl.Acids.Res.15，58卯(1987))。或者，还可以在体外转录和翻译重组载体(=表达载体)，例如使用T7启动子和T7RNA聚合酶。用于原核生物的表达载体经常利用含有或不含融合蛋白或融合寡肽的诱导型系统，其中这些融合可同时以N端和C端方式发生，或者在蛋白质的其他有用结构域中发生。这些融合载体一般具有以下目的l)提高RNA的表达率；2)提高可获得的蛋白质合成率；3)提高蛋白质的溶解度；4)或通过可用于亲和层析的结合序列来简化纯化。还经常通过融合蛋白引入蛋白酶切割位点，这允许切割融合蛋白部分和纯化。这些蛋白酶识别序列是已知的，例如因子Xa、凝血酶和肠激酶。典型的有利融合物和表达载体为pGEX(PharmaciaBiotechInc;SmithD.B.和JohnsonK.S.，Gene67，31(1988))、pMAL(NewEnglandBiolabs,Beverly,MA)和pRIT5(Pharmacia,Piscataway,NJ)，其含有谷胱甘肽S-转移酶(GST)、麦芽糖结合蛋白或蛋白A。在一个实施方案中，将本发明多肽的编码序列克隆进pGEX表达载体中，以产生编码融合多肽的栽体，所述融合多肽从N端到C端包含GST-凝血酶切割位点-X多肽。该融合多肽可使用谷胱甘肽-琼脂糖树脂通过亲和层析来纯化。可通过用凝血酶切割融合多肽来回收不融合GST的重组PKPRS。大肠杆菌表达载体的其他实例为pTrc(Amann等，Gene69，301(1988))和pET载体(Studier等，GeneExpressionTechnology:MethodsinEnzymology185，AcademicPress,SanDiego,California(1990)60-89;Stratagene，Amsterdam,TheNetherlands)。从pTrc载体表达靼基因依赖于从杂合trp-lac融合启动子转录宿主RNA聚合酶。从pETlid载体表达靶基因依赖于由共表达的病毒RNA聚合酶(T7gnl)介导的从T7gnl0-lac融合启动子的转录。该病毒聚合酶由宿主菌株BL21(DE3)或HMS174(DE3)从固有的1原噬菌体提供，其带有lacUV5启动子转录控制之下的T7gnl基因。在本发明的一个优选实施方案中，PRS在植物和植物细胞中表达，例如单细胞植物细胞(如藻类)(参阅Falciatore等，MarineBiotechnology1(3)，239(1999)及其参考文献)和来自高等植物(例如种子植物，如作物植物)的植物细胞。可通过任何方法将编码选自SEQIDNO:1，3，12，38，39，40，41，42，43,44，45，46，47，48，49，50的PRS的核酸分子"引入"植物细胞中,所述方法包括转染、转化或转导、电穿孔、微粒轰击、农杆菌感染等。本领域技术人员已知的一种转化方法是将开花植物浸入农杆菌溶液中(其中所述农杆菌含有本发明的核酸)，然后对转化配子进行育种。用于转化或转染宿主细胞(包括植物细胞)的其他合适方法可见于Sambrook等，MolecularCloning:ALaboratoryManual.第二版，ColdSpringHarborLaboratory,ColdSpringHarborLaboratoryPress,ColdSpringHarbor,NY，1989以及其他实验手册如MethodsinMolecularBiology,1995，Vol.44，々n6fl"m'歸protocols,Gartland和Davey编辑，HumanaPress,Totowa，NewJersey。产量提高是希望在多种植物中遗传的一种一般性状，所述#_物例如玉米、小麦、黑麦、燕麦、黑小麦、水稻、大麦、大豆、花生、棉花、油菜籽和芸苔、木薯、胡椒、向日葵和万寿菊；茄科植物如马铃薯、烟草、茄子和番茄；蚕豆属物种、豌豆、苜蓿；灌木植物(咖啡、可可、茶)；柳属物种；树木(油棕榈、椰子)；多年生草本植物和饲料作物，这些作物植物也是本发明另一实施方案中遗传改造的优选靶植物。铜料作物包括但不仅限于水草(wheatrass)、蘸草(Canarygrass)、雀麦草(Bromegrass)、披碱草(WildryeGrass)、早熟禾(Bluegrass)、鸭茅(Orchardgrass)、苜蓿、Salfoin、百务M艮(BirdsfootTrefoil)、杂三叶(Alsikeclover)、红三叶(redclover)和草木樨(Sweetclover)。在本发明的一个实施方案中，通过农杆菌介导的基因转移将编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的PRS的核酸分子转染进植物中。农杆菌介导的植物转化可使用例如GV3101(pMP卯)(Koncz和Schell，Mol.Gen.Genet.204，383(1986))或LBA4404(Clontech)根癌农杆菌菌抹来进行。转化可通过标准转化和再生技术来进行(Deblaere等，Nucl.AcidsRes.13,4777(1994)，Gelvin，StantonB.和SchilperoortRobertA，PlantMolecularBiologyManual,第二版-Dordrecht:KluwerAcademicPubl"1995.-Sect"RingbucZentraleSignatur:BT11-PISBN0-7923-2731-4;GlickBernardR.，ThompsonJohnE.，MethodsinPlantMolecularBiologyandBiotechnology,BocaRaton:CRCPress,1993360S.，ISBN0-8493-5164-2)。例如，可通过子叶或下胚轴转化来转化油菜籽(Moloney等，PlantCellReport8，238(1989);DeBlock等，PlantPhysiol.91，694(1989))。用于农杆菌和植物选择的抗生素的使用取决于用于转化的双元载体和农杆菌菌林。一般使用卡那霉素作为植物选择标记来进行油菜籽的选择。可使用如Mlynarova等，PlantCellReport13，282(1994)所述技术通过农杆菌介导基因转移进亚麻中。此外，可以使用如欧洲专利号424047、美国专利号5，322，783、欧洲专利号397687、美国专利号5，376，543或美国专利号5,169,770所述的技术来转化大豆。可通过孩吏粒轰击、聚乙二醇介导的DNA摄取或通过碳化硅纤维技术来实现玉米转化(参阅如Freeling和Walbot"Themaizehandbook"SpringerVerlag:NewYork(1993)ISBN3-540-97826-7)。玉米转化的具体实例可见于美国专利号5，9卯，387，小麦转化的具体实例可见于PCT申请号WO93/07256。在本发明的一个实施方案中，有利地将所用的核酸序列引入转基因表达构建体中，该构建体确保在植物生物或所述植物生物的組织、器官、部分、细胞或繁殖材料中实现来自棉阿舒嚢霉的磷酸核糖焦磷酸合酶的转基因表达。在该表达构建体中，编码磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸分子优选地与至少一个遗传控制元件(例如启动子和/或终止子)有效连接，所述遗传控制元件确保在植物生物或其组织、器官、部分、细胞或繁殖材料中实现表达。有效连接应理解为例如启动子与编码待表达磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸序列(如SEQIDNO:1所示序歹'j)以及适当时的其他调节元件(如终止子)依次排列，以使在重组表达该核酸序列时每个调节元件可发挥其功能。该目的不一定需要化学意义上的直接连接。遗传控制序列(如增强子序列)也可对在移动至更远的位置上或者事实上从其他DNA分子中对靶序列发挥其功能。优选的排列是待重组表达的核酸序列位于作为启动子的序列之后，以使两序列彼此共价连接。启动子序列与待重组表达的核酸序列之间的距离优选小于200个碱基对，特别优选小于IOO个碱基对，非常特别优选小于50个碱基对。有效连接和表达盒均可通过常规重组方法和克隆技术来实现，它们描述于例如ManiatisT,FritschEF和SambrookJ(1989)MolecularCloning:ALaboratoryManual,ColdSpringHarborLaboratory,ColdSpringHarbor(NY);SilhavyTJ，BermanML和EnquistLW(1984)ExperimentswithGeneFusions,ColdSpringHarborLaboratory,ColdSpringHarbor(NY);A訓belFM等(1987)CurrentProtocolsinMolecularBiology,GreenePublishingAssoc.andWileyInterscience以及Gelvin等(1990》PlantMolecularBiologyManual。然而，这两个序列之间还可以安i文可作为带有限制性酶特异性切割位点的接头的其他序列或者信号肽。另外，序列的插入可导致表达融合蛋白。优选地，由与待表达核酸连接的启动子组成的表达盒可以是载体整合的形式，并可插入植物基因组中，例如通过转化来实现。然而，表达盒也应理解为指这样的构建体，其中编码来自棉阿舒嚢霉的磷酸核糖焦磷酸合酶的核*列置于内源启动子之后，以使后者引起表达来自棉阿舒嚢霉的磷酸核糖焦磷酸合酶。优选引入转基因表达盒中的启动子是在植物生物或其组织、器官、部分、细胞或繁殖材料中有功能的启动子。在植物生物中有功能的启动子应理解为指能在植物或植物部分、植物细胞、植物组织或植物培养物中决定基因(特别是外源基因)表达的任何启动子。在这种情况下，表达可以是例如组成型的，诱导型的或者发育依赖性的。以下是优选的a)组成型启动子"组成型，，启动子指确保在植物发育的大部分阶段(优选植物发育中的所有时间)在多种(优选全部)组织中表达的启动子(Benfey等(1989)EMBOJ8:2195-2202)。特别优选使用植物启动子或来源于^t物病毒的启动子。特别优选CaMV(花椰菜花叶病毒)35S转录物(Franck等(1980)Cell21:285-294;Odell等(1985)Nature313:810-812;Shewmaker等(1985)Virology140:281-288;Gardner等(1986)PlantMolBiol6:221-228)的启动子或19SCaMV启动子(US5，352，605;WO84/02913;Benfey等(1989)EMBOJ8:2195-2202)。其他合适的组成型启动子为核酮糖二磷酸羧化酶/加氧酶小亚基(SSU)启动子(US4,962,028)、leguminB启动子(GenBankAcc.No.X03677)、来自农杆菌的胭脂碱合酶启动子、TR双启动子、来自农杆菌的OCS(章鱼碱合酶)启动子、泛蛋白启动子(HoltorfS等(1995)PlantMolBiol29:637-649)、泛蛋白1启动子(Christensen等(1992)PlantMolBiol18:675-689;Bruce等(1989)ProcNatlAcadSciUSA86:9692-9696)、Smas启动子、肉桂醇脱氢酶启动子(US5,683,439)、液泡ATP酶亚基启动子、拟南芥腈水解酶-1基因启动子(GenBankAcc.No.:U38846,核苷酸3862至5325或S342)和来自小麦富脯氨酸蛋白的启动子(WO91/13991)，CaMV35S启动子和拟南芥腈水解酶-1启动子。在一个实施方案中，使用GOS-2启动子。b)组织特异性启动子此外，优选对种子具有特异性的启动子，例如菜豆蛋白启动子(US5,504,200;BustosMM等(1989)PlantCelll(9):839-53)、2S白蛋白基因的启动子(JoseffsonLG等(1987)JBiolChem262:12196-12201)、豆球蛋白启动子(ShirsatA等(1989)MolGenGenet215(2):326-331)、USP(未知种子蛋白)启动子(BaumleinH等(1991)MolGenGenet225(3):459-67)、油菜籽蛋白基因启动子(US5,608,152;StalbergK等(1996)LPlanta199:515-519)、蔗糖结合蛋白启动子(WO00/26388)或豆3求蛋白B4启动子(LeB4;BaumleinH等(1991)MolGenGenet225:121-128;BSumlein等(1992)PlantJournal2(2):233-9;FiedlerU等(1995)Biotechnology(NY)13(10):10卯1)、拟南芥油质蛋白启动子(WO98/45461)和芸苔Bce4启动子(WO91/13980)。其他合适的种子特异性启动子是以下基因的启动子编码高分子量麦谷蛋白(HMWG)的基因、麦醇溶蛋白、分支酶、ADP葡萄糖焦磷酸酶(AGP酶)或淀粉合酶。其他优选的是允许在单子叶植物(如玉米、大麻、小麦、黑麦、稻等)中实现种子特异性表达的启动子。可以有利地使用lpt2或lptl基因的启动子(WO95/15389,WO95/23230)或者WO99/168卯中所述启动子(大麦醇溶蛋白基因、谷蛋白基因、水稻素基因、谷醇溶蛋白基因、麦醇溶蛋白基因、谷蛋白基因、玉米醇溶蛋白基因、蓖麻素(casirin)基因或棵麦醇溶蛋白基因的启动子)。c)化学诱导型启动子表达盒还可含有化学诱导型启动子(综述文章Gatz等(1997)AnnuRevPlantPhysiolPlantMolBiol48:89-108)，由此可将植物中外源基因的表达控制在特定的时间点。可以类似地使用这些启动子，例如PRP1启动子(Ward等(1993)PlantMolBiol22:361-366)、水杨酸诱导型启动子(WO95/19443)、苯磺酰胺诱导型启动子(EP0388186)、四环素i秀导型启动子(Gatz等(1992)PlantJ2:397-404)、脱落酸诱导型启动子(EP0335528)或乙醇-环己酮i秀导型启动子(WO93/21334)。合适的还有谷胱甘肽S转移酶同工型n基因的启动子(GST-II-27),它可被外源应用的安全剂(如N，N-二烯丙基-2，2-二氯乙酰胺)激活(W093/01294)，并且在单子叶植物和双子叶植物的多种组织中有活性。特别优选组成型启动子，更特别优选种子特异性启动子，特别是油菜籽蛋白启动子和USP启动子。此外，允许在其他植物组织或其他生物(如大肠杆菌)中表达的其他启动子可与待表达的核酸序列有效连接。原则上，合适的植物启动子是所有上述启动子。表达盒或栽体中存在的核酸序列可与除启动子以外的其他遗传控制序列有效连接。术语"遗传控制序列"应以广义理解，指对本发明表达盒的建立或功能有影响的所有序列。例如，遗传控制序列改变在原核或真核生物中的转录和翻译。本发明的表达盒优选在各种情况下均包括待重组表达核酸序列5，上游的植物特异性启动子，以及作为额外遗传控制序列的3，下游终止子序列，并在适当时还包含惯用的调节元件，它们均与待重组表达的核酸序列有效连接。遗传控制序列还包括能改变表达控制特性的其他启动子、启动子元件或最小启动子。因此，遗传控制序列可以例如产生额外依赖于某些胁迫条件的组织特异性表达。例如，已对水胁迫、脱落酸(LamE和ChuaNH，JBiolChem1991;266(26):17131画17135)和热胁迫(SchofflF等(1989)MolGenGenetics217(2-3):246-53)描述了这些元件。其他有利的控制序列为例如革兰氏阳性启动子amy和SP02,以及酵母或真菌启动子ADC1、MFa、AC、P-60、CYC1、GAPDH、TEF、rp28、ADH。原则上，所有带有其调节序列的天然启动子(如上文所述)均可用于本发明的方法。此外，可以有利地使用合成启动子。遗传控制序列还包括基因的5'非翻译区、内含子或非编码3，区，例如肌动蛋白-1内含子或Adhl-S内含子1、2和6(—般性综述参阅如TheMaizeHandbook,Chapter116,Freeling和Walbot编辑,Springer,NewYork(1994))。已经证明，它们可在基因表达的调节中发挥重要作用。因此，已经证明，5，非翻译序列可增强异源基因的瞬时表达。可以提到的翻译增强子为例如烟草花叶病毒5'前导序歹'j(Gallie等(1987)NuclAcidsRes15:8693-8711)等。它们还可促进组织特异性(RousterJ等(1998)PlantJ15:435-440)。表达盒还可有利地含有与启动子有效连接的已知为增强子序列的序列，它们使得可以提高核酸序列的重组表达。还可以在待重组表达的核酸序列的3，末端插入其他有利的序列，例如其他调节元件或终止子。基因构建体中可以存在待重组表达核^列的一个或多个拷贝。适于作为控制序列的多腺普酸化信号为植物多腺苷酸化信号，优选与根癌农杆菌T-DNA多腺苷酸化信号特别是Ti质粒pTiCHS中T-DNA基因3(章鱼碱合酶)或其功能等同物基本一致的那些(Gielen等(1984)EMBO，J3:835等等)。特别合适的终止子序列的实例是OCS(章鱼碱合酶)终止子和NOS(胭脂碱合酶)终止子。控制序列还应理解为允许发生同源重组或插入宿主生物基因组或从基因组中移除的序列。例如，对于同源重组的情况，可以定向方式将特定内源基因的编码序列替换为编码dsRNA的序列。诸如cre/loxl支术的方法允许从宿主生物基因组中组织特异性(可能为诱导型)地移除表达盒(SauerB(1998)Methods.14(4):381-92)。这时，将某些侧翼序列加入靶基因中(lox序列)，这使得可以在其后的时间点通过cre重组酶进行移除。表达盒和由其产生的载体可包含其他功能元件。术语"功能元件，，应以广义理解，指对本发明表达盒、载体或转基因生物的产生、复制或功能有影响的所有元件。可以提到的实例包括但不仅限于a)选择标记，其赋予对以下物质的抗性代谢抑制剂如2-脱氧葡萄糖一6一磷酸(WO98/45456)、抗生素或杀生物剂(优选除草剂)，例如卡那霉素、G418、博来霉素、潮霉素或膦丝菌素等。特别优选的选择标记是赋予对除草剂的抗性的那些。例如编码膦丝菌素乙酰转移酶(PAT)并使谷氨酰胺合酶抑制剂失活的DNA序列(bar和pat基因)、赋予草甘膦⑧(N-(膦酰甲基)甘氨酸)抗性的5-烯醇式丙酮基莽草酸-3-磷酸合酶基因(EPSP合酶基因)、编码草甘膦⑧降解酶(草甘膦氧化还原酶)的gox基因、deh基因(编码使茅草枯失活的脱囟素酶)、使磺酰脲和咪唑啉酮失活的乙酰乳酸合酶，以及编码降解溴草腈的腈水解酶的bxn基因、赋予抗生素大观霉素抗性的aasa基因、产生链霉素抗性的链霉素磷酸转移酶(SPT)基因、赋予卡那霉素或遗传霉素抗性的新霉素磷酸转移酶(NPTII)基因、赋予潮霉素抗性的潮霉素磷酸转移酶(HPT)基因、赋予磺酰脲除草剂抗性的乙酰乳酸合酶基因(ALS)(例如带有如S4和/或Hra突变的突变ALS变体)。b^艮告基因，其编码易于定量的蛋白质，并允许通过其颜色或酶活性来评价转化效率或表达部位或时间。这种情况下非常特别优选的是报告蛋白(SchenbornE，GroskreutzD.MolBiotechnol.1999;13(1):29-44),如纟录色荧光蛋白(GFP)(Sheen等(1995)PlantJournal8(5):777-784)、氯霉素转移酶、萤光素酶(Ow等(1986)Science234:856-859)、水母发光蛋白基因(Prasher等(1985)BiochemBiophysResCommun126(3):1259-1268)、B画半乳糖苷酶，非常特别优选的是B-葡糖醛酸糖苷酶(Jefferson等(1987)EMBOJ6:39013907)。c)复制起点，其允许本发明的表达盒或载体在例如大肠杆菌中复制。可以提到的实例为ORI(DNA复制起点)、pBR322起点或P15A起点(Sambrook等MolecularCloning.ALaboratoryManual,第二版.ColdSpringHarborLaboratoryPress,ColdSpringHarbor,NY，1989)。d)农杆菌介导的植物转化所需的元件，例如T-DNA的右边界或左边界，或者vir区。为了选择成功发生同源重组的细胞或者成功转化的细胞，一般需要额外引入选择标记，其赋予成功发生重组的细胞对杀生物剂(如除草剂)、代谢抑制剂(如2-脱氧葡萄糖-6-磷酸)(WO98/45456)或抗生素的抗性。选择标记允许将转化细胞从未转化细胞中选择出来(McCormick等(1986)PlantCellReports5:81-84)。此外，重组表达盒或表达载体还可包含这样的核酸序列，其不编码来自棉阿舒嚢霉的磷酸核糖焦磷酸合酶，其重组表达导致进一步提高脂肪酸的生物合成(例如由于proOIL)。额外重组表达的proOIL核酸序列可选自例如但不仅限于编码乙酰辅酶A羧化酶(ACCase)、甘油-3-磷酸酰基转移酶(GPAT)、溶血磷脂酰基转移酶(LPAT)、二酰甘油酰基转移酶(DAGAT)和磷月旨:二酰甘油酰基转移酶(PDAT)的核酸。这些序列为本领域技术人员已知，并可容易地得自数据库或相应植物的适当cDNA文库。其细胞、组织、器官、部分或种子(优选植物或植物细胞、组织、器官、部分或种子)中。因此，本发明还涉及所述重组载体，其包含来自棉阿舒嚢霉的磷酸核糖焦磷酸合酶的重组表达盒。例如，栽体可以是质粒、粘粒、噬菌体、病毒或农杆菌。表达盒可通过适当的限制性切割位点引入载体(优选质粒载体)中。所得的载体首先引入大肠杆菌中。选择正确转化的大肠杆菌，培养并通过本领域技术人员已知的方法获得重组载体。可以使用限制酶分析和测序来验证克隆步骤。优选的载体是使得可以将表达盒稳定整合进宿主基因组中的那些。转化生物(或转化的细胞或组织)的产生需要将目的DNA(例如表达载体)、RNA或蛋白质引入目的宿主细胞。有多种方法可用于称为转化(或转导或转染)的这一过程(Keown等(19卯)MethodsinEnzymology185:527-537)。因此，DNA或RNA可通过如显微注射或以包被有DNA的孩史粒进行的生物射弹直接引入。还可对细胞进行化学透化处理，例如用聚乙二醇进行处理，以4吏DNA可通过扩散到达细胞。还可使用其他含有DNA的单位如小细胞、细胞、溶酶体或脂质体通过原生质体融合来实施DNA引入。电穿孔是引入DNA的另一种合适方法，这时，通过电脉冲使细胞可逆地透化。还可以将植物部分浸入DNA溶液中，以及花粉或花粉管转化。这些方法已被描述(例如Bilang等(1991)Gene100:247-250;Scheid等(1991)MolGenGenet228:104-112;Guerche等(1987)PlantScience52:111-116;Neuhause等(1987)TheorApplGenet75:30-36;Klein等(1987)Nature327:70-73;Howell等(1980)Science208:1265;Horsch等(1985)Science227:1229-1231;DeBlock等(1989)PlantPhysiology91:694-701;MethodsforPlantMolecularBiology(Weissbach和Weissbach编辑)AcademicPressInc.(1988);以及MethodsinPlantMolecularBiology(Schuler和Zielinski，eds.)AcademicPressInc.(1989》。在植物中，已描述的用于转化植物组织或植物细胞和由其再生植物的方法已被利用于瞬时转化或稳定转化。具体地，合适的方法是通过聚乙二醇诱导的DNA摄取实现的原生质体转化、使用基因枪进行的生物射弹法(也称为微粒轰击法)、电穿孔、将千胚在含有DNA的溶液中孵育以及显微注射。除了这些"直接，，转化技术以外，还可以通过细菌感染来实现转化，这通过根癌农杆菌或发根农杆菌和相应重组Ti质粒或Ri质粒的转移来实现，或者通过转基因植物病毒感染来实现。农杆菌介导的转化最适合于双子叶植物细胞。该方法描述于例如HorschRB等(1985)Science225:1229f)。当使用农杆菌时，表达盒将整合进特定的质粒(穿梭载体或双元载体)中。如果将Ti或Ri质粒用于转化，将Ti或Ri质粒T-DNA的至少右边界(多数情况下为右边界和左边界)作为侧翼区与待引入的表达盒连接。优选使用双元载体。双元载体在大肠杆菌和农杆菌中都能复制。它们通常含有选择标记基因以及侧翼为T-DNA序列右边界和左边界的接头或多聚接头。它们可直接转化进农杆菌中(Holsters等(1978)MolGenGenet163:181-187)。选择标记基因(例如赋予卡那霉素抗性的nptll基因)允许选择转化的农杆菌。在这种情况下作为宿主生物的农杆菌应已包含带有vir区的质粒。vir区是向植物细胞转移T-DNA所需的。这样转化的农杆菌可用于转化植物细胞。T-DNA用于转化植物细胞的用途已被广泛研究和描述(El)120516;Hoekema，TheBinaryPlantVectorSystem,OffsetdrukkerijKantersB.V.，Alblasserdam，ChapterV;An等(1985)EMBOJ4:277-287)。已知多种双元栽体，其中一些是市售的，例如pBI101.2或pBI贈(ClontechLaboratories,Inc.USA)。已经描述了其他适于植物表达的启动子(Rogers等(1987)MethinEnzymol153:253-277;Schardl等(1987)Gene61:1-11;Berger等(1989)ProcNatlAcadSciUSA86:8402-8406)。直接转化技术适用于任J可生物和细胞类型。在将DNA或RNA注射或电穿孔进植物细胞的情况下，所用的质粒不一定满足任何特定要求。可以使用简单的质粒，例如来自pUC系列的质粒。如果将从转化细胞再生完整植物，则质粒中有必要存在额外的选择标记基因。当选择标记是所插入DNA的一部分时，可以将稳定转化细胞(即含有例如，能赋予对抗生素或除草剂(如卡那霉一素、G418、博一来霉素、潮霉素或膦丝菌素等)的抗性的任何基因都可作为标记(见上文)。表达这样的标记基因的转化细胞能在存在杀死未转化野生型的抗生素或除草剂浓度的情况下存活。实例如上述，优选包括赋予除草剂膦丝菌素抗性的bar基因(RathoreKS等(1993)PlantMolBiol21(5):871-884)、赋予卡那霉素抗性的nptll基因、赋予潮霉素抗性的hpt基因，或者赋予除草剂草甘膦抗性的EPSP基因。选择标记允许将转化细胞从未转化细胞中选择出来(McCormick等(1986)PlantCellReports5:81-84)。可以惯用的方式对所得植物进行育种和杂交。应培养两代或更多代以确保基因組整合是稳定并且可遗传的。上述方法描述于例如JenesB等(1993)TechniquesforGeneTransfer,TransgenicPlants,Vol.1，EngineeringandUtilization,SDKung和RWu编辑，AcademicPress,128-143页，以及Potrykus(1991)AnnuRevPlantPhysiolPlantMolecBiol42:205-225。优选将待表达的构建体克隆进适于转化根癌农杆菌的载体(如pBinl9)中(Bevan等(1984)NuclAcidsRes12:87111)。一旦产生了转化的植物细胞，就可使用本领域技术人员已知的方法获得完整植物。例如，使用愈伤组织培养物作为起始材料。可以已知方式在这种尚未分化的细胞生物量中诱导嫩枝和根的发育。可将所得的小植物移出并用于育种。本领域技术人员熟悉这些用于从植物细胞再生植物部分和完整植物的方法。可以用于此目的的方法例如为Fennell等(1992)PlantCellRep.11:567-570;Stoeger等(1995)PlantCellRep.14:273-278;Jahne等(1994)TheorApplGenet89:525-533所述的方法。"转基因，，或"重组"(例如对于核酸序列、表达盒或者包含所述核酸序列的载体或者转化有所述核酸序列、表达盒或载体的生物的情况)指所有通过重组方法构建的构建体，其中a)编码磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸序列，或b)与a)所述核酸序列有效连接的遗传控制序列，例如在植物生物中有功能的启动子，或c)a)和b)不在其天然遗传环境中，或者已通过重组方法进行了修饰，所述^f'务饰可以是例如替换、添加、缺失、倒位或插入一个或多个核苷酸残基。天然遗传环境指来源生物中的天然染色体基因座或者在基因组文库中存在。对于基因组文库的情况，核酸序列的天然遗传环境优选至少在一定程度上保留。该环境在核酸序列的至少一侧，并且序列长度为至少50bp，优选至少500bp，更优选至少1000bp，非常特别优选至少5000bp。天然表达盒(例如启动子与编码酵母G3PDH的基因的天然组合)在后者经非天然合成("人工")方法(例如诱变)修饰时成为转基因表达盒。已经描述了这样的方法(US5,565,350;WO00/15815;见上文)。特别地，优选作为转基因生物的宿主或起始生物是与上文定义一致的植物。本发明的目的包括植物界中所有属和种的单子叶植物和双子叶植物，特别是用于获得油的植物，例如油菜、向日葵、芝麻、红花、橄榄树、大豆、玉米和坚果物种。还包括成熟植物、种子、嫩枝和苗，以及由此产生的部分、繁殖材料和培养物(例如细胞培养物)。成熟植物指处于苗阶段之后的任何期望的发育阶段的植物。苗指早期发育阶段的年幼未成熟植物。可以用上文所述用于转化或转染生物的方法来产生转基因植物。根据本发明，如果整合进非染色体自主复制子或整合进植物染色体或细胞器基因組中，则所引入的编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之PRS的核酸分子可在植物细胞中稳定维持。或者，所引入的PRS可存在于染色体外的非复制型载体中，并瞬时表达或具有瞬时活性。在一个实施方案中，可以产生其中PRS已整合进基因组中的异源重组微生物，制备载体，其含有编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之PRS的核酸分子的至少一部分，其中引入了缺失、添加或替换，以改变(例如功能性破坏)该基因。优选地，所述PRS基因为酵母、大肠杆菌基因，但也可以是来自相关植物或甚至来自哺乳动物或昆虫来源的同源物。载体可^:计成^f吏得在同源重组时编码PRS的内源核酸分子被突变或以其他方式改变，但仍编码功能性多肽(例如，可以改变上游调节区，从而改变内源PRS的表达)。在一个优选的实施方案中，本发明蛋白质的生物活性在同源重组后提高。为了通过同源重组产生点突变，可以在称为嵌合修复术(chimeraplasty)的技术中使用DNA-RNA杂交体(Cole画Strauss等，NucleicAcidsResearch27(5)，1323(1999)和Kmiec，GeneTherapyAmericanScientist.87(3)，240(1999))。展叶剑叶藓(尸/^^wm7"〃tf/mfew)中的同源重组操作也是本领域技术人员所熟知的，并考虑用于本文中。而在同源重组载体中，编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之PRS的核酸分子中改变的部分在其5'和3，末端的侧翼为额外的PRS基因核酸分子，以允许在该载体所携带的外源PRS基因与微生物或植物中的内源PRS基因之间发生同源重组。所述额外的侧翼PRS核酸分子为足以与内源基因发生成功的同源重组的长度。载体中一般包含数百个碱基对至数千碱基对的侧翼DNA(5，和3，端都是如此)。对同源重组载体的描述参阅如ThomasK.R.，和CapecchiM.R.,Cell51，503(1987)，或者对展叶剑叶藓中基于cDNA的重组参阅Strepp等，PNAS，95(8)，4368(1998)。将该载体引入微生物或植物细胞中(例如通过聚乙二醇介导的DNA)，并使用本领域已知的技术选择所引入RPS基因已与内源PRS基因发生同源重组的细胞。无论是存在于染色体外非复制型载体中还是存在于整合进染色体的载体中，编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的PRS的核酸分子均优选存在于植物表达盒中。植物表达盒优选地含有调节序列，所述调节序列能在植物细胞中驱动与其有效连接的基因表达，以使每个序列可发挥其功能，例如通过聚腺苷酸化信号来终止转录。优选的多腺苷酸化信号是来源于根癌农杆菌t-DNA(例如Ti质粒pTiACH5中称为章鱼碱合酶的基因3)的那些(Gielen等，EMBO丄3，835(1984))或其功能等同物，但在植物中具有功能活性的其他终止子也是合适的。由于植物基因表达经常不仅受限于转录水平，因此植物表达盒优选含有其他有效连接的序列，如翻译增强子，如含有提高多肽/RNA比值的烟草花叶病毒5，非翻译前导序列的超驱动序列(Gallie等，Nucl.AcidsResearch15，8693(1987))。植物表达载体的实例包括BeckerD.等，PlantMol.Biol.20，1195(1992)以及BevanM.W.，Nucl.Acid.Res.12，8711(1984);和"VectorsforGeneTransferinHigherPlants"TransgenicPlants,Vol.1，EngineeringandUtilization,Kung和WuR.，AcademicPress,1993，S.15-38中详细描述的那些。"转化"在本文中定义为将异源DNA引入植物细胞、植物组织或才直物的方法。这可在天然或人工条件下使用本领域熟知的多种方法来进行。转于所转化的宿主细胞来选择方法，包括但不仅限于病毒感染、电穿孔、月旨转染和微粒轰击。这些"转化"细胞包括稳定转化的细胞，其中所插入的DNA能作为自主复制质粒复制，或作为宿主染色体的一部分复制。它们包括在有限的时间内瞬时表达所插入DNA或RNA的细胞。转化的植物细胞、植物组织或植物应理解为不仅包括转化方法的终产物，而且还包括其转基因后代。术语"转化的"、"转基因的"和"重组的"指已引入异源核酸分子的宿主生物，例如细菌或植物。所述核酸分子可稳定整合进宿主的基因组中，或者该核酸分子也可作为染色体外的分子存在。这样的染色体外分子可以自主复制。转化的细胞、组织或植物应理解为不仅包括转化方法的终产物，而且还包括其转基因后代。"非转化的"、"非转基因的"或"非重组的"宿主指不含有异源核酸分子的野生型生物，例如细菌或植物。本文使用的"转基因植物"指含有插入其核基因组或细胞器基因组的外源核苷酸序列的植物。其还包括后代，例如Tl、T2和后续世代，或者BC1、BC2和后续世代，及其与非转基因植物或其他转基因植物的杂种。宿主生物(=转基因生物)有利地含有至少一个拷贝的本发明核酸和/或本发明的核酸构建体。原则上，所有植物均可用作宿主生物。优选的转基因植物为例如选自以下科槭树科(Aceraceae)、漆树科(Anacadiaceae)、伞形科(Apiaceae)、菊科(Asteraceae)、十字花科(Brassicaceae)、仙人掌科(Cactaceae)、葫A科(Cucurbitaceae)、大戟科(E叩horbiaceae)、豆科(Fabaceae)、锦葵科(Malvaceae)、睡莲科(Nymphaeaceae)、翼栗科(Papaveraceae)、蔷蔽科(Rosaceae)、杨柳科(Salicaceae)、痴科(Solanaceae)、棕榈科(Arecaceae)、凤梨科(Bromeliaceae)、莎草科(Cyperaceae)、秀尾科(Iridaceae)、百合科(Liliaceae)、兰科(Orchidaceae)、龙胆科(Gentianaceae)、唇形科(Labiaceae)、木兰科(Magnoliaceae)、毛莱科(Ranunculaceae)、Carifolaceae、萏草科(Rubiaceae)、玄参科(Scrophulariaceae)、石竹科(Caryophyllaceae)、杜鹃花科(Ericaceae)、蓼科(Polygonaceae)、堇菜科(Violaceae)、灯心草科(Juncaceae)或禾本科(Poaceae)并优选来源于选自槭树科、漆树科、十字花科、葫芦科、豆科、罂粟科、蔷薇科、茄科、百合科或禾本科植物。优选作物植物，如有利地选自如下属的植物花生、欧洲油菜、卡诺拉油菜、向日葵属、红花、橄榄(olive)、芝麻(sesame)、榛子(hazelnut)、扁桃(almond)、鳄梨(avocado)、月桂(bay)、南瓜(pumpkin/squash)、胡麻、大豆(soya)、阿月混子(pistachio)、琉璃苣、玉米、小麦、黑麦、燕麦、高粱(sorghum)和粟(millet)、黑小麦、稻、大麦、木薯(cassava)、马铃薯、甜菜、茄子、苜蓿和多年生草本和伺用植物、油棕榈、蔬菜(芸莒属植物、根用蔬菜、块茎类蔬菜、荚果蔬菜、果类蔬菜、葱蒜类蔬菜、叶用蔬菜和茎用蔬菜)、荞麦(buckwheat)、菊芋(Jerusalemartichoke)、蚕豆(broadbean)、野豌豆(vetches)、小扁豆(lentil)、四季豆(dwarfbean)、羽扇豆、三叶草和紫花苜蓿，此处仅提到它们中的某些。在本发明的一个实施方案中，转基因植物选自谷类、大豆、油菜籽(包括油菜，特别是芸莒和冬季油菜)、棉花、甘蔗和马铃薯，特别是玉米、大豆、油菜籽(包括油菜，特别是芸苔和冬季油茱)、棉花、小麦和水稻。在本发明的另一实施方案中，转基因植物为棵子植物，特别是云杉、松树或冷杉。在一个优选的实施方案中，宿主植物选自槭树科、漆树科、伞形科、菊科、十字花科、仙人掌科、葫芦科、大戟科、豆科、锦葵科、睡莲科、罂粟科、蔷薮科、杨柳科、茄科、棕榈科、凤梨科、莎草科、鸢尾科、百合科、兰科、龙胆科、唇形科、木兰科、毛莱科、Carifolaceae、茜草科、玄参科、石竹科、杜鹃花科、蓼科、堇菜科、灯心草科或禾本科并优选来源于选自槭树科、漆树科、十字花科、葫芦科、豆科、罂粟科、蔷薇科、茄科、百合科或禾本科植物。优选作物植物并且特别是本文中以上提到的植物作为宿主植物，如以上提到的科和属，例如优选的物种是腰果(Anacardiumoccidentale)、金盞花(Calendulaofficinalis)、红花(Carthamustinctorius)、菊芋(Cichoriumintybus)、洋蓟(Cynarascolymus)、向曰蔡(Helianthusannus)、香叶万寿菊(Tageteslucida)、万寿菊(Tageteserecta)、细叶万寿菊(Tagetestenuifolia);胡萝卜(Daucuscarota);欧洲榛(Corylusavellana)、土耳其榛(Coryluscolurna)、琉璃苣(Boragoofficinalis);欧洲油菜、芜青(Brassicarapassp.)、野欧白芥(Sinapisarvensis)、芥菜(Brassicajuncea)、芥菜原变种(Brassicajunceavar.juncea)、铍叶芥菜(Brassicajunceavar.crispifolia)、大叶芥菜(Brassicajunceavar.foliosa)、黑芥(Brassicanigra、Brassicasinapioides、Melanosinapiscommunis)、甘蓝(Brassicaoleracea)、才以南芥菜、凤梨(Ananacomosus)、Ananasananas、Bromeliacomosa、番木瓜(Caricapapaya)、大麻(Cannabissative)、甘薯(lpomoeabatatus)、提琴叶牵牛花(lpomoeapandurata)、Convolvulusbatatas、Convolvulustiliaceus、甘薯(lpomoeafastigiata)、lpomoeatiliacea、三裂叶薯(lpomoeatriloba)、Convolvuluspanduratus、甜菜(Betavulgaris)、甜萝卜(Betavulgarisvar.altissima)、甜菜(原变种)(Betavulgarisvar.vulgaris)、沿海甜菜(Betamaritima)、Betavulgarisvar.perennis、Betavulgarisvar.conditiva、Betavulgarisvar.esculenta、夢瓜(Cucurbitamixta)、西葫,(Cucurbitapepo)、南瓜(Cucurbitamoschata)、油橄榄(Oleaeuropaea)、木薯(Manihotutilissima)、JaniphaManihot、Jatrophamanihot、Manihotaipil、Manihotdulcis、Manihotmanihot、Manihotmelanobasis、木薯(Manihotesculenta)、蓖麻(Ricinuscommunis)、婉豆(Pisumsativum)、饲料豌豆(Pisumarvense)、早生矮豌豆(Pisumhumile)、紫花苜蓿(Medicagosativa)、野苜蓿(Medicagofalcata)、杂交苜蓿(Medicagovaria)、大豆、Dolichossoja、宽叶蔓豆(Glycinegracilis)、Glycinehispida、Phaseolusmax、Sojahispida、Sojamax、挪子(Cocosnucifera)、茶麗子天竺蔡(Pelargoniumgrossularioides)、Oleumcocoas、月桂(Laurusnobilis)、鲟梨(Perseaamericana)、花生(Arachishypogaea)、亚麻(linumusitatissimum)、linumhumile、奥地利亚麻(linumaustriacum)、linumbienne、窄叶亚麻(linumangustifolium)、泻亚麻(linumcatharticum)、金黄亚麻(linumflavum)、大花亚麻(linumgrandiflorum、Adenolinumgrandiflorum)、刘易斯亚麻(linumlewisii)、那旁亚麻(linumnarbonense)、宿才艮亚麻(linumperenne)、刘易斯宿才艮亚麻(linumperennevar.lewisii)、linumpratense、linumtrigynum、石插(Punicagranatum)、陆地棉Gossypiumhirsutum、树冲帛(Gossypiumarboreum)、海岛冲帛(Gossypiumbarbadense)、草4帛(Gossypiumherbaceum)、瑟伯氏冲帛(Gossypiumthurberi)、香蕉(Musanana)、小果野蕉(Musaacuminata)、大蕉(Musaparadisiaca)、芭蕉(Musaspp.)、油棕(Elaeisguineensis)、东方翼粟(Papaverorientale)、虞美人(Papaverrhoeas)、Papaverdubium、胡麻(Sesamumindicum)、树胡椒(Piperaduncum)、Piperamalago、狭叶胡椒(Piperangustifolium)、Piperauritum、萎叶(Piperbetel)、毕澄痴(Pipercubeba)、荜菝(Piperlongum)、胡椒(Pipernigrum)、假荜菝(Piperretrofractum)、Artantheadunca、Artantheelongata、Peperomiaelongata、Piperelongatum、Steffensiaelongata、大麦(Hordeumvulgare)、芒颖大麦草(Hordeumjubatum)、鼠大麦(Hordeummurinum)、黑麦状大麦草(Hordeumsecalinum)、栽培二梭大麦(Hordeumdistichon)、三叉大麦(Hordeumaegiceras)、栽培六梭大麦(Hordeumhexastichon.、Hordeumhexastichum)、Hordeumirregulare、大麦(Hordeumsativum)、黑麦状大麦草(Hordeumsecalinum)、燕麦(Avenasativa)、野燕麦(Avenafatua)、比赞燕麦(Avenabyzantina)、野燕麦(原变种)(Avenafatuavar.sativa)、杂种野燕麦(Avenahybrida)、双色高粱(Sorghumbicolor)、石茅高粱(Sorghumhalepense)、甜高粱(Sorghumsaccharatum)、高粱(Sorghumvulgare)、Andropogondrummondii、Holcusbicolor、Holcussorghum、Sorghumaethiopicum、Sorghumarundinaceum、卡"f弗尔高粱(Sorghumcaffrorum)、垂穗高粱草(Sorghumcernuum)、甜高粱(Sorghumdochna)、Sorghumdrummondii、硬高粱草(Sorghumdurra)、Sorghumguineense、Sorghumlanceolatum、多脉高粱草(Sorghumnervosum)、甜高粱(Sorghumsaccharatum)、Sorghumsubglabrescens、Sorghumverticilliflorum、高粱(Sorghumvulgare)、石茅高粱(Holcushalepensis)、泰(Sorghummiliaceum)(谷子(millet))、稷(Panicummilitaceum)、玉米、普通小麦(Triticumaestivum)、硬粒小麦(Triticumdurum)、圓柱小麦(Triticumturgidum)、Triticumhybernum、马卡小麦(Triticummacha)、普通小麦(Triticumsativum)或普通小麦(Triticumvulgare)、咖啡(Cofeaspp.)、小果咖啡(Coffeaarabica)、中果咖啡(Coffeacanephora)、大果咖啡(Coffealiberica)、辣椒(Capsicumannuum)、Capsicumannuumvar.glabriusculum、小米椒(Capsicumfrutescens)、辣椒(Capsicumannuum)、烟草(Nicotianatabacum)、马铃薯(Solanumtuberosum)、痴(Solanummelongena)、番痴(Lycopersiconesculentum)、番痴(Lycopersiconlycopersicum.)、梨形番痴(Lycopersiconpyriforme)、红痴(Solanumintegrifolium)、番痴(Solanumlycopersicum)、可可树(Theobromacacao)或大叶茶(Camelliasinensis)。漆树科如黄连木属(Pistacia)、芒果属(Mangifera)、腰果属(Anacardium)伊H口物种阿月'混子(Pistaciavera)[pistachios、Pistazie、芒果(Mangiferindica)Mango或腰果(Anacardiumoccidentale)Cashew];菊科如金盏花属(Calendula)、红蓝花属(Carthamus)、矢车菊属(Centaurea)、菊苣属(Cichorium)、菜蓟属(Cynara)、向日葵属(Helianthus)、莴苣属(Lactuca)、Locusta、万寿菊属、缬草属(Valeriana)例如物种金盏花Marigoldj、红花safflowerl、矢车菊(Centaureacyanus)[cornflowerl、菊苣(Cichoriumintybus)[bluedaisyl、洋蓟Artichokej、向日葵[sunflowerj、莴苣(Lactucasativa)、铍叶莴苣(Lactucacrispa)、Lactucaesculenta、LactucascariolaLssp.sativa、LactucascariolaLvar.integrata、LactucascariolaL.var.integrifolia、Lactucasativasubsp.romana、Locustacommums、莴苣缬草(Valerianalocusta)卩ettuce]、香叶万寿菊、万寿菊或细叶万寿菊[MarigoIdj;伞形科如胡萝卜属(Daucus)例如物种胡萝卜[carrot];桦木科(Betulaceae)如榛属(Corylus)例如物种欧洲榛或土耳其榛[hazelnutj;紫草科(Boraginaceae)如琉璃苣属(Borage)例如物种琉璃苣boragej;十字花科如芸莒属、Melanosinapis、白芥属(Sinapis)、拟南芥菜属例如物种欧洲油菜、芜青[卡诺拉油菜、欧洲油菜、甘蓝型油菜j、野欧白芥、芥菜、芥菜(原变种)、皱叶芥菜、大叶芥菜、黑芥、黑芥(Brassicasinapioides)、黑齐(Melanosinapiscommunis)[mustardj、甘蓝fodderbeet]或拟南芥菜；凤梨科如thegenera凤梨属(Anana)、Bromelia例如物种凤comosa菠萝；番木瓜科如番木瓜属例如物种番木瓜[papaya];大麻科(Cannabaceae)如大麻属例如物种大麻hempl、旋花科(Convolvulaceae)如番薯属、旋花属例如物种甘薯、提琴叶牵牛花、Convolvulusbatatas、Convolvulustiliaceus、甘薯(lpomoeafastigiata)、lpomoeatiliacea、三裂叶薯或Convolvuluspanduratus[sweetpotato、ManoftheEarth、wildpotato]、藜科(Chenopodiaceae)如甜菜属即物种甜菜、甜萝卜、甜菜(原变种)、沿海甜菜、Betavulgarisvar.perennis、Betavulgarisvar.conditiva或Betavulgarisvar.esculenta[sugarbeet];葫,科如南瓜属(Cucurbita)例如物种夢瓜、灰冲予南瓜(Cucurbitamixta)、西葫,或南瓜[pumpkin、squash];胡颓子科(Elaeagnaceae)如胡颓子属例:ft口物种油橄榄[olive；杜鹃花科如山月桂属(Kalmia)例如物种宽叶山月桂(Kalmialatifolia)、窄叶山月桂(Kalmiaangustifolia)、小叶山月桂(Kalmiamicrophylla)、沼泽山月桂(Kalmiapolifolia)、Kalmiaoccidentalis、Cistuschamaerhodendros或KalmialuddaAmericanlaurel、阔叶月桂、calicobush、spoonwood、sheeplaurel、alpinelaurel、boglaurel、westernbog-laurel、swamp-laurel];大戟科如木薯属、Janipha、麻疯树属(Jatropha)、蓖麻属(Ricinus)例如物种木薯、Janiphamanihot、Jatrophamanihot、Manihotaipil、Manihotdulcis、Manihotmanihot、Manihotmelanobasis、Manihotesculenta[Manihot、arrowroot、tapioca、cassava或荛麻castorbean、CastorOilBush、CastorOilplant、PalmaChristi、WonderTreel;豆科如3宛豆属(Pisum)、合欢属(Albizia)、Cathormion、Feuillea、因加属(Inga)、围延树属(Pithecolobium)、金合欢属(Acacia)、含羞草属(Mimosa)、苜蓿属(Medicago)、大豆属(Glycine)、扁豆属(Dolichos)、菜豆属(Phaseolus)、Soja例长口物种豌豆、饲料豌豆、早生矮豌豆[pea、Albiziaberteriana、合欠(Albiziajulibrissin)、大叶合欠(Albizialebbeck)、Acaciaberteriana、Acacialittoralis、Albiziaberteriana、Albizziaberteriana、Cathormionberteriana、Feuilleaberteriana、Ingafragrans、Pithecellobiumberterianum、Pithecellobiumfragrans、Pithecolobiumberterianum、Pseudalbizziaberteriana、Acaciajulibrissin、Acacianemu、Albizianemu、Feuilleeajulibrissin、Mimosajulibrissin、Mimosaspeciosa、Sericanrdajulibrissin、Acacialebbeck、Acaciamacrohylla、Albizialebbek、Feuilleealebbeck、Mimosalebbeck、Mimosaspeciosa[bastardlogwood、silktree、EastIndianWalnut、紫花苜蓿、野苜蓿、杂交苜蓿[苜蓿l、大豆、Dolichossoja、宽叶蔓豆、Glycinehispida、Phaseolusmax、Sojahispida或Sojamax[大豆I;栊牛儿苗科如天竺葵属(Pelargonium)、椰子属(Cocos)、Oleum例如物种椰子、茶簏子天竺葵或Oleumcocois[椰子；禾本科如甘蔗属例如物种甘蔗(Saccharumofficinamm);核杉W牛(Juglandaceae)如核杉^属、Wallia例如物种核杉匕(Juglansregia)、Juglansailanthifolia、山核杉匕Juglanssieboldiana、灰核杉匕(Juglanscinerea)、Walliacinerea、Juglansbixbyi、力口州黑核桃(Juglanscalifornica)、印度黑核桃(Juglanshindsii)、Juglansintermedia、Juglansjamaicensis、大核杉匕(Juglansmajor)、Juglansmicroearpa、黑核杉&(Juglansnigra)或Wallianigra[胡书匕、黑胡杉匕、commonwalnut、Persianwalnut、白胡书匕、灰胡杉&、黑胡杉匕j;樟牙+如聘梨属、月才圭属例:i口物种月才圭[bay、laurel、baylaurel、sweetbayj、絝梨、鲟梨(Perseagratissima)或聘梨(Perseapersea)[avocado；豆科^口落花生属(Arachis)伊J^(口物种花生lpeanut];亚麻科(Linaceae)浊口亚麻属(Linum)、Adenolinum例:fe口物种亚麻(linumusitatissimum)、linumhumile、奥i也利亚麻(linumaustriacum)、linumbienne、窄叶亚麻(Iinumangustifolium)、泻亚麻(linumcatharticum)、金黄亚麻(linumflavum)、大花亚麻(linumgrandiflorum、Adenolinumgrandiflorum)、刘易斯亚麻(linumlewisii)、那旁亚麻(linumnarbonense)、宿才艮亚麻(linumperenne)、刘易斯宿才艮亚麻(linumperennevar.lewisii)、linumpratense、linumtrigynum[亚麻属、胡麻；Lythrarieae如石榴属(Punica)例3口物种石榴[pomegranate];锦葵禾牛如棉花属(Gossypium)例如物种陆地棉、树棉、海岛棉、草棉或瑟伯氏棉(Gossypiumthurberi)l棉花j;芭蕉科(Musaceae)如芭蕉属(Musa)例如物种香蕉、小果野蕉、大蕉、芭蕉[bananal;柳叶茱科(Onagraceae)如Camissonia、月见草属(Oenothera)例i口物种月见草(Oenotherabiennis)或Camissoniabrevipes[primose、eveningprimosel;標才闾矛牛:i口油棉属(Elacis)例^口物种油棕榈(Eladsguineensis)[oilplam；巽粟科如翼粟属(Papaver)例如物种东方罌粟、虞美人、长果罌粟(Papaverdubium)[poppy、orientalpoppy、compoppy、fieldpoppy、shiiieypoppies、fieldpoppy、long-headedpoppy、long-podpoppy];胡麻科(Pedaliaceae)如胡麻属例如物种胡麻sesameJ;胡椒科(Piperaceae)如胡椒属(Piper)、Artanthe、草胡椒属(Peperomia)、Steffensia例如物种树胡氺仅、Piperamalago、狭叶胡氺权、Piperauritum、萎叶、毕澄痴、荜菝、胡椒、假荜菝、Artantheadunca、Artantheelongata、Peperomiaelongata、Piperelongatum、SteffensiaelongataCayennepepper、wildpepperj;禾本科如大麦属(Hordeum)、黑麦属(Secale)、燕麦属(Avena)、高粱属(Sorghum)、须芒草属(Andropogon)、绒毛草属(Holcus)、黍(Panicum)、稻属(Oryza)、玉蜀黍属、小麦属(Triticum)例如物种大麦、芒颖大麦草、鼠大麦、黑麦状大麦草、栽培二棱大麦、三叉大麦、栽培六棱大麦、栽培六棱大麦(Hordeumhexastichum)、Hordeumirregulare、大麦(Hordeumsativum)、黑麦状大麦草[barley、pearlbarley、foxtailbarley、wallbarley、meadowbarley、黑麦(Secalecereale)[rye、燕麦、野燕麦、比赞燕麦、野燕麦(原变种)、杂种野燕麦、双色高粱、石茅高粱(Sorghumhalepense)、甜高粱(Sorghumsaccharatum)、高粱(Sorghumvulgare)、Andropogondmmmondii、Holcusbicolor、Hokussorghum、Sorghumaethiopicum、Sorghumarundinaceum、卡佛尔高粱、垂稳高粱草、甜高粱(Sorghumdochna)、Sorghumdrummondii、硬高粱草、Sorghumguineense、Sorghumlanceolatum、多脉高粱草、甜高粱、Sorghumsubglabrescens、Sorghumverticilliflorum、高粱、石茅高粱(Holcushalepensis)、泰(Sorghummiliaceummillet)、稷(Panicummilitaceum)[Sorghum、millet]、稻、玉米[corn、maize、普通小麦(Triticumaestivum)、石更丰立小麦、圆柱小麦、Triticumhybernum、马卡小麦、普通小麦(Triticumsativum)或普通小麦(Triticumvulgare)[wheat、breadwheat、commonwheatj、山龙眼科(Proteaceae)如澳洲坚果黍(Macadamia)例如物种澳洲坚果(Macadamiaintergrifolia)[macadamiaj;茜草牙牛力口咖叫一属例如物种咖啡(Cofeaspp.)、小果咖啡(Coffeaarabica)、中果咖啡(Coffeacanephora)或大果咖叫^(Coffealiberica)[coffee];玄参科^口毛H花属(Verbascum)例如物种毛瓣毛蕊花(Verbascumblattaria)、南欧毛蕊花(Verbascumchaixii)、Verbascumdensiflorum、Verbascumlagurus、Verbascumlongifolium、Verbascumlychnitis、Verbascumnigrum、奥林匹克毛蔬花(Verbascumolympicum)、Verbascumphlomoides、紫花毛签花(Verbascumphoenicum)、Verbascumpulverulentum或毛蔬'花(Verbascumthapsus)[mullein、whitemothmullein、nettle-leavedmullein、密花毛,统花(dense-floweredmullein)、silvermullein、长叶毛,统、花、whitemullein、darkmullein、希腊毛,H花(greekmullein)、检色毛蔬花(orangemulldn)、紫花毛'露花(purplemullein)、hoarymullein、greatmullein];痴科如辣椒属、烟草属(Nicotiana)、茄属(Solanum)、番茄属(Lycopersicon)例如物种辣冲权、Capsicum3niiuumvar.glabriusculum、小米椒[辣椒卜辣椒[红辣椒(paprika)卜烟草、花烟草(Nicotianaalata)、Nicotianaattenuate、光烟草(Nicotianaglauca)、Nicotianalangsdorffii、Nicotianaobtusifolia、Nicotianaquadrivalvis、Nicotianarepanda、黄花烟草(Nicotianarustica)、林烟草(Nicotianasylvestris)[烟草、马铃薯[potato、茄[egg画plant、番茄、番茄、梨形番茄、红茄或番茄l番茄j;梧桐科(Sterculiaceae)如可可属例如物种可可树I可可1;山茶科(Theaceae)如山茶属(Camellia)例如物种茶(Camelliasinensis)[茶j。在本发明的一个实施方案中，宿主生物是植物，特别是选自单子叶作物植物，例如禾本科，例如玉米。在本发明的一个实施方案中，宿主生物是植物，特别是选自以下-紫菀科，例如向日葵、万寿菊或金盏花等，-菊科，特别是莴苣属，更特别是莴苣等，-十字花科，特别是芸苔属，更特别是欧洲油菜(油菜)、napusvar.napus或rapassp，oleifera(芸莒)、juncea(芥菜)、亚麻齐(Camelinasative)(假亚麻)等，-葫芦科，例如西瓜、南瓜/西葫芦或胡瓜等，-豆科，特别是大豆属，更特别是大豆、黄豆和苜蓿、豌豆、豆或花生等，以及亚麻子、大豆、冲帛花或大麻。此外，用于本发明目的的植物生物还包括有光合成活性的其他生物，例如藻类、蓝细菌和藓类。优选的藻类是绿藻，例如红球藻科(Haematococcus)、三角褐指藻(Phaedactylumtricornatum)、团藻属(Volvox)或杜氏藻属(Dunaliella)的藻类。特别优选集胞藻属(Synechocystis)。更优选油料作物，即已天然具有高含油量和/或可用于油的工业生产的植物。这些植物可具有高含油量和/或有工业意义的特定脂肪酸组成。优选的植物是含脂量为至少1%(重量)的植物。油料作物包括如Bovagooficinalis(琉璃苣)；芸苜例如芸苔(及a附pe^^)、欧洲油菜(丑.w"/7船)、芜青(fi.m/7fl)(芥菜或油菜)，.Cflfmflr6/s5flrivfl(大麻)；Carthamusri""w'ws(红花)；Cocosww"/mi(椰子)；Crambeabyssinica(crambe);萼距花属(C叩hea)种(萼距花种获得中等链长的脂肪酸，特别是用于工业应用)；油棕(￡7acsgw,View5iy)(非洲油棉冲闾)；￡7"e^(美洲油標书司)；G(v"Vie附fl;c(大豆)；G"(wsj;/7/m附&>&/附(美洲沖帛)；'海岛才帛((7仍5^/;f7i附6fl^"dewse)(埃及冲帛)；草冲帛(G"fW5^/7/w附/re/"6flce"附)(亚洲冲帛)；^^//afi幼W51flwwwws1(向曰，)；ZJ/iM附M57似^s"附m附(亚麻子或亚麻)；(月见草)；油橄榄(O/eaefm/;fle")(椒揽)；Oryzasarivfl(稻》7/"Viw51co附附朋/s(蓖麻)；Sesamum,W/cm附(芝麻)；G7戸Vie附ax(大豆)；小麦属(7>&/('"附)物种(小麦)；Zea附"p(玉米)以及多种其他物种，例如胡桃或杏。原则上，可通过本领域技术人员已知的所有方法向生物(如植物)中引入本发明的核酸、表达盒或载体。核酸序列的引入产生了重组生物或转基因生物。除非另外指明，否则术语"多核苷酸"、"核酸"和"核酸分子"在本文中可互换使用。除非另外指明，否则术语"肽"、"多肽"和"蛋白质"在本文中可互换使用。术语"序列，，可涉及多核苷酸、核酸、核酸分子、肽、多肽和蛋白质，这取决于使用术语"序列"的上下文。本文使用的术语"基因"、"多核苷酸"、"核酸序列"、"核苷^列"或"核酸分子"指任何长度的核苷酸(核糖核苷酸或脱氧核糖核苷酸)的聚合形式。该术语仅涉及分子的一级结构。因此，本文使用的术语"基因"、"多核苷酸"、"核酸序列"、"核苷,列"或"核酸分子"包括双链和单链的DNA和RNA。它们还包括已知类型的修饰，例如曱基化、"加帽"、将一个或多个天然核苷酸替换为类似物。优选地，本发明的DNA或RNA序列包含编码本文所述多肽的编码序列。编码选自磷酸核糖焦磷酸合酶的活性的本发明基因也称为"PRS基"编码序列"是核苷酸序列，其在置于适当调节序列控制之下时转录成mRNA和/或翻译成多肽。编码序列的边界由5，端的翻译起始密码子和3，端的翻译终止密码子决定。编码序列可包括但不仅限于mRNA、cDNA、重组核苷酸序列或基因组DNA，在某些情况下也可存在内含子。将外源基因转移进植物基因组中称为转化。为此，使用就转化植物组织或植物细胞并再生植物方面描述的方法进行瞬时或稳定转化。合适的方法是通过聚乙二醇诱导的DNA摄取进行的原生质体转化、使用基因枪进行的"生物射弹，，法(称为微粒轰击法)电穿孔、干胚在DNA溶液中温育、显微注射和农杆菌介导的基因转移。所述方法描述于例如JenesB.等，TechniquesforGeneTransfer,TransgenicPlants,第一巻，EngineeringandUtilization,KungS.D和WuR.编辑，AcademicPress(1993)128-143以及l)otrykus，Annu.Rev.PlantPhysiol.PlantMolec.Biol.42，205(1991)。优选将待表达的核酸或构建体克隆进适用于转化根癌农杆菌的载体(例如pBinl9)中(Bevan等，Nucl.AcidsRes.12，8711(1984))。转化有这些载体的农杆菌接着可以已知方式用于转化植物，特别是作物植物，例如烟草植物，例如通过将擦伤或剪断的叶浸泡在农杆菌溶液中，接着在合适的培养基中培养它们。通过根癌农杆菌进行的植物转化描述于例如H6fgen和WillmitzerNucl.AcidRes.16，9877(1988)，或者可从WhiteF.F.，VectorsforGeneTransferinHigherPlants;inTransgenicPlants,Vol.1，EngineeringandUtilization,KungS.D.和WuR.编辑，AcademicPress,1993，15-38页等中获知。通过本发明表达载体转化的农杆菌可类似地以已知方式(例如将擦伤或剪断的叶浸泡在农杆菌溶液中，接着在合适的培养基中培养它们)用于转化植物，例如实验植物如拟南芥，或者作物植物如谷类作物、玉米、燕麦、黑麦、大麦、小麦、大豆、稻、棉花、甜菜、芸苔、向日葵、亚麻、大麻、马铃薯、烟草、番茄、胡萝卜、红辣椒、油茱、树薯、木薯、竹芋、万寿菊、苜蓿、莴苣和多种树木、坚果和藤本物种，特别是含油作物植物，例如大豆、花生、蓖麻植物、向日葵、玉米、棉花、亚麻、油菜、椰子、油棕榈、红花(Carthamustinctorius)或可可豆，或者特别是玉米、小麦、大豆、稻、棉花和芸苔。可以通过本领域技术人员已知的所有方法产生经遗传修饰的植物细胞。合适的方法可见于上文提到的KungS.D.和WuR.，Potrykus或者H6fgen和Willmitzer的出版物。因此，本发明的另一方面涉及以至少一种本发明的核酸序列、表达盒或载体转化的转基因生物，以及来自这些生物的细胞、细胞培养物、组织、部分(例如对于植物生物的情况为叶、根等)或繁殖材料。术语"宿主生物"、"宿主细胞"、"重组(宿主)生物"和"转基因(宿主)细胞"可互换使用。当然，这些术语不仅涉及特定的宿主生物或具体的耙细胞，而且还涉及这些生物或细胞的后代或潜在后代。由于突变或环境效应，可以在后续世代中产生某些改变，因此这些后代不一定与亲本细胞相同，但仍包括在本文使用的该术语中。就本发明目的而言，"转基因"或"重组"指例如含有本发明核酸序列的核酸序列、表达盒(=基因构建体、核酸构建体)或载体，或者以本发明核酸序列、表达盒或载体转化的生物，所有通过遗传工程方法产生的构建体，其中(a)选自SEQIDNO:1，3，12，38，39，40，41，42，43，44，45，46，47，48,49，50的核酸序列或其^f汙生物或部分；或(b)与(a)所述核酸序列有效连接的遗传控制序列，例如3，和/或5'遗传控制序列，例如启动子或终止子，和(c)(a)和(b)不在其天然遗传环境中，或者已通过重组方法进行了修饰，所述修饰可以是例如替换、添加、缺失、倒位或插入一个或多个核苷酸残基。天然遗传环境指来源生物或宿主生物中的天然基因组或染色体基因座或者在基因组文库中存在。对于基因组文库的情况，核酸序列的天然遗传环境优选至少在一定程度上保留。该环境在核酸序列的至少一侧，并且序列长度为至少50bp，优选至少500bp，更优选至少1000bp，最优选至少5000bp。所述基因经非天然合成("人工，，)方法(例如诱变)修饰时成为转基因表达盒。已经描述了这样的方法，例如US5,565,350或WO00/15815;。用于本发明核酸、表达盒或载体的合适的生物或宿主生物有利地为基本上所有适于表达上述重组基因的生物。可以提到的其他实例为植物，例如拟南芥，紫菀科例如金盏花，或者作物植物如大豆、花生、蓖麻油植物、向日葵、亚麻、玉米、棉花、亚麻、油菜、椰子、油棕榈、红花(Carthamustinctorius)或可可豆。在本发明的一个实施方案中，用于本发明核酸、表达盒或栽体的宿主植物选自玉米、大豆、油菜(包括芸莒和冬季油菜)、棉花、小麦和稻。本发明的另一目的涉及核酸构建体(例如表达盒)用于转化植物细胞、组织或植物部分的用途，所述核酸构建体含有编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽的DNA序列或者与其杂交的DNA序列。为此，取决于启动子的选择，可以在叶、种子、根瘤、根、茎或其他植物部分中特异性表达表I所示序列。这些过量产生表I所示序列的转基因植物、其繁殖材料及其植物细胞、组织或部分是本发明的另一目的。此外，含有本发明序列的本发明表达盒或核酸序列或构建体还可用于转化例如上文提到的生物，例如细菌、酵母、丝状真菌和植物。在本发明的框架内，增强的产量表示例如在至少一代植物的时间内与未遗传修饰的起始植物相比，在本发明生物(有利的为本发明的转基因植物)中由于功能性过表达由选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子和/或同源物编码的表II多肽序列而人工获得了产量增强的性状。此外，组成型表达由选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子和/或同源物编码的表II多肽序列是有利的。然而，另一方面，也可能期望诱导型表达。本发明多肽序列的表达可导向宿主细胞(优选植物细胞)的胞质或细胞器，优选质体。可通过如嫩冲支分生组织繁殖来测定由选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子和/或同源物编码的表n序列的表达效率。此外，可在温室试-险中对测试植物测试在性质和水平上发生了改变的由选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子和/或同源物编码的表II序列的表达及其对代谢途径性能的影响。本发明的另一目的包括转化有包含选自本发明SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之序列或与其杂交之DNA序列的表达盒的转基因生物，例如转基因植物，以及这些植物的转基因细胞、组织、部分和繁殖材料。这种情况下特别优选转基因作物植物，例如大麦、小麦、黑麦、燕麦、玉米、大豆、稻、棉花、甜菜、油菜和芸苔、向日葵、亚麻、大麻、大蓟、马铃薯、烟草、番茄、树薯、木薯、竹芋、苜蓿、莴苣以及多种树木、坚果和藤本物种。在本发明的一个实施方案中，转化有包含选自本发明SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之序列或与其杂交之DNA序列的表达盒的转基因植物选自玉米、大豆、油菜(包括芸莒和冬季油菜)、棉花、小麦和稻。就本发明而言，植物是单子叶植物和双子叶植物、藓类或藻类，特别是植物，优选是单子叶植物，或者优选是双子叶植物。本发明的另一对象是如上述的转基因植物，其含有本发明的核酸序列或构建体或者本发明的表达盒。然而，转基因也指本发明的核酸位于其在生物基因组中的天然位置，优选地，转基因/重组应理解为指本发明核酸的转录存在于基因组中非天然位置，即，该核酸的表达是同源的，或者优选是异源的。这种表达可以是瞬时的，或者是稳定整合进基因组的序列的表达。本发明使用的术语"转基因植物"还指转基因植物的后代，例如T,、T2、T3,T4和后续的植物世代或者Bd、BC2、BC3和后续的植物世代。因此，可以产生本发明的转基因植物，并且自交或者与其他个体杂交，以获得其他本发明的转基因植物。还可通过无性繁殖转基因^:物细胞来获得转基因植物。本发明还涉及来自于本发明转基因植物群的转基因植物材料。这些材料包括植物细胞和某些组织、器官和植物部分的所有表现形式，例如种子、叶、花药、纤维、块茎、根、根毛、茎、胚、愈伤组织、子叶、叶柄、收获材料、植物组织、繁殖组织和细胞培养物，它们来自于实际的转基因植物和/或可用于产生转基因植物。根据本发明获得的任何转化植物可用于常规育种方案或体外植物繁殖，以产生更多具有相同特征的转化植物和/或可用于将同一特征引入相同或相关物种的其他变种中。这些植物也可以是本发明的一部分。得自转化植物的种子一般也含有相同的特征，并且也是本发明的一部分。如上文所化的任何植物和作物。有利的诱导型才直物启动子为例如PRP1启动子(Ward等，Plant.Mol.Biol.22361(1993))、恭璜酰胺诱导型启动子(EP0388186)、四环素诱导型启动子(Gatz等，Plant丄2，397(1992))、水杨酸诱导型启动子(WO95/19443)、脱落酸诱导型启动子(EP335528)或乙醇或环己酮诱导型启动子(WO93/21334)。可以有利地使用的植物启动子的其他实例为来自马铃薯的胞质FBPas启动子、来自马铃薯的ST-LSI启动子(Stockhaus等，EMBOJ.8，2445(1989))、来自大豆的磷酸核糖焦磷酸转酰胺酶启动子(还参阅genebank登记号U87999)或)EP249676所述的nodiene特异性启动子。特别优选的是确保在低温条件开始(例如开始冷冻和/或水冻温度，如上述)时表达的启动子。在一个实施方案中，可以对单子叶植物或双子叶植物使用种子特异性启动子。原则上，所有带有其调节序列的天然启动子均可使用，例如上文针对本发明表达盒和本发明方法所描述的那些。除此以外，还可以有利地使用合成启动子。在表达盒的制备中，可以操作多种DNA片段以获得核苷酸序列，其有用地以正确方向阅读并带有正确的读码框。为了将DNA片段(=本发明核酸)彼此连接，可在片段上附着衔接头或接头。包含用于插入此序列中的一个或多个限制性位点。接头一般含有1至10个、常为1至8个、优选2至6个限制酶位点。一般而言，调节区中的接头的大小小于100bp，经常小于60bp，^f旦至少为5bp。启动子可以与宿主生物(例如宿主植物)是天然或同源的，是外源或异源的也可。在5，-3，转录方向上，表达盒含有启动子、表I所示DNA序列以及用于终止转录的区域。不同的终止区可以任何期望的方式彼此交换。本文使用的术语"核酸"和"核酸分子"旨在包括DNA分子(如cDNA或基因组DNA)和RNA分子(如mRNA)以及使用核苷酸类似物产生的DNA或RNA类似物。该术语还包括位于基因编码区3，和5'末端的非翻译序列——基因编码区5'末端上游至少约1000个核苷酸的序列以及编码区3，末端下游至少约200个核普酸的序列。核酸分子可以是单链的或双链的，但优选双链DNA。"分离的"核酸分子是与该核酸天然来源中存在的其他核酸分子基本分开的核酸分子。这意味着，所存在的其他核酸分子为所需核酸重量的少于5%，优选少于2%重量，更优选少于1%重量，最优选少于0.5%重量。优选地，"分离的"核酸不含该核酸来源生物的基因组DNA中天然位于该核酸侧翼的一些序列(即位于该核酸5，和5，末端的序列)。例如，在多个实施方案中，分离的低温抗性和/或耐性相关蛋白的编码核酸分子可含有该核酸来源细^^的基因组DNA中天然位于该核酸分子侧翼的少于约5kb、4kb、3kb、2kb、1kb、0.5kb或0.1kb核苷酸序列。此外，"分离的，，核酸分子(例如cDNA分子)可不含与其天然相关的其他细胞材料，或者在通过重组技术产生的情况下不含培养基，或者在化学合成的情况下不含化学前体或91其他化学物质。可以使用标准分子生物学技术和本文提供的序列信息来分离本发明的核酸分子，例如编码在植物中赋予产量提高的PRS或其部分的核酸分子。例如，可以使用表I所示序列之一的全部或部分，从拟南芥cDNA文库中分离拟南芥PRS的编码cDNA,或者从集胞藻、欧洲油菜、大豆、玉米或水稻的cDNA文库中分别分离集胞藻、欧洲油菜、大豆、玉米或水稻的PRS编码cDNA。此外，可以使用基于表I序列设计的寡核苷酸引物，通过聚合酶链式反应分离包含表I序列的全部或部分的核酸分子。例如，可以从植物细胞中分离mRNA(例如通过Chirgwin等，Biochemistry18，5294(1979)的硫氰酸胍提取法)，并可使用逆转录酶(例如MoloneyMLV逆转录酶，可得自Gibco/BRL，Bethesda，MD;或者AMV逆转录酶，可得自SeikagakuAmerica,Inc.,St.Petersburg,FL)制备cDNA。可以基于表I所示核苷酸序列之一设计用于聚合酶链式反应扩增的合成的寡核苷酸引物。可以使用cDNA或基因组DNA作为模板，并使用适当的寡核苷酸引物根据标准PCR扩增技术来扩增本发明的核酸分子。这样扩增的核酸分子可克隆进适当的载体中，并通过DNA序列分析进行表征。此外，可以通过标准合成技术(如使用自动化DNA合成仪)来制备对应于PRS编码核苷酸序列的寡核苷酸。在一个优选的实施方案中，本发明的分离的核酸分子包含编码PRS的表I所示核苦酸序列之一(即"编码区")以及5，非翻译序列和3，非翻译序列。此外，本发明的核酸分子可仅包含表I核酸序列之一的编码区的一部分，例如可用作探针或引物的片段或者编码PRS的生物活性部分的片段。本发明的PRS编码核酸分子所编码的蛋白质的部分优选为本文所述的生物活性部分。本文使用的术语PRS的"生物活性部分"旨在包括参与植物中NUE效率增强和/或产量提高的低温抗性和/或耐性相关蛋白的部分(例如结构域/基序)。为了确定PRS或其生物活性部分是否在植物中导致NUE效率增强和/或产量提高，可对包含该PRS的植物进行分析。这些分析方法为本领域技术人员所熟知，并详细描述于实施例中。更具体地，可以如下制备编码PRS之生物活性部分的核酸片段分离表I核酸序列之一的一部分，表达所编码的PRS或肽的部分(例如通过体外重组表达)，以及评估所编码的PRS或肽的部分的活性。PRS的生物活性部分包括在本发明之中，并包括含有来自PRS编码基因之氨基酸序列的氨基酸序列或者与PRS同源之蛋白质的氨基酸序列的肽，其包含比全长PRS或与PRS同源的全长蛋白更少的氨基酸，并显示PRS的至少某种酶活性或生物活性。一般地，生物活性部分(例如长度为5，10,15，20,30，35,36，37，38，39，40，50，100或更多个氨基酸的肽)包含具有至少一种PRS活性的结构域或基序。此外，可以通过重组技术制备缺失了该蛋白质中另一些部分的其他生物活性部分，并评估本文所述的一种或多种活性。优选地，PRS的生物活性部分包括其具有生物活性的一种或多种选定的结构域/基序或其部分。术语"生物活性部分"或"生物活性"指表II第3列所示多肽，或者所述多肽中仍具有该天然或起始酶或蛋白之酶活性或生物活性的至少10%或20%，优选30%、40%、50%或60%，特别优选70%、75%、80%、90%或95%的部分。在本发明的方法中，可以使用适当时含有可掺入DNA或RNA中的合成、非天然或修饰核苷酸碱基的核酸序列。例如，所述合成、非天然或修饰碱基可提高该核酸分子在细胞外或细胞内的稳定性。本发明的核酸分子可含有与上述相同的修饰。本文使用的术语"核酸分子"还可包含位于基因编码区3，和5'末端的非翻译序列，例如编码区5，末端上游至少500个、优选200个、特别优选100个核苷酸的序列，以及基因编码区3，下游至少100个、优选50个、特别优选20个核苷酸的序列。仅选择编码区用于克隆和表达目的经常是有利的。优选地，用于本发明方法的核酸分子或本发明的核酸分子是分离的核酸分子。"分离的"多核苷酸或核酸分子与该核酸分子天然来源中所存在的其他多核苷酸或核酸分子分开。分离的核酸分子可以是若干kb的染色体片段，93或者优选是仅包含基因编码区的分子。因此，本发明的分离的核酸分子可包含5，和3，的相邻染色体区或其他相邻染色体区，-f旦优选不包含该核酸来源生物的基因组或染色体环境中天然位于该核酸分子序列侧翼的这些序列(例如编码该核酸分子5，和3，UTR的区域附近的序列)。例如，在多个实施方案中，用于本发明方法的分离的核酸分子可以包含该核酸分子来源细胞的基因组DNA中天然位于该核酸分子侧翼的少于约5kb、4kb、3kb、2kb、1kb、0.5kb或0.1kb的核苷酸序列。用于本方法的核酸分子(例如本发明的多核苷酸或其部分)可使用分子生物学标准技术和本文提供的序列信息来分离。还可以例如借助于比较算法来鉴定在DNA或氨基酸水平上的同源序列或同源保守序列区。前者可在标准杂交技术中用作杂交探针(例如Sambrook等，MolecularCloning:ALaboratoryManual.第二版，ColdSpringHarborLaboratory,ColdSpringHarborLaboratoryPress,ColdSpringHarbor,NY，1989所述)，用于分离可用于该方法的其他核i^f列。还可以通过聚合酶链式反应分离包含本方法所用核酸分子(例如本发明的多核苷酸)的完整序列或其部分的核酸分子，其中使用基于该序列或其部分的寡核苷酸引物。例如，可以使用基于该特定序列产生的寡核苷酸引物，通过聚合酶链式反应分离包含完整序列或其部分的核酸分子。例如，可以从细胞中分离mRNA(例如通过Chirgwin等，Biochemistry18，5294(1979)所述的硫氰酸胍提取法)，并可通过逆转录酶(例如MoloneyMLV逆转录酶，可得自Gibco/BRL，Bethesda，MD，或者AMV逆转录酶，可得自SeikagakuAmerica,Inc.,St.Petersburg，FL)产生cDNA。用于通过聚合酶链式反应进行扩增的合成寡核苷酸引物(例如选自SEQIDNO:5、6)可基于本文所示序列产生，例如基于选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列或者4汙生自选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之序列的序列。此外，可以通过与本发明核酸分子所编码多肽(特别是与选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50此可以产生保守区并进而产生简并引物。保守区是在来自不同来源的若干同源物中一个特定位置上的氨基酸极少显示变异的区域。共有的序列和多肽基序来自于所述比对。此外，可以通过与本发明核酸分子所编码的多肽(特别是与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽分子所编码的序列)进行蛋白质序列比对来从多种生物中鉴定保守区，由此可以产生保守区并进而产生简并引物。在一个有利的实施方案中，在本发明方法中提高了多肽的活性，所述多肽包含选自SEQIDNo.64，65，66，67，68，69，70,71，72，73的共有序列或多肽基序或者由其组成，在另一实施方案中，本发明涉及多肽，其包含共有序列或多肽基序或者由其组成，或者包含选自SEQIDNo.64，65，66，67,68，69，70，71，72，73之基序的多肽，其中所标明氨基酸位置中少于20个，优选少于15或10个，优选少于9、8、7或6个，更优选少于5或4个，甚至更优选少于3个，甚至更优选少于2个，甚至更优选0个可被任何氨基酸替换。在一个实施方案中，以字母标出的氨基酸位置中的不超过15%，优选10%,甚至更优选5%、4%、3%或2%，最优选1%或0。/"皮另一氨基酸替换。在一个实施方案中，共有序列或蛋白质基序中插入了少于20个氨基酸，优选少于15或10个，优选少于9、8、7或6个，更优选少于5或4个，甚至更优选少于3个，甚至更优选少于2个，甚至更优选0个氨基酸。共有序列来自于SEQIDNO:51至63所列序列的多重比对。保守性图i普使用软件工具MEME3.5.1版鉴定，或者人工鉴定。MEME由美国加利福尼亚大学圣地亚哥分校计算机科学与工程学院的TimothyL.Bailey和CharlesElkan开发，并由TimothyL.Bailey和CharlesElkan描述(Fittingamixturemodelbyexpectationmaximizationtodiscovermotifsinbiopolymers，ProceedingsoftheSecondInternationalConferenceonIntelligentSystemsforMolecularBiology,28-36页，AAAIPress,MenloPark,California,1994)。公众可在圣地亚哥超级计算机中心(http:〃meme.sdsc,edu)获得该独立程序的源代码。为了使用软件工具MEME鉴定所有序列中的共有基序，使用以下设置-maxsize500000，-nmotifs15，-evt0.001，-maxw60，-distancele-3，-minsites分析中所用的序列数。MEME的输入序列是Fasta格式的非比对序列。其他参数可以本版软件中的默认设置使用。保守性结构域的Prosite图谱使用软件工具Pratt2.1版产生，或者人工产生。Pratt由挪威Bergen大学信息学院的IngeJonassen开发，并由Jonassen等描述(I.Jonassen，J.F.Collins和D.G.Higgins,Findingflexiblepatternsinunalignedproteinsequences,ProteinScience4(1995)，1587-1595页；I.Jonassen，Efficientdiscoveryofconservedpatternsusingapatterngraph,SubmittedtoCABIOSFebr.1997]。该独立程序的源代码(ANSIC)是公众可获得的，例如在已建立的生物信息学中心如EBI(欧洲生物信息学研究所)。为了使用软件工具Pratt产生图谱，使用以下i殳置PL(最大Pattern长度)100，PN(最大图谱标记数)100，PX(最大连续x数)30，FN(最大柔性间隔区数)5，FL(最高柔性)30，FP(最高柔性产物)10,ON(最大图谦数)50。Pratt的输入序列是由软件工具MEME鉴定的显示高度相似性的蛋白质序列的不同区域。必须与所产生图谱匹配的最小序列数(CM，最小匹配序列数)设置为所提供序列的至少80%。此处未提及的参数以其默认设置使用。可以使用保守性结构域的Prosite图谱来检索与该图谱匹配的蛋白质序列。多个已建立的生物信息学中心提供在数据库检索中使用这些图谱的乂〉众互联网入口(例如PIR(ProteinInformationResource,位于乔治城大学医学中心)或ExPASy(ExpertProteinAnalysisSystem))。或者，有独立软件可以使用，如Fuzzpro程序，它是EMBOSS软件包的一部分。例如，Fuzzpro程序不仅允许检索准确的图语-蛋白质匹配，还允许在所进行的检索中设置多种模糊度。比对使用ClustalW软件(1.83版)进行，并描述于Thompson等(NucleicAcidsResearch22，4673(1994))。公众可从德国海德堡的欧洲分子生物学实验室获得该独立程序的源代码。使用ChistalWvl，83的默认参数进行分析(缺口罚分10.0;缺口延伸罚分0.2;蛋白质矩阵Gonnet;蛋白质/DNAendgap:画l;蛋白质/DNAgapdist:4)。接着可以使用简并引物通过PCR扩增新的蛋白质的片段，所述蛋白质具有上述活性，例如在提高表达或活性后与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比赋予提高的产量，或者具有选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之蛋白质或来自其他生物的其他本发明多肽功能同源物的活性。接着，这些片段可作为杂交探针用于分离完整基因序列。或者，可以通过RACE-PCR分离缺少的5，和3，序列。可以使用cDNA或基因组DNA作为模板，使用合适的引物，按照标准PCR扩增技术来扩增本发明的核酸分子。这样扩增的核酸分子可克隆进合适的载体中，并通过DNA序列分析进行表征。可以通过标准合成法(例如使用自动化DNA合成仪)产生对应于本方法所用核酸分子之一的寡核苷酸。有利地用于本发明方法的核酸分子可基于其与本文所述核酸分子的同源性来分离，其中使用该序列或其部分作为探针，并遵循标准杂交技术在严格杂交条件下进行。在这种情况下，可以使用例如在严格条件下与上述核酸分子杂交(特别是与这样的核酸分子杂交其包含本发明方法所用核酸分子的核苷酸序列，或者编码本发明所用蛋白质的核苷酸序列，或者本发明核酸分子的核苷^列)的长度为至少15、20、25、30、35、40、50、60或更多个核苷酸(优选至少15、20或25个核苷酸)的分离的核酸分子。还可以使用含有30、50、100、250或更多个核苷酸的核酸分子。术语"同源性"指各个核酸分子或所编码的蛋白质在功能和/或结构上是等同的。例如，与上述核酸分子同源或者作为所述核酸分子之衍生物的核酸分子是所述核酸分子的变异，其中代表具有相同生物功能(特别是编码97具有相同或基本相同的生物功能的蛋白质)的修饰。它们可以是天然的变异，例如来自其他植物变种或物种的序列，或者是突变。这些突变可天然发生，或者可通过诱变技术获得。等位基因变异可以天然的等位基因变异以及合成产生的或遗传工程产生的变体。例如，结构等同物可通过测试所述多肽与抗体的结合或者通过基于计算机的预测来鉴定。结构等同物具有相似的免疫学特征，例如包含相似的表位。"杂交"指这些核酸分子在常规杂交条件下杂交，优选在严格条件下杂交，如Sambrook(MolecularCloning;ALaboratoryManual,第二版，ColdSpringHarborLaboratoryPress,ColdSpringHarbor,NY(1989》或CurrentProtocolsinMolecularBiology,JohnWiley&Sons,N.Y.(1989)，6.3.1-6.3.6所述。根据本发明，可使用本发明核酸的DNA和RNA分子作为探针。此外，作为用于鉴定功能同源物的模板，可以进行Northern印迹测定和Southern印迹测定。Northern印迹测定有利地提供了关于所表达基因产物的进一步信息例如表达语、加工步骤(如剪接和加帽)的存在情况等。Southern印4吕息。严格杂交条件的一个优选的非限制性实例为在约45。C下在6x氯化钠/柠檬酸钠^SSC)中杂交，然后在50至65。C(例如50°C、55。C或60。C)下在0.2xSSC、0.1%SDS中进行一次或多次洗涤步骤。本领域技术人员了解，这些杂交条件作为核酸类型的函数而变化，并且例如在存在有机溶剂时随温度和緩沖液浓度而变化。例如，"标准杂交条件"下的温度作为核酸类型的函数在0.1x、0.5x、lx、2x、3x、4或5xSSC(pH7.2)浓度的水性緩沖液中可为42。C至58。C不等，优选45。C和50。C。如果上述緩冲液中存在有机溶剂，例如50%曱酰胺，则标准条件下的温度约为40°C、42。C或45。C。I)NA:DNA杂交分子的杂交条件优选为0.1xSSC和20。C、25。C、30。C、35。C、4(TC或45°C,优选3(TC至45°C。DNA:RNA杂交分子的杂交条件优选为例如0.1xSSC和30。C、35。C、40°C、45°C、50。C或55。C,优选45。C到55°C。上述杂交温度是在例如不存在曱酰胺的情况下对长度约100bp(-碱基对)且G+C含量为50%的核酸确定的。本领域技术人员了解借助于教科书来确定杂交条件，所述教科书为例如上文提到的那些，或者以下教科书Sambrook等，"MolecularCloning",ColdSpringHarborLaboratory,1989;Hames和Higgins编辑1985,"NucleicAcidsHybridization:APracticalApproach",IRLPressatOxfordUniversityPress,Oxford;Brown编辑1991，"EssentialMolecularBiology:APracticalApproach",IRLPressatOxfordUniversityPress,Oxford。一个这种严格杂交条件的另一实例是在65。C下在4xSSC中杂交，其后在65。C下以O.lxSSC洗涤1小时。或者，一个示例性严格杂交条件为50%甲酰胺、4xSSC，42°C。此外，洗涤步骤过程中的条件可以在划分为低严格条件(约2xSSC，50。C)至高严格条件(约0.2xSSC，50°C，优选65。C)的范围内选择(20xSSC:0.3M柠檬酸钠、3MNaCl，pH7.0)。此外，洗涤步骤过程中的温度可从室温(约22。C)下的低严格条件提高至约65。C的高严格条件。盐浓度和温度这两个参数可同时改变，或者可将这两个参数之一保持恒定而改变另一个。杂交过程中还可以使用变性剂，例如甲酰胺或SI)S。在50%甲酰胺存在下，杂交优选在42。C下进行。可在各个情况下组合相关的因素例如l)处理的长度、2)盐条件、3)洗涤剂条件、4)竟争DNA、5)温度和6)探针的选择，因此本文无法提及所有的可能性。因此，在一个优选的实施方案中，在68。C下将Northern印迹在Rothi-Hybri-Quick緩沖液(Roth，Karlsruhe)中预杂交2小时。与》文射性标记探针的杂交在68。C进行过夜。其后在68。C下用lxSSC进行洗涤步骤。对于Southern印迹测定，在68。C下将膜在Rothi-Hybri-Quick緩冲液(Roth,Karlsruhe)中预杂交2小时。与放射性标记探针的杂交在68。C进行过夜。其后弃去杂交緩沖液，并用2xSSC、0.1。/。SDS短暂地洗涤滤器。弃去洗涤緩冲液后，加入新的2xSSC、(U。/。SDS緩冲液并在68。C下孵育15分钟。将该洗涤步骤进行两次，其后在68。c下使用ixssc、0.;r/。SDS进行10分钟的额外洗涤步骤。用于DNA杂交(Southern印迹测定)和洗涤步骤的一些条件实例在下文给出(l)杂交条件可选自例如以下条件(a)4xSSC，65。C，(b)6xSSC，45。C，(c)6xSSC，100mg/ml变性的片段化鱼精DNA，68°C，(d)6xSSC，0.5。/。SDS，100mg/ml变性的鲑精DNA，68。C，(e)6xSSC，0.5%SDS，100mg/ml变性的片段化鮭精DNA，50%甲酰胺，42。C，(f)50。/o曱酰胺，4xSSC,42°C，(g)50%(v/v)曱酰胺，0.1%牛血清白蛋白，0.1%Ficoll，0.1%聚乙烯吡咯烷酮，50mM磷酸钠緩沖液pH6.5，750mMNaCl，75mM柠檬酸钠，42。C,(h)2x或4xSSC，50。C(低严格条件)，或(i)30到40%曱酰胺，2x或4xSSC,42。C(低严格条件)。(2)洗涤步骤可选自例如以下条件(a)0.015MNaCl/0.0015M柠檬酸钠/0.1%SDS,50oC。(b)O.lxSSC,65。C。(c)0.1xSSC，0.5%SDS，68。C。(d)O.lxSSC，0.5%SDS，50%曱酰胺，42。C。(e)0.2xSSC，0.1%SDS，42。C。(f)2xSSC，65。C(低严格条件)。来自其他生物的具有上述活性(即，赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量)的多肽可由其他DNA序列编码，所述DNA序列在宽松的杂交条件下与选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列杂交，并且在表达时编码赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比增强的低温耐性和/提高产量的肽。此外，一些应用必须在低严格杂交条件下进行，而对杂交特异性无任何影响。例如，可以用本发明核酸分子检测总DNA的Southern印迹分析，并低严格洗涤(55。C下，2xSSPE、0.1%SDS)。杂交分析可显示出仅编码本物或其部分相比提高产量的上述活性)的基因的简单图谱。这些低严格杂交条件的另一实例是4xSSC，50°C，或者在42。C下用30至40%甲酰胺进行杂交。这些分子包括这样的分子其为本发明多肽或本发明方法所用多肽的片段、类似物或衍生物，其差异为氨基酸和/或核苷酸的缺失、插入、替换、添加和/或重组或者本领域技术人员已知的单独或组合地对上述氨基酸序列或其内在核苷酸序列的任何其他修饰。然而，优选使用高严格杂交条件。杂交应有利地以至少5、10、15、20、25、30、35或40bp的片,史进行，有利地为至少50、60、70或80bp，优选至少90、100或110bp。最优选至少15、20、25或30bp的片,殳。还优选至少100bp或200bp、更特别优选至少400bp长度的杂交。在一个特别优选的实施方案中，杂交应以上述条件用整个核酸序列进行。术语"片段"、"序列片段，，或"序列部分，，表示所指代原始序列的截短序列。截短序列(核酸或蛋白质序列)的长度可广泛变化，最小尺寸是这样的序列，其大小足以为序列提供与所指代原始序列至少相当的功能和/或活杂交，而最大尺寸则不是关键性的。在一些应用中，最大尺寸一般不显著大于提供原始序列的期望活性和/或功能所需的大小。截短的氨基酸序列的长度一般为约5至约310个氨基酸。然而，更一般地，序列长度最高将约为250个氨基酸，优选最高约200或100个氨基酸。经常期望选择至少约IO、12或15个氨基酸上至最高约20或25个氨基酸的序列。术语"表位"涉及抗原中的特异性免疫反应性位点，也称为抗原决定簇。这些表位可以是多聚组合物中单体(如蛋白质中的氨基酸)的线性排列，或101者包含更复杂的二级结构或三级结构或者由其组成。本领域技术人员会认识到，免疫原(即能引发免疫应答的物质)是抗原，但一些抗原(如半抗原)则不是免疫原，而是可能通过与载体分子偶联而具有免疫原性。术语"抗原"在一个实施方案中，本发明涉及本发明多肽或本发明方法中所用并赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量的多肽的表位。术语"一个或多个氨基酸"指至少一个氨基酸，但不多于将导致同源性低于50%同一性的氨基酸数。优选地，同一性高于70%或80%，更优选85%、90%、91%、92%、93%、94%或95%，甚至更优选96%、97%、98%或99%的同一性。此外，本发明的核酸分子包括作为上述核酸分子的核苷酸序列之一或其部分之互补序列的核酸分子。与选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核苷,列之一互补的核酸分子是这样的核酸分子，其与选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核苷酸序列之一充分互补，以4吏其能与选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核苷酸序列之一杂交，从而形成稳定的双链体。优选地，所述杂交在严格条件下进行。然而，本文所述序列之一的互补序列优选是根据本领域技术人员熟知的碱基配对与其互补的序列。例如，碱基A和G分别与碱基T以及U或C碱基配对，反之亦然。对碱基的修饰可能影响碱基配对的配偶体。本发明的核酸分子包括这样的核苷酸序列，其与选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核普酸序列或其部分具有至少约30%、35%、40%或45%的同源性，优选至少约50%、55%、60%或65%，更优选至少约70%、80%或卯％，甚至更优选至少约95%、97%、98%、99%或更高的同源性，并且优选地具有上述活性，特别是通过如在胞质溶胶或细胞器(如质体或线粒体或这两者，优选质体)中表达而提高选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的基因产物的活性后具有提高的产量。本发明的核酸分子包括这样的核苷酸序列，其与选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核苷酸序列或其部分杂交，优选在本文所述的严格条件下杂交，并且编码具有上述活性的蛋白质，例如通过如在胞质溶胶或细胞器(如质体或线粒体或这两者，优选质体)中表达而赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量，并且任选地，该活性选自磷酸核糖焦磷酸合酶。此外，本发明的核酸分子可以仅包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50序列之一的一部分编码区，例如可用作探针或引物的片段或者编码本发明多肽或本发明方法中所用多肽的生物活性部分的片段，即具有上述活性，例如通过如在胞质溶胶或细胞器(如质体或线粒体或这两者，优选质体)中表达而赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。从本发明蛋白质编码基因的克隆中测定的核苷酸序列允许产生用于在其他细胞类型和生物中鉴定和/或克隆其同源物的探针和引物。所述探针/引物一般包含基本纯化的寡核苷酸。该寡核苷酸一般包含这样的核苷酸序列区域，其在严格条件下与所示序列之一的有义链的至少约12、15个、优选至少约20或25个、更优选约40、50或75个连续核苷酸杂交，例如选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50;所述序列之一(例如选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50)的反义序列或其天然突变体。基于本发明核苷酸的引物可用于PCR反应中来克隆本发明多肽或本发明方法所用多肽的同源物，例如作为本发明实施例中所述的引物，例如实施例中所示。用选自SEQIDNO:5、6的引物进行的PCR将产生选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的基因产物的片段。引物组可互换。本领域技术人员了解组合所述引物来产生期望的产物，例如全长克隆或部分序列。基于本发明核酸分子或本发明方法中所用核酸103A-探针还可包含其上附着的标记基团，例如所述标记基团可以是放射性同位素、荧光化合物、酶或酶辅因子。这些探针可作为基因组标志物试剂盒的一部分，用于鉴定表达本发明多肽或本发明方法中所用多肽的细胞(例如通过测量细胞样品中编码核酸分子的水平(例如检测mRNA水平))，或者用于确定是否已突变或缺失。本发明的核酸分子编码多肽或其部分，其包括与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的氨基酸序列充分同源的氨基#列，从而该蛋白质或其部分保持参与与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比产量提高的能力，特别是在所述植物中提高上文所述活性或实施例中所述活性。本文使用的术语"充分同源"指蛋白质或其部分，其具有这样的氨基酸序列，其包含最少数目的与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的氨基紗列相同或等同的氨基酸残基(例如与本发明多肽序列之一中的氨基酸残基具有相似侧链的氨基酸残基)，以使该蛋白质或其部分能参与与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比产量的提高。例如，具有本文所述的磷酸核糖焦磷酸合酶活性。在一个实施方案中，本发明的核酸分子包括编码本发明蛋白质的一部分的核酸。所述蛋白质与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的完整氨基酸序列具有至少约30%、35%、40%、45%或50%的同源性，优选至少约55%、60%、65%或70%，更优选至少约75%、80%、85%、卯％、91%、92%、93%或94%，最优选至少约95%、97%、98%、99%或更高的同源性，并且具有上述活性，例如通过如在胞质溶胶或细胞器(如质体或线粒体或这两者，优选质体)中表达而赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。本发明核酸分子所编码蛋白质的部分优选具有生物活性，优选具有上述生物活性，例如在提高活性后赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量。如本文所述，术语"生物活性部分"旨在包括这样的部分(例如结构域/基序)，其赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量，或者具有免疫活性，从而与抗体结合，所述抗体特异性结合本发明多肽或本发明方法中用于赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量的多肽。本发明还涉及这样的核酸分子，其由于遗传密码的简并性而不同于选白SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核苷M列之一(及其部分)，并因而编码本发明的多肽，特别是具有上述活性的多肽，例如选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其功能同源物的多肽。有利地，本发明的核酸分子包含(或在另一些方案中具有)编码蛋白质的核苷酸序列，所述蛋白质包含(或在另一些实施方案中具有)选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其功能同源物的氨基一列。在另一些实施方案中，本发明的核酸分子编码全长蛋白，其与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63或其功能同源物的氨基*列基本同源。然而，在一个优选的实施方案中，本发明的核酸分子不由选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列组成。此外，本领域技术人员会理解，在种群中可能存在导致氨基酸序列改变的DNA序列多态性。编码本发明多肽或包含本发明核酸分子的基因中的这种遗传多态性可由于天然变异而在种群的个体中存在。本文使用的术语"基因"和"重组基因"指这样的核酸分子，其包含编码本发明多肽的可读框，或者包含本发明的核酸分子，或者编码本发明方法中所用的多肽，优选来自作物植物或者来自可用于本发明方法的微生物。这些天然变异一般可导致基因的核苷酸序列中1至5%的变异。本发明范围中旨有核苷酸变异及其引起的氨基酸多态性，这些变异由于天然变异而产生，并且不改变所述功能活性。可以基于其与本文所述核酸分子的同源性，使用本发明核酸分子或其部分作为杂交探针，根据标准杂交技术在严格杂交条件下分离与本发明核酸分子同源之天然变体的相应核酸分子，其也可以是cDNA。因此，在另一实施方案中，本发明的核酸分子长度至少为15、20、25或30个核苷酸。优选地，其在严格条件下与包含本发明核酸分子或本发明方法中所用核酸分子之核苷酸序歹'j(例如包含选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列)的核酸分子杂交。所述核酸分子的长度优选为至少20、30、50、100、250或更多个核苷酸。上文定义了术语"在严格条件下杂交"。在一个实施方案中，术语"在严格条件下杂交"旨在描述这样的杂交和洗涤条件，在所述条件下彼此具有至少30%、40%、50%或65%同一性的核苷酸序列一般保持彼此杂交。优选地，该条件使得彼此具有至少约70%、更优选至少约75%或80%、甚至更优选至少约85%、90%或95%或更高同一性的序列一般〗呆持^C此杂交。优选地，在严格条件下与选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列杂交的本发明核酸分子对应于本发明的天然核酸分子。本文使用的术语"天然"核酸分子指具有在自然界中存在的核苷酸序列(例如编码天然蛋白质)的RNA或DNA分子。优选地，该核酸分子编码具有上述活性的天然蛋白质，所述活性为例如在提高其表达或活性或者通过如在胞质溶胶或细胞器(如质体或线粒体或这两者，优选质体)中表达基因产物的核一列提高本发明蛋白质或本发明方法中所用蛋白质之活性后赋予提高的产量。序列的天然变体以外，本领域技术人员会认识到，可通过诱变向编码本发而导致所编码多肽的氨基酸改变，而不改变该多肽的功能能力，优选不降106低所述活性。例如，可以在本发明核酸分子或本发明方法中所用核酸分子(例如选自SF力IDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50)的序列中产生导致在"非关键"氨基酸残基处发生氨基酸替换的核苷酸替换。"非关键"氨基酸残基是在野生型序列中发生变化而不改变所述多肽之活性的残基，而"关键"氨基酸残基是上述活性(例如在提高该多肽的活性后导致与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量)所需的氨基酸残基。然而，其他氨基酸残基(例如在具有所述活性的结构域中不保守或仅半保守的残基)可能不是活性所必需的，因此^f艮可能适于进行改变而不改变所述活性。此外，本领域技术人员了解，生物之间的密码子使用可能不同。因此，可以使本发明核酸分子中的密码子使用适用于表达所述多核苷酸或多肽的生物或细胞区室(例如质体或线粒体)中的使用。因此，本发明涉及编码多肽的核酸分子，所述多肽通过如在胞质溶胶或细胞器(如质体或线粒体或这两者，优选质体)中表达而在生物或其部分中具有上述活性，并在所述活性的非关键氨基酸残基中含有改变。这些多肽在氨基断列上不同于选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之序列的序列，但仍保留本文所述活性。所述核酸分子可包含编码多肽的核苷酸序列，其中所述多肽包含与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的氨基酸序列具有至少约50%同一性的氨基酸序列，并且能在通过如在胞质溶胶或细胞器(如质体或线粒体或这两者，优选质体)中表达而提高其活性(例如其表达)后参与与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比产量的提高。优选地，该核酸分子所编码的蛋白质与选自SEQII)NO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的序列具有至少约60%的同一性，更优选与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的序列之一具有至少约70%的同一性，甚至更优选与表11第5列和第7列所示序列具有至少约80%、90%、95%的同源性，最优选与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的序列具有至少约96%、97%、98%或99%的同一性。为了测定两氨基酸序列或两核酸分子之间的百分比同源性(=同一性，本文中可互换使用)，将序列一个写在另一个下方用于最佳比较(例如，可以向蛋白质或核酸中插入缺口，以产生与另一蛋白质或另一核酸的最佳比对)。接着比较相应氨基酸位置或核苷酸位置上的氨基酸残基或核酸分子。如果一个序列中的位置被与另一序列中相应位置上相同的氨基酸残基或相同的核酸分子占据，则所述分子在此位置上是同源的(即，本文中使用的氨基酸或核酸"同源性"对应于氨基酸或核酸"同一性")。两序列间的百分比同源性是所述序列间共有的相同位置数的函数(即，％同源性=相同位置数/总位置数xlOO)。因此，术语"同源性"和"同一性"应认为是同义的。为了确定两个或更多个氨基酸或者两个或更多个核苷酸序列之间的百分比同源性(=同一性)，已经开发了若干计算机软件程序。两个或更多个序列的同一性可以使用例如fasta软件来计算，该软件目前使用的版本是fasta3(W.R.Pearson和D.J.Lipman,PNAS85，2444(1988);W.R.Pearson,MethodsinEnzymology183，63(1990);W.R.Pearson和D.J.Lipman,PNAS85，2444(1988);W.R.Pearson,Enzymology183,63(1990))。另一种可用于计算不同序列间同源性的程序是标准blast程序，其包括在Biomaxpedant软件中(Biomax，Munich,FederalRepublicofGermany)。遗憾的是，这有时产生非最优的结果，因为blast不总是包括主题和查询的完整序列。尽管如此，该程序非常高效，可用于比较大量序列。一般在这样的序列比较中使用以下设置-p程序名[字符串l;-d数据库[字符串I;默认=nr;-i检索文件[FileInj;默认=stdin;-e期望值(E)[实数；默认=10.0;-m比对视图选项0=配对；1=查询固定，显示名称；2=查询固定，无名称；3=平查询固定，显示名称；4=平查询固定，无名称；5=查询固定，无名称，平末端；6=平查询固定，无名称，平末端；7=乂]\11^81381输出；8=列表；9有注解行的表[整数I;默认=0;-oBLAST报告输出文件[FileOut可选；默认=stdout;-F过滤查询序列(DUST使用blastn，SEG使用其他)[字符串j;默认=T;-G打开缺口的消耗(O调用默认行为)整数1;默认=0;-E延伸缺口的消耗(O调用默认行为)[整数l;默认=0;-XX缺口比对的降低值(比特)(O调用默认行为)；blastn30，megablast20,tblastx0，其他均为15[整数j;默认=0;-IShowGI，sindeflines[T/F];默认=F;-q核苷酸错配罚分(仅用于blastn)[整数I;默认=-3;-r核苷酸匹配奖分(仅用于blastn)[整数；默认=1;-v对(V)显示一行描述的数据库序列数[整数；默认=500;-b对(B)显示比对的数据库序列数[整数；默认=250;-f延伸命中的阈值，0为默认；blastp11，blastn0，blastx12，tblastn13;tblastx13,megablast0[整数j;默认=0;-g进行缺口比对(tblastx不提供)T/Fj;默认=T;-Q使用的查询遗传密码[整数；默认=1;-DDB遗传密码(仅用于tblast[nx)[整数；默认=1;-a使用的处理器数整数；默认=1;-O序列比对文件FileOutj可选；-J相信查询defline[T/F;默认=F;-M矩阵[字符串；默认=BLOSUM62;-W字号，0为默认(blastn11，megablast28，其他均为3)[整数l;默认=0;-z数据库有效长度(实际大小使用0)[实数];默认-0;-K区域中保留的最佳命中数(默认关闭，如果使用则推荐值为100)[整数l;默认=0;-P多个命中使用0，单个命中使用ll整数j;默认=0;-Y检索空间有效长度(实际大小使用0)[实数j;默认=0;-S针对数据库检索的查询链(用于blast[nxj和tblastx);3为都是，1为上，2为下[整数I;默认=3;-T产生HTML输出[T/Fj;默认=F;-1将数据库检索限制在GI列表[字符串可选；-U使用FASTA序列的小写过滤T/F可选；默认=F;-y无缺口延伸的X降低值(比特)(O.O调用默认行为)；blastn20，megablast10，其他均为7[实数];默认=0.0;-Z最终缺口比对的X降低值(比特)(O.O调用默认行为)；blastn/megablast50，tblastx0，其他均为2整数；默认=0;-RPSI画TBLASTNcheckpointfile[FileIn109可选；-nMegaBlastsearchT/FI;默认=F;-L查询序列上的位置字符串l可选；-A多重命中的窗口大小，0为默认(blastn/megablast0，其他均为40[整数l;默认=0;-w移码罚分(blastx使用OOF算法)[整数];默认=0;-ttblastn中用于连接HSP的最大允许内含子长度(O不进行连接)[整数l;默认=0。使用Needleman和Wunsch或者Smith或Waterman的算法得到了高质量的结果。因此，优选基于所述算法的程序。有利地，序列比较可以使用PileUp程序(J.Mol.Evolution"25，351(1987)，Higgins等，CABIOS5，151(1989))或优选使用"Gap"和"Needle"程序来进行，它们都基于Needleman和Wunsch的算法(丄Mol.Biol.48;443(1970))，还有"BestFit"，它基于Smith和Waterman的算法(Adv.Appl.Math.2;482(1981))。"Gap"和"BestFif，是GCG软件包的一部分(GeneticsComputerGroup,575ScienceDrive,Madison,Wisconsin,USA53711(1991);Altschul等，(NucleicAcidsRes.25，3389(1997))，"Needle"是TheEuropeanMolecularBiologyOpenSoftwareSuite(EMBOSS)的一部分(TrendsinGenetics16(6)，276(2000))。因此，优选地，在完整序列范围内使用"Gap"或"Needle"程序进行用于确定序列同源性百分比的计算。对"Needle，，使用以下标准调整用于核酸序列比较矩阵EDNAFULL，缺口罚分10.0，延伸罚分0.5。对"Gap"使用以下标准调整用于核酸序列比较缺口权重50，长度权重3，评价匹配10.000，评价错配0.000。例如，在核酸水平上与SEQIDNO:1具有80%同源性的序列应理解为在以上述参数通过上述程序"Needle，，与序列SEQIDNO:1比较后具有80%的同源性。两多肽间的同源性应理解为完整序列长度上氨基酸序列的同一性，通过借助上述程序"Needle"进行比较来计算，其中使用矩阵EBLOSUM62,缺口罚分8.0，延伸罚分2.0。例如，在蛋白质水平上与序列SEQIDNO:2具有80%同源性的序列应理解为在以上述参数通过上述程序"Needle，，与序列SEQIDNO:2比较后具有80%的同源性。通过对选自本发明SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸序列进行替换、插入或缺失而产生的功能等同物与选自本发明SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽之一具有至少30%、35%、40%、45%或50%，优选至少55%、60%、65%或70%，优选至少80%，特别优选至少85%或90%、91%、92%、93%或94%，非常特别优选至少95%、97%、98%或99%的同源性，并且编码与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽具有基本相同特性的多肽。通过对选自本发明SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽之一进行替换、插入或缺失而产生的功能等同物与选自本发明SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽之一具有至少30%、35%、40%、45%或50%，优选至少55%、60%、65%或70%，优选至少80%，特别优选至少85%或90%、91%、92%、93%或94%，非常特别优选至少95%、97%、98%或99%的同源性，并且与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽具有基本相同特性。功能等同物的"基本相同的特性"首先应理解为指该功能等同物具有上述活性，例如在胞质溶胶或细胞器(如质体或线粒体或这两者，优选质体)中表达而提高所述功能等同物在生物(如微生物、植物或植物组织或动物组织、植物或动物细胞或其部分)中的蛋白量、活性或功能。可以这样产生编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之蛋白质序列的同源物的核酸分子向本发明核酸分子(特别是选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50)的核苷酸序列中引入一个或多个核苷酸替换、添加或缺失，以使所编码蛋白质中引入一个或多个氨基酸替换、添加或缺失。可以通过标准技术(如定点诱变和PCR介导的诱变)向选自SEQmIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的编码序列中引入突变。优选地，在一个或多个预测的非关键氨基酸残基处产生保守性氨基酸替换。"保守性氨基酸替换"是这样的氨基酸替换，其中氨基酸残基被具有相似侧链的氨基酸残基替换。具有相似测量的氨基酸残基家族已在本领域中定义。这些家族包括带有以下侧链的氨基酸碱性侧链(例如赖氨酸、精氨酸、组氨酸)、酸性侧链(例如天冬氨酸、谷氨酸)、不带电的极性側链(例如甘氨酸、天冬酰胺、谷氨酰胺、丝氨酸、苏氨酸、酪氨酸、半胱氨酸)、非极性侧链(例如丙氨酸、缬氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、脯氨酸、苯丙氨酸、甲硫氨酸、色氨酸)、p-分支侧链(例如苏氨酸、缬氨酸、异亮氨酸)和芳香侧链(例如酪氨酸、苯丙氨酸、色氨酸、组氨酸)。因此，本发明多肽或本发明方法所用多肽中预测的非关键氨基酸残基优选被来自同一家族的另一氨基酸残基替换，或者，在另一实施方案中，中随机引入突变，例如通过饱和诱变引入，并可在所得突变体中筛选本文所述活性，以鉴定保留或甚至提高上述活性(例如赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量)的突变体。在诱变本文所示序列之一后，可以重组表达所编码的蛋白质并可使用如本文所述的测定(见实施例)来测定蛋白质的活性。高同源性。亚'、、'.，、、三、、具有选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列的所用核酸序列的同源物还包括等位基因变体，其与所示核苷酸序列之一或上述衍生的核酸序列或其同源物、衍生物或类似物或其部分具有至少约30%、35%、40%或45%,优选至少约50%、60%或70%,更优选至少约90°/。、91%、92%、93%、94%或95%，甚至更优选至少96%、97%、98%或99%的同源性。特别地，等位基因变体包括功能变体，其可通过在所示序列(优选选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或衍生的核酸序列)中缺失、插入或替换核苷酸来获得，然而，其目的是所合成的蛋白质的酶活性或生物活性有利地被保留或提高。在本发明的一个实施方案中，本发明的核酸分子或本发明方法所用核酸分子包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列。优选地，该核酸分子包含尽可能少的在选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的任何序列中未显示的其他核苷酸。在一个实施方案中，所述核酸分子包含少于500、400、300、200、100、90、80、70、60、50或40个其他核苷酸。在另一实施方案中，所述核酸分子包含少于30、20或10个其他核苷酸。在一个实施方案中，本发明方法所用的所述核酸分子与选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的序列相同。还优选本发明方法所用核酸分子编码包含选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之序列的多肽。在一个实施方案中，所述核酸分子编码少于150、130、100、80、60、50、40或30个其他氨基酸。在另一实施方案中，所编码的多肽包含少于20、15、10、9、8、7、6或5个其他氨基酸。在用于本发明方法的一个实施方案中，所编码的多肽与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的序列相同。在一个实施方案中，本发明的核酸分子或者本发明方法中所用核酸分子编码包含选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的序列的多肽，并包含少于100个其他核苷酸。在另一实施方案中，所述核酸分子包含少于30个其他核苷酸。在一个实施方案中，本发明方法中所用核酸分子与选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之序列的编码序列相同。仍具有本发明多肽赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量之必要生物活性或酶活性(即，其活性基本未降低)的多肽(=蛋白质)的多肽是具有野生型生物活性或酶活性的至少10%或20%、优选30%或40%、特别优选50%或60%、非常特别优选80%或卯或更高的多肽，有利地，该活性与在相同条件下表达的选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽之活性相比基本未降低。表I第5列和第7列的同源物或者选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的4汙生序列的同源物还指编码和非编码DNA序列的截短序列、cDNA、单链DNA或RNA。所述序列的同源物还应理解为指衍生物，其包舍非编码区，例如UTR、终止子、增强子或启动子变体。所述核苷酸序列上游的启动子可通过一个或多个核苷酸替换、插入和/或缺失进行修饰，但却不干扰该启动子、可读框—ORF)或远离ORF的3'调节区(如终止子或其他3'调节区)的功能或活性。还可以如下提高启动子的活性修饰其序列，或者将其完全替换为活性更高的启动子，甚至来自异源生物的启动子。合适的启动子为本领域技术人员已知，并在下文提及。除了上述编码PRS的核酸分子以外，本发明的另一方面涉及对选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子之活性的负调节物。认为其反义多核苷酸抑制这些负调节物的下调活性，这是通过与靶标多核苷酸特异性结合以及千扰靶标多核苷酸的转录、剪接、转运、翻译和/或稳定性来实现的。本领域中描述了用于将反义多核苷酸靶向至染色体DNA、初级RNA转录物或经加工mRNA的方法。优选地，靶标区包括剪接位点、翻译起始密码子、翻译终止密码子和可读框中的其他序列。就本发明目的而言，术语"反义"指这样的核酸，其包括多核苷酸，上述多核苷酸与基因、原始转录物或经加工mRNA的全部或部分充分互补，从而干扰内源基因的表达。"互补，，多核苷酸是能根据标准Watson-Crick互补原则碱基配对的多核苷酸。具体而言，嘌呤与嘧啶碱基配对，形成鸟嘌呤与胞嘧啶配对(G:C)和腺嘌呤与胸腺嘧啶(A:T)(DNA的情况)或者腺嘌呤与尿嘧啶(A:U)(RNA的情况)的组合。应该理解，两个多核苷酸即便不彼此完全互补也能彼此杂交，只要各自具有彼此基本互补的至少一个区域即可。术语"反义核酸，，包括单链RNA以及能转录产生反义RNA的双链DNA表达盒。"活性"反义核酸是能与核酸分子活性的负调节物选择性杂交的反义RNA分子，所述核酸分子编码与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽具有至少80%序列同一性的多肽。反义核酸可以与完整的负调节物链互补，或者仅与其一部分互补。在一个实施方案中，反义核酸分子与编码PRS的核苷酸序列的编码链中的"非编码区"反义。术语"非编码区"指编码区侧翼不翻译成氨基酸的5'和3，序列(即，也称为5，和3，非翻译区)。反义核酸分子可以仅与PRSmRNA的非编码区的一部分互补。例如，反义寡核苷酸可以与PRSmRNA翻译起始位点周围的区域互补。例如，反义寡核苷酸的长度可以为约5、10、15、20、25、30、35、40、45或50个核苷酸。本发明的反义分子一般包含与选白SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸之一的非编码区中至少14个连续核苷酸具有60-100%序列同一性的RNA。优选地，所述序列同一性将为至少70%，更优选至少75%、80%、85%、90%、95%、98%,最优选99%。可以使用本领域已知的方法，使用化学合成和酶连接反应来构建本发明的反义核酸。例如，反义核酸(例如反义寡核苷酸)可以使用天然核苷酸或多种修饰核苷酸来化学合成，所述修饰核苷酸设计用于提高分子的生物稳定性或提高反义与有义核酸之间所形成双链体的物理稳定性，例如，可以使用硫代磷酸酯衍生物和吖啶取代的核苷酸。可用于产生反义核酸的修饰核苷酸的实例包括5-氟尿嘧啶、5-溴尿嘧啶、5-氯尿嘧啶、5-碘尿嘧啶、次黄嘌呤、黄嘌呤、4-乙酰胞嘧啶、5-(羧基羟甲基)-尿嘧啶、5-羧曱基氨基曱基-2-硫代尿苷、5-羧甲基氨曱基尿嘧啶、二氢尿嘧啶、p-D-半乳糖基queosine、肌苷、N6-异戊烯基腺嘌呤、1-甲基鸟嘌呤、l-甲基肌苷、2，2-二甲基鸟嘌呤、2-曱基腺嘌呤、2-曱基鸟嘌呤、3-甲基胞嘧啶、5-曱基胞嘧啶、N6-腺噤呤、7-甲基鸟嘌呤、5-甲基氨曱基尿嘧啶、5-曱氧基氨甲基-2-硫尿嘧啶、p-D-甘露糖基queosine、5'-甲氧基羧甲基尿嘧啶、5-甲氧基尿嘧啶、2-曱硫基-N6-异戊烯基腺噪呤、尿嘧咬-5-氧乙酸(v)、wybutoxosine、假尿嘧咬、queosine、2-硫代胞嘧咬、5-曱基-2-尿嘧啶、2-硫尿嘧啶、4-硫尿嘧啶、5-甲基尿嘧啶、尿嘧啶-5-氧乙酸曱酯、5-甲基-2-硫尿嘧啶、3-(3-氨基-:3-N-:2-羧基丙基)-尿嘧啶、acp3和2，6-二氨基噤呤。或者，可以使用已经将核酸以反义方向亚克隆(即，从所插入核酸转录的RNA将为目的靶核酸的反义取向，以下章节中进一步描述)的表达载体通过生物方法产生反义核酸。在另一实施方案中，本发明的反义核酸分子是a-端基异构核酸分子。a-端基异构效应核酸分子与互补RNA形成特定的双链杂交体，其中与通常的b单元相反，链彼此平行排列(Gaultier等，NucleicAcids.Res.15，6625(1987))。反义核酸分子还可包含2'-o-甲基核糖核苷酸(Inoue等，NucleicAcidsRes.15，6131(1987))或嵌合RNA-DNA类似物(Inoue等，FEBSLett.215,327(1987))。本发明的反义核酸分子一般对细胞施用或者原位产生，以使其与细胞mRNA和/或基因组DNA杂交或结合。杂交可通过常规核苷酸互补性进行，以形成稳定双链体，或者例如对于与DNA双链体结合的反义核酸分子的情况，通过双螺旋大沟中的特异性相互作用进行。可以修饰反义分子，以使其特异性结合选定细胞表面上表达的受体或抗原，例如将该反义核酸分子与结合细胞表面受体或抗原的肽或抗体连接在一起。也可以使用本文所述载体将反义核酸分子递送至细胞中。为了实现足够的反义分子胞内浓度，优选其中将反义核酸分子置于强原核、病毒或真核(包括植物)启动子控制之下的载体构建体。作为反义多核苷酸的备选，可以使用核酶、有义多核苷酸或双链RNA(dsRNA)以减少PRS多肽表达。"核酶"意指具有核糖核酸酶活性的基于催化性RNA的酶，其能够切割与之具有互补区域的单链核酸如mRNA。可以使用核酶(例如Haselhoff和Gerlach，Nature334,585(1988)所述的锤头状核酶)以催化性切割PRSmRNA转录物以便因此抑制PRSmRNA的翻译。对编码PRS的核酸呈特异性的核酶可以基于如本文中所公开的PRScDNA的核苷酸序列或基于根据本发明中已教授的方法而分离的异源序列设计。例如，可以构建四膜虫(Tetrahymena)L-19IVSRNA的衍生物，在其中活性位点的核苷酸序列与编码PRS的mRNA中待受到切割的核苷酸序列互补。参见例如Cech等的美国专利号4,987,071和5,116,742。备选地，可以使用PRSmRNA以在RNA分子库内选择具有特异性核糖核酸酶活性的催化性RNA。。参阅如BartelD.和Szostak丄W"Science261，1411(1993)。在优选的实施方案中，核酶将含有具备至少7、8、9、10、12、14、16、18或20个核苷酸并且更优选地7或8个核苷酸的与靶RNA的部分具有100%互补性的部分。用于产生核酶的方法对本领域技术人员为已知。例如参见美国专利号6,025,167;5,773,260和5,496,698。本文使用的术语"dsRNA"指包含两个RNA链的RNA杂交体。dsRNA的结构可以是线性或环状的。在一个优选的实施方案中，dsRNA对多核苷酸具有特异性，所述多核苷酸编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽，或者编码与选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽具有至少70%序列同一性的多肽。杂交的RNA可以是基本互补或完全互补。"基本互补"意指当使用如上所述的BLAST程序优化比对两种杂交的RNA时，杂交的部分至少95%互补。优选地，dsRNA的长度将是至少100个碱基对。一般地，杂交的RNA长度相同，没有突出的5，或3'端并且没有缺口。然而，达100个核苷酸的具有5'或3'突出端的dsRNA可以用于本发明的方法中。dsRNA可以包含核糖核苷酸或核糖核苷酸类似物如2'-0-曱基核糖基或其组合。例如，参见美国专利号4,130,641和4,024,222。dsRNA聚核糖次黄苷酸:聚核糖胞苷酸在美国专利4,283,393中描述。用于产生和使用dsRNA的方法在本领域已知。一个方法包括在体内或在体外单个反应混合物内同时转录两条互补的DNA链。例如，参见美国专利号5,795,715。在一个实施方案中，dsRNA可以通过标准技术直接导入植物或植物细胞。或者，dsRNA可以在植物细胞中通过转录两种互补的RNA得到表达。用于抑制内源基因表达的其他方法如三螺旋形成(Moser等，Science238,645(1987)，以及Cooney等，Science241，456(1988))和共抑制(Napoli等，ThePlantCell2，279，1990，)为本领域已知。已经将部分或全长的cDNA用于共抑制内源植物基因。参阅如美国专利号4,801,340、5，034，323、5,231,020和5,283,184;VanderKroll等，ThePlantCell2，291，(19卯);Smith等，Mol.Gen.Genetics224，477(1990)，以及Napoli等，ThePlantCell2,279(1990)。对于有义抑制，认为导入有义多核苷酸封闭相应靶基因的转录。有义多核苷酸具有与靶植物基因或靶RNA至少65。/。的序列同一性。优选地，同一性百分数是至少80%、90%、95%或更高。导入的有义多核苷酸不必在全长上与耙基因或转录物相关。优选地，有义多核苷酸与选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸之一的至少100个连续核普酸具有至少65%的序列同一性。同一性的区域可以包含内含子和/或外显子和非翻译区域。导入的有义多核苷酸可以短暂存在于植物细胞中，或可以稳定整合至植物染色体或染色体外复制子。此外，本发明的目的是包含核酸分子的表达载体，所述核酸分子包含选自以下的核酸分子(a)编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽的核酸分子；(b)选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子；(c)核酸分子，其由于遗传密码的简并性而可以衍生自选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之多肽序列，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(d)核酸分子，其与包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之核酸分子的多核苷酸的核酸分子序列具有至少30%同一性，优选至少40%、50%、60%、70%、75%、80%、85%、卯％、95%、96%、97%、98%、99%、99,5%同一性，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(e)核酸分子，其编码与(a)、(b)、(c)或(d)核酸分子所编码多肽的氨基酸序列具有至少30%同一性、优选至少40%、50%、60%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、99.5%同一性的多肽，并具有包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核苷酸的核酸分子所代表的活性，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(f)核酸分子，其在严格杂交条件下与(a)、(b)、(c)、(d)或(e)的核酸分子杂交，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(g)核酸分子，其编码可借助于针对(a)、(b)、(c)、(d)、(e)或(f)核酸分子之一所编码多肽产生的单克隆或多克隆抗体来分离的多肽，并具有包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核苷酸的核酸分子所代表的活性；(h)核酸分子，其编码包含选自SEQIDNO:7、8、9、10、11、14、15、16、17、18之ADP结合位点的多肽基序的多肽或者包含选自SEQIDNo.64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽，并优选地具有包含选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核苷酸的核酸分子所代表的活性；(i)核酸分子，其编码具有选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之蛋白质所代表的活性的多肽，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(j)核酸分子，其包含可通过^f吏用选自SEQIDNO:5、6的引物扩增cDNA文库或基因组文库获得的多核苷酸，该核酸分子在其5，末端不以核苷酸ATA开始，并优选地具有包含表II或表IV的第5列申请号1中所示多核苷酸的核酸分子代表的活性；和(k)核酸分子，其可通过严格杂交条件下筛选合适的核酸文库(特别是cDNA文库和/或基因组文库)获得，所述筛选中使用包含(a)或(b)核酸分子之互补序列的探针或者使用其片段，所述探针或其片段具有(a)至(e)所表征核酸分子序列之互补核酸分子的至少15nt，优选20nt、30nt、50nt、100nt、200nt、500nt、750nt或1000nt，并且该核酸分子编码多肽，该多肽具有包含选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之多肽的蛋白质所代表的活性。本发明还提供分离的重组表达载体，其包含如上述的PRS编码核酸，其中该载体或PRS编码核酸分别在宿主细胞中的表达导致与宿主细胞的相应未转化的野生型相比提高的产量。如本文中所用，术语"载体"指能够转运与之连接的另一种核酸分子的核酸分子。一个类型的载体实例是"质粒"，其指向其中可以连接额外DNA节段的环状双链DNA环。另一类型的载体是病毒载体，其中可以将额外DNA节段连接至病毒的基因组内。其它类型的栽可以是线性化的核酸序列，如转座子，其是可以拷贝并自我插入的DNA片段。存在两种类型的已知转座子称作插入序列的简单转座子以及组合转座子，其可以具有数种基因以及为转座所需要的基因。某些载体能够在导入这些载体的宿主细胞内自主复制(例如具有细菌复制起点的细菌载体和附加型哺乳动物载体)。其它载体(非附加型哺乳动物栽体)在导入宿主细胞后整合至宿主细胞基因组，并且因此随宿主基因组一起复制。此外，某些载体能够指导与它们有效连接的基因表达。此类载体在本文中称为"表达载体"。通常，用于DNA重组技术的表达载体通常是质粒的形式。在本说明书中，"质粒"和"载体"可互换使用，因为质粒是载体的最常用形式。然而，本发明意图包含表达载体的其它形式，如病毒载体(例如复制缺陷型逆转录病毒、腺病毒和腺相关病毒)，其发挥等效功妙H匕,植物表达盒优选地包含调节序列，此类调节序列能够在植物细胞中驱动基因表达并有效地连接以至每一序列可以充分实现它的功能，如通过聚腺苷酸化信号终止转录。优选的聚腺苷酸化信号不但是源自根瘤农杆菌t-DNA如Ti质粒pTiACH5(Giden等(1984)EMBOJ3:835)中称作章鱼碱合酶的基因3或其功能等同物的那些聚腺苷酸化信号，而且在植物中呈功能活性的所有其它终止子也适合。由于植物基因表达并不总是在翻译水平受限，因此植物表达盒优选地含有有效连接的其它序列，如转录增强子，如含有来自烟草花叶病毒的5，非翻译前导序列的增强每RNA对多肽比率的超驱动序列(Gallie等，Nucl.AcidsResearch15，8693(1987))。基因表达必须有效地连接至赋予基因以时间、细胞或组织特异性方式表达的适宜启动子。优选的启动子是驱动组成型表达的启动子(Benfey等，EMBO丄8,2195(1989))，如那些衍生自植物病毒如35SCaMV((Franck等，Cell21，285(1980))、19SCaMV(还参阅美国专利号5,352,605和PCT申请号WO84/02913)的启动子，或植物启动子，如那些在美国专利号4,962,028中所述来自Rubisco小亚基的启动子。额外有利的调节序列例如包含在植物启动子如CaMV/35S(Franck等，Cell21285(1980))、PRP1(Ward等，Plant.Mol.Biol.22，361(1993))、SSU、()CS、Iib4、usp、STLSl、B33、LEB4、nos中或者包含在泛蛋白、油菜籽蛋白或茱豆蛋白启动子内。诱导型启动子在本上下文中也有利，如在EP國A-O388186(苯磺酰胺诱导型)、PlantJ.2，1992:397-404(Gatz等，四环素诱导型)、EP-A-O335528(脱落酸诱导型)或WO93/21334(乙醇或环己酮诱导型)中描述的启动子。额外有利的植物启动子是马铃薯的胞浆FBP酶启动子或马铃薯的ST-LSI启动子(Stockhaus等，EMBOJ.8(1989)2445-245)、大豆的磷酸核糖焦磷酸酰胺转移酶启动子(还参见Genebank登录号U87999)或如EP-A-O249676中所述节特异性启动子。5，608，152(来自欧洲油菜的油菜籽蛋白启动子)、WO98/45461(来自拟南芥菜属的油质蛋白启动子)、US5，504，200(来自菜豆的菜豆蛋白启动子)、WO91/13980(来自芥属的Bce4启动子)和Baeumlein等，PlantJ.，2,2，1992:233-239(来自豆科植物的LEB4启动子)中描述的种子特异性启动子。所述启动子用于双子叶植物中。如下启动子用于例如单子叶4直物来自大麦中Ipt2或Iptl启动子(WO95/15389和WO95/23230)或来自大麦的大麦醇溶蛋白启动子。其它有用的启动子在WO99/16890中描述。原则上，可以使用具有其调节序列的所有天然启动子，如以上提及的用于新方法的那些天然启动子。除此之外，还可能并且可以有利地使用合成性启动子。基因构建体还可含有待插入生物中并例如参与产量提高的其他基周。在宿主生物中插入并表达调节基因是可能的并且是有利的，例如编码诱导物、阻遏物或通过其酶活性干预调节作用的酶的基因，或者生物合成途径中一种或多种或全部酶的基因。这些基因在来源上可以是异源或同源的。插入的基因可以具有它们自己的启动子或处于如与表I核酸序列或其同源物的相同启动子控制下。为了表达存在的其它基因，基因构建体有利地包含根据已选择的宿主生物和基因选择用于最佳表达的3，和/或5'末端调节序列以增强表达。这些调节序列用于使如上所述的基因特异性表达和蛋白质表达成为可能。根据宿主生物，这可以意指例如仅在诱导后基因才得以表达或过量表达或基因立即得以表达和/或过量表达。调节序列或因子还可以优选地有益影响导入的基因的表达并且因此提高表达。有可能通过使用强转录信号，如启动子和/或增强子以这种方式有利地在转录水平增强调节元件。然而，除此此外，还有可能例如通过改善mRNA的稳定性增强翻译。优选用于植物基因表达盒的其它序列是指导基因产物进入适宜细胞区室所需要的耙向序列(综述参阅Kermode，Crit.Rev.PlantSci.15(4)，285(1996)及其参考文献)，如进入液泡、细胞核、所有类型的质粒如淀粉体、叶绿体、细胞外空间、线粒体、色质体、内质网、油体、过氧化物酶体和植物细胞的其它区室。植物基因表达还可以通过诱导型启动子进行促进(综述参阅Gatz，Annu.Rev.PlantPhysiol.PlantMol.Biol.48，89(1997))。当基因表达需要以时间特异性方式发生时，化学诱导型启动子特别合适。表IV列出了可用于调节本发明核酸编码序列的转录的一些启动子实例,表IV:植物中组织特异性启动子和诱导型启动子的实例表达参考文献Cor78-低温、干旱、盐、ABA、创伤-誇导Rci2A-低温、脱水诱导Rd22-干旱、盐Corl5A-低温、脱水、ABAGH3-生长素诱导ARSKl-根，盐诱导PtxA-根，盐诱导SbHRGP3-才艮特异性KST1-保卫细胞特异性KAT1-保卫细胞特异性Ishitani，等，PlantCell9，1935(1997)，Yamaguchi-Shinozaki和Shinozaki，PlantCell6，251(1994)Capel等，PlantPhysiol115，569(1997)Yamaguchi-Shinozaki和Shinozaki,Mol.Gen.Genet.238，17(1993)Baker等，PlantMol.Biol.24,701(1994)Liu等，PlantCell6，645(1994)Hwang和Goodman,PlantJ.8，37(1995)GenBank登记号X67427Ahn等，PlantCell8，1477(1998).Plesch等，PlantJournal.28(4)，455-(2001)Plesch等，Gene249，83(2000)，Nakamura等，PlantPhysiol.109,371(1995)水杨酸i秀导四环素i秀导乙醇诱导病原体诱导的PRP1热诱导的hsp80低温诱导的a-淀粉酶创伤诱导的pinllRD29A-盐诱导质体特异性病毒RNAPCT申请号WO95/19443Gatz等，PlantJ.2，397(1992)PCT申请号WO93/21334Ward等，Plant.Mol.Biol,22，361—(1993)美国专利号5,187,267PCT申请号WO96/12814欧洲专利号375091Yamaguchi-Shinozalei等Mol.Gen.Genet.236，331(1993)PCT申请号WO95/16783，PCT申请WO97/06250其他启动子例如超级启动子(Ni等，.PlantJournal7，661(1995))、泛蛋白启动子(Callis等，J.Biol.Chem.,265，12486(1990);US5,510,474;US6,020,190;K醒lleck等，Plant.MolecularBiology,21，673(1993))或34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)可类似地用于本发明，并为本领域技术人员已知。发育阶段优选的启动子在发育的某个阶段优先受到表达。组织和器官优选的启动子包括在特定组织或器官如叶、根、种子或木质部中优先受到表达的那些启动子。组织优选的启动子包括但不限于果实优选的、胚珠优选的、雄性组织优选的、种子优选的、珠被优选的、块茎优选的、柄优选的、果皮优选的和叶优选的、柱头优选的、花粉优选的、花药优选的、花瓣优选的、萼片优选的、花梗优选的、长角果优选的、茎优选的、根优选的启动子等。种子优选的启动子在种子繁育和/或萌发期间优先受到表达。例如，种子优选地启动子可以是胚优选的、胚乳优选和种衣优选的启动子。参阅Thompson等，BioEssays10，108(1989)。种子优选的启动子实例包括但不限于纤维素合成酶(celA)、Ciml、？玉米醇溶蛋白、球蛋白-1、玉米19kD玉米醇溶蛋白(cZ19Bl)等。其它在本发明表达盒中有用的启动子包括但不限于主要叶绿素a/b结合蛋白启动子、组蛋白启动子、Ap3启动子、p-伴大豆球蛋白启动子、油菜籽蛋白启动子，大豆凝集素启动子、玉米15kD玉米醇溶蛋白启动子、22kD玉米醇溶蛋白启动子、27kD玉米醇溶蛋白启动子、g-玉米醇溶蛋白启动子、蜡质、萎缩1、萎缩2和青铜色启动子、Zml3启动子(美国专利号5，086，169)、玉米多聚半乳糖醛酸酶启动子(PG)(美国专利号5,412,085和5，545，546)和SGB6启动子(美国专利号5，470，359)以及合成性或其它的天然启动子。I)NA结合结构域和反应元件(即来自非植物的DNA结合结构域)达到。异源DNA结合结构域的实例是LexADNA结合结构域(Brent和Ptashne，Cell43，729(1985))。本发明还提供包含以反义方向克隆至该表达载体的本发明PRSDNA分子的重组表达载体。即DNA分子以如此方式有效连接至调节序列，该方式允许(通过DNA分子转录)与PRSmRNA呈反义的RNA分子表达。可以选择有效地连接至以反义方向克隆的核酸分子的调节序列，其指导反义RNA分子在多种细胞类型中连续表达。例如，可以选择指导反义RNA组成型、组织特异性或细胞类型特异性表达的病毒启动子和/或增强子，或调节序列。反义表达载体可以是重组质粒、噬菌粒或减毒病毒的形式，在其中反义核酸在高效调节区域的控制下产生。调节区域的活性可以通过向其中导入载体的细胞类型加以测定。对于使用反义基因调节基因表达的讨论，参阅WeintraubH.等，Reviews-TrendsinGenetics,Vol.1(1)，23(1986)和Mol等，FEBSLetters268，427(19卯)。本发明的另一方面涉及分离的PRS、及其生物活性部分。"分离的"或"纯化的"多肽或其生物活性部分在通过重组DNA技术产生时基本不含某些细胞性材料，或在通过化学合成时基本不含化学前体或其它化学品。词组"基本不含细胞性材料，，包括这样的PRS制品，在所述PRS制品中该多肽与从其中天然或重组地产生此多肽的细胞的某些细胞器分开。在一个实施方案中，词组"基本不含细胞材料"包括这样的PRS制品，其具有少于大约30%(干重)的非PRS材料(本文中也称作"杂质多肽")、优选地少于大约20%的非PRS材料、仍更优选地少于大约10%的非PRS材料并且最优选地少于大约5%的非PRS材料。当重组产生PRS或其生物学活性部分时，它还优选地基本不含培养基，即培养基占蛋白质制品的体积少于大约20%、更优选地少于大约10D/o并且最优选地少于大约5%。词组"基本不含化学前体或其它化学品"包括PRS制品，在其中该多肽与参与合成此多肽的化学前体或其它化学品分开。词组"基本不含化学前体或其它化学品"包括PRS制品，其具有少于大约30%(干重)的化学性前体或非PRS化学品、更优选地少于大约20%的化学性前体或非PRS化学品、仍更优选地少于大约10%的化学性前体或非PRS化学品并且最优选地少于大约5%的化学性前体或非PRS化学品。在优选的实施方案中，分离的多肽或其生物活性部分没有来自在其中衍生PRS的同一生物的杂质多肽。这样的多肽一般通过重组表达来产生，例如酿酒酵母、大肠杆菌或欧洲油菜、大豆、玉米或水稻的PRS在^f效生物(如酿酒酵母、大肠杆菌、谷氨酸棒杆菌、纤毛虫、藻类、真菌)或植物中产生，只要该多肽在与其来源生物不同的生物中重组表达即可。本文所述的核酸分子、多肽、多肽同源物、融合多肽、引物、载体和宿主细胞可用于一种或多种以下方法鉴定酿酒酵母、大肠杆菌或欧洲油菜、大豆、玉米或水稻及相关生物；对酿酒酵母、大肠杆菌相关生物的基因组进行作图；鉴定和定位酿酒酵母、大肠杆菌或欧洲油菜、大豆、玉米或水稻的目的序列；进化研究；确定功能所需的PRS区；调节PRS活性；调节一个或多个细胞功能的代谢；调节一种或多种化合物的跨膜转运；调节产量；以及调节PRS核酸的表达。本发明的PRS核酸分子还用于进化和多肽结构研究。本发明分子所参与的代谢过程和转运过程由种类广泛的原核细胞和真核细胞所利用；通过将本发明核酸分子的序列与来自其它生物的编码类似酶的核酸分子的序列比较，可以评估生物的进化相关性。类似地，此类比较研究允许评估序列的哪些区域保守而哪些区域不保守，这可能有助于确定多肽的哪个区域对酶的功能关键。这种类型的确定对于多肽工程研究极有意义并且可以提供多肽可以耐受何种诱变而不丧失功能的线索。对本发明PRS核酸分子的操作可导致产生与野生型PRS有功能差异的PRS。这些多肽可具有提高的效率或活性，可以比通常更高的数量存在于细胞中，或者可以具有降低的效率或活性。本发明PRS的改变可通过多种机制直接影响产量。可以如下评估植物中的遗传修饰在提高产量方面的效果在比合适更差的条件下培养修饰的植物，接着分析该植物的生长特征和/或代谢。此类分析技术对本领域技术人员而言众所周知，并且包括干重、鲜重、多肽合成、糖合成、脂类合成、蒸发蒸腾速率、整体的植物和/或作物产量、开花、繁殖、结种、根生长、呼吸速率、光合作用速率等(ApplicationsofHPLCinBiochemistry:LaboratoryTechniquesinBiochemistryandMolecularBiology,Vol.17;Rehm等，1993Biotechnology,Vol.3，ChapterIII:Productrecoveryandpurification,469-714页，VCH:Weinheim;BelterP.A.等,1988,Bioseparations:downstreamprocessingforbiotechnology,JohnWileyandSons;KennedyJ.F,，和CabralJ.M.S.，1992，Recoveryprocessesforbiologicalmaterials,JohnWileyandSons;ShaeiwitzJ.A.和HenryJ.D.，1988,Biochemicalseparations,Ulmann，sEncyclopediaofIndustrialChemistry,Vol.B3，Chapter11，page1-27，VCH:Weinheim;以及DechowF.J.，1989，Separationandpurificationtechniquesinbiotechnology,NoyesPublications)。例如，可以使用标准方法构建包含本文所述核酸或其片段的酵母表达载体并转化进酿酒酵母中。接着对所得转基因细胞测定产量的产生或改变。类似地，可以使用标准方法构建包含本文所述核酸或其片段的植物表达栽体并转化进适当的植物细胞中，例如拟南芥、大豆、油菜、玉米、棉花、稻、小麦、蒺藜苜蓿(M^/Zcago^wwai似/a)等。接着对所得转基因细胞和/或由其产生的植物测定产量的产生或改变。对选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50并编码选自本发明SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的PRS的一个或多个基因进行的改造还可产生改变了活性的PRS,其间接和/或直接影响植物产量。此外，本文所述序列或其片段可用于在多种生物(如细菌、哺乳动物细胞、酵母细胞和植物细胞)的基因组中产生敲除突变(Girke，T.，ThePlantJournal15,39(1998))。接着可对所得的敲除细胞评估其提高产量的能力以及对该突变的表型和/或基因型的影响。基因失活的其他方法参阅美国专利号6,004,804和Puttaraju等，NatureBiotechnology17，246(1999)。导致产量提高增强的上述用于PRS的诱变策略并不意在限制，这些策略的修改对于本领域技术人员来说是很明显的。使用这些策略并结合本文公开的机制，本发明的核酸及多肽分子可用于产生表达突变PRS核酸及多肽分子从而提高产量的藻类、植物、真菌。本发明还提供特异性结合至如由本文中所述的核酸编码的PRS或其部分的抗体。抗体可以通过众多众所周知的方法产生(参见例如Harlow和Lane,"Antibodies;ALaboratoryManual",ColdSpringHarborLaboratory,ColdSpringHarbor,NewYork,(1988))。简而言之，可以将纯化的抗原以足以激发免疫反应的量和间隔期注射至动物。可以直接纯化抗体，或可以自该动物获得脾脏细胞。随后将此细胞与永生细胞系融合并对抗体分泌进行筛选。抗体可用于对核酸克隆文库筛选针分泌抗原的细胞。随后可以将那些阳性克隆测序。参阅如Kelly等，Bio/Technology10，163(1992);Bebbington等，Bio/Technology10，169(1992)。短语与多肽"选择性结合，，和"特异性结合，，指可确定多肽在异源多肽群体和其它生物中存在的结合反应。因此，在指定的免疫分析条件下，结合至特定多肽的指定抗体不以显著量结合至样品中存在的其它多肽。抗体在如此条件下的选择性结合可能需要因其对特定多肽的特异性而选择的抗体。多种免疫方法可以用于选择与特定多肽选择性结合的抗体。例如固相可以用于测定选择性结合的免疫方法和条件的描述，参见Harlow和Lane，"Antibodies,ALaboratoryManual,"ColdSpringHarborPublications,NewYork,(1988)。在某些情况下，需要制备来自多种宿主的单克隆抗体。用于制备此类单克隆抗体的技术的描述可以在Stites等编辑，"Basic和ClinicalImmunology，，,(LangeMedicalPublications,LosAltos,Calif"第五版和及其中引用的参考文献，和在Harlow和Lane,"Antibodies,ALaboratoryManual,，，ColdSpringHarborPublications,NewYork,(1988)中找到。植物中的基因表达受蛋白质转录因子与基因调节区域内特定核苷酸序列相互作用的调节。转录因子的一个实例是含有锌指(ZF)基序的多肽。每一ZF模块的长度是大约30个氨基酸，在锌离子周围折叠。ZF蛋白质的DNA识别结构域是插入DNA双螺旋大沟内的a-螺旋结构。模块含有结合至DNA的三个氨基酸，每一氨基酸接触靶DNA序列中的单个碱基对。ZF基序以模块重复方式排列以形成一套识别连续DNA序列的指。例如，三指ZF基序将识别DNA的9个bp。已证实数百个蛋白质含有ZF基序，每一蛋白质中有2至37个ZF模块(IsalanM.等，Biochemistry37(35)，12026(1998);MooreM.等,Proc.Natl.Acad.Sci.USA98(4),1432(2001)以及MooreM.等，Proc.Natl.Acad.Sci.USA98(4)，1437(2001);美国专利US6,007,988和US6,013,453)。植物基因的调节区域含有众多起到识别包括ZF蛋白在内的转录因子的短DNA序列(顺式作用元件)。不同基因中类似的识别结构域允许通过常见转录因子在代谢途径中协同表达数个编码酶的基因。基因家族成员的识别结构域中的变化有利于同一基因家族内部在基因表达的差异，例如在组织和发育阶段以及对环境条件的反应中。常见ZF蛋白不仅含有DNA识别结构域，还含有使ZF蛋白激活或抑制特定基因转录的功能域。实验上，已经将激活域用于激活靶基因转录(美国专利5,789,538和专利申请WO95/19431)，不过还有可能将转录阻遏物域连接至ZF并且因而抑制转录(专利申请WO00/47754和WO01/002019)。已报道酶的功能如核酸切割可以与ZF联合(专利申请WO00/20622)。本发明提供了使得本领域技术人员能够从植物细胞基因组中分离一种或多种PRS编码基因的调节区，并能设计与功能结构域连接的锌指转录因子，所述功能结构域与该基因的调节区相互作用。可以以改变该基因表达(并优选由此赋予产量提高)的方式来设计锌指蛋白与植物基因的相互作用。具体地，本发明提供了产生含有PRS编码核酸的转基因植物的方法，其中该核酸在该植物中的表达导致与野生型植物相比提高的产量，该方法包括(a)用包含PRS编码核酸的表达载体转化植物细胞，和(b)从该植物细胞产生与野生型植物相比具有提高的产量的转基因植物。就这样的植物转化而言，可以使用双元载体，如pBinAR(H6fgen和Willmitzer，PlantScience66，221(1990))。其他合适的双元载体为例如pBIN19、pBIlOl、pGPTV或pPZP(HajukiewiczP.等，PlantMol.Biol"25，989(1994))。双元栽体的构建可以通过将cDNA连接至T-DNA进行。位于该cDNA5'端的植物启动子激活cDNA的转录。聚腺苷酸化序列位于cDNA的3'端。组织特异性表达可以通过使用如上所列的组织特异性启动子实现。此外，可以使用任何其它启动子元件。对于在完整植物中的组成型表达，可以使用CaMV35S启动子。可以使用信号肽将表达的蛋白质靶向至细胞区室例如质体、线粒体或内质网(Kermode，Crit.Rev.PlantSci.4(15)，285(1996))。将信号肽以符合cDNA读框方式克隆至5'端以实现融和蛋白的亚细胞定位。本领域技术人员认识到所用的启动子应当有效地连接至核酸以至该启动子引起核酸的转录，导致合成编码多肽的mRNA。另一种转染方法包括通过电穿孔或农杆菌介导的基因转移将DNA直接转移至发育的花中。农杆菌介导的植物转化可以使用例如GV3101(pMP90)(KonczandSchell,Mol.Gen.Genet.204，383(1986))或LBA4404(Ooms等，Plasmid，7，15(1982);Hoekema等，Nature,303，179(1983))根瘤农杆菌菌株开展。转化可以通过标准转化和再生技术(Deblaere等，Nucl.Acids.Res.13，4777(1994);Gelvin和Schilperoort,PlantMolecularBiologyManual,第二版.-Dordrecht:KluwerAcademicPubl.，1995.-inSect"RingbucZentraleSignatur:BT11-PISBN0-7923-2731-4;GlickB.R.和ThompsonJ.E.，MethodsinPlantMolecularBiologyandBiotechnology,BocaRaton:CRCPress,1993.-360S.,ISBN0-8493-5164-2)开展。例如，油菜可以通过子叶或下胚轴转化作用加以转化(Moloney等，PlantCellReports8，238(1989);DeBlock等，PlantPhysiol.91，694(1989))。用于农杆菌的抗生素以及植物选择取决于转化所用的双元载体和农杆菌菌林。油菜的选择通常使用作为可选择植物标记的卡那霉素开展。农杆菌介导至亚麻属植物的基因转移可以使用例如由Mlynarova等，PlantCellReport13,282(1994)描述的技术开展。此外，大豆的转化可以使用例如由欧洲专利号424047、美国专利号5,322,783、欧洲专利号397687、美国专利号5,376,543或美国专利号5,169,770描述的技术开展。玉米的转化可以通过粒子轰击、聚乙二醇介导的DNA摄取或碳化硅纤维技术(参阅如Freeling和Walbot"Themaizehandbook"SpringerVerlag:NewYork(1993)ISBN3-540-97826-7)实现。转化玉米的具体实例在美国专利号5,990,387中找到并且转化小麦的具体实例在PCT申请号WO93/07256中找到。在确定的N条件下培养修饰植物，接着筛选和分析生长特征和/或代谢活性，这评估了植物中基因修饰对产量提高的影响。这些分析技术为本领域技术人员所熟知。它们包括筛选(R6mppLexikonBiotechnologie，Stuttgart/NewYork:GeorgThiemeVerlag1992，"screening"701页)干重、鲜重、蛋白质合成、碳水化合物合成、脂类合成、蒸发蒸腾速率、总体植物和/或作物产量、开花、繁殖、结籽、根生长、呼吸速率、光合作用速率等。(ApplicationsofHPLCinBiochemistry,LaboratoryTechniquesinBiochemistryandMolecularBiology,Vol.17;Rehm等,1993Biotechnology,Vol.3，ChapterIII:Productrecoveryandpurification,469-714页，VCH:Weinheim;Belter,P.A.等，1988Bioseparations:downstreamprocessingforbiotechnology,JohnWileyandSons;KennedyJ.F.和CabralJ.M.S.，1992Recoveryprocessesforbiologicalmaterials,JohnWileyandSons;ShadwitzJ.A.和HenryJ.D.，1988Biochemicalseparations,Ullmann，sEncyclopediaofIndustrialChemistry,Vol.B3，Chapter11，1-27页，VCH:Weinheim;以及DechowF.J.(1989)Separationandpurificationtechniquesinbiotechnology,NoyesPublications)。在一个实施方案中，本发明涉及用于在生物(例如植物)的细胞中鉴定基因产物的方法，所述基因产物赋予与相应未转化野生型植物细胞相比提高的产量，该方法包括以下步骤(a)将含有编码赋予产量提高之候选基因的样品(例如细胞、组织、植物或樣t生物或核酸文库)与选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子或其功能同源物接触(例如杂交)；(b)鉴定在宽松的严格条件下与所述核酸分子(特别是选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子序列)杂交的核酸分子，并任选地分离全长cDNA克隆或完整的基因组克隆；(c)在宿主细胞(优选植物细胞)中鉴定该候选核酸分子或其片段；(d)在期望提高产量的宿主细胞中提高所鉴定核酸分子的表达；(e)测定该宿主细胞的产量提高水平；和(f)鉴定核酸分子及其基因产物，其在宿主细胞中的表达提高赋予与野生型相比提高的产量。宽松的杂交条件为在标准杂交操作之后，洗涤步骤可在低至中等严格条件下进行，通常使用这样的洗涤条件40'C-55°C,盐浓度为2xSSC至0.2xSSC以及0.1%SDS，相比之下，严格洗涤条件为例如6(TC至68°C以及0.1。/。SDS。严格杂交条件的其他实例可见于上文列出的参考文献。通常以提高的严格度和长度重复洗涤步骤，直至检测到有用的信噪比，这取决于许多因素，例如靶标(例如其纯度、GC含量、大小等)、探针(例如其长度，是RNA还是DNA探针)、盐条件、洗涤或杂交温度、洗涤或杂交时间等。在另一实施方案中，本发明涉及用于鉴定基因产物的方法，所述基因产物的表达在细胞中赋予提高的产量，该方法包括以下步骤(a)在生物中鉴定核酸分子(例如通过在数据库中进行同源性检索来鉴定)，该核酸分子与编码以下蛋白质的核酸分子具有至少20%的同源性，优选20%，更优选30%，甚至更优选35%、40%或50%，甚至更优选60%、70%或80%，最优选卯％或95%或更高同源性，所述蛋白质包含选自SEQII)NO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽分子，或者包含编码含有选自SEQIDNO:7、8、9、10、11、14、15、16、17、18的ADP结合位点的多肽基序之多肽的核酸分子，或者包含具有选自SEQIDNo:64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽，并优选具有由包含选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之多核苷酸的核酸分子所代表的活性，或者由包含选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之多核苷酸的核酸分子或其同源物编码，如本文所述；(b)增强所鉴定核酸分子在宿主细胞中的表达；(c)评价宿主细胞中的产量提高水平；和(d)鉴定宿主细胞，其中所述增强的表达在该宿主细胞中赋予与野生型相比提高的产量。此外，本文所述核酸分子(特别是选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子)可与相关物种的序列充分同源，从而这些核酸分子可作为标志物用于在相关生物中构建基因组图谱或用于关联作图。此外，本文所述核酸(特别是选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其活性的变异，并由此导致产量的天然变异，所述蛋白质尤其是这样的蛋白质，其包含选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽，或者包含编码含有选自SEQIDNO:7、8、9、10、11、14、15、16、17、18的ADP结合位点多肽基序之多肽的核酸分子，或者包含具有选自SEQIDNo:64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽，并优选具有由包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50和其同源物之多核苷酸的核酸分子所代表的活性。因此，天然变异最终也以更具活性的等位基因变体的形式存在，其导致产量增强相对提高。可以鉴定对应于不同产量提高水平的本文所述核酸分子(尤其是包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子的核酸)的不同变体，并用于标记辅助的育种，以提高产量。因此，本发明涉及用于培育产量提高的植物的方法，包括(a)基于本文所述核酸(尤其是包含选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的核酸分子的核酸分子)或者多肽的表达提高来选择产量提高的第一种植物品种，所述多肽包含选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽，或者包含编码含有选自SEQIDNO:7、8、9、10、11、14、15、16、17、18的ADP结合位点多肽基序之多肽的核酸分子，或者包含具有选自SEQIDNo:64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之基序的多肽，并优选具有由包含选自SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之多核苷酸或其同源物的核酸分子所代表的活性，如本文所述；(b)将产量增强水平与编码所述多肽或所述核酸分子的基因的表达水平或基因组结构相关联；134(C)将所述第一种植物品种与产量增强水平存在显著差异的第二种植物品种杂交；和发明核酸分子的基因的基因组结构来鉴定哪种后代品种获得了提高的产量增强水平。在一个实施方案中，步骤(b)的基因的表达水平是提高的。本发明的另一实施方案涉及用于鉴定化合物的方法，所述化合物赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比在植物细胞、植物或其部分中提高的产量，该方法包括以下步骤(a)培养植物细胞、植物或其部分，维持植物，该植物表达选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63的多肽，或者由包含选自本文所述SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物之多核苷酸的核酸分子编码的多肽，或者表达编码所述多肽并赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量的多核苷酸；并且提供读出系统，该读出系统能在允许该多肽在化合物或包含多种化合物的样品存在下与此读出系统发生相互作用的合适条件下与该多肽相互作用，并能在一定条件下应答于化合物与所述多肽的结合而提供检测信号，该条件允许表达所述读出系统和蛋白质，该蛋白质选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63，或者由包含选自本文所述SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50或其同源物之多核苷酸的核酸分子编码；和(b)通过所述读出系统所产生信号的存在与否或者升降情况来鉴定该化合物是否是有效的激动剂。来自如植物、动物或微生物(如病原体)的样品(如细胞提取物)中。此外，所述化合物可以是本领域已知的，但还不了解其能够抑制本发明的多肽。反应混合物可以是无细胞提取物，或者可包含细胞或组织培养物。用于鉴定本发明化合物的方法的合适设置为本领域技术人员已知，并且一般性地描述于例如Alberts等，MolecularBiologyoftheCell,第三版(1994)，特别是第17章。所述化合物可以例如添加到反应混合物、培养基中，注射到细胞中或者喷洒到植物上。如果在该方法中鉴定含有化合物的样品，则可以从鉴定为含有能激活或增强与相应未转化野生型相比的产量提高的化合物的原始样品中分离该化合物，或者可以将原始样品进一步细分(例如如果由多种不同化合物组成)，从而减少每个样品中的不同物质数，并以原始样品的细分重复该方法。取决于样品的复杂度，上述步骤可以重复若干次，优选直至根据所述方法鉴定的样品仅含有数目有限的物质或仅含一种物质。优选地，所述样品含有具有相似化学和/或物理特性的物质，最优选地，所述物质是相同的。优选地，将根据上述方法鉴定的化合物或其衍生物进一步配制成适于在植物育种或植物细胞和组织培养中应用的形式。可根据所述方法测试和鉴定的化合物可以是表达文库(例如cDNA表达文库)、肽、蛋白质、核酸、抗体、小有机化合物、激素、拟肽、PNA等(Milner，NatureMedicine1，879(1995);H叩p，Cell83，237(1995);Gibbs，Cell79，193(1994)，及上文引用的参考文献)。所述化合物也可以是已知抑制剂或激活剂的功能衍生物或类似物。用于制备化学衍生物和类似丄/_/i丄，丄、,—J-At，i:丄上1;iSt:己.i#JjJ>、丄'T_AOI..ti■，，，rW日M&刀个々贝3X^又个八贝尸/|，T3田A丁VJ^口Deusiein，nanaoooKolOrganicChemistry,Springer,NewYorkInc.,175FifthAvenue,NewYork，N.Y.10010U.S.A.以及OrganicSynthesis,Wiley,NewYork,USA。jt匕夕卜，可根据本领域已知的方法测试所述衍生物和类似物的效果。此外，可以使用拟肽和/或计算机辅助设计合适的衍生物或类似物，例如根据上文所述的方法。该方法中可使用的细胞或组织为上文实施方案中所述的本发明宿主细月包、4直物细力包或纟直物纟且织。因此，在另一实施方案中，本发明涉及可根据用于鉴定本发明激动剂的方法获得或鉴定的化合物，所述化合物是本发明多肽的拮抗剂。或者，在一个实施方案中，本发明还涉及通过用于鉴定本发明化合物的方法鉴定的化合物。在一个实施方案中，本发明涉及特异性识别本发明化合物或激动剂的抗体。本发明还涉及诊断组合物，其包含至少一种上述本发明核酸分子、反义核酸分子、RNAi、snRNA、dsRNA、siRNA、miRNA、ta画siRNA、共抑制分子、核酶、载体、蛋白质、抗体或化合物，并任选地包含合适的检测手段。本发明的诊断组合物适用于从细胞中分离mRNA，并在杂交条件下使这样获得的mRNA接触包含上述核酸探针的探针，检测与该探针杂交的mRNA的存在情况，从而检测细胞中该蛋白质的表达。检测本发明蛋白质存在与否的其他方法包括本领域熟知的免疫技术，例如酶联免疫吸附测定。此外，可以在植物育种中使用本发明的核酸分子作为分子标记或引物。合适的检测方法为本领域技术人员所熟知，例如，描述于Sambrook等的用于杂交测定的緩沖液和溶液(例如上述溶液和緩沖液)以及用于Southern、Western、Northern等印迹的方法是已知的。在一个实施方案中，诊断组合物含有PCR引物，其设计成特异性检测待在本发明方法中降低的核酸分子(例如本发明的核酸分子)的存在或表达水平，或者设计成区分本发明核酸分子的不同变体或等位基因或者待在本发明方法中降低其活性的变体或等位基因在另一实施方案中，本发明涉及试剂盒，其包含核酸分子、载体、宿主细胞、多肽或反义、RNAi、snRNA、dsRNA、siRNA、miRNA、ta-siRNA、共抑制分子或核酶分子或病毒核酸分子、抗体、植物细胞、植物或植物組织、可收获部分、繁殖材料和/或根据本发明方法鉴定的化合物和/或激动剂。本发明试剂盒中的化合物可包装在容器(例如小瓶)中，任选地与緩冲液和/或溶液一起或者在緩沖液和/或溶液中。如果合适，所述组分的一种或多种可以包装在一个和相同的容器中。作为补充或替代，可将一种或多种所述组分吸附至固相支持体，例如硝酸纤维素滤膜、玻璃板、芯片或尼龙膜或其微量滴定板的孔。该试剂盒可用于任何本文所述方法和实施方案，例如用于产生宿主细胞、转基因植物、药物组合物；检测同源序列；鉴定拮抗剂或激动剂；作为食品或饲料或其补充剂；或者作为处理植物的补充剂等。此外，该试剂盒可包含将该试剂盒用于任何所述实施方案的说明书。在一个实施方案中，所述试剂盒还包含编码一种或多种所述蛋白质的核酸分子，和/或抗体、栽体、宿主细胞、反义核酸、植物细胞或植物组织或植物。在另一实施方案中，所述试剂盒包含用于检测和区分待在本发明方法中降低的核酸分子(例如本发明核酸分子)的PCR引物。在另一实施方案中，本发明涉及用于产生农用组合物的方法，所述农用组合物提供用于本发明方法的核酸分子，本发明的核酸分子，本发明的栽体，本发明的反义、RNAi、snRNA、dsRNA、siRNA、miRNA、ta-siRNA、共抑制分子、核酶或抗体，本发明的病毒核酸分子或本发明的多肽；或者包含用于鉴定所述化合物或激动剂的本发明方法的步骤；以及制备本发明的核酸分子、载体或多肽；或者根据本发明方法鉴定或可用于本发明主题的激动剂或化合物，它们均为可用作植物农用组合物的形式。在另一实施方案中，本发明涉及用于产生植物培养组合物的方法，其包括本发明方法的步骤，以及将所鉴定的化合物制备成可用作农用组合物的形式。"可用作农用组合物"应理解为这样的组合物符合规定杀真菌剂、；tt物养分、除草剂等含量的法律。优选地，这样的组合物对所保护的植物和所喂饲的动物(包括人)无任何害处。在本申请中，参考了多篇出版物。这些出版物以及这些出版物中引用的参考文献的公开内容作为参考整体并入本文，以更完整地描述本发明所属领域的现状。应该理解，上文涉及本发明的一些优选实施方案，可对其进行大量改变和更改，而不偏离本发明的范围。还通过以下实施例展示本发明，它们不应理解为以任何方式进行限制。相反，应该清楚地理解，本领域技术人员在阅读本说明书后能提出多种其他实施方案、其修改和等同方案，而不偏离本发明的构思和/或权利要求的范围。参考实施例更详细地描述本发明一般性方法除非另外指明，否则所有化学物质均来自Fluka(Buchs)、Merck(Darmstadt)、Roth(Karlsruhe)、Serva(Heidelberg)和Sigma(Deisenhofen)。限制性酶、DNA修饰酶和分子生物学试剂盒来自Amersham-Pharmacia(Freiburg)、Biometra(Giittingen)、Roche(Mannheim)、NewEnglandBiolabs(Schwalbach)、Novagen(Madison、Wisconsin、USA)、PerkinElmer(Weiterstadt)、Qiagen(Hilden)、Stratagen(Amsterdam,Netherlands)、Invitrogen(Karlsruhe)和Ambion(Cambridgeshire,UnitedKingdom)。试剂根据生产商的说明使用。例如，可以使用亚磷酰胺法，以已知方式化学合成寡核苷酸(Voet，Voet，第二版，WileyPressNewYork,896-897页)。为本发明目的进行的克隆步骤(例如限制性切割、琼脂糖凝胶电泳、DNA片段纯化、将核酸转移至纤维素和尼龙膜、连接DNA片段、转化大肠杆菌细胞、细菌培养、噬菌体增殖和重组DNA的序列分析)如Sambrook等(1989)ColdSpringHarborLaboratoryPress;ISBN0-87969-309-6所述进行。按照Sanger(Sanger等(1977)ProcNatlAcadSciUSA74:5463-5467)的方法，使用ABI激光荧光I)NA测序4义对重组DNA分子进4亍测序。植物培养根据Scheible等(2004)进行拟南芥苗培养。对拟南芥种子(100-120个)进行表面灭菌，并在完全黑暗下在5。C吸胀3天。转移种子并在30ml培养基中，在定轨摇床上以恒定均匀的荧光(瓶中的光子通量密度约为50pmol*m—2*s")和恒定的温度(22。C)无菌液体培养基中培养(250mlErlenmeyer玻璃瓶)。无菌全营养培养基含有2mMKN03，1mMNH4N03,1mMGln，3mMKH2P04/K2HP04pH5.8,4mMCaCl2，1mMMgS04，2mMK2S04，3mM2-[N-吗啉代乙磺酸(MES)pH5.8(KOH)，0.5%(Wv)蔗糖，50mgl1卡那霉素，40pMNa2FeEDTA,60pMH3B03，14MnS04，1,ZnS04，0.6CuS04，0.4NiCl2，0,3|iiMHMo04，20nMCoCl2。摇床速度在前3天为低速(30rpm)，然后提高至80rpm。7天后通过在液氮中速冻来收获苗。如下在土壤中培养拟南芥植物将种子表面灭菌，并在含有1/2浓度Murashige和Skoog盐(孩i量元素和大量元素，包括维生素)、0.25mM2-lN-吗啉代I乙碌酸(MES)pH5.8(KOH)、50mg*1"卡那霉素、0.5%(w/v)蔗糖和0.8%(w/v)琼脂的培养基上无菌培养。将种子在完全黑暗中在5。C吸胀3天，并以12小时光周期(光子通量密度150pmol*nT2*s"，22。C光照，18。C黑暗)培养。两周后，将植物转移至6cm直径盆中的土壤里。对于充分营养条件，在盆中装入GS90土(组成泥炭、粘土、椰子纤维、2g/l盐、160mg/lN、190mg/lP2O5、230mg/1K20，pH6,由WernerTantauGmbH&Co.KG，Germany提供)与蛭石(GebriiderPatzer，Germany)的2:1(v/v)混合物，并在短日照条件(8小时光照，16小时黑暗)下以145pmol*m—2*s—1的光密度、60%的相对湿度、20。C(白天)和18。C(晚上)的温度下进行培养。对于有限养分条件，将GS卯土替换为GS90土与"Null-soil"(组成泥炭、粘土、椰子纤维、0.8g/l盐、50mg/1N、80mg/1P2O5、80mg/1K20,pH6,由WernerTantauGmbH&Co.KG供应)的1:10(v/v)混合物。在与充分营养条件相同的条件下培养植物。对于表达分析以及种子产生和分析，将在高氮条件下在长日照(16小时光照，8小时黑暗)下以145|Lunol*m—2*s_1的光密度和80%的相对湿度在20°C(白天)和18°C(夜晚，50%相对湿度)的温度下培养植物。与拟南芥苗培养相同地进行烟草苗的培养，但在8天后收获苗，并使用不同类型的营养液。烟草全营养培养基含有Murashige和Skoog盐(微量元素及大量元素，包括维生素)、0.25mM2-[N-吗啉代j乙磺酸(MES)pH5.8(KOH)、50mgM"卡那霉素、0.5%(w/v)蔗糖。如下进行烟草植物培养将种子表面灭菌，并在含有Murashige和Skoog盐(微量元素和大量元素，包括维生素)、0.25mM2-[N-吗啉代乙磺酸(MES)pH5.8(KOH)、50mg*r1卡那霉素、0.5%(w/v)蔗糖和0.8V。(w/v)琼脂的培养基上无菌培养。将种子在完全黑暗中在5'C吸胀3天，并以12小时光周期(光子通量密度150pmol*nT2*s"，22。C)培养。四周后，将植物转移至16小时光周期(光子通量密度200inmol*nT2*s"，25。C(光照)和20。C(黑暗)、60%相对湿度)温室中的20cm直径盆中的土壤里，盆中装有GS90土与沙子的2:1(v/v)混合物。通过每天向每个盆中滴加100-250ml富肥料水(Hakaphosspezial(16%N，8%P，22%K，3%Mg)，浓度为1g*l")对植物进行连续浇水。或者在组织培养四周后将植物转移至12小时光周期(光子通量密度350pmol*m2*s"，23。C(光照)和20。C(黑暗)、60。/。相对湿度)温室中的16cm直径盆中的石英砂上(0.3-0.8与0.6-1.2mm大小颗粒的1:1混合物，Dorsolit)。每天在光照约3小时后对盆浇水，向盆中加入营养液并允许其渗出，留下沙粒之间存留的液体(田间持水量)。营养液含有4mMKN03，4mMMg(N03)2，3mMKH2P04/K2HP04pH5.8，2mMMgS04,1mMNaCl，40一Na2FeEDTA，90,H3B03，20,MnS04，1.5juMZnS04，0.9CuS04，0.6juMNiCl2，0.45juMHMo04，30nMCoCl2。克隆操作和质粒构建使用标准方法培养大肠杆菌菌林XL-1Blue和含有pGV2260的根癌农杆菌菌株C5SCl(Sambrock和Russel，2001)。使用标准方法，用测序引物AgPRSv(GGATCCAATATGTCGTCCAAT)和AgPRSh(GGATCCTACATGACAGCG)从质粒pJRAgprs1486中扩增野生型PRS，并从p,IRAgprsl404(突变体)中扩增突变体PRS。根据供应商提供的方案亚克隆进pCRScript(Stratagene)中。通过序列分析来验证克隆。将编码全长蛋白的965bpBamHI片段克隆进经BamHI限制性处理的双元载体pBinAR(H6fgen和Willmitzer，1990)。通过Sail消化以及寸吏用引物35Shv(TATAGAGGAAGGGTCTTGCG)和AgPRSh进行的PCR分析来检查有义方向的插入。最后通过序列分析来验证确定用于转化植物的质粒。植物转化和表达分析农杆菌介导的基因转移对于烟草植物像Rosahl等(1989)那样进行，对于拟南芥则像Bent和Ciough(1998)那样进行。使用全长野生型PRS作为探针，像Giermann等那样(2002)通过Northern杂交来分析转基因的表达。代谢物分析使用球磨机在液氮中将冷冻的植物材料磨碎。像chr6der等2005那样提取并测量碳水化合物、氨基酸和核苷酸。根据Bligh和Dyer(1959)的方法提取脂肪酸，使用十五烷酸作为内标，通过脂肪酸甲酯的GC来测量含月旨量(Benning和Somerville，1992)。酶活性使用球磨机在液氮中将冷冻的植物材料磨成粉末。通过以500至1000提取緩冲液剧烈涡旋来提取10至20mg鲜重的等分试样。提取緩冲液的组成为50mMKH2P04/K2HP04pH7.5、10%(Wv)甘油、0.1%(v/v)TritonX-IOO、5mMMgCl2、1mMEDTA、1mMEGTA、1mM苯甲基磺酰氟和5mMDTT。在4。C下将提取物以16,000*g离心10分钟。通过将10pl酶提取物上清液与100至200pi测量緩沖液(KH2P04/K2HP04pH7.5,5mMMgCl2，3.75mM核糖-5-磷酸，2mMATP，3.75mM磷酸烯醇式丙酮酸，0.2mMNADH，1.5U肌激酶，3U丙酮酸、激酶，1.5U乳酸脱氬酶)混合而在微孔板中进行测量。使用染料结合测定法来测定上清液中的可溶蛋白含量(Bradford，1976)。实施例1:为了将野生型PRS基因(PRS)和突变体PRS基因(PRSM;Leul33Ile，Hisl96Glu)从棉阿舒嚢霉克隆进植物表达载体中，将全长cDNA序列用于以寡核苷酸引物AgPRSv和AgPRSh进行的PCR反应中。序列引物AgPRSv:5'-5，-GGATCCAATATGTCGTCCAAT-3，(SEQIDNO5)序列引物AgPRSh:5画5，國GGATCCTACATGACAGCG-3，(SEQIDNO6)PCR反应物的組成(50pi):5.0010ng质粒DNA5.00pi10x緩沖液(Pfu聚合酶)5.00pi2mMdNTP1.25pi每种引物(IOpmol/jiL)0.50piPfu聚合酶。所用的Pfu聚合酶来自Stratagene。PCR程序95。C初始变性2分钟，接着是95。C45秒、55°C45秒和72°C2分钟的35个循环。最后在72。C延伸5分钟。根据生产商的说明，将PCR产物克隆进pCRScript(Stratagene),产生载体pCR-PRS和pCR-PRPM，并通过测序来验证序列。向农杆菌转化载体pBIN中的克隆包括将0.5jig载体pCR-PRS和pCR-PRSM与限制性酶BamHI(NewEnglandBiolabs)孵育2小时并通过凝胶电泳分离DNA片段。从凝胶上切下PRS序列相应的971bp片段，根据生产商的说明用来自Qiagen的"凝胶纯化"试剂盒进行纯化，并用50^1洗脱緩冲液洗脱。首先用限制性酶BamHI将0.1jig载体pBIN19消化1小时，接着使用凝胶电泳进行分离，根据生产商的说明用来自Qiagen的"凝胶纯化"试剂盒进行纯化，并用50nl洗脱緩冲液洗脱。接着将相应的DNA片段克隆进双元载体pBIN中35S终止子和核酮糖二磷酸羧化酶小亚基的质体信号序列之后。接着在每种情况下将10jilPRS片段的洗脱液与10ng经处理的pBIN19载体在16。C下连接过夜(T4连接酶，NewEnglandBiolabs)。接着根据生产商的说明将连接产物转化进TOP10细胞(Stratagene)并适当地进行选择，产生载体pBIN-PRS和pBIN-PRSM。通过测序和使用引物AgPRSv和AgPRSh进行的PCR来验证阳性克隆。实施例2:用于转化植物的质粒可以使用双元载体如pBIN19来转化植物(H6fgen和Willmitzer(1990)PlantScience66:221-230)。可以通过将cDNA以有义和反义方向连接进T-DNA中来构建双元载体。cDNA5，的植物启动子激活该cDNA转录。多腺苷酸化序列位于cDNA的3，。可以使用组织特异性启动子来实现组织特异性表达。例如，可通过将油菜籽蛋白或LeB4或USP启动子克隆进cDNA的5，来实现种子特异性表达。还可以使用任何其他种子特异性启动子元件。CaMV35S启动子可用于在整个植物中实现组成型表达。基因产物(蛋白质)的亚细胞定位由蛋白质序列末端或内部的多种氨基酸序列基序来决定。因此，例如，通过将PRS基因序列克隆到编码质体信号序列的核酮糖1，5-二磷酸羧化酶大亚基的5'区域之后来实现PRS合酶的质体定位。双元载体的另一实例是载体pSUN-USP和pGPTV-油菜籽蛋白。载体pSUN-USP含有USP启动子和OCS终止子。载体pGPTV-油菜籽蛋白含有油菜籽蛋白启动子的截短形式以及NOS终止子。将实施例1的片段克隆进栽体pBIN19中35S启动子和核酮糖1，5-二磷酸羧化酶质体信号肽序列之后的多克隆位点中，以使得可能进行种子特异性表达PRS基因和基因产物的质体定位。实施例3:转化农杆菌农杆菌介导的植物转化可例如通过根癌农杆菌菌林GV3101(pMP90)(Koncz和Schell(1986)MolGenGenet204:383-396)或LBA4404(Clontech)来进行。可使用标准转化技术来进行转化(Deblaere等(1984)NuclAcidsRes13:4777-4788)。实施例4:转化植物可以使用标准转化和再生技术来实现农杆菌介导的植物转化(Gelvin,StantonB.，Schilperoort，RobertA.,PlantMolecularBiologyManual,第二版,Dordrecht:KluwerAcademicPubl"1995，inSect"RingbuchZentraleSignatur:BTll画PISBN0画7923画2731-4;Glick，BernardR.，Thompson,JohnE.，MethodsinPlantMolecularBiologyandBiotechnology,BocaRaton:CRCPress,1993，360页，ISBN0-8493-5164-2)。通过Bechthold等，1993(C.R.Acad.Sci.Ser.IllSci.Vie"316,1194-1199)的方法通过农杆菌来转化拟南芥。例如，可通过子叶或下胚轴转化来转化油菜(Moloney等(1989)PlantCellReport8:238画242;DeBlock等(1989)PlantPhysiol91:694-701)。用于农杆菌和植物选择的抗生素的使用取决于用于转化的双元载体和农杆菌菌林。一般使用卡那霉素作为植物选择标记来进行油菜籽的选择。可使用如Mlynarova等，(1994)PlantCellReport13:282-285所述技术通过农杆菌介导基因转移进亚麻中。此外，可以使用如EP-A-00424047(PioneerHi-BredInternational)或EP-A-00397687、US5，376，543、US5，169，770(UniversityofToledo)所述的技术来转化大豆。使用微粒轰击、聚乙二醇介导的DNA摄取或通过碳化硅纤维技术进4亍的才直物转4匕描述于例如Freding和Walbot"TheMaizeHandbook"(1993)ISBN3-540-97826-7，SpringerVerlagNewYork)。实施例5:研究重组基因产物在转化生物中的表达用于测定基因转录水平(代表可用于翻译基因产物的RNA量)的合适方法是如下文所述进行Northern印迹(参阅如Ausubel等(1988)CurrentProtocolsinMolecularBiology,Wiley:NewYork,或以上实施例部分)，其中将设计成与目的基因结合的引物用可检测标记(通常为放射性标记或化学发光标记)进行标记，从而在生物培养物的总RNA被提取、在凝胶上分离、转移至稳定基质并与此探针孵育后，该探针的结合和结合程度指示该基因mRNA的存在和量。该信息表明了转化基因的转录程度。可以使用多种方法从细胞、组织或器官中制备细胞总RNA，这些方法都是本领域技术人员已知的，例如Bormann，E.R.,等(1992)Mol.Microbiol.6:317-326的方法。Northern杂交为进行RNA杂交，使用甲醛并按照Amasino(1986，Anal.Biochem.152，304)所述方法，在1.25%浓度琼脂糖凝胶中通过凝胶电泳分离20ng总RNA或1ngpoIy(A)十RNA，使用10xSSC通过毛细作用力转移至带正电的尼龙膜(HybondN+,Amersham，Brunswick),通过UV光固定并^f吏用杂交緩冲液(10%硫酸葡聚糖w/v,1MNaCl，1%SDS，100mg鲜精DNA)在68。C下预杂交3小时。在预杂交步骤中使用a-"P-dCTP用HighprimeDNA标记试剂盒(Roche，Mannheim,Germany)来标记DNA探针。在相同緩冲液中加入经标记的DNA探针后在68。C进行杂交过夜。在68。C下，使用2xSSC将洗涤步骤以15分钟进行两次，并用lxSSC、1%SDS以30分钟进行两次。将密封的滤膜在-7(TC下曝光1至14天。为了研究由此mRNA翻译的蛋白质的存在和相对量，可以使用标准技术，如Western印迹(参阅如Ausubel等(1988)CurrentProtocolsinMolecularBiology，Wiley:NewYork)。在此方法中，提取细胞总蛋白，通过凝胶电泳分离，转移至基质(如硝酸纤维素)并与探针(如特异性结合期望蛋白的抗体)孵育。这种探针一般具有可容易地进行检测的化学发光或比色标记。所观察到的标记存在情况和量表明了细胞中存在的期望突变蛋白的存在情况和量。实施例6:分析重组蛋白对期望产物之产生的影响遗传修饰在植物、真菌、藻类、纤毛虫的影响或者对期望化合物(如脂肪酸)产生的影响可通过以下来测定在合适的条件下(如上文所述)培养修饰的微生物或修饰的植物，并对培养基和/或细胞组分检查期望产物(即，146脂类或脂肪酸)生产的提高。这些分析技术为本领域技术人员已知，包括光谱法、薄层层析、多种染色方法、酶和微生物方法以及分析型层析，例如高效液相层才斤(参阅如Ullmann，EncyclopediaofIndustrialChemistry,vol.A2，89-90页和443-613页，VCH:Weinheim(1985);FallonA等(1987)"ApplicationsofHPLCinBiochemistry"in:LaboratoryTechniquesinBiochemistryandMolecularBiology,vol.17;Rehm等(1993)Biotechnology,vol.3,chapterIII:"Productrecoveryandpurification",469-714页，VCH:Weinheim;BelterPA等(1988)Bioseparations:downstreamprocessingforBiotechnology,JohnWileyandSons;Kennedy丄F.和CabralJ.M.S.(1992)RecoveryprocessesforbiologicalMaterials,JohnWileyandSons;ShaehvkzJ.A.和HenryJ.D.(1988)BiochemicalSeparations,Ullmann，sEncyclopediaofIndustrialChemistry,vol.B3;chapter11，1画27页，VCH:Weinheim;以及Dechow，F.J.(1989)Separationandpurificationtechniquesinbiotechnology,NoyesPublications)。除了上述方法以夕卜，如Cahoon等(1999)Proc.Natl.Acad.Sci.USA96(22):12935-12940和Browse等(1986)AnalyticBiochemistry152:141145所述从植物材料中提取植物脂类。定性和定量的脂类或脂肪酸分析描述于Christie,WilliamW.，AdvancesinLipidMethodology,Ayr/Scotland:OilyPress(OilyPressLipidLibrary;2);Christie,WilliamW.，GasChromatographyandLipids.APracticalGuide-Ayr,Scotland:OilyPress,1989，Repr.1992，IX,307pp.(OilyPressLipidLibrary;1);"ProgressinLipidResearch,Oxford:PergamonPress,1(1952)-16(1977)题目为ProgressintheChemistryofFatsandOtherLipidsCODEN。除了测量发酵的终产物以外，还可以分析用于产生期望化合物的代谢途径中的其他组分，例如中间产物和次级产物，以测定化合物产生的总体效率。分析方法包括测量培养基中的养分量(例如糖、碳水化合物、氮源、磷酸盐和其他离子)，测量生物量的组成和生长，分析生物合成途径中常规代谢物的产生，以及测量发酵中产生的气体。用于这些测量的标准方法描述于AppliedMicrobialPhysiology;APracticalApproach,P.M.Rhodes以及P.F.Stanbury编辑，IRLPress,103-129;131-163和165-192页(ISBN:0199635773)及其引用的参考文献。一个实例是脂肪酸分析(缩写FAME,脂肪酸甲酯；GC-MS，气-液层析/质谱法；TAG,三酰甘油；TLC，薄层层析)。可以通过分析型标准方法GC、GC-MS或TLC，通过分析重组生物来获得脂肪酸产物存在的模糊证据，如广泛描述于Christie及其引用的参考文献(1997，AdvancesonLipidMethodology,第四版Christie,OilyPress,Dundee,119-169;1998，Gaschromatographie-Massenspektrometrie画Verfahren[气相层析/质语法I，Lipide33:343-353)。可以通过超声处理、在玻璃研磨机中研磨、液氮和碾磨或其他可用方法来破碎待分析的材料。破碎后，材料必须离心。将沉淀重悬于蒸馏水，在100。C加热10分钟，在水上冷却并再次离心，其后以甲醇中的0.5MA乾酸(含有2%二曱氧基丙烷)在90。C提取1小时，得到水解的油和脂类化合物，其产生转曱基脂类。在石油醚中提取这些脂肪酸甲酯，最后使用毛细柱(Chrompack，WCOTFusedSilica,CP-Wax-52CB，25mm,0.32mm)在必须使用可从商业来源(即Sigma)获得的标准品来定义所得脂肪酸甲酯的身份。使用以下方案对转化有PRS基因的拟南芥植物进行定量油分析通过Bligh&Dyer(1959)CanJBiochemPhysiol37:911的方法从种子中提取脂类。为此，数出10个拟南芥种子到1.2mlQiagen微型管中(Qiagen，Hilden)。接着在来自Retsch(Haan)的MM300Retsch研磨机中将种子材料匀浆用于以500pi氯仿/曱醇(2:1;含有来自Sigma的单C17-甘油作为内标)进行提取，并在室温下孵育20分钟。在添加500pi50mM磷酸钾緩沖液pH7.5后进行相分离。将有机相浓缩至干，为了脂肪酸的转曱基作用，加入2ml硫酸甲醇(lN)和2。/。(v/v)二甲氧基丙烷，并将混合物在80。C孵育30分钟。接着向冷却的样品中加入2x2ml己烷，涡旋样品。在新试管中合并目的上层有才几相，并用2ml100mM多友酸氩钠溶液和2ml蒸馏水纯化一次。在氩气中将所得上层有机相浓缩至干，将以此方式获得的脂肪酸甲酯溶于确定体积的己烷中。最后在毛细柱(Chrompack，WCOTFusedSilica,CP-Wax画52CB，25m,0.32mm)上通过气相层析(HP6890，AgilentTechnologies)分离2|til脂肪酸甲酯，并使用火焰电离检测器进行分析。通过将所衍生脂肪酸的信号强度与内标的进行比较来对油进行定量。接着通过总脂肪酸与种子重量或种子的关系来确定各自的含油量。图1以示例性方式显示了对分别转化有表达构建体pBIN19-PRSM和pBIN-PRS的4个独立转基因拟南芥林系(Mp2、Mpl2、Mpl4和Mpl5,也称为Ppll、Ppl3、Ppl5和Ppl9)的T3种子的含油量进4亍定量测定(基于种子重量)。还列出了对照植物V72和V75的种子重量。从每个林系中使用3林植物，在每个情况下使用10个种子进行3次独立的提取，并独立测量提取物。对这三次独立测量计算平均值和标准差。基于种子重量，两个对照植物V7-2和V7-5的含脂量分别为21和23%。转化有构建体pBIN-PRS并表达野生型PRS序列的林系Pp中的含脂量为28至33%。这对应于转基因林系中含油量提高28至52%。转化有构建体pBIN-PRSM并表达PRS突变序列的Mp林系中的含脂量为38至50%。这对应于该转基因林系中含油量提高75至132%。图2以示例性方式显示了对分别转化有表达构建体pBIN19-PRSM和pBIN-PRS的4个独立转基因拟南芥林系(Mp2、Mpl2、Mpl4和Mp15,也称为Ppll、Ppl3、Ppl5和Ppl9)的T3种子的含油量进行定量测定(基于种子)。还列出了对照植物V72和V75的种子重量。在两个对照植物V7-2和V7-5中，液体含量(基于种子)分别为3.5和4.1pg。转化有构建体pBIN-PRS并表达野生型PRS序列的林系Pp中的含脂量为4.6至5.2照。这对应于转基因林系中含油量提高20至38%。转化有构建体pBIN-PRSM并表达PRS突变序列的Mp林系中的含脂量为5.7至6.6ng。这对应于该转基因林系中含油量提高50至74%。结果清楚地显示，磷酸核糖焦磷酸合酶的过表达导致含油量显著提高。通过过表达不再受到ADP别构抑制的突变磷酸核糖焦磷酸合酶实现了进一步提高。实施例7:测定种子重量为了测定种子重量，从每个转基因抹系或对照抹系的各3林植物中收集3x100个种子，并计算结果的平均值。图3显示了测定分别转化有表达构建体pBIN19-PRSM和pBIN-PRS的转基因才朱系Mp2、Mpl2、Mpl4和Mpl5和转基因林系Ppll、Ppl3、Ppl5和Ppl9的T3种子重量的结果。还列出了对照植物V72和V75的种子重量。实施例8:拟南芥苗的生长分析为了分析拟南芥苗的生长，在恒定光照(150]LiE)下将T4苗在液体培养基(2mMKN03,1mMNH4N03，3mMK2HP04，4mMCaCl2,1mMMgS04,2mMK2S04，3mMMES，微量元素，0.5蔗糖，1mM谷氨酰胺，10mg/l卡那霉素)中培养8天。接着通过称重来测定鲜重。总共分析对照植物及4种转基因株系(过表达野生型及无质体靶向的突变PRS)中每一种的各3个培养物与各ioo个苗。图4显示了生长分析的结果。生长培养8天后，对照苗的平均鲜重为2.5mg。相反，转基因植物的鲜重分别为2.8mg(PRS)和3.6mg(PRSM)。这分别对应于为12。/。(PRS)和41%的鲜重提高。实施例9:产生和选择表达棉阿舒嚢霉磷酸核糖焦磷酸合酶基因(PRS)的转基因植物使用真菌来源的两种不同PRS基因在植物中进行表达。一种编码棉阿舒嚢霉ATCC10895(AGR371Cp)的野生型PRSI类活性，另一种代表突变体形式。突变体变体带有三个点突变，导致亮氨酸133改变成异亮氨酸，组氨酸196改变成谷氨酰胺。因此，这一棉阿舒嚢霉PRS蛋白的突变体形式类似于PRSII类活性蛋白。选择棉阿舒嚢霉PRS基因是因为可以获得与植物基因高度异源的两种变体基因。用于转化烟草或拟南芥植物的所有构建体均使用双元载体pBinAR(H6fgen和Willmitzer,1990)来制备，它是pBinl9载体的衍生物，含有用于靶基因组成型表达的花椰菜花叶病毒35S启动子和章鱼碱合酶多聚腺苷酸化信号。在含有50mg*1"卡那霉素的选择培养基上培养原代转化体(T1)。将卡那霉素抗性小植物转移至土壤并在标准培养条件下在培养室中培养。就每次转化而言，再生约30林在选择过程中存活的植物并进一步进行分析。在转移后3至5周在这些植物的叶中分析转基因表达(图5)。收集种子，再在培养基上培养T2后代。当约四分之一的后代无法在选择过程中存活时选择T2代的抗性植物。将这些植物在土壤中转移至培养室中，并在最佳条件下进一步培养并收获种子(T3)。再将T3种子置于选择板上，以鉴定所有植物均为卡那霉素抗性并可认为对至少一个T-DNA功能性插入是纯合子的种子组。所有实验均使用通过此选择过程的T3或T4代种子来进行。每个实验选择来源于不同个体原代转化体的的3至4个林系。所有实验均与在转化空载体后通过相同选择标准的对照植物一起进行。图5:棉阿舒嚢霉PRS基因在拟南芥和烟草转化体的叶中的表达。在选择培养基上培养植物，将抗性小植物转移至土壤中并在标准培养条件下培养。在转移3至5周后4吏用编码PRS的全长cDNA作为杂交4笨针来分析这些植物的叶中稳态PRSmRNA水平。AtP:以表达棉阿舒嚢霉野生型PRS基因的构建体转化的拟南芥;NtP:以表达棉阿舒囊霉野生型PRS基因的构建体转化的烟草；AtM:以表达棉阿舒嚢霉突变体形式PRS基因的构建体转化的拟南芥；NtM:以表达棉阿舒嚢霉突变体形式PRS基因的构建体转化的烟草；数字表示各个原代转化体的身份；星号表示进一步选择的抹系；C:以空载体转化的对照植物。实施例10:PRS表达导致可提取的PRS活性显著提高通过使用标准化的酶联分光光度测定法测定PRS活性而证实了PRS基因的表达导致酶活性提高。在拟南芥和烟草苗的可溶性蛋白提取物中测定总PRS活性，所述苗在各自生长培养基中培养7或8天后在液体培养基中培养(图6)。基于植物鲜重，以各自对照转化体的百分比来计算所有数据(烟草，2.17±0.31jiimol*min1*(g鲜重)'；拟南芥，2.83±0.14|Limol*miiT1*(g鲜重)-1。结果显示，野生型PRS基因的表达将PRS活性在拟南芥中显著提高1.2-1.4倍，在烟草中提高1.4-1.6倍。突变PRS基因的表达将PRS活性在拟南芥中提高1.3倍，在烟草中提高1.4倍。除了AtM-2以外，所有值均在所分析的各个种子批次之间显示强的差异，并且显著高于各自的对照转化体。图6:拟南芥和烟草苗中的PRS活性将植物在各自的生长培养基中在液体苗培养基中培养7或8天。以T4代植物进行实验。数值为来源于不同于个体原代转化体的3至4个林系的平均值士标准差。数据以各自对照转化体的百分比给出，烟草为2.17士0.31jiimol*min"*(g鲜重)-1，拟南芥为2.83±0.14|nmol*min1*(g鲜重)-1。使用非配对双尾t检验。以星号标出显著差异值(P<0.05)。(a)拟南芥的PRS活性。AtP:表达野生型PRS基因的拟南芥；AtM:表达突变体形式PRS基因的拟南芥；数字表示各个原代转化体的身份。(b)烟草的PRS活性。NtP:表达野生型PRS基因的烟草；NtM:表达突变体形式PRS基因的烟草；数字表示各个原代转化体的身份。实施例11:代谢物分析揭示了蔗糖含量与生物量累积之间的负相关性分析苗提取物的碳水化合物、核苷酸及氨基酸的含量和组成。代谢物水平总是基于鲜重(以分析浓度差异)和总苗重(以描迷生产力)二者来计算。可以发现个体糖水平的显著差异。己糖浓度在拟南芥或烟草苗中提高。由于在液体培养基中培养后具有额外PRS活性的苗的鲜重累积提高，因此在拟南芥或烟草苗中存在更高的总碳水化合物量(基于苗)(数据未显示)。细胞分裂和生长所需的其他重要前体是核苷酸和氨基酸。因此，测定拟南芥及烟草苗培养物中的这些中间体。仅显示了拟南芥苗的数据(图7)，因为仅在此品种中可观察到与PRS活性提高相关的显著改变，而多数烟草苗显示出可比较但不显著的倾向。核苷酸浓度分析显示，PRS活性提高的拟南芥苗中UDP-葡萄糖(图7a)和游离核苷酸(图7b)提高，但仅有一些UDP-葡萄糖的值与对照存在显著差异。此外，在一些拟南芥苗中，ATP/ADP比值显著提高(图7c)，而该比值在PRS活性提高的烟草苗中是下降的(数据未显示)。这些结果提示，总体核苷酸库的提高不是过表达PRS之植物生长速率提高的主要原因。总氨基酸浓度的分析显示了拟南芥苗的增加，其与PRS活性提高良好相关(图7d)，但仅有一些值与对照存在显著差异。更详细的氨基酸组成分析显示了拟南芥和烟草苗中相同的行为，但仅有一些来自拟南芥的结果导致显著改变。尽管氨基酸总量在所有PRS活性提高的苗中均提高，但次要氨基酸的比例降低了(图7e)。其他改变包括PRS活性提高的拟南芥苗中主要氨基酸丝氨酸和甘氨酸的提高(数据未显示)以及支链氨基酸(BCAA)比例的相关降低(图7f)。在这一点上，推测特定氨基酸种类相对于总氨基酸库之比例的改变是由于在各个氨基酸生物合成途径中的协同调控。图7:拟南芥苗的代谢物分析。如图2所述将植物在液体苗培养物中培养7天。数值以3至4次重复的平均值和标准误给出。使用非配对双尾t检验。以红色星号标记显著差异(P〈0.05)。进行线性相关性分析，并给出各自的相关系数。总核苷酸AMP，ADP，UDP，GDP，UTP，ATP和GTP。总氨基酸除脯氨酸和半胱氨酸以外的所有L-a-氨基酸，包括p-丙氨酸、，氨基丁酸、瓜氨酸和鸟氨酸。次要氨基酸精氨酸、组氨酸、异亮氨酸、亮氨酸、赖氨酸、曱硫氨酸、苯丙氨酸、色氨酸、酪氨酸和缬氨酸。BCAA:分支氨基酸异亮氨酸、亮氨酸和缬氨酸。(a)-(c)PRS活性与核苷酸累积之间的关系。灰色表达野生型PRS基因的拟南芥；黑色表达突变体形式的拟南芥；黑色方形空载体对照。(d)-(f)PRS活性与氨基酸累积之间的关系。灰色表达野生型PRS基因的拟南芥；黑色表达突变体形式的拟南芥；黑色方形空载体对照。实施例12:在不同的标准化培养条件下更高的生物量累积也是明显的PRS活性提高使在液体培养基中在优化条件下的拟南芥和烟草苗的生长提高(图8)。图8:PRS活性与鲜重累积之间的相关性。在图6所述的各个生长培养基中在液体苗培养中将植物培养7或8天。数值为来源于不同于个体原代转化体的3至4个抹系的平均值士标准误。数据以相应对照转化体的百分比给出，烟草为49.6±9.03mg*苗"，拟南芥为2.7±0.4811^*苗"。使用非配对双尾t检验。除AtP-9以外的所有鲜重值均与对照存在显著差异(P〈0.05)。进行线性相关性分析并给出各自的相关系数。(a)PRS活性与拟南芥鲜重累积之间的关系。灰色表达野生型PRS基因的拟南芥；黑色表达突变体形式的拟南芥；黑色方形空载体对照。(b)PRS活性与烟草鲜重累积之间的关系。灰色表达野生型PRS基因的拟南芥；黑色表达突变体形式的拟南芥；黑色方形空栽体对照。进行了进一步实验来研究在更自然且优化程度较低的条件下培养的拟南芥和烟草中是否也存在生长增强。在培养室中用两种不同营养方案在土壤上培养拟南芥植物，烟草植物在培养室中在中等光强度下以营养液灌溉的石英砂上培养，或者在温室里在低光强度的土壤中培养。拟南芥(图9)或烟草(图IO)中PRS基因的表达和突变体形式的表达导致所有测试的培养条件下的生长提高。在高和低营154养可用度下，表达PRS基因的拟南芥植物与各自对照相比显示出更大的花结直径(数据未显示)和更高的花结鲜重(图9)，而叶数未改变(数据未显示)。表达PRS基因的烟草植物还显示出基于鲜重和干重的生物量累积提高(图IO)和叶面积增加(数据未显示)。独立地分析了根和嫩枝的鲜重累积，但未发现根与嫩枝比值的显著改变(数据未显示)。这也表明了两种器官中生长平行地提高。在任何所分析的生长条件下，随机化的表达PRS基因的烟草植物均由于其植物高度提高而可容易地与对照转化体区分。总之，所有这些方法均显示，提高的PRS活性在多种生长条件下提高植物的生物量累积。图9拟南芥植物的生长分析。如所示在不同条件下培养植物。以T4代植物进行实验。数值为三个生物学重复(各6至12个样品)的平均值士标准误。使用非配对双尾t检验。以星号标出显著差异的值(P<0.05)。AtP:表达野生型PRS基因的拟南芥；AtM:表达突变体形式PRS基因的拟南芥；数字表示各个原代转化体的身份。(a)以充足营养培养的拟南芥植物的花结鲜重。在8小时日照145pE、20°C、60%相对湿度和16小时黑暗18。C的培养室中，在装有含高养分浓度之基质的6cm直径盆中培养植物。在转移至土壤5周后收获植物。(b)以有限营养培养的拟南芥植物的花结鲜重。将植物在与(a)植物相同的生长条件下平行培养，但基质混合物含有实验方法中所述的低养分浓度。在转移至土壤5周后收获植物。图10:烟草植物的生长分析。以T4代植物进行实验。数值为三个生物重复(各4个样品)的平均值士标准误。使用非配对双尾t检验。以星号标出显著差异的值(P<0.05)。NtP:表达野生型PRS基因的烟草；NtM:表达突变体形式PRS基因的烟草；数字表示各个原代转化体的身份。(a)鲜重提高。在12小时日照350pE(23。C)和12小时黑暗(20。C)和60%相对湿度的培养室中，在16cm直径盆中在石英砂培养基中培养植物，并每天以营养液灌溉。在转移至沙培养基后3和4周收获植物，从这些测量中计算每天的生长率。(b)如(a)中所述培养的烟草植物的干重提高。(c)烟草植物的高度。在16小时日照200pE(25。C)和8小时黑暗(20。C)和60%相对湿度的温室中，在装有土壤的20cm直径盆中培养植物。在转移至土壤上5周后测量植物。实施例13通过过表达磷酸核糖焦磷酸合酶来改造出具有提高的生物量生产的苜蓿植物使用现有方法(例如McKersie等，PlantPhysiol119，839(1999))转化苜蓿(Medicagosativa)的再生克隆。苜蓿的再生和转化是基因型依赖性的，因此需要再生植物。获得再生植物的方法已有描述。例如，它们可选自Rangelander栽培种(AgricultureCanada)或者BrownD.C.W，和AtanassovA.(PlantCellTissueOrganCulture4，111(1985))描述的任何商品苜蓿品种。或者，选择RA3品种(UniversityofWisconsin)用于组织培养(Walker等，Am.丄Bot.65，654(1978))。将叶柄外植体与含有双元载体的根癌农杆菌C58C1pMP90(McKersie等，PlantPhysiol119,839(1999))或LBA4404的过夜培养物共培养。已经描述了用于植物转化的许多不同的双元载体系统(例如AnG.，AgrobacteriumProtocols,MethodsinMolecularBiology,Vol44，47-62页，GartlandK.M.A.和DaveyM.R编辑.HumanaPress,Totowa，NewJersey)。许多都是基于Bevan(NucleicAcidResearch.12，8711(1984))所述的栽体pBIN19,其包括侧翼为根癌农杆菌Ti质粒的左边界和右边界序列的植物基因表达盒。植物基因表达盒由至少两个基因组成——选择标记基因和调节性状基因的cDNA或基因组DNA转录的植物启动子。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰雍酸合酶(AHAS)的拟南芥基因(美国专利5，7673，666和6,225,105)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因，以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，使用34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)来提供性状基因的组成型表达。在含有288mg/LPro、53mg/L硫代脯氨酸、4.35g/LK2S04和100Hm乙酰丁香酮的SH诱导培养基上在黑暗中将外植体共培养3天。以半强度的Murashige-Skoog培养基(Murashige和Skoog，1962)洗涤外植体，并平板接种到相同的SH诱导培养基上，但其中不含乙酰丁香酮，而是含有合适的选择剂和合适的抗生素以抑制农杆菌生长。几周后，将体细胞胚转移至无生长调节剂、无抗生素并含有50g/L蔗糖的BOi2Y发育培养基。其后使体细胞胚在半强度的Murashige-Skoog培养基上萌发。将生根的苗移植到盆中并在温室中培养。如上述产生Tl或T2代植物并分析。实施例14通过过表达磷酸核糖焦磷酸合酶来改造出具有提高的生物量生产的黑麦草植物。可将来自若干不同黑麦草品种的种子作为外植体来源用于转化，包括商品品种Gunne(可得自Sval6fWeibull种子公司)或者Affinity品种。将种子依次用1Q/QTween-20表面灭菌1分钟，以100%漂白剂表面灭菌60分钟，用去离子水和蒸馏水漂洗3次(每次5分钟)，接着在黑暗中在湿润的无菌滤纸上萌发3-4天。将苗再用V/。Tween-20灭菌l分钟，以75%漂白剂灭菌5分钟，并用双蒸水漂洗3次，每次5分钟。将经表面灭菌的种子置于含有Murashige和Skoog基础盐和维生素、20g/L蔗糖、150mg/L天冬酰胺、500mg/L酪蛋白水解物、3g/LPhytagd、10mg/LBAP和5mg/二氯甲氧苯酸的愈伤组织诱导培养基上。将平板在黑暗中以25。C孵育4天以进行种子萌发和胚胎发生愈伤組织诱导。在愈伤组织诱导培养基上4周后，剪去苗的嫩枝和根，将愈伤组织转移至新鲜培养基，再培养4周，接着转移至MSO培养基在光照下培养2周。将一些愈伤组织片(11-17周龄)通过10目筛并置于愈伤组织诱导培养基上，或者在250ml瓶中的100ml液体黑麦草愈伤組织诱导培养基(与用琼脂诱导愈伤组织的培养基相同)中培养。将瓶用箔裹住，并在黑暗中在23。C下以175rpm摇动1周。用40目筛将液体培养基过筛来收集细胞。将筛上收集的级分置于固体黑麦草愈伤组织诱导培养基并在黑暗中以25。C培养1周。接着将愈伤組织转移至含有1%蔗糖的MS培养基并培养2周。转化可通过农杆菌或微粒轰击法来实现。产生在pUC栽体中含有组成型植物启动子和基因cDNA的表达载体。使用Qiagen试剂盒，根据生产商的说明从大肠杆菌细胞中制备质粒DNA。将约2g胚胎发生愈伤组织涂在培养jDL中无菌滤纸的中心。在滤纸上添加含有10g/L蔗糖的液体MSO等分试样。根据Sanford等，1993的方法用质粒DNA包裹金微粒(大小为1.0pm)，并使用以下参数递送至胚胎发生愈伤组织每次轰击500pg凝:粒和2照DNA，1300psi，挡板到愈伤组织平板的距离为8.5cm,每个愈伤组织轰击1次。轰击后，将愈伤组织转移回新鲜的愈伤组织发育培养基中，并在室温下在黑暗中维持1周时间。接着将愈伤组织转移至25°C下光照的生长条件，以用合适的选择剂(例如250nMArsenal、5mg/LPPT或50mg/L卡那霉素)起始胚分化。出现了对选择剂有抗性的嫩枝，一旦枯萎就转移至土壤中。通过PCR分析原代转基因植物(TO)的样品，以证实T-DNA的存在。通过Southern杂交证实这些结果，其中将DNA在1%琼脂糖凝胶上电泳并转移至带正电的尼龙膜(RocheDiagnostics)。使用PCRDIGProbeSynthesisKit(RocheDiagnostics),通过PCR制备以洋地黄毒苷标记的神笨针，并如生产商的推荐来使用。通过剪下分蘖对转基因TO黑麦草植物进行无性繁殖。将移植的分蘖在温室中维持2个月，直至已良好建立。除下嫩枝并培养2周。如所述产生并分析Tl或T2代纟直物。实施例15通过过表达磷酸核糖焦磷酸合酶来改造出具有提高的生物量生产的大豆才±物根据对TexasA&M专利US5,164,310所述方法的以下j务改来转化大豆。一些商品大豆品种适于通过该方法进行转化。通常使用栽培种Jack(可得自IllinoisSeedFoundation)进行转化。通过将种子浸入70%(v/v)乙醇6分钟和补充有0.1%(Wv)Tween的25%商业漂白剂(NaOC1)20分钟而进行消毒，然后用无菌双蒸水漂洗4次。通过从每个苗上除去胚根、下胚轴和一个子叶来繁殖7日龄的苗。接着，将带有一个子叶的上胚轴转移至培养皿中新鲜的萌发培养基，并在16小时光周期(约100ftmol/m、)下以25。C孵育3周。从3-4周龄植物上剪下叶腋节(约4mm长)。切下叶腋节并在农杆菌LBA4404培养基中孵育。已经描述了用于植物转化的许多不同的双元载体系统(例如AnG,，AgrobacteriumProtocols.MethodsinMolecularBiologyVol.44，47-62页，GartlandK.M.A.和DaveyM.R.编辑.HumanaPress,Totowa，NewJersey)。许多都是基于Bevan(NucleicAcidResearch.12，8711(1984))所述的栽体pBIN19,其包括侧翼为根癌农杆菌Ti质粒的左边界和右边界序列的植物基因表达盒。植物基因表达盒由至少两个基因组成——选择标记基因和调节性状基因cDNA或基因组DNA转录的植物启动子。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的拟南芥基因(美国专利5,7673,666和6,225,105)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，可以用34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)来提供性状基因的组成型表达。共培养处理后，洗涤外植体并转移至补充有500mg/L泰门汀的选择培养基。剪下嫩枝并置于嫩枝延长培养基上。在移植至土壤之前，将长于1cm的嫩枝置于生根培养基上2至4周。通过PCR分析原代转基因植物(T0)，以证实T-DNA的存在。通过Southern杂交证实这些结果，其中将DNA在1%琼脂糖凝胶上电泳并转159移至带正电的尼龙膜(RocheDiagnostics)。使用PCRDIGProbeSynthesisKit(RocheDiagnostics),通过PCR制备以洋地黄毒苷标记的探针，并如生产商的推荐来使用。如上述产生并分析Tl或T2代植物。实施例16通过过表达磷酸核糖焦磷酸合酶来改造出具有提高的生物量产生的油菜籽/芸莒使用5-6日龄幼苗的子叶柄和下胚轴作为外植体用于组织培养并根据Babic等(PlantCellRep17，183(1998))转化。商品栽培种Westar(AgricultureCanada)是用于转化的标准品种，但也可使用其他品种。可使用含有双元载体的根癌农杆菌LBA4404用于芸苔转化。已经描述了用于^:物转化的^p多不同的双元载体系统(例如AnG.，AgrobacteriumProtocols.MethodsinMolecularBiologyVol.44，47-62页，GartlandK.M.A.和DaveyM.R.编辑.HumanaPress,Totowa，NewJersey)。许多都是基于Bevan(NucleicAcidResearch.12，8711(1984))所述的载体pBIN19,其包括侧翼为根癌农杆菌Ti质粒的左边界和右边界序列的植物基因表达盒。植物基因表达盒由至少两个基因组成——选择标记基因和调节性状基因cDNA或基因组DNA转录的植物启动子。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的拟南芥基因(美国专利5,7673,666和6,225,105)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，可以用34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)来提供性状基因的组成型表达。将芸苔种子在70%乙醇中表面灭菌2分钟，接着在含有一滴Tween-20的30%Clorox中表面灭菌10分钟，其后用无菌蒸馏水漂洗3次。接着将种子在含有1%蔗糖、0.7%Phytagar的无激素的半强度MS培养基上以23°C、16小时光照体外萌发5天。从体外苗上剪下附有子叶的子叶柄外植体，并通过将叶柄外植体的切口末端浸入细菌悬液中来接种农杆菌。接着将外植体在含有3mg/LBAP、3%蔗糖、0.7%Phytagar的MSBAP-3培养基上以23。C、16小时光照培养2天。与农杆菌共培养2天后，将叶柄外植体转移至含有3mg/LBAP、头孢噻肟、羧节青霉素或特美汀(300mg/L)的MSBAP-3培养基上7天，接着在含有头孢噢肟、羧千青霉素或泰门汀以及选择剂的MSBAP-3培养基上培养，直至再生出嫩枝。当嫩枝为5-10mm长时，将其剪下并转移至嫩枝延长培养基(MSBAP-0.5,含有0.5mg/LBAP)。将长度约2cm的嫩枝转移至生根培养基(MSO)用于4艮i秀导。通过PCR分析原代转基因植物(TO)的样品，以证实T-DNA的存在。通过Southern杂交证实这些结果，其中将DNA在1%琼脂糖凝胶上电泳并转移至带正电的尼龙膜(RocheDiagnostics)。使用PCRDIGProbeSynthesisKit(RocheDiagnostics),通过PCR制备以洋地黄毒脊标记的探针，并如生产商的推荐来使用。如上述产生并分析Tl或T2代植物。实施例17通过过表达磷酸核糖焦磷酸合酶来改造出具有提高的生物量产生的玉米植物使用对Ishida等(NatureBiotech14745(1996))所述方法的修改来进行玉米(ZeaMaysL.)转化。玉米中的转化是基因型依赖性的，仅有特定的基因型适于转化和再生。近交林系A188(UniversityofMinnesota)或以A188为亲本的杂种是转化供体材料的良好来源(Fromm等Biotech8，833(1990)),但也可成功地使用其他基因型。在授粉后约11天(DAP)从玉米植物上收获穗，这时未成熟胚的长度约为1至1.2mm。将未成熟胚与带有"超级二元，，载体的根癌农杆菌共培养，并通过器官发生获得转基因植物。95/06722。如所述构建载体。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的玉米基因(美国专利6,025,541)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因，以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，使用34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)来提供性状基因的组成型表达。将剪下的胚在愈伤组织诱导培养基上培养，接着在含有咪唑啉酮作为选择剂的玉米再生培养基上培养。将培一在光照下以25。C孵育2-3周，或者直至发育出嫩枝。将绿色的嫩枝从每个胚上转移至玉米生根培养基，并以25。C孵育2-3周，直至发育出根。将生根的嫩枝移植到温室中的土壤里。从显示咪唑啉酮除草剂耐性并对转基因为PCR阳性的植物产生Tl种子。接着根据实施例1所述方法对Tl转基因植物评价其增强的胁迫耐性(例如对低温的耐性)和/或提高的生物量产生。单基因座T-DNA插入的Tl代将以3:1的比例分离该转基因。含有1或2个转基因拷贝的后代对咪唑啉酮除草剂有耐性，并显示出与缺少该转基因的后代相比增强的胁迫耐性(如低温耐性)和/或提高的生物量产生。如上述产生并分析Tl或T2代植物。纯合T2植物显示相似的基因型。纯合转基因植物与非转基因植物的杂种植物(F1后代)也显示该性状。实施例18通过过表达磷酸核糖焦磷酸合酶来改造出具有提高的生物量产生的小麦植物以Ishida等(NatureBiotech.14745(1996))所述方法进行小麦转化。Bobwhite栽培种(可得自CYMMIT，Mexico)常用于转化。将未成熟胚与带有"超级二元，，载体的根癌农杆菌共培养，并通过器官发生获得转基因植物。95/06722。如所述构建载体。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的玉米基因(美国专利6,025,541)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因，以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，使用34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)来提供性状基因的组成型表达。与农杆菌孵育后，将胚在愈伤组织诱导培养基上培养，接着在含有咪唑啉酮作为选择剂的再生培养基上培养。将培养皿在光照下以25。C孵育2-3周，或者直至发育出嫩枝。将绿色的嫩枝从每个胚上转移至生根培养基，并以25。C孵育2-3周，直至发育出根。将生根的嫩枝移植到温室中的土壤里。从显示咪唑啉酮除草剂耐性并对转基因为PCR阳性的植物产生Tl种子。接着根据上述方法对Tl转基因植物评价其提高的生物量产生。单基因座T-DNA插入的Tl代将以3:1的比例分离该转基因。含有1或2个转基因拷贝的后代对咪唑啉酮除草剂有耐性，并显示出与缺少该转基因的后代相比提高的生物量产生。实施例19鉴定相同和异源的基因可以使用基因序列从cDNA或基因组文库中鉴定相同或异源的基因。可以使用如cDNA文库，通过核酸杂交分离相同基因(例如全长cDNA克隆)。取决于目的基因的丰度，将100,000至l，OOO，OOO个重组噬菌体涂板并转移至尼龙膜。以碱变性后，通过如UV交联将DNA固定在膜上。杂交在高严格条件下进行。在水溶液中，杂交和洗涤以lMNaCl的离子强度和68。C的温度进行。通过如放射性产P)缺口转录标记(HighPrime,Roche,Mannheim,Germany)来产生杂交探针。通过放射自显影来检测信号。可以与上述类似的方式使用低严格杂交和洗涤调节来鉴定相关但不相同的部分相同或异源基因。就水溶液杂交而言，离子强度一般保持在1MNaCl，而温度逐渐从68。C降低至42。C。可以通过使用合成的放射性标记寡核苷酸探针来分离仅在不同结构域(例如10-20个氨基酸)中具有同源性(或序列同一性/相似性)的基因序列。通过用T4多核苷酸激酶将两个互补寡核普酸的5，末端磷酸化来制备放射性163标记的寡核苷酸。所述互补寡核苷酸退火并连接形成多联体。接着通过如缺口转录对双链多联体进行放射性标记。杂交一般使用高寡核苷酸浓度在低严格条件下进行。寡核苷酸杂交液6xSSC0.01M磷酸钠1mMEDTA(pH8)0.5%SDS100^g/ml变性鲑精DNA0.1%脱脂奶粉在杂交过程中，将温度逐渐降低至估计的寡核苷酸Tm以下5-10。C，或者降低至室温，然后进行洗涤步骤和放射自显影。洗涤以低严格度进行，例如使用4xSSC洗涤3次。其他细节描述于SambrookJ.等，1989，"MolecularCloning:ALaboratoryManual,"ColdSpringHarborLaboratoryPress或者AusubelF.M.等，1994，"CurrentProtocolsinMolecularBiology,"JohnWiley&Sons。实施例20通过用抗体筛选表达文库来鉴定相同基因cDNA克隆可用于产生重组多肽，例如在大肠杆菌中产生(例如QiagenQIAexpresspQE系统)。接着一般通过Ni-NTA亲和层析(Qiagen)对重组多肽进行亲和纯化。接着使用重组多肽产生特异性抗体，例如使用标准技术免疫兔子。如Gu等，BioTechniques17，257(1994)所述，使用以重组抗原饱和的Ni-NTA柱对抗体进行亲和纯化。接着可使用抗体通过免疫筛选来筛选表达cDNA文库，以鉴定相同或异源的基因(Sambrook,J.等，1989，"MolecularCloning:ALaboratoryManual,"ColdSpringHarborLaboratoryPress或者Ausubel,F.M.等，1994，"CurrentProtocolsinMolecularBiology",JohnWiley&Sons)。实施例21体内诱变可通过以维持其遗传信息完整性之能力受损的大肠杆菌或其他微生物(例如芽孢杆菌或者酵母，如酿酒酵母)传代质粒(或其他载体)DNA来进行微生物的体内诱变。典型的增变菌抹在其DNA修复系统的基因中含有突变(例如mutHLS、mutD、mutT等，参阅RuppW.D.，DNArepairmechanisms,Esc/imc/h"co/iandSa/歸we〃"，2277-2294页，ASM,1996，Washington).这些菌林为本领域技术人员所熟知。这些菌林的使用展示于例如GreenerA.和CallahanM.，Strategies7,32(1994)。优选在微生物中选择并测试后将突变DNA分子转移进植物。根据本文实例的多个实施例产生转基因植物。实施例22通过使用组织特异性启动子或胁迫诱导型启动子过表达PRS编码基因(例如来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻)来改造出具有提高的生物量生产的拟南芥植物。如实施例1所述产生过表达低温抗性和/或耐性相关蛋白编码基因(例如来自欧洲油菜、大豆、玉米和水稻)的转基因拟南芥植物以表达在组织特异性启动子或胁迫诱导型启动子控制下的编码PRS蛋白的转基因。与非转基因野生型植物相比，T2代植物显示出提高的生物量产生和/或干物质产生和/或种子产量。实施例23通过过表达PRS基因(例如来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻)来改造出具有提高的生物量产生的苜蓿植物使用McKersie等(PlantPhysiol.119，839(1999))的方法转化苜蓿(Medicagosativa)的再生克隆。苜蓿的再生和转化是基因型依赖性的，因此需要再生植物。已经描述了获得再生植物的方法。例如，可以如Brown和Atanassov(PlantCellTissueOrganCulture4，111(1985))所述，从栽培种(AgricultureCanada)或任何其他商品苜蓿品种中对其进行选择。或者，选择RA3品种(UniversityofWisconsin)用于组织培养(Walker等，Am.J.Bot.65，54(1978))。将叶柄外植体与含有双元载体的根癌农杆菌C58C1pMP90(McKersie等，PlantPhysiol119，839(1999))或LBA4404的过夜培养物共培养。已经描述了将用于植物转化的许多不同的双元载体系统(例如AnG.，AgrobacteriumProtocols,MethodsinMolecularBiology,Vol44，47-62页，GartlandK.M.A.和DaveyM.R编辑.HumanaPress,Totowa，NewJersey)。许多都是基于Bevan(NucleicAcidResearch.12，8711(1984))所述的载体pBIN19，其包括侧翼为才艮癌农杆菌Ti质粒的左边界和右边界序列的植物基因表达盒。植物基因表达盒由至少两个基因组成——选择标记基因和调节性状基因的cDNA或基因组DNA转录的植物启动子。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的拟南芥基因(美国专利5,7673,666和6,225,105)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因，以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，使用34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)来提供性状基因的组成型表达。在含有288mg/LPro、53mg/L硫代脯氨酸、4.35g/LK2S04和100乙酰丁香酮的SH诱导培养基上在黑暗中将外植体培养3天。以半强度的Murashige-Skoog培养基(Murashige和Skoog，1962)洗涤外植体，并涂板到相同的SH诱导培养基上，但其中不含乙酰丁香酮，而是含有合适的选择剂和合适的抗生素以抑制农杆菌生长。几周后，将体细胞胚转移至无生长调节剂、无抗生素并含有50g/L蔗糖的BOi2Y发育培养基。其后使体细胞胚在半强度的Murashige-Skoog培养基上萌发。将生根的苗移植到盆中并在温室中培养。通过节剪切繁殖T0转基因植物，并在Tnrface生长培养基中生根。如上文实施例中所述分析T1或T2代植物。与非转基因野生型植物相比，植物具有提高的生物量产生和/或干物质产生和/或种子产量。实施例24通过过表达PRS基因(例如来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻)来改造出具有提高的生物量产生的黑麦草植物可将来自若干不同黑麦草品种的种子作为外植体来源用于转化，包括商品品种Gunne(可得自Sval6fWeibull种子公司)或者Affinity品种。将种子依次用1%Tween-20表面灭菌1分钟，以100%漂白剂表面灭菌60分钟，用去离子水和蒸馏水漂洗3次(每次5分钟)，接着在黑暗中在湿润的无菌滤纸上萌发3-4天。将苗再用1。/。Tween-20灭菌1分钟，以75%漂白剂灭菌5分钟，并用双蒸水漂洗3次，每次5分钟。将经表面灭菌的种子置于含有Murashige和Skoog基础盐和维生素、20g/L蔗糖、150mg/L天冬酰胺、500mg/L酪蛋白水解物、3g/LPhytagel、10mg/LBAP和5mg/二氯甲氧苯酸的愈伤组织诱导培养基上。将平板在黑暗中以25。C孵育4天以进行种子萌发和胚胎发生愈伤组织诱导。在愈伤组织诱导培养基上4周后，剪去苗的嫩枝和根，将愈伤组织转移至新鲜培养基，再培养4周，接着转移至MSoMSO培养基在光照下培养2周。将一些愈伤组织片(11-17周龄)通过10目筛并置于愈伤组织诱导培养基上，或者在250ml瓶中的100ml液体黑麦草愈伤组织诱导培养基(与用琼脂诱导愈伤组织的培养基相同)中培养。将瓶用箔裹住，并在黑暗中在23。C下以175rpm摇动1周。用40目筛将液体培养基过篩来收集细胞。将篩上收集的级分置于固体黑麦草愈伤组织诱导培养基并在黑暗中以25。C培养l周。接着将愈伤组织转移至含有1%蔗糖的MS培养基并培养2周。转化可通过农杆菌或微粒轰击法来实现。产生在pUC载体中含有组成型植物启动子和基因cDNA的表达载体。使用Qiagen试剂盒，根据生产商的说明从大肠杆菌细胞中制备质粒DNA。将约2g胚胎发生愈伤组织涂在培养皿中无菌滤纸的中心。在滤纸上添加含有10g/L蔗糖的液体MSO等分试样。根据Sanford等，1993的方法用质粒DNA包裹金微粒(大小为1.0pm),并使用以下参数递送至胚胎发生愈伤组织每次轰击500ng孩丈粒和2照DNA,1300psi，挡板到愈伤组织平板的距离为8.5cm，每个愈伤组织轰击1次。轰击后，将愈伤组织转移回新鲜的愈伤组织发育培养基中，并在室温下在黑暗中维持1周时间。接着将愈伤组织转移至25°C下光照的生长条件，以用合适的选择剂(例如250nMArsenal、5mg/LPPT或50mg/L卡那霉素)起始胚分化。出现了对选择剂有抗性的嫩枝，一旦枯萎就转移至土壤中。通过PCR分析原代转基因植物(TO)的样品，以证实T-DNA的存在。通过Southern杂交证实这些结果，其中将DNA在1%琼脂糖凝胶上电泳SynthesisKit(RocheDiagnostics),通过PCR制备以洋地黄毒苦标记的探针，并如生产商的推荐来使用。通过剪下分蘖对转基因TO黑麦草植物进行无性繁殖。将移植的分蘖在温室中维持2个月，直至已良好建立。如上述产生并分析Tl或T2代植物并分析。实施例25通过过表达PRS基因(例如来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻)来改造出具有提高的生物量生产的大豆植物根据对TexasA&M专利US5，164，310所述方法的以下修改来转化大豆。一些商品大豆品种适于通过该方法进行转化。通常使用栽培种Jack(可得自IllinoisSeedFoundation)进行转化。通过将种子浸入70%(v/v)乙醇6分钟和补充有0.1%(v/v)Tween的25%商业漂白剂(NaOC1)20分钟而进4亍消毒，然后用无菌双蒸水漂洗4次。通过从每个苗上除去胚根、下胚轴和一个子叶来繁殖7日龄的苗。接着，将带有一个子叶的上胚轴转移至培养皿中新鲜的萌发培养基，并在16小时光周期(约100pmol/m、)下以25。C孵育3周。从3-4周龄植物上剪下叶腋节(约4mm长)。切下叶腋节并在农杆168菌LBA4404培养基中孵育。已经描述了用于植物转化的许多不同的双元载体系统(例如AnG.，AgrobacteriumProtocols.MethodsinMolecularBiologyVol.44，47-62页，GartlandK.M.A.和DaveyM.R.编辑.HumanaPress,Totowa，NewJersey)。许多都是基于Bevan(NucleicAcidResearch.12，8711(1984))所述的载体pBIN19，其包括侧翼为根癌农杆菌Ti质粒的左边界和右边界序列的植物基因表达盒。植物基因表达盒由至少两个基因組成——选择标记基因和调节性状基因cDNA或基因组DNA转录的植物启动子。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的拟南芥基因(美国专利5,7673,666和6,225,105)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因以提供基因转录的组成型、发育、組织或环境型调节。在本实施例中，型表达。、_B、、、土、，共培养处理后，洗涤外植体并转移至补充有500mg/L泰门汀的选择培养基。剪下嫩枝并置于嫩枝延长培养基上。在移植至土壤之前，将长于1cm的嫩枝置于生根培养基上2至4周。通过PCR分析原代转基因植物(T0),以证实T-DNA的存在。通过Southern杂交证实这些结果，其中将DNA在1%琼脂糖凝胶上电泳并转移至带正电的尼龙膜(RocheDiagnostics)。使用PCRDIGProbeSynthesisKit(RocheDiagnostics),通过PCR制备以洋地黄毒苷标记的探针，并如生产商的推荐来使用。过表达例如来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻的低温抗性和/或耐性相关基因的大豆植物具有更高的种子产量。如所述产生并分析Tl或T2代植物，将干物质产生和/或种子产量与非转基因野生型植物进行比较。实施例26通过过表达PRS基因(例如来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻)来改造出具有提高的生物量产生的油菜籽/芸苔植物使用5-6日龄幼苗的子叶柄和下胚轴作为外植体用于组织培养并根据Babic等(PlantCellRep17,183(1998))转化。商品栽培种Westar(AgricultureCanada)是用于转化的标准品种，但也可使用其他品种。可使用含有双元载体的根癌农杆菌LBA4404用于芸苔转化。已经描述了用于植物转化的许多不同的双元载体系统(例如AnG.，AgrobacteriumProtocols.MethodsinMolecularBiologyVol.44,47-62页，GartlandK.M.A.和DaveyM.R.编辑.HumanaPress,Totowa，NewJersey)。许多都是基于Bevan(NucleicAcidResearch.12，8711(1984))所述的载体pBIN19，其包括侧翼为根癌农杆菌Ti质粒的左边界和右边界序列的植物基因表达盒。植物基因表达盒由至少两个基因组成——选择标记基因和调节性状基因cDNA或基因组DNA转录的植物启动子。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的拟南芥基因(美国专利5,7673,666和6,225,105)。类似地，可以4吏用多种启动子来调节性状基因以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，可以型表达:—曰、'、土、，将芸苔种子在70%乙醇中表面灭菌2分钟，接着在含有一滴Tween-20的30%Clorox中表面灭菌10分钟，其后用无菌蒸馏水漂洗3次。接着将种子在含有1%蔗糖、0.7%Phytagar的无激素的半强度MS培养基上以23°C、16小时光照体外萌发5天。从体外苗上剪下附有子叶的子叶柄外植体，并通过将叶柄外植体的切口末端浸入细菌悬液中来接种农杆菌。接着将外植体在含有3mg/LBAP、3%蔗糖、0.7%Phytagar的MSBAP-3培养基上以23。C、16小时光照培养2天。与农杆菌共培养2天后，将叶柄外植体转移至含有3mg/LBAP、头孢噻肟、羧千青霉素或特美汀(300mg/L)的MSBAP-3培养基上7天，接着在含有头孢噻肟、羧节青霉素或泰门汀以及选择剂的MSBAP-3培养基上培养，直至再生出嫩枝。当嫩枝为5-10mm长时，将其剪下并转移至嫩枝延长培养基(MSBAP-0.5，含有0.5mg/LBAP)。将长度约2cm的嫩枝转移至生根培养基(MSO)用于根诱导。通过PCR分析原代转基因植物(TO)的样品，以证实T-DNA的存在。通过Southern杂交证实这些结果，其中将DNA在1%琼脂糖凝胶上电泳并转移至带正电的尼龙膜(RocheDiagnostics),使用PCRDIGProbeSynthesisKit(RocheDiagnostics),通过PCR制备以洋地黄毒苷标记的探针，并如生产商的推荐来使用。接着根据上文所述方法对转基因植物评估其提高的生物量产生。发现过表达来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻的PRS具有的转基因油茱籽/芸苔与非转基因对照植物相比具有提高的生物量产生。实施例27通过过表达PRS基因(例如来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻)来改造出具有提高的生物量产生的玉米植物使用对Ishida等(NatureBiotech14745(1996))所述方法的修改来进行玉米(ZeaMaysL.)转化。玉米中的转化是基因型依赖性的，仅有特定的基因型适于转化和再生。近交林系A188(UniversityofMinnesota)或以A188为亲本的杂种是转化供体材料的良好来源(Fromm等Biotech8，833(1990)),但也可成功地使用其他基因型。在授粉后约11天(DAP)从玉米植物上收获穗，这时未成熟胚的长度约为1至1.2mm。将未成熟胚与带有"超级二元"栽体的根癌农杆菌共培养，并通过器官发生获得转基因植物。95/06722。如所述构建栽体。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的玉米基因(美国专利6，025，541)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因，以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，使用34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)来提供性状基因的组成型表达。将剪下的胚在愈伤组织诱导培养基上培养，接着在含有咪唑啉酮作为选择剂的玉米再生培养基上培养。将培养皿在光照下以25。C孵育2-3周，或者直至发育出嫩枝。将绿色的嫩枝从每个胚上转移至玉米生根培养基，并以25。C孵育2-3周，直至发育出根。将生根的嫩枝移植到温室中的土壤里。从显示咪唑啉酮除草剂耐性并对转基因为PCR阳性的植物产生Tl种子。接着根据上述方法对Tl转基因植物评价其提高的生物量产生。单基因座T-DNA插入的Tl代将以1:2:1的比例分离该转基因。含有1或2个转基因拷贝的后代(3/4的后代)对咪唑啉酮除草剂有耐性，并显示出与缺少该转基因的后代相比提高的生物量产生。这些植物具有更高的种子产量。纯合T2植物显示出相似的表型。纯合转基因植物与非转基因植物的杂交植物(F1后代)也显示提高的生物量产生。实施例28通过过表达PRS基因(例如来自欧洲油菜、大豆、玉米或水稻)来改造出具有提高的生物量产生的小麦植物以Ishida等(NatureBiotech.14745(1996))所述方法进行小麦转化。Bobwhite栽培种(可得自CYMMIT，Mexico)常用于转化。将未成熟胚与带有"超级二元，，载体的根癌农杆菌共培养，并通过器官发生获得转基因植物。95/06722。如所述构建载体。可以使用多种选择标记基因，包括编码突变的乙酰羟酸合酶(AHAS)的玉米基因(美国专利6,025,541)。类似地，可以使用多种启动子来调节性状基因，以提供基因转录的组成型、发育、组织或环境型调节。在本实施例中，使用34S启动子(GenBank登记号M59930和X16673)来提供性状基因的组成型表达。与农杆菌孵育后，将胚在愈伤组织诱导培养基上培养，接着在含有咪唑啉酮作为选择剂的再生培养基上培养。将培养皿在光照下以25。C孵育2-3周，或者直至发育出嫩枝。将绿色的嫩枝从每个胚上转移至生根培养基，并以25。C孵育2-3周，直至发育出根。将生根的嫩枝移植到温室中的土壤里。从显示咪唑啉酮除草剂耐性并对转基因为PCR阳性的植物产生Tl种接着根据上述方法对Tl转基因植物评价其提高的生物量产生。单基因座T-DNA插入的Tl代将以1:2:1的比例分离该转基因。含有1或2个转基因拷贝的后代(3/4的后代)与缺少该转基因的后代相比显示出提高的生物量产生。实施例29通过过表达PRS基因改造出具有提高的生物量产生的水稻植物水稻转化使用含有表达载体的农杆菌转化水稻植物。将水稻日本栽培种Nipponbare的成熟干种子脱皮。如下进行灭菌在70°/。乙醇中孵育1分钟，随后在0.2。/。HgCl2中孵育30分钟，然后用无菌蒸馏水洗涤6次(各15分钟)。接着将灭菌的种子在含有2，4-D的培养基(愈伤组织诱导培养基)上萌发。在黑暗中诱导4周后，剪下胚胎发生的盾片来源愈伤组织，并在相同的培养基上繁殖。两周后，通过在相同培养基上传代培养2周来增殖或繁殖愈伤组织。在共培养之前，将胚胎发生愈伤组织片在新鲜培养基上传代培养3天(以增强细胞分裂活性)。使用含有表达载体的农杆菌菌林LBA4404进行共培养。以农杆菌接种含有适当抗生素的AB培养基并以28。C培养3天。接着收集细菌并悬浮于液体共培养培养基中，至密度(OD600)约为1。接着将悬液转移至培养皿，并将愈伤组织浸没在悬液中15分钟。接着将愈伤组织在滤纸上吸干并转移至固化的共培养培养基，并在黑暗中以25。C孵育3天。在选择剂存在下，将共培养的愈伤组织在含有2，4-D的培养基上在黑暗中以28。C培养4周。在此期间，发育出了迅速生长的抗性愈伤组织岛。将此材料转移至再生培养基并在光照下孵育后，在接下来的4至5周中释^L胚胎发生势并发育出嫩枝。从愈伤组织上剪下嫩枝并在含有生长素的培养基上孵育2至3周，再转移至土壤里。将变硬的嫩枝在温室中以高湿度和短日照进行培养。从每个构建体产生了约35个独立的T0水稻转化体。将原代转化体从组织培养室转移至温室中。以定量PCR分析验证T-DNA插入片段的拷贝数后，保留显示选择剂耐受性的仅含有单个拷贝的转基因植物用于收获Tl种子。接着在移植3至5个月后收获种子。该方法以超过50%的比率获得单基因座转化体(Aldemita和Hodgesl996，Chan等1993，Hid等1994)。水稻表型评价方法1.评价设置保留了Tl后代对转基因存在/不存在以3:1分离的8个事件中的5个。对于每个这些事件，通过监测视觉标记的表达来选择含有转基因的约10个T1苗(杂合子和纯合子)和不含转基因的约10个T1苗(失效合子)。在随机位置将转基因植物和相应的失效合子并列培养。温室条件为短日照(12小时光照)，光照期28。C，黑暗期22。C，相对湿度为70%。从播种阶段到植物成熟阶段，使植物数次穿过数字成像柜。在每个时间点对每林植物获取至少6个不同角度的数字图像(2048xl536像素，16百万色)。2.统计学分析F检验使用双因素ANOVA(方差分析)作为统计学模型对植物表型特征进行总体评价。对所有本发明基因转化事件的所有植物中所有测量参数进行F检验。进行F检验以检查基因对所有转化事件的影响，以及验证该基因的总体效果(也称为全局性基因效果)。F检验的真实全局基因效果的显著性阈值设置为％概率水平。显著的F检验值代表基因效果，表示不仅仅是基因的存在或位置导致了表型的差异。3.测量的参数3.1生物量相关参数的测量从播种阶段到植物成熟阶段，使植物数次穿过数字成像拒。在每个时间点对每林植物获取至少6个不同角度的数字图像(2048xl536像素，16百万色)。通过对以背景区分的地上植物部分的数字图像的总像素数进行计数来测定植物的地上面积(或叶生物量)。该数值在同一时间点取自不同角度的图像之间进行平均，并通过校准转换为以平方毫米表示的物理表面值。实验显示，这样测量的地上植物面积与地上植物部分的生物量相关。地上面积是在植物到达其最高叶生物量的时间点测量的面积。早期活力是萌发后3周的植物(苗)地上面积。根生物量的提高表示为根总生物量(以植物生命期中观察到的最高根生物量测量)，或者表示为根冠指数(以根和嫩枝活跃生长期中根生物量与嫩枝生物量之间的比值来衡量)的增加。3.2种子相关参数的测量收获成熟的一级圆锥花序，计数，装袋，用条形码标记，接着在烘箱中以37。C干燥3天。接着脱粒花序，收集所有的种子并计数。使用吹气设备将饱满的籽实与空壳分开。弃去空壳，对剩余部分再次计数。在分析天平上对饱满的种子称重。通过计数在分离步骤后剩余的饱满籽实数来确定饱满种子数。通过对从一林植物收获的所有饱满籽实进行称重来测量每林植物的种子总重。通过对收获自一抹植物的籽实数进行计数来测量每林植物的种子总数。从计数的饱满种子数及其总重外推出千粒重(TKW)。本发明的收获指数(HI)定义为每抹植物的种子总重与地上面积(mm2)的比值再乘以因数106。每个圆锥花序的总花数在本发明中定义为种子总数与成熟一级圓锥花序数的比值。种子饱满率在本发明中定义为饱满种子数与种子(或小花)总数的比值(表达为％)。权利要求1.用于产生与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分的方法，该方法通过在所述植物细胞或植物或其部分中提高或产生选自磷酸核糖焦磷酸合酶的一种或多种活性来实现。2.用于产生与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分的方法，该方法通过在所述植物细胞或植物或其部分中提高或产生至少一种多肽的一种或多种活性来实现，所述多肽包括选自以下的多肽(i)包含选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、7、8、9、10、11、14、15、16、17、18、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之多肽、共有序列或至少一种多肽基序的多肽，或者(ii)包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50之多核苦酸的核酸分子的表达产物，(iii)或者(i)或(ii)的功能等同物。3.用于产生与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分的方法，该方法通过提高至少一种核酸分子的表达而在所述植物细胞或植物或其部分中提高或产生一种或多种活性来实现，所述核酸分子包括选自以下的核酸分子(a)编码选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之多肽的核酸分子；(b)选自SEQIDNO:1、3、12的核酸分子；(c)核酸分子，其由于遗传密码的简并性而可以衍生自选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之多肽序列，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(d)核酸分子，其与包含选自SEQIDNO:l、3、12之核酸分子的多核普酸的核酸分子序列具有至少30%同一性，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(e)核酸分子，其编码与(a)至(c)核酸分子所编码多肽的氨基酸序列具有至少30%同一性的多肽，并具有包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核苷酸的核酸分子所代表的活性，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(f)核酸分子，其在严格杂交条件下与(a)至(c)的核酸分子杂交，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(g)核酸分子，其编码可借助于针对(a)至(e)核酸分子之一所编码多肽产生的单克隆或多克隆抗体来分离并具有磷酸核糖焦磷酸合酶的活性的多肽，优选由包含选自SEQIDNO:l、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50的多核普酸的核酸分子所代表；(h)核酸分子，其编码多肽，该多肽包含选自SEQIDNO:7、8、9、10、11、14、15、16、17、18、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之共有序列或一种或多种多肽基序，并优选地具有磷酸核糖焦磷酸合酶的活性，优选由包含选自SEQIDNO:2、4、7、8、9、10、11、13、14、15、16、17、18、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73之多肽的多肽所代表；(i)核酸分子，其编码具有磷酸核糖焦磷酸合酶活性、优选由选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之蛋白质所代表的活性的多肽，并赋予与相应的未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量；(j)核酸分子，其包含可通过^f吏用选自SEQIDNO:5、6的引物扩增cDNA文库或基因组文库获得的多核苷酸，该核酸分子在其5，末端不以核苷酸ATA开始，并优选地具有磷酸核糖焦磷酸合酶的活性，优选由包含选白SEQIDNO:1、3、12、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、，48、49、50的多核苷酸的核酸分子所代表；和(k)核酸分子，其可通过严格杂交条件下篩选合适的核酸文库而获得，所述筛选中使用包含(a)或(b)的核酸分子之互补序列的探针或者使用其片至少15nt，优选20nt、30nt、50nt、100nt、200nt或500nt，并且该核酸分子编码具有磷酸核糖焦磷酸合酶活性的多肽、优选由包含选自SEQIDNO:2、4、13、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63之多肽的蛋白质所代表的多肽。4.权利要求l、2或3中任一项的方法，其包括以下步骤a)将编码磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸序列引入植物细胞、植物或其部分中，和b)在植物细胞、植物或其部分中表达该核酸所编码的磷酸核糖焦磷酸合酶，和c)选择植物细胞、植物或其部分，其中与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分对比或相比，该植物细胞、植物或其部分或其繁殖材料中的产量得到提高。5.权利要求1至3中任一项的方法，其中所述编码磷酸核糖焦磷酸合酶的核酸序列来源于选自子嚢菌、丝状真菌的真菌，优选选自曲霉属(Aspergillus)、木霉属(Trichoderma)、阿舒嚢霉属(Ashbya)、假嚢酵母属(Eremothecium)、脉孢菌属(Neurospora)、镰孢霉属(Fusarium)、白僵菌属(Beauveria)、被孢霉属(Mortierella)、水霉属(Saprolegnia)、腐霉属(Pythium)的真菌。6.权利要求1至3中任一项的方法，其中与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比，该转化的植物细胞、植物或其部分中的总含油量提高了。7.权利要求1至3中任一项的方法，其中与相应未转化野生型植物相比，该转化植物的种子中的总含油量提高了。8.权利要求9或10的方法，其中在培养后收获所述转化的植物细胞、植物或其部分，并在适当时分离该转化植物细胞、植物或其部分中存在的油。9.权利要求1至3中任一项的方法，其中与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比，该转化的植物细胞、植物或其部分的生物量增加了。10.权利要求12的方法，其中在培养后收获所述转化的植物细胞、植物或其部分，并在适当时分离该转化的植物细胞、植物或其部分中存在的生物量。11.权利要求1至3中任一项的方法，其中对单子叶作物植物，特别是禾本科物种进行转化。12.权利要求1至3中任一项的方法，其中对双子叶作物植物，特别是选自紫莞科(Asteraceae)、十字花科(Brassicacea)、菊科(Compostiae)、十字花科(Cruciferae)、葫声科(Cucurbitaceae)、豆科(Leguminosae)、茜草科(Rubiaceae)、痴科(Solanaceae)、梧桐科(Sterculiaceae)、山茶科(Theaceae)和伞形科(Umbelliferae)的植物进行转化。13.权利要求1至3中任一项的方法，其中所述植物选自腰果(Anacardiumoccidentale)、花生(Arachishypogaea)、琉璃苣(Boragoofficinalis)、芸莒(Brassicacampestris)、欧洲油菜(Brassicanapus)、芜青(Brassicarapa)、芥菜(Brassicajuncea)、亚麻齐(Camelinasativa)、大麻(Cannabissativa)、红花(Carthamustinctorius)、挪子(Cocosnucifera)、Crambeabyssinica、Cupheaciliata、油棕(Elaeisguineensis)、大豆(Glycinemax)、陆地棉(Gossypiumhirsitum)、海岛棉(Gossypiumbarbadense)、草冲帛(Gossypiumherbaceum)、向日葵(Helianthusannus)、亚麻(Linumusitatissimum)、月见草(Oenotherabiennis)、油橄揽(Oleaeuropaea)、荒麻(Ricinuscommunis)、玉米(Zeamays)、核桃(Juglansregia)、Prunusdulcis、玉米(玉蜀黍)、小麦、黑麦、燕麦、黑小麦、稻、大麦、黄豆、大豆、花生、棉花、油菜，包括芸苔和冬季油菜、木薯、胡椒、向曰葵、亚麻、琉璃苣、红花、亚麻子、报春花、油菜籽、球茎甘蓝、万寿菊；茄科植物，包括马铃薯、烟草、茄子、番茄；蚕豆属物种、豌豆、苜蓿、咖啡、可可、茶、柳属物种、油棕榈、椰子、多年生草本、饲料作物、烟草(Nicotianatabacum)和拟南芥(Arabidopsisthaliana)。14.包含至少一种核酸分子的转化的宿主细胞，所述核酸分子包含选自权利要求3.a)、3.b)、3.c)、3.d)、3.e)、3.f)、3.g)、3.h)、3.i)、3.j)或3.k)所述的核酸分子。15.通过权利要求1至15中任一项的方法产生的与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比具有提高的产量的转基因植物细胞、植物或其部分。16.由权利要求19的转基因植物产生的种子，其中所述种子对赋予与相应未转化野生型植物细胞、植物或其部分相比提高的产量的转基因是遗传纯合的。17.包含权利要求19的宿主细胞的植物组织、繁殖材料、收获的材料或才直物。18.包含至少一种选自权利要求3.a)、3.b)、3.c)、3.d)、3.e)、3.f)、3.g)、3.h)、3.i)、3.j)或3.k)所述核酸分子的核酸分子用于制备转基因植物细胞、植物或其部分的用途，所述转基因植物细胞、植物或其部分与相应未转化的野生型植物细胞、植物或其部分相比具有提高的产量。19.包含至少一种选自权利要求3.a)、3.b)、3.c)、3.d)、3.e)、3.i)、3.g)、3.h)、3.i)、3.j)或3.k)所述核酸分子的核酸分子作为选择植物或植物细胞的标记的用途，所述植物或植物细胞与相应未转化的野生型植物细胞、未转化的野生型植物或其部分相比具有提高的产量。全文摘要本发明一般涉及通过在植物中提高或产生中间体磷酸核糖焦磷酸(PRPP)相关多肽的一种或多种活性而与相应未转化野生型植物细胞相比具有提高的产量的植物细胞和/或植物。特别地，本发明涉及通过提高或产生磷酸核糖焦磷酸合酶(PRPP合成酶，PRS)的一种或多种活性而与相应未转化野生型植物细胞相比具有提高的产量的植物细胞和/或植物。本发明还涉及这些植物细胞和/或植物的产生、筛选和育种方法。文档编号A01H5/10GK101589148SQ200780045602公开日2009年11月25日申请日期2007年10月12日优先权日2006年10月13日发明者J·鲍尔,O·奥斯瓦德,R·M·茨伦纳,S·科斯洛夫斯基,T·灿克申请人:巴斯福植物科学有限公司;马克思-普朗克科学促进协会公司