专利名称：魔芋高效快速组培繁殖方法
技术领域：
本发明涉及一种植物的繁殖方法，尤其是一种利用植物组织离体培养技术人工快 速繁殖魔芋种苗及其在自然条件(或人工温室条件)下规模化生产魔芋原原种的魔芋高效 快速组培繁殖方法。
背景技术：
魔芋属天南星科多年生草本植物。魔芋在我国栽培已有两千多年的历史。魔芋 是自然界中大量含有葡甘露聚糖的特种经济作物，其经济价值高，发展潜力大，广泛应用于 食品、医药、轻纺、日化、印染、造纸、建筑、石油、环保等领域，被誉为“保健食品”和“工业味 Ib ο近些年来，国内外魔芋市场进一步得到拓展，一方面，随着国际现代魔芋加工技术 的不断进步，大大开拓了魔芋加工市场，使其产业链得到了巨大的延伸，各方对魔芋原料的 需求逐年上升渐呈供不应求之势；对魔芋及其加工产品的需求也越来越大，魔芋及其制品 价格看涨，极大地推动了魔芋种植及产业的发展。另一方面，随着国内生活水平的提高，人 们对魔芋的特殊保健作用的认识不断增强，国内市场逐步得到培育和发掘，魔芋产业快速 发展起来，正成为我国新世纪的朝阳产业，大力发展魔芋产业已成为不少地区调整农业结 构、发展农村经济的重要举措。随着人们对魔芋的认识不断深入，以及魔芋科技及加工业的 发展，魔芋产业必将发展成为农业增效、农民增收、企业增利、财政增税的新兴支柱产业。我国魔芋资源丰富，是魔芋的发源地之一，也是世界最大的魔芋产区。我国魔芋种 植虽有两千多年历史，但规模化种植只是从20世纪80年代开始，至今仅有20多年历史，由 于近些年来魔芋行情持续走高，加上各地政府的高度重视，农民种植魔芋积极性空前高涨， 魔芋种植面积迅速扩大，魔芋产业发展到一定程度时，魔芋生产中的深层次矛盾逐渐暴露 出来。那就是魔芋亩需种量大与魔芋繁殖系数低的矛盾；造成魔芋种植面积在进一步扩大 时，面临良种匮乏的局面。限制了魔芋种植面积的进一步扩大和良种的推广普及，正日益成 为生产上迫切需要解决而又难以解决的问题以及魔芋产业快速发展壮大的瓶颈因素。由于我国魔芋产业发展的历史较短，魔芋种植技术及新品种选育推广普及率不 高，各地魔芋引种、种植相当混杂，造成魔芋遗传基因高度混杂，种性不断退化，病害发病率 居高不下，种源十分缺乏，尤其是魔芋良种。魔芋有性繁殖因生产条件、技术条件、优良种质 材料等的缺乏或要求过高且生产周期过长以及繁殖后代性状不稳定等诸多原因，不具备魔 芋良种生产。目前生产上的魔芋种芋繁殖主要是靠球茎上生长的根状茎(芋鞭)来延续后 代的，其要经过2年以上生长长大才能再产生新的根状茎，且重量在0. 5kg以下一般只有 1 3条根状茎，只有生长3 4年的球茎，重量达1. 5kg以上的，才能产生3 8根根状 茎，但因目前魔芋价格好，一般0. 5kg以上的魔芋球茎都作商品芋出售和加工了，因而魔芋 当前的繁殖系数是很低的，远远不能满足生产上对种芋的巨大需求。这样一来，一方面是魔 芋行情不断看涨，加工企业对原料的需求迫切，收购的商品魔芋有越来越小的趋势，为了多 收购原料，甚至连种芋也收购，造成生产上的种芋越来越小；另一方面，由于生产上的种芋越来越小，来年能产出的种芋更少，造成魔芋种植面积下滑，也助推了魔芋原料的更加紧缺 的恶性循环。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种魔芋高效快速组培繁殖方法，为各魔芋产 区规模化大量生产魔芋组培种苗及其原原种提供了一种高效快速的繁殖技术方法，克服了 魔芋传统繁殖系数过低、种性混杂以及魔芋传统繁殖系数过低和全工厂化快繁成本过高而 无法与市场接轨的缺点，有效地提纯和保持了魔芋品种原有的种性，有利于良种生产与推 广，繁殖系数大、繁殖量大。为解决上述技术问题，本发明所采用的技术方案是一种魔芋高效快速组培繁殖 方法，该方法包括以下步骤1)培养基的制备以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤0. 05 2. 5mg/ L、α -萘乙酸0. 6 2. Omg/L、聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH 值为5. 8 6. 0的愈伤组织诱导培养基，以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤0.05 3. 5mg/L、α-萘乙酸 0. 1 1. 5mg/L、聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的芽分化诱导培养基，以1/2MS培养基为基本培养基，附加3-吲哚丁酸0.02mg/L、蔗糖30g/L、琼脂 6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的生根培养基，2)魔芋外植体的采集采集健康无病无伤的魔芋球茎作为外植体；3)魔芋外植体的消毒将采集的魔芋球茎外植体表面消毒；4)魔芋愈伤组织诱导将步骤3)中消毒好的魔芋球茎外植体，切成0. 4 1cm见 方的小块，接种到愈伤组织诱导培养基上培养，先暗培养14 16天后，再置于27°C 士 1 °C、 每天光照12 14h、光照强度1000 20001χ的条件下，诱导愈伤组织产生，平均愈伤诱导 率为97%，初代接种10天后，外植体开始膨大，18天后形成少量愈伤，白色居多，少量梅红 色，30天后，愈伤大量形成，愈伤组织诱导周期为30 35天；5)魔芋芽分化诱导将步骤4)中的愈伤组织转接到芽分化诱导培养基上培养，35 天后，芽点大量产生，魔芋芽分化诱导周期为60 70天，不定芽大量产生，魔芋组培种苗开 始形成；6)魔芋组培种苗生根培养将步骤幻中形成的魔芋组培种苗在生根培养基上培 养，生根培养时间需要7 15天，组培种苗形成白色的不定根3 5条，此时，一棵棵健壮 的魔芋组培种苗已经具备了移栽室外独立生长的能力；以上从接种到成苗整个过程需时最快只需3个半月左右；7)组培种苗移栽将经过生根培养的魔芋组培种苗移栽于苗床上，正常存活生长 的组培种苗正常倒苗后，即可收获魔芋原原种，获得的原原种平均重达10克以上。选择自然条件下的苗床或人工温室无土栽培苗床作为步骤7)中的苗床。自然条件下的苗床为选择遮阳度在50 70%的林下有机质丰富的菜园地作苗 床，在魔芋组培种苗移栽苗床前，苗床土壤要先施敌克松或生石灰进行消毒处理，用量为敌 克松250g/亩，生石灰25kg/亩，施后翻均。
人工温室无土栽培苗床为用草炭土与珍珠岩按1 1比例混配好基质，并经过集 中消毒处理后分装于栽培盆钵或栽培池中铺平。将魔芋组培种苗移栽至自然条件下的苗床应于每年3 7月进行，移栽后浇足定 根水及少量1/10MS营养液。每年其它时间将魔芋组培种苗移栽至人工温室无土栽培苗床中，温室温度宜控 制在M 之间，移栽后浇足定根水及少量1/10MS营养液，缓苗期温室湿度可控制在 90%以上，人工遮阳度在50 70%，阴雨天或寡照天应人工补光20001x以上。步骤幻中，将采集的魔芋球茎外植体，用自来水冲洗干净后，放入质量百分浓度 为洗衣粉水中冲洗5分钟，并搅拌；然后用清水冲洗干净后放到75%酒精(体积分数) 中浸泡1分钟，之后取出再浸入0.2% (体积分数)升汞水浸泡15分钟，并搅拌，最后用无 菌水冲洗3次，每次2 3分钟。步骤7)中，经过生根培养的魔芋组培种苗在移栽前要先在室内炼苗3 4天。步骤7)中，魔芋组培种苗移栽于苗床后的施肥方法为前1个月每7 10天浇一 次1/2MS营养液，1个月后每周浇一次1/4MS营养液，至倒苗前半个月停止。MS营养液的成分为(mg/L)i)NH4N0333000、KN03 3 8 0 00、CaC12 · 2H20 8800、MgSO4 · 7H20 7400、KH2PO4 3400 ；ii)KI 166、H3BO31240、MnSO4 · 4H20 4460、ZnSO4 · 7H20 1720、Na2 · MoO4 · 2H2050、 CuSO4 · 5H20 5、CaCl2 · 6H20 5 ；iii) FeSO4 · 7H20 5560、Na2 · EDTA · 2H20 7460 ；将配制好的MS营养液用水稀释两倍后得到1/2MS营养液；将配制好的MS营养液用水稀释四倍后得到1/4MS营养液；将配制好的MS营养液用水稀释十倍后得到1/10MS营养液。步骤7)中，在魔芋组培种苗整个生长期中，当室外气温超过30°C或发现有少量染 病苗时，需每7 10天喷施一次8000倍硫酸农用链霉素液+1000倍百菌清液，并对染病株 进行清除处理；在进行病害防治时，同时还要注意防治虫害。步骤1)中所用MS培养基的成分如下(mg/L)i) NH4NO3 33000、KNO3 38000、CaCl2 · 2H20 8800、MgSO4 · 7H20 7400、KH2PO4 3400 ；ii)KI 166、H3BO3 1240、MnSO4 · 4H20 4460、ZnSO4 · 7H20 1720、Na2 · MoO4 · 2H2050、 CuSO4 · 5H20 5、CaCl2 · 6H20 5 ；iii) FeSO4 · 7H20 5560、Na2 · EDTA · 2H20 7460 ；iv)肌醇20000、烟酸100、盐酸吡哆醇100、盐酸硫胺素100、甘氨酸400 ；将配制好的MS培养基用水稀释两倍后得到1/2MS培养基。本发明提供的魔芋高效快速组培繁殖方法，同现有魔芋传统繁殖方式及全工厂化 快繁方法相比，具有以下优点1、由于利用魔芋球茎材料，通过组织离体培养诱导，直接在培养瓶等容器内生产 出魔芋组培种苗，即种苗，继而生产出原原种，为各魔芋产区规模化大量生产魔芋组培种苗 及其原原种提供了一种高效快速的繁殖技术方法，繁殖系数大，繁殖量大，平均诱导率高于 90%，克服了魔芋传统繁殖系数过低、种性混杂的缺点，有效地提纯和保持了魔芋品种原有 的种性，有利于良种生产与推广。
2、接种材料为魔芋球茎，具有取材广泛充足，可周年生产种苗；每年3 7月在自 然条件下生产原原种，其它时间可于人工温室条件下生产原原种。3、外植体消毒彻底，初代污染率可控制在10%以下。4、愈伤诱导和芽分化率平均在88%以上，生根诱导率达100%，平均诱导率达 94%。5、集中成苗周期大大缩短，比一般快繁方法(需时约5个月以上)时间缩短30% 以上，使年生产魔芋组培种苗数量增加3成以上，且在自然条件下与人工温室条件下相结 合的方法生产原原种，克服了全工厂化快繁成本过高而无法与市场接轨的缺点，大大降低 了生产成本，极大提高了生产效益，有利于各魔芋主产区在无巨额资金建设与运行智能温 室工厂的情况下，利用现有简易大棚、经济林地等条件在自然条件下开展魔芋原原种生产 及魔芋良种的普及与推广。6、获得的原原种平均重达10克以上，大大降低了生产成本，极大提高了生产效益。
具体实施例方式实施例一一种魔芋高效快速组培繁殖方法，该方法包括以下步骤1)培养基的制备以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤2. 5mg/L、α -萘 乙酸2. Omg/L、聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0 的愈伤组织诱导培养基，以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤3. 5mg/L、α -萘乙酸1. ang/L、聚 乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的芽分化诱导
培养基，以1/2MS培养基为基本培养基，附加3-吲哚丁酸0.02mg/L、蔗糖30g/L、琼脂 6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的生根培养基；2)魔芋外植体的采集采集健康无病无伤的2 3年生魔芋球茎作为外植体；3)魔芋外植体的消毒将采集的魔芋球茎外植体，用自来水冲洗干净后，放入质 量百分浓度为洗衣粉水中冲洗5分钟，并搅拌；然后用清水冲洗干净后放到75%的酒精 中浸泡1分钟，之后取出再浸入0. 2%升汞水浸泡15分钟，并搅拌，最后用无菌水冲洗3次， 每次2 3分钟；4)魔芋愈伤组织诱导将步骤3)中消毒好的魔芋球茎外植体，切成0. 4cm见方的 小块，接种到愈伤组织诱导培养基上培养，先暗培养14天后，再置于27°C 士 1°C、每天光照 12h、光照强度1000 20001x的条件下，诱导愈伤组织产生，平均愈伤诱导率为97%，初代 接种10天后，外植体开始膨大，18天后形成少量愈伤，白色居多，少量梅红色，30天后，愈伤 大量形成，愈伤组织诱导周期为30 35天；5)魔芋芽分化诱导将步骤4)中的愈伤组织转接到芽分化诱导培养基上培养，35 天后，芽点大量产生，魔芋芽分化诱导周期为60 70天，不定芽大量产生，魔芋组培种苗开 始形成；6)魔芋组培种苗生根培养将步骤幻中形成的魔芋组培种苗在生根培养基上培养，生根培养时间需要7 15天，组培种苗形成白色的不定根3 5条，此时，一棵棵健壮 的魔芋组培种苗已经具备了移栽室外独立生长的能力；7)将步骤6)中生根的魔芋组培种苗开瓶炼苗3 4天后移栽于自然条件下的苗 床或人工温室无土栽培苗床上；经过精心栽培、肥水管理、温光控制及病虫害防治，正常倒 苗后收获魔芋原原种，获得的原原种平均重达10克以上。魔芋组培种苗移栽于苗床后的施肥方法为前1个月每7 10天浇一次1/2MS营 养液，1个月后每周浇一次1/4MS营养液，至倒苗前半个月停止。在魔芋组培种苗整个生长期中，当室外气温超过30°C或发现有少量染病苗时，需 每7 10天喷施一次8000倍硫酸农用链霉素液+1000倍百菌清液，并对染病株进行清除 处理；在进行病害防治时，同时还要注意防治虫害。实施例二一种魔芋高效快速组培繁殖方法，该方法包括以下步骤1)培养基的制备以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤0. 6mg/L、α -萘 乙酸0. 6mg/L、聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0 的愈伤组织诱导培养基，以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤1. 5mg/L、α -萘乙酸0. 5mg/L、聚 乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的芽分化诱导
培养基，以1/2MS培养基为基本培养基，附加3-吲哚丁酸0. O^iig/L、蔗糖30g/L、琼脂 6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的生根培养基；2)魔芋外植体的采集采集健康无病无伤的2 3年生魔芋球茎作为外植体；3)魔芋外植体的消毒将采集的魔芋球茎外植体，用自来水冲洗干净后，放入质 量百分浓度为洗衣粉水中冲洗5分钟，并搅拌；然后用清水冲洗干净后放到75%的酒精 中浸泡1分钟，之后取出再浸入0. 2%升汞水浸泡15分钟，并搅拌，最后用无菌水冲洗3次， 每次2 3分钟；4)魔芋愈伤组织诱导将步骤3)中消毒好的魔芋球茎外植体，切成0. 6cm见方的 小块，接种到愈伤组织诱导培养基上培养，先暗培养15天后，再置于27°C 士 1°C、每天光照 13h、光照强度1000 20001x的条件下，诱导愈伤组织产生，平均愈伤诱导率为97%，初代 接种10天后，外植体开始膨大，18天后形成少量愈伤，白色居多，少量梅红色，30天后，愈伤 大量形成，愈伤组织诱导周期为30 35天；5)魔芋芽分化诱导将步骤4)中的愈伤组织转接到芽分化诱导培养基上培养，35 天后，芽点大量产生，魔芋芽分化诱导周期为60 70天，不定芽大量产生，魔芋组培种苗开 始形成；6)魔芋组培种苗生根培养将步骤幻中形成的魔芋组培种苗在生根培养基上培 养，生根培养时间需要7 15天，组培种苗形成白色的不定根3 5条，此时，一棵棵健壮 的魔芋组培种苗已经具备了移栽室外独立生长的能力；7)将步骤6)中生根的魔芋组培种苗开瓶炼苗3 4天后移栽于自然条件下的苗 床或人工温室无土栽培苗床上；经过精心栽培、肥水管理、温光控制及病虫害防治，正常倒 苗后收获魔芋原原种，获得的原原种平均重达10克以上。
魔芋组培种苗移栽于苗床后的施肥方法为前1个月每7 10天浇一次1/2MS营 养液，1个月后每周浇一次1/4MS营养液，至倒苗前半个月停止。在魔芋组培种苗整个生长期中，当室外气温超过30°C或发现有少量染病苗时，需 每7 10天喷施一次8000倍硫酸农用链霉素液+1000倍百菌清液，并对染病株进行清除 处理；在进行病害防治时，同时还要注意防治虫害。实施例三一种魔芋高效快速组培繁殖方法，该方法包括以下步骤1)培养基的制备以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤2. Omg/L、α -萘 乙酸2. Omg/L、聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0 的愈伤组织诱导培养基，以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤1. Omg/L、α -萘乙酸0. lmg/L、聚 乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的芽分化诱导
培养基，以1/2MS培养基为基本培养基，附加3-吲哚丁酸0. 02mg/L、蔗糖30g/L、琼脂 6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的生根培养基；2)魔芋外植体的采集采集健康无病无伤的2 3年生魔芋球茎作为外植体；3)魔芋外植体的消毒将采集的魔芋球茎外植体，用自来水冲洗干净后，放入质 量百分浓度为洗衣粉水中冲洗5分钟，并搅拌；然后用清水冲洗干净后放到75%的酒精 中浸泡1分钟，之后取出再浸入0. 2%升汞水浸泡15分钟，并搅拌，最后用无菌水冲洗3次， 每次2 3分钟；4)魔芋愈伤组织诱导将步骤3)中消毒好的魔芋球茎外植体，切成0. 8cm见方的 小块，接种到愈伤组织诱导培养基上培养，先暗培养16天后，再置于27°C 士 1 °C、每天光照 14h、光照强度1000 20001x的条件下，诱导愈伤组织产生，平均愈伤诱导率为97%，初代 接种10天后，外植体开始膨大，18天后形成少量愈伤，白色居多，少量梅红色，30天后，愈伤 大量形成，愈伤组织诱导周期为30 35天；5)魔芋芽分化诱导将步骤4)中的愈伤组织转接到芽分化诱导培养基上培养，35 天后，芽点大量产生，魔芋芽分化诱导周期为60 70天，不定芽大量产生，魔芋组培种苗开 始形成；6)魔芋组培种苗生根培养将步骤幻中形成的魔芋组培种苗在生根培养基上培 养，生根培养时间需要7 15天，组培种苗形成白色的不定根3 5条，此时，一棵棵健壮 的魔芋组培种苗已经具备了移栽室外独立生长的能力；7)将步骤6)中生根的魔芋组培种苗开瓶炼苗3 4天后移栽于自然条件下的苗 床或人工温室无土栽培苗床上；经过精心栽培、肥水管理、温光控制及病虫害防治，正常倒 苗后收获魔芋原原种，获得的原原种平均重达10克以上。魔芋组培种苗移栽于苗床后的施肥方法为前1个月每7 10天浇一次1/2MS营 养液，1个月后每周浇一次1/4MS营养液，至倒苗前半个月停止。在魔芋组培种苗整个生长期中，当室外气温超过30°C或发现有少量染病苗时，需 每7 10天喷施一次8000倍硫酸农用链霉素液+1000倍百菌清液，并对染病株进行清除 处理；在进行病害防治时，同时还要注意防治虫害。
实施例四一种魔芋高效快速组培繁殖方法，该方法包括以下步骤1)培养基的制备以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤0. 05mg/I α -萘 乙酸2.0mg/L、聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0 的愈伤组织诱导培养基，以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤0. 05mg/L、α -萘乙酸1. 5mg/L、 聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的芽分化诱
导培养基，以1/2MS培养基为基本培养基，附加3-吲哚丁酸0. O^ig/L、蔗糖30g/L、琼脂 6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的生根培养基；2)魔芋外植体的采集采集健康无病无伤的2 3年生魔芋球茎作为外植体；3)魔芋外植体的消毒将采集的魔芋球茎外植体，用自来水冲洗干净后，放入质 量百分浓度为洗衣粉水中冲洗5分钟，并搅拌；然后用清水冲洗干净后放到75%的酒精 中浸泡1分钟，之后取出再浸入0. 2%升汞水浸泡15分钟，并搅拌，最后用无菌水冲洗3次， 每次2 3分钟；4)魔芋愈伤组织诱导将步骤3)中消毒好的魔芋球茎外植体，切成1. Ocm见方的 小块，接种到愈伤组织诱导培养基上培养，先暗培养14天后，再置于27°C 士 1°C、每天光照 13h、光照强度1000 20001x的条件下，诱导愈伤组织产生，平均愈伤诱导率为97%，初代 接种10天后，外植体开始膨大，18天后形成少量愈伤，白色居多，少量梅红色，30天后，愈伤 大量形成，愈伤组织诱导周期为30 35天；5)魔芋芽分化诱导将步骤4)中的愈伤组织转接到芽分化诱导培养基上培养，35 天后，芽点大量产生，魔芋芽分化诱导周期为60 70天，不定芽大量产生，魔芋组培种苗开 始形成；6)魔芋组培种苗生根培养将步骤幻中形成的魔芋组培种苗在生根培养基上培 养，生根培养时间需要7 15天，组培种苗形成白色的不定根3 5条，此时，一棵棵健壮 的魔芋组培种苗已经具备了移栽室外独立生长的能力；7)将步骤6)中生根的魔芋组培种苗开瓶炼苗3 4天后移栽于自然条件下的苗 床或人工温室无土栽培苗床上；经过精心栽培、肥水管理、温光控制及病虫害防治，正常倒 苗后收获魔芋原原种，获得的原原种平均重达10克以上。魔芋组培种苗移栽于苗床后的施肥方法为前1个月每7 10天浇一次1/2MS营 养液，1个月后每周浇一次1/4MS营养液，至倒苗前半个月停止。在魔芋组培种苗整个生长期中，当室外气温超过30°C或发现有少量染病苗时需每 7 10天喷施一次8000倍硫酸农用链霉素液+1000倍百菌清液，并对染病株进行清除处 理；在进行病害防治时，同时还要注意防治虫害。上述各实施例中，自然条件下的苗床为选择遮阳度在50 70%的林下有机质丰 富的菜园地作苗床，在魔芋组培种苗移栽苗床前，苗床土壤要先施敌克松或生石灰进行消 毒处理，用量为敌克松250g/亩，生石灰亩，施后翻均。人工温室无土栽培苗床为用草炭土与珍珠岩按1 1比例混配好基质，并经过集 中消毒处理后分装于栽培盆钵或栽培池中铺平。
将魔芋组培种苗移栽至自然条件下的苗床应于每年3 7月进行，移栽后浇足定 根水及少量1/10MS营养液。每年其它时间将魔芋组培种苗移栽至人工温室无土栽培苗床中，温室温度宜控 制在M 之间，移栽后浇足定根水及少量1/10MS营养液，缓苗期温室湿度可控制在 90%以上，人工遮阳度在50 70%，阴雨天或寡照天应人工补光20001x以上。MS营养液的成分为(mg/L)i) NH4NO3 33000、KNO3 38000、CaCl2 · 2H20 8800、MgSO4 · 7H20 7400、KH2PO4 3400 ；ii)KI 166,H3BO3 1240、MnSO4 · 4H20 4460、ZnSO4 · 7H20 1720、Νει2 · MoO4 · 2H2050、 CuSO4 · 5H20 5、CaCl2 · 6H20 5 ；iii) FeSO4 · 7H20 5560、Na2 · EDTA · 2H20 7460 ；将配制好的MS营养液用水稀释两倍后得到1/2MS营养液；将配制好的MS营养液用水稀释四倍后得到1/4MS营养液；将配制好的MS营养液用水稀释十倍后得到1/10MS营养液。MS培养基的成分如下(mg/L)i) NH4NO3 33000、KNO3 38000、CaCl2 · 2H20 8800、MgSO4 · 7H20 7400、KH2PO4 3400 ；ii)KI 166,H3BO3 1240、MnSO4 · 4H20 4460、ZnSO4 · 7H20 1720、Νει2 · MoO4 · 2H2050、 CuSO4 · 5H20 5、CaCl2 · 6H20 5 ；iii) FeSO4 · 7H20 5560、Na2 · EDTA · 2H20 7460 ；iv)肌醇20000、烟酸100、盐酸吡哆醇100、盐酸硫胺素100、甘氨酸400 ；将配制好的MS培养基用水稀释两倍后得到1/2MS培养基。
权利要求
1.一种魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于该方法包括以下步骤1)培养基的制备以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤0.05 2. 5mg/L、 α -萘乙酸0. 6 2. Omg/L、聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH 值为5. 8 6. 0的愈伤组织诱导培养基，以MS培养基为基本培养基，附加6-苄氨基嘌呤0. 05 3. 5mg/L、α -萘乙酸0. 1 1. 5mg/L、聚乙烯吡咯烷酮0. 5mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L后制得pH值为5. 8 6. 0的 芽分化诱导培养基，以1/2MS培养基为基本培养基，附加3-吲哚丁酸0. 02mg/L、蔗糖30g/L、琼脂6. 5g/L 后制得PH值为5. 8 6. 0的生根培养基；2)魔芋外植体的采集采集健康无病无伤的魔芋球茎作为外植体；3)魔芋外植体的消毒将采集的魔芋球茎外植体表面消毒；4)魔芋愈伤组织诱导将步骤3)中消毒好的魔芋球茎外植体，切成0.4 Icm见方的 小块，接种到愈伤组织诱导培养基上培养，先暗培养14 16天后，再置于27°C 士 1 °C、每天 光照12 14h、光照强度1000 20001χ的条件下，诱导愈伤组织产生，愈伤组织诱导周期 为30 ；35天；5)魔芋芽分化诱导将步骤4)中的愈伤组织转接到芽分化诱导培养基上培养，魔芋芽 分化诱导周期为60 70天，不定芽大量产生，魔芋组培种苗开始形成；6)魔芋组培种苗生根培养将步骤幻中形成的魔芋组培种苗在生根培养基上培养，生 根培养时间需要7 15天；7)组培种苗移栽将经过生根培养的魔芋组培种苗移栽于苗床上，正常存活生长的组 培种苗正常倒苗后，即可收获魔芋原原种。
2.根据权利要求1所述的魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于选择自然条件下 的苗床或人工温室无土栽培苗床作为步骤7)中的苗床。
3.根据权利要求2所述的魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于自然条件下的苗床 为选择遮阳度在50 70%的林下有机质丰富的菜园地作苗床，在魔芋组培种苗移栽苗床 前，苗床土壤要先施敌克松或生石灰进行消毒处理，用量为敌克松250g/亩，生石灰亩，施后翻均。
4.根据权利要求2所述的魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于人工温室无土栽培 苗床为用草炭土与珍珠岩按1 1比例混配好基质，并经过集中消毒处理后分装于栽培盆 钵或栽培池中铺平。
5.根据权利要求2所述的魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于将魔芋组培种苗 移栽至自然条件下的苗床应于每年3 7月进行，移栽后浇足定根水及少量1/10MS营养 液；每年其它时间将魔芋组培种苗移栽至人工温室无土栽培苗床上，温室温度宜控制在 24 之间，移栽后浇足定根水及少量1/10MS营养液，缓苗期温室湿度可控制在90%以 上，人工遮阳度在50 70%，阴雨天或寡照天应人工补光20001x以上。
6.根据权利要求1所述的魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于步骤3)中，将采 集的魔芋球茎外植体，用自来水冲洗干净后，放入质量百分浓度为洗衣粉水中冲洗5分 钟，并搅拌；然后用清水冲洗干净后放到75%酒精中浸泡1分钟，之后取出再浸入0. 2%升汞水浸泡15分钟，并搅拌，最后用无菌水冲洗3次，每次2 3分钟。
7.根据权利要求1所述的魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于步骤7)中，魔芋 组培种苗移栽于苗床后的施肥方法为前1个月每7 10天浇一次1/2MS营养液，1个月后 每周浇一次1/4MS营养液，至倒苗前半个月停止。
8.根据权利要求5或7所述的魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于MS营养液的成 分为(mg/L)i)NH4NO3 33000、KNO3 38000、CaCl2 · 2H20 8800, MgSO4 · 7H20 7400、KH2PO4 3400 ；ii)KI166、H3BO3 1240、MnSO4 · 4H20 4460、ZnSO4 · 7H20 1720、Νει2 · MoO4 · 2H2050、 CuSO4 · 5H20 5、CaCl2 · 6H20 5 ；iii)FeSO4 · 7H20 5560、Na2 · EDTA · 2H20 7460 ；将配制好的MS营养液用水稀释两倍后得到1/2MS营养液；将配制好的MS营养液用水稀释四倍后得到1/4MS营养液；将配制好的MS营养液用水稀释十倍后得到1/10MS营养液。
9.根据权利要求1所述的魔芋高效快速组培繁殖方法，其特征在于步骤7)中，在魔 芋组培种苗整个生长期中，当室外气温超过30°C或发现有少量染病苗时，需每7 10天喷 施一次8000倍硫酸农用链霉素液+1000倍百菌清液，并对染病株进行清除处理；在进行病 害防治时，同时还要注意防治虫害。
全文摘要
一种魔芋高效快速组培繁殖方法，是将魔芋球茎切块材料离体培养诱导产生愈伤、不定芽和不定根，进而在较短时间内大量形成魔芋组培种苗，再将组培种苗移栽于苗床中，辅以必要的药剂及肥料，正常倒苗后获得魔芋原原种。本发明提供的魔芋高效快速组培繁殖方法，克服了魔芋传统繁殖系数过低和全工厂化快繁成本过高而无法与市场接轨的缺点，繁殖系数高，繁殖量大，初代污染率低于10％，平均诱导率高于90％，集中成苗周期缩短为3个半月，可周年生产种苗，每年3～7月在自然条件下生产原原种，其它时间于人工温室条件下生产原原种，获得的原原种平均重达10克以上，大大降低了生产成本，极大提高了生产效益。
文档编号A01H4/00GK102144562SQ20111004569
公开日2011年8月10日 申请日期2011年2月24日 优先权日2011年2月24日
发明者廖文月, 张明海, 彭金波, 徐小燕, 牟愔, 费甫华 申请人:宜昌市农业科学研究院