一种两面针的组织培养快繁方法与流程

文档序号:11781221阅读:673来源:国知局

本发明涉及到一种两面针的快繁技术领域,特征是一种两面针的组织培养快繁方法。



背景技术:

两面针为芸香科植物,两面针Zanthoxylum nitidm cRoxbjdc 的干燥根。主产广东、广西、福建、云南、贵州、浙江、台湾等地,全年采,挖取根部,除去枝叶、泥土、洗净、切片、晒干,其药理药性为,根是类圆柱形,长5~20cm,直径0.5~7cm,表面呈棕黄色或淡黄色,皮孔类圆形,黄色。商品多切成不规则的块片或段。大小不一,厚1~4mm,外皮脱落处呈浅褐色。切面皮部成棕色,木部浅黄色,可见同心性环纹及密集的小孔,质硬。气微香,味苦而辛辣,有麻舌感。以根皮厚、气味浓者为佳。主要成份:根和根皮含两面针碱,根皮还含布桔叶苷。功用主治:行气止痛,活血化瘀。用于风湿骨病,喉痹,胃痛,牙痛,跌打损伤,烫伤,蛇咬伤。



技术实现要素:

本发明的目的就提供一种通过诱导导入定芽、丛生芽增殖、试管苗生根、炼苗移栽等,使两面针通过丛生芽的离体快繁方式获得管苗,再经移栽获得成功的一种两面针的组织培养快繁方法。

本发明的技术解决方案是这样的,一种两面针的组织培养快繁方法,其特征在于包括以下工艺步骤:

(1)诱导不定芽:选取两面针带节藤茎为外植体,经75%酒精消毒16秒种后,用无菌水冲洗6次后置于0.4%的升汞溶液中消毒32分钟,然后用无菌水冲洗7次,经无菌滤纸吸干水分后接种到诱导培养基上,在29℃条件下全暗培养,直至诱导形成不定芽;

(2)丛生芽增殖培养:将不定芽接种到增殖培养基上进行增殖培养,接种后置于每天光照16小时,光照强度为1600lx,培养温度为29℃的条件下培养,19天转接一次;

(3)试管苗生根:将长至5cm的丛生芽分切接种到生根培养基上进行诱导生根,接种后先在29℃条件下全暗培养15天,然后每天光照16小时,光照强度为3100lx,培养温度为29℃的条件下培养至生根;

(4)炼苗移栽:将长至5cm的生根试管苗的培养瓶瓶盖打开自然光照下炼苗8天后,将试管苗从培养瓶中取出,洗掉根部培养基,栽入由泥炭土和河沙(1:1)混合成的基质中并定植于大田中。

步骤(1)所述的两面针带藤茎外植体在进行不定芽诱导之前需进行预处理,处理的方法是:将从野外采集的两面针带藤茎用自来水冲洗干净泥沙后置于0.06%的高锰酸钾溶液中浸泡9小时,再用自来水冲洗6次后用胶塑料袋密封后置于6℃冰箱中过夜备用。

步骤(1)所述的诱导培养基为:以GS为基本培养基,附加3.6%蔗糖0.6%琼脂0.2%活性炭0.6%酸性水解酪蛋白以及2.2mg/L KT2.2mg/L IBA和1.2mg/L 2,4-D,pH值为5.3。

步骤(2)所述的增殖培养基为:以MS为基本培养基,附加3.2mg/L 6-BA1.6mg/L NAA 7.0mg/L核黄素0.6mg/L D-泛酸钙7.0mg/L抗坏血酸6.0mg/L L-半胱氨酸和3.6%蔗糖0.6%琼脂0.2%活性炭,pH值为5.3。

步骤(3)所述的生根培养基为:以1/2MS为基本培养基,附加0.9mg/L IBA1.2mg/L GGR2.6mg/L L-半胱氨酸和2.6%蔗糖0.8%琼脂0.2%活性炭,pH值为5.3。

与现有技术相比本发明的突出效果是:技术工艺路线简单、可行,操作容易,育成的试管苗成活率达95%以上,为市场大量提供优质的两面针种苗打定基础。

具体实施方式

以下实施例是对本发明的进一步说明,不是对本发明的限制。

实施例1

1、外植体预处理:将从采集的两面针带藤茎用自来水冲洗干净泥沙后置于0.02%的高锰酸钾溶液中浸泡6小时,再用自来水冲洗6次后用胶塑料袋密封后置于2℃冰箱中过夜备用。

2、培养过程:

(1)诱导不定芽:两面针带节藤茎经75%酒精消毒10秒种后,用无菌水冲洗4次后经0.1%的升汞溶液中消毒20分钟,然后用无菌水冲洗5次,经无菌滤纸吸干水分后接种到诱导培养基上,在26℃条件下全暗培养,培养46天后形成不定芽。所采用的诱导培养基为:GS+1.6mg/LKT+0.2mg/LIBA和0.5mg/L 2,4-D +3.3%蔗糖+0.30%琼脂+0.06%活性炭+0.2%酸性水解酪蛋白,pH值为5.6;

(2)丛生芽增殖培养:将不定芽接种到增殖培养基上进行增殖培养,接种后置于每天光照16小时,光照强度为1100lx,培养温度为26℃的条件下培养,26天转接一次,增殖系数为4。所采用的增殖培养基为:MS+1.6mg/L 6-BA+0.6mg/L NAA +1.2mg/L核黄素+0.6mg/L D-泛酸钙+1.2mg/L抗坏血酸+1.2mg/L L-半胱氨酸+3.5%蔗糖+0.30%琼脂+0.2%活性炭,pH值为5.6;

(3)试管苗生根:将长至5cm的丛生芽分切接种到生根培养基上进行诱导生根,接种后先在26℃条件下全暗培养8天,然后每天光照16小时,光照强度为3100lx,培养温度为26℃的条件下培养21天生根,生根率达96%。所采用的生根培养基为:1/2MS+0.2mg/L IBA+0.5mg/L GGR+1.2mg/L L-半胱氨酸+2.2%%蔗糖+0.5%琼脂+0.2%活性炭,pH值为5.6;

(4)炼苗移栽:将长至5cm的生根试管苗的培养瓶瓶盖打开自然光照下炼苗6天后,将试管苗从培养瓶中取出,洗掉根部培养基,栽入由泥炭土和河沙(1:1)混合成的基质并定植于大田中,成活率达95%。

实施例2

1、外植体预处理:将从野外采集的两面针带藤茎用自来水冲洗干净泥沙后置于0.02%的高锰酸钾溶液中浸泡9小时,再用自来水冲洗4次后用胶塑料袋密封后置于6℃冰箱中过夜备用。

2、培养过程:

(1)诱导不定芽:两面针带节藤茎经75%酒精消毒6秒种后,用无菌水冲洗6次后经0.3%的升汞溶液中消毒12分钟,然后用无菌水冲洗6次,经无菌滤纸吸干水分后接种到诱导培养基上,在26℃条件下全暗培养,培养41天后形成不定芽。所采用的诱导培养基为:GS+0.9mg/L KT+0.3mg/L IBA和0.3mg/L 2,4-D +3.2%蔗糖+0.5%琼脂+0.2%活性炭+0.6%酸性水解酪蛋白,pH值为5.5;

(2)丛生芽增殖培养:将不定芽接种到增殖培养基上进行增殖培养,接种后置于每天光照13小时,光照强度为1250lx,培养温度为26℃的条件下培养,29天转接一次,增殖系数为7。所采用的增殖培养基为:MS+0.9mg/L 6-BA+0.4mg/L NAA +4.0mg/L核黄素+0.4mg/L D-泛酸钙+3.6mg/L抗坏血酸+4.6mg/L L-半胱氨酸+3.6%蔗糖+0.6%琼脂+0.06%活性炭,pH值为5.5;

(3)试管苗生根:将长至5cm的丛生芽分切接种到生根培养基上进行诱导生根,接种后先在26℃条件下全暗培养11天,然后置于每天光照13小时,光照强度为3000lx,培养温度为26℃的条件下培养29天生根,生根率达95%。所采用的生根培养基为:1/2MS+0.6mg/L IBA+1.2mg/L GGR+2.6mg/L L-半胱氨酸+2.6%%蔗糖+0.5%琼脂+0.06%活性炭,pH值为5.5;

(4)炼苗移栽:将长至5cm的生根试管苗的培养瓶瓶盖打开自然光照下炼苗8天后,将试管苗从培养瓶中取出,洗掉根部培养基,栽入由泥炭土和河沙(1:1)混合成的基质并定植于大田中,成活率达96%。

实施例3

1、外植体预处理:将从野外采集的两面针带藤茎用自来水冲洗干净泥沙后置于0.05%的高锰酸钾溶液中浸泡4小时,再用自来水冲洗5次后用胶塑料袋密封后置于5℃冰箱中过夜备用。

2、培养过程:

(1)诱导不定芽:两面针带节藤茎经75%酒精消毒5秒种后,用无菌水冲洗4次后置于0.1%的升汞溶液中消毒13分钟,然后用无菌水冲洗5次,经无菌滤纸吸干水分后接种到诱导培养基上,在25℃条件下全暗培养,培养48天后形成不定芽。所采用的诱导培养基为:GS+2.0mg/L KT+0.8mg/L IBA和0.4mg/L 2,4-D +3.5%蔗糖+0.4%琼脂+0.05%活性炭+0.3%酸性水解酪蛋白,pH值为5.4;

(2)丛生芽增殖培养:将不定芽接种到增殖培养基上进行增殖培养,接种后置于每天光照13小时,光照强度为1200lx,培养温度为27℃的条件下培养,26天转接一次,增殖系数为3~6。所采用的增殖培养基为:MS+1.5mg/L 6-BA+0.6mg/L NAA +5.0mg/L核黄素+0.5mg/L D-泛酸钙+6.0mg/L抗坏血酸+4.0mg/L L-半胱氨酸+3.5%蔗糖+0.5%琼脂+0.1%活性炭,pH值为5.4;

(3)试管苗生根:将长至6cm的丛生芽分切接种到生根培养基上进行诱导生根,接种后先在25℃条件下全暗培养13天,然后置于每天光照13小时,光照强度为3000lx,培养温度为25℃的条件下培养20天生根,生根率达95%。所采用的生根培养基为:1/2MS+0.2mg/L IBA+0.8mg/L GGR+1.5mg/L L-半胱氨酸+2.5%%蔗糖+0.5%琼脂+0.1%活性炭,pH值为5.4;

(4)炼苗移栽:将长至5cm的生根试管苗的培养瓶瓶盖打开并置于自然光照下炼苗6天后,将试管苗从培养瓶中取出,洗掉根部培养基,栽入由泥炭土和河沙(1:1)混合成的基质中并定植于大田中,成活率达95%。

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