一种花生染色体探针染色试剂盒及其使用方法与流程

本发明涉及花生细胞学研究领域，特别涉及一种花生染色体探针染色试剂盒及其使用方法。

背景技术：

植物染色体工程技术，是利用细胞遗传学的方法，人为地、有目的、有计划地增、减、代换、易位同种或异种染色体、或染色体片段，从而创造符合人们需要的具有不同染色体结构的新植物。染色体工程育种在植物种质资源的创造、育种改良、遗传研究材料创制等方面发挥着重要作用。而构建植物染色体核型依赖于单条染色体的识别技术，但是，植物染色体鉴定技术的落后，限制了植物染色体的深入研究和染色体工程技术的发展。因此，需要发展细胞学鉴定方法，促进植物染色体结构和功能研究。

纵观染色体研究历程，染色体鉴定技术先后经历了染色体分带技术、以质粒dna探针为主的荧光原位杂交技术(fish)以及最新发展的单链寡核苷酸探针fish等。三种技术相比，质粒dnafish比分带技术带型更稳定，更易于识别。单链寡核苷酸探针fish技术比质粒dnafish技术，程序更为简单、方法更高效，成本更低。

花生是世界上重要的经济作物。简单、高效、低成本的染色体鉴定技术有利于花生品种或种质的批量鉴定。目前，寡核苷酸fish技术已经成功在许多作物上应用，并大幅提升了染色体的鉴定效率。然而，寡核苷酸fish技术依然包含较多的人为操作步骤，不利于自动化鉴定。

前人研究发现，寡核苷酸不仅可以进行变性fish，还可以进行非变性fish。迄今为止，小麦、黑麦、大麦和玉米都有寡核苷酸非变性fish的报道。这主要是因为寡核苷酸可能具备直接侵入dna双联的能力。我们研究发现，适当长度的寡核苷酸探针侵入能力更强，更稳定，并且可以在极低浓度侵入到染色体，产生信号，这为我们发展寡核苷酸探针染液提供一个很好的思路。

技术实现要素：

本发明针对花生开发了一种比寡核苷酸fish效率更高的探针染色技术，并设计了试剂盒。它可以高效的染色花生染色体，并且可以重复利用，有益于未来自动化分析鉴定花生染色体。

为了实现上述目的，本发明所采用的技术方案是：

一种花生染色体探针染色试剂盒，包括probemix干粉、浓度为100μg/mldapi母液、2×ssc缓冲液、dapi缓冲液、染色缸。

上述试剂盒还包括品种对照核型。

probemix干粉中的探针包括tam荧光标记的dp-1、dp-7和fam荧光标记dp-5、dp-8，每种探针含量均为0.2od，具体如下：

2×ssc缓冲液由0.3m的柠檬酸三钠c6h5na3o7·2h2o和3m的nacl组成。

dapi缓冲液由0.1m柠檬酸和0.05mna2hpo4组成。

染色缸为黑色避光的玻璃染色缸。

一种花生染色体探针染色试剂盒的使用方法，包括以下步骤：

(1)染液配制：用2×ssc缓冲液溶解probemix干粉，其中探针dp-1、dp-5、dp-7和dp-8终浓度均为0.005od/ml；

(2)将包含有花生染色体的载玻片置于染液中，染色5-6h；然后用2×ssc缓冲液冲洗3-5次，再在每张载玻片上滴加体积比为2.5:500、浓度100μg/ml的dapi母液和dapi缓冲液的混合液，染色3-4min，之后用dapi缓冲液冲洗5次，滴加防荧光淬灭封片剂，盖上盖玻片，在荧光显微镜下照相。

染色温度为35-37℃。

步骤(2)的染液在染色缸中。

本发明有益效果：

本发明建立了花生探针染色技术，并开发了探针染色试剂盒，它是一种新型花生带型分析方法，与传统的分带技术和荧光原位杂交等分带技术相比，该技术方法简单、高效且成本更低，可有效用于花生物种识别和基因组分类等，并为下一步自动化分析鉴定花生染色体奠定基础。

附图说明

图1为利用本发明试剂盒对花生栽培种四粒红中期染色体染色结果(a)和核型图(b)。图1b中a、b分别代表花生的a和b基因组。

图2为利用本发明试剂盒对21个花生栽培种和30个花生野生种染色体染色获得的染色核型以及基因组分类情况。

图3为利用本发明试剂盒对经处理的花生根尖组织染色结果。图中a和b分别为两个不同的视野区域。图中a和b从左到右图片分别为dapi染色，红色探针染色信号和dapi染色与信号的合成图。

具体实施方式

以下结合实施例对本发明的具体实施方式作进一步详细说明。

实施例1、花生染色体探针染色试剂盒

所述的试剂盒包括probemix干粉、浓度为100μg/mldapi母液、2×ssc缓冲液、dapi缓冲液、染色缸和品种对照核型。

其中probemix干粉中的探针包括tam荧光标记的探针dp-1、dp-7和fam荧光标记的探针dp-5、dp-8，每种探针含量均为0.2od，具体如下：

2×ssc缓冲液由0.3m的柠檬酸三钠c6h5na3o7·2h2o和3m的nacl组成。

dapi缓冲液由0.1m柠檬酸和0.05mna2hpo4组成。

染色缸为黑色避光的玻璃染色缸。

实施例2、花生染色体探针染色试剂盒的使用方法，包括以下步骤：

(1)染液配制：利用1ml2×ssc缓冲液溶解probemix干粉，倒入染色缸，并加入39ml2×ssc缓冲液，使dp-1、dp-5、dp-7和dp-8终浓度均为0.005od/ml；

(2)将包含有花生染色体的载玻片(76×26×1mm)置于染色缸染液中，35-37℃染色6h；取出载玻片，用2×ssc缓冲液冲洗3次，然后在每张载玻片上滴加500μl体积比2.5:500的dapi母液(100μg/ml)和dapi缓冲液的混合液，染色3-4min，之后用dapi缓冲液冲洗4-5次，滴加5μl防荧光淬灭封片剂，盖上盖玻片，在荧光显微镜下照相。

实施例3、花生栽培种四粒红染色体的染色

采用实施例2的方法，用同一染色缸染液对花生栽培种四粒红中期染色体进行染色，染色获得图片(图1a)，并剪出每条染色体，排列出核型(图1b)。从图1中可以看出，利用试剂盒probemix染液染色后，染色体存在明显的红绿特征信号，a基因组以红色信号为主，b基因组以绿色信号为主，根据颜色可明显区分花生的a和b基因组。此外花生各染色体带型差异不同，特征如下：a基因组中，1号染色体只有端部有微弱的信号，2号染色体着丝粒处有较弱的红和绿色信号，3号染色体着丝粒和短臂近着丝粒处有强的红和绿色信号，4号染色体着丝粒处有较强的红色信号且长臂端部绿色信号较强，5号染色体同时有强的着丝粒红色信号和且长臂中间绿色信号，6号染色体有弱的红色着丝粒信号，7号染色体有很强的短臂端部信号，8号染色体有较强的红色着丝粒信号，9号染色体着丝粒处有强的红色信号且是最小的染色体，10号染色体是易被拉伸成两段的随体染色体；b基因组中，1号、7号、8号和10号染色体只有弱的端粒信号，没有其它信号，但1号染色体最大，7号、8号和10号染色体较难区分，2号染色体有弱的绿色着丝粒信号，3号染色体着丝粒和短臂近着丝粒处有较强的红和绿色信号，4号染色体着丝粒处有强的绿色信号，5号染色体同时有非常强的着丝粒绿色信号，6号染色体有中等强度的绿色着丝粒信号，9号染色体着丝粒处有中等强度的绿色信号且它是b基因组最小的染色体。

实施例4、花生属物种染色体的染色验证

采用实施例2的方法，用同一染色缸染液对21个花生栽培种和30个花生野生种(表1)染色体染色，拍照，排列染色体核型，结果构建了这51个物种的核型图(图2)。从核型图可以看出a基因组信号以红色为主，且均包含9号“小染色体”，而b基因组以绿色为主，包含大面积绿色着丝粒信号的5号染色体；f基因组有着丝粒大面积绿色信号的5号染色体，但其它染色体以红色信号为主；e基因组和k基因组均包含短臂大面积绿色信号的9号明显不同于a、b和f基因组，但e基因组其它染色体信号以绿色为主，而k基因组以红色为主；h基因组信号很少，明显不同于a、b、f、e和k基因组。在花生各物种中，重复序列分布是相对稳定的，dp-1、dp-5、dp-7和dp-8均是利用重复序列设计的探针，因此用它们染色获得的染色核型图也是相对稳定的，表明可以以这个核型图为对照，有效区分栽培种和野生种基因组。

实施例5、花生根尖组织的染色

将花生根尖组织经酒精：醋酸的混合液(体积比3:1)处理后，然后放入包含有本发明染色液的缸染中，染色12h；然后用水冲洗5次，再将根尖放在载玻片上，滴加质量浓度45％的醋酸；盖上盖玻片压片，-80℃冰冻24h后，揭掉盖玻片，烘烤风干后，在每张载玻片上滴加体积比2.5:500的dapi母液(100μg/ml)和dapi缓冲液的混合液，染色3-4min，之后用dapi缓冲液冲洗5次，滴加5μl防荧光淬灭封片剂，盖上盖玻片，在荧光显微镜下照相(图3)。可以看出，花生组织染色质上出现了明显的红色信号，表明该试剂盒可以有效对经过处理的植物死体进行染色。

表1对照核型所用品种的系谱号、来源和区组

序列表

<110>河南省农业科学院

<120>一种花生染色体探针染色试剂盒及其使用方法

<160>4

<170>siposequencelisting1.0

<210>1

<211>57

<212>dna

<213>人工序列()

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