2.9抗氧化作用 徐惠波等[36]通过灌服鹿茸磷脂，发现鹿茸磷脂可明显抑制老年小鼠血、脑、肝组织 MO-B活性，增强脑和肝组织SOD活性，减少褐素含量，从而延缓衰老。
[0024] 陈晓光等[37]研究表明，鹿茸提取物能明显提高小鼠体内SOD，CAT等氧化酶水平， 降低体内MDA水平，说明了鹿茸提取物具有一定的提高机体抗氧化作用。另外，研究表明， 鹿茸提取物对由CCl 4和乙醇诱发的肝损伤具有一定的保护作用。
[0025] 2009年周冉等[38]首次研究了鹿茸超临界提取物在邻二氢菲-Fe2+体系产生的羟 基自由基体系、脱氧核糖-铁体系产生的羟基自由基体系中的体外抗氧化活性，结果表明 鹿茸超临界提取物具有明显的抑制作用，且后者体系的抑制作用大于前者，并且都呈一定 的量效关系。
[0026] 研究发现鹿茸水提物、正丁醇提物、乙醚提取物均具有抑制MAO-B作用并能显著 增加脑内5-羟色胺和多巴胺含量[39]。鹿茸多胺也具有很好的抗氧化作用[4°]。
[0027] 2. 10 抗疲劳 罗翔丹等[41]研究表明鹿茸多肽能延长小鼠爬杆时间和负重游泳时间，说明鹿茸多肽 具有抗疲劳的能力。张馨文等[42]研究表明鹿茸脂溶性成分可以提高小鼠的抗疲劳时间，随 着鹿茸剂量的增加小鼠抗疲劳时间变长，不同剂量组都表现出显著的差异G°〈〇. 01)。2011 年张睿等[43]发现鹿茸水提物能延长小鼠的负重游泳时间，能降低BLA、BUN的含量，提高小 鼠体内糖原的储备能量，对小鼠有明显的抗疲劳作用。
[0028] 另有研究报道鹿茸系列产品如鹿茸酒、鹿茸保健品(鹿茸、人参、杜仲、五味子等十 余种中药）均有很好的抗疲劳作用 [44]。
[0029] 2. 11其它作用 1)对血流动力学的影响 日本学者久保道德等[45]研究发现鹿茸乙醇浸提物和马鹿茸乙醇浸提物具有抑制红细 胞凝集和促进纤维蛋白溶解的作用。
[0030] 吴勃岩[46]对环磷酰胺诱发的小鼠灌胃鹿茸精来观察对遗传物质损伤保护作用， 研究结果表明鹿茸精具有抗诱变作用，调节和恢复机体失调的能力。
[0031] 2)抗肿瘤作用 范玉林等将小鼠接种S180肿瘤，腹腔注射鹿茸蛋白进行了抗肿瘤初步研究，结果表明 鹿茸蛋白具有抗肿瘤作用[47]。此外也有研究证明鹿茸角Folch试剂提取液和水提液能保 护动物对抗结肠癌 [48]。
[0032] 3)糖尿病 研究发现鹿茸提取物能降低四氧嘧啶诱导的1型糖尿病小鼠的血糖、血脂水平、MDA浓 度，提高麦芽糖活力，调节糖尿病小鼠的饮食水平[49]。
[0033] 本发明以链脲佐菌素（STZ)诱导2型糖尿病动物模型，研究鹿茸对2型糖尿病小 鼠的影响，发现鹿茸在糖尿病的治疗方面具有很好的疗效。因此，鹿茸在作为预防和治疗糖 尿病药物方面有着可观的开发和应用价值。
[0034] 经检索未见鹿茸在2型糖尿病动物体内实验方面的报道。
【发明内容】
[0035] 本发明提供的鹿茸具有显著的抗糖尿病的作用。它具有能够降低血糖，缓解糖尿 病症状，起到预防和治疗糖尿病的作用。
[0036] 本发明进一步公开了鹿茸在糖尿病预防、治疗的药品及食品中的应用。
[0037] 本发明可以用在抗糖尿病类药品食品可接受的载体中。
[0038] 本发明的鹿茸具有抗糖尿病作用，鹿茸能够降低空腹血糖和糖耐量，降低甘油三 月旨、总胆固醇、低密度脂蛋白（LDL-C)水平等作用，从而达到抗肥胖的作用。本发明所提供 的鹿茸可用于抗糖尿病。
[0039] 本发明提供鹿茸治疗2型糖尿病，其特征在于： 取ICR健康小鼠饲喂普通饲料适应一周后，给予高脂饲料饲喂四周，形成肥胖，然后进 行腹腔注射STZ，造成2型糖尿病模型。造模成功后，随机分为四组，模型组、阳性(二甲双 胍）组、鹿茸低剂量组和鹿茸高剂量组，每组10只，继续给予高脂饲料喂养，直至实验结束。 鹿茸细粉（180目)使用5%。的CMC-Na溶液助悬，空白组和模型组以5%。的CMC-Na溶液灌胃； 阳性药组灌胃剂量为250mg/kg ;小鼠鹿茸低剂量组为0. 15g/kg ;鹿茸高剂量组为0. 3g/kg。 实验结果表明鹿茸具有降血糖、改善葡萄糖耐量、降低甘油三脂、总胆固醇、低密度脂蛋白 (LDL-C)水平等作用，具有治疗2型糖尿病的作用。
[0040] 本发明的积极效果在于： 鹿茸具有降血糖、改善葡萄糖耐量、调节血脂以及保护和修复受损胰岛的作用。鹿茸可 应用于预防及治疗糖尿病。
[0041] 药学上可接受的载体为常规的药物载体，包括稀释剂、赋形剂、填充剂、黏合剂、崩 解剂、吸收促进剂、表面活性剂、吸附载体、甜味剂等。
[0042] 本发明可以以单一或组合物的形式通过口服给药方式施用于糖尿病治疗的患者。 也可以制备成片剂、冲剂、胶囊。
[0043] 本发明的施药量可根据给药途径及组合情况，患者年龄、体重、疾病和患病程度等 变化，日剂量为Ig/天。
[0044] 实验例1鹿茸对2型糖尿病小鼠的作用 1实验材料 鹿茸、鹿胎、鹿角盘细粉(样品粉碎，过180目筛）；基础饲料、高脂饲料均来自于吉林白 求恩医学院动物实验中心，其组成配方如下： 表1饲料组分表（g/l〇〇g) Tab. I Table of composition of animal feeds (g/lOOg)
2仪器与试剂 电子天平(十万分之一)，德国sartorius公司；FS-2型高速分散匀质机江苏金坛金 城国盛实验仪器厂；离心机（GL-21LM)，湖南星科科学仪器有限公司；连续光谱扫描式酶标 仪，美国分子仪器公司；高密度脂蛋白试剂盒，南京建成生物工程研究所；低密度脂蛋白试 剂盒南京建成生物工程研究所；甘油三酯试剂盒，南京建成生物工程研究所；羧甲基纤维 素钠，北京化工厂；生理盐水，吉林大药房；氯仿、甲醇为分析纯，北京化工厂；镊子，手术 刀，注射器，相机等，实验室自备。
[0045] 3实验方法 3. 1实验动物 雄性ICR小鼠100只（18-22g)，购自吉林白求恩医学院动物实验中心，许可证号为 SCXK-(吉）2007-0003。随机分组，适应饲养，明暗交替12h循环，条件为温度23 ± I °C，湿度 为45-50%，自由采食普通饲料和饮水，适应时间为一周 3. 2模型的建立 ICR小鼠饲喂普通饲料适应一周称重、记录，从中随机挑出10只小鼠作为空白对照组， 继续喂食普通饲料，直到实验结束。其他小鼠给予高脂饲料饲喂四周，四周后小鼠眼眶取 血，取血清进行血脂指标测定，血脂指标符合要求时，进行腹腔注射STZ。
[0046] 将小鼠禁食不禁水12h，STZ以100mg/kg的剂量溶于0· 1Μ、ΡΗ4· 5柠檬酸缓冲盐溶 液中，用STZ进行腹腔注射，配制和注射的过程中严格注意避光。注射STZl周后，测定小鼠 空腹血糖值，以后每隔一周测定一次，血糖值稳定且在7. 8mmol/L以上者即为2型糖尿病造 模成功。
[0047] 3. 3糖尿病小鼠的分组及给药 造模成功后，随机分为四组，模型组、阳性(二甲双胍）组、鹿茸低剂量组和鹿茸高剂量 组，每组10只，继续给予高脂饲料喂养，直至实验结束。鹿茸细粉（180目)使用5%。的CMC-Na 溶液助悬，空白组和模型组以5%。的CMC-Na溶液灌胃；阳性药组灌胃剂量为250mg/kg ;给 药组剂量按照2010版《中国药典》中鹿茸细末的服用剂量：l-2g/日，根据人和小鼠之间服 用量的换算率计算得出，鹿茸低剂量组为〇. 15g/kg ;鹿茸高剂量组为0. 3g/kg。以小鼠体重 0.1 mVlOg每日灌胃一次，连续给药4周，每天记录各组小鼠体重、摄食量、饮水量。
[0048] 3. 4给药期间血糖的检测 实验过程中，每隔10天测定一次空腹血糖，使用血糖仪进行血糖值测定，做好记录，并 使用曲线图和柱形图来评价小鼠给药期间空腹血糖的变化趋势。
[0049] 3. 5给药期间小鼠口服糖耐量的测定 糖尿病小鼠经过4周给药治疗后，禁食不禁水12h后进行口服糖耐量的测定。各组小 鼠给药Ih之后，以2g/kg的葡萄糖灌胃，测定〇111；[11、30111；[11、60111；[11、120111；[11的血糖值，并以时 间为横坐标，血糖值为纵坐标绘制曲线，计算曲线下面积（AUC)。
[0050] 3.6生化指标的测定 实验结束后，将小鼠眼球取血，收集血液，以4200r/min转速离心，将血清吸出，按照总 胆固醇（TC)、甘油三酯（TG)、高密度脂蛋白（HDLC)说明书的方法进行测定血清中各指标的 含量。取血后，将小鼠脱白处死，迅速摘取肝脏、脾脏、胸腺、胰腺并称重，肝脏取0.5g左右， 按1 :9的比例加入4°C生理盐水，匀浆，以4200r/min转速反复离心，取上清液，按照丙二醛 (MDA)和超氧化物歧化酶（SOD)试剂盒方法测定肝脏中MDA和SOD的含量。
[0051] 3. 7统计学处理 数据使用SPSS17.0软件进行统计学分析，运用比较均值中的单因素 ANOVA方差 分析处理数据，数据结果用平均值土标准偏差（M±SE)表示*7X0.05表示有显著性差 异，01表示有极显著性差异。
[0052] 4实验结果 4. 1注射STZ前小鼠的血脂情况 腹腔注射STZ前，眼眶取血测定小鼠血脂的情况，，国际上认为血清中TG超过 I. 70mmol/l，HDLC低于0. 91mmol/l为正常值，血脂不在正常值范围内时，即为高脂血症。测 定高脂饲料组TC含量为4. 32 mmol/1，TG含量为2. 36 mmol/1，HDL-C含量为0. 79 mmol/ 1，说明小鼠血脂已经上升，可进行STZ腹腔注射诱导建立2型糖尿病模型，成模率较高，大 概约70%。
[0053] 4. 2给药期间小鼠摄食量和饮水量的变化 附图1为给药期间每只小鼠的摄食量变化，如图所示，各组在给药期间每只小鼠的摄 食量变化不大，空白组摄食量最少，平均8. 75g/只/天，模型组摄食量波动不大，基本在 26-28g/只/天变化，给药组摄食量的变化也较小，鹿茸低、高剂量组从第二周开始摄食量 都有所下降，到第四周分别降低了 30. 3%、33. 3%。，结合附图2,给药第四周各组小鼠的摄 食量变化可以看出，空白组与模型组相比，差异极显著（***P < 0.001)，阳性组、鹿茸低、高 剂量组与模型组相比，摄食量均有不同程度的降低，差异不显著（P > 〇. 05)。
[0054] 各组饮水量方面，空白组饮水剂量最少，平均维持在7. 75g/只/天。模型组饮水 量最高，平均是在31. 43g/只/天，比空白组高